Universidad Nacional Del Altiplano Parasitologia II

PARASITOLGIA VETERINARIA

VETERINARIA Y ZOOTECNIA UNA_PUNO] UNA_PUNO] [FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA

Universidad Nacional del Altiplano – Puno FACULTAD DE VETERINARIA Y ZOOTECNIA

INFORME DE LAS PRACTICAS DOCTORa: m.v.z. feliciana

PRESENTADO POR: RICHARD CURO CALSIN: codigo: 094137  SEMESTRE: IV  “2012”  

PARASITOLGIA VETERINARIA

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FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA LABORATORIO DE PARASITOLOGIA GUIA DE PRACTICAS PRACTICA Nº 1 INTRODUCCION AL ESTUDIO DE PROTOZOARIOS 1. OBTENCION Y REMISION DE MUESTRAS DE HECES AL LABORATORIO 2. PROCEDIMIENTO PARA LA OBTENCIÓN Y REMISION DE MUESTRA DE HECES AL LABORATORIO MATERIALES: 

Mandiles o mamelucos



Botas de jebe



Caja refrigerante (acero, madera)



Materiales de sujeción (sogas, mochetas)



Balde de plástico.



Jabón carbólico



Guantes de polietileno



Espátula de plástico.



Recipientes adecuados, como : -

Bolsas de polietileno

-

Embase de plástico o de vidrio de boca ancha con tapa o rosca

-

Rotulo que debe llevar el frasco en el que debe constar: . Nombre del Propietario o fundo . Identificación del animal



. Fecha y hora en que se obtuvo la muestra

ALGUNOS CRITERIOS QUE DEBE TOMARSE: 1. Número de Muestra: 

Cuando la cantidades son mayores a 100 = 10% (5%B, 5%M).



Cuando las cantidades son menores a 100 = Mínimo de 10 animales por rebaño o manada (por grupo de edad).

2. Las muestras tomadas deberán ser analizadas inmediatamente: 

Costa: Dentro de 18 horas como máximo



Sierra: Dentro de 48 horas máximo

En caso de no poder realizar el análisis dentro de este tiempo, es necesario utilizar  Sistemas fijadores como :

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COMPOSICION 

FORMOL AL 10%.: - Formol comercial 4%

-  Agua destilada

1 parte 3 parte -------------

4 partes 



F0RMOL SALINO - Formol comercial 4%

50 c.c.

- Agua Destilada

50 c.c.

- Na Cl

10 gr.

ALCOHOL POLIVINILICO (PVA), (PARA PRESERVAR) - PVA em polvo

254 gr.

- Solución saturada de bicloruro de mercúrio

312 ml.

- Glicerina

7.5 ml.

- Alcohol etílico (95%) - Alcohol acético glacial

176 ml. 25 ml

METODO DIRECTO EXTENSION FECAL DIRECTA MATERIALES. 

Muestra de heces



Varilla de vidrio



Laminas portaobjetos



Laminillas cubre objetos



Microscopio óptico.



 Agua desmineralizada y/o suero fisiológico o lugol débil.

PROCEDIMIENTO Y/O MÉTODOS 1.

Tomar una pequeñísima cantidad de heces y depositar al centro de un portaobjeto limpio.

2.

Poner 1-2 gotas más de agua desmineralizada o suero fisiológico y/o lugol débil, sobre las heces y luego mezclarlo completamente empleando la varilla de vidrio o palillo de madera.

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3.

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Con la varilla o el palillo de madera apartar la suspensión o estructuras duras no disueltas anteriormente.

4.

Cuidadosamente aplicar las laminillas cubreobjetos sobre la muestra evitando que se forme burbujas de aire.

5.

finalmente examinara el área bajo el microscopio óptico (10x,40x,100x),

RESULTADOS Y DISCUSIONES PROTOCOLO UNIVERSIDAD NACIONAL DEL ALTIPLANO FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

CIP LA RAYA PROTOCOLO Nº …………………………………………………………….………… NOMBRE DEL PROPIETARIO…………………………………………………..…… PROFESIONAL TRATANTE………………………………………………………….. LUGAR…………………………………..FECHA……………………………………… ZONA GEOFRAFICA Y TOPOGRAFICA… ………………………………………….

CARACTERISTICAS GENERALES DE LOS ANIMALES ESPECIE………………………..RAZA…………………………..SEXO……………..ESTADO NUTRICIONAL……………………………………………………………... TIPO DE CRIANZA……………………………………………………………………..

RESUMEN DE LA HISTORIA CLINICA SINTOMAS………………………………………………………………………………………………… …………………………………………………………………………. DIAGNOSTICO PRESUNTIVO O APARENTE………………………………...…… -…………………………………………………………………………………………… DESPARASITACIONES PREVIAS: PRODUCTO UTILIZADO…………………... DOSIS………………………………..FECHA DE TRATAMIENTO………………… ENFERMEDADES CONCOMITANTES……………………………………………… MORBILIDAD (%)………………………………MORTALIDAD (%)……………… EXAMEN DESEADO……………………………………………………………………

OTROS DATOS TIPO DE CONSERVADOR……………………………………………………………. MEDIO DE TRANSPORTE……………………………………………………………. SISTEMA DE REFRIGERACION……………………………………………………..

----------------------------------------------FIRMA Y SELLO DEL REMITENTE

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FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA LABORATORIO DE PARASITOLOGIA GUIA DE PRACTICAS PRACTICA Nº 2 IDENTIFICACIÓN DE EIMERIAS FUNDAMENTO.-La parasitología veterinaria estudia a los parásitos de los animale4s domésticos de importancia como: vacunos, ovinos, caprinos, porcinos, camélidos sudamericanos, cuyes y aves respectivamente, pero también existe otro tipo de animales considerados como mascotas como el perro y el gato que son de importancia porque transmiten enfermedades zoonoticas al hombre y es necesario conocer a los parásitos que afectan a estas especies..

METODO DE CONCENTRACION  METODO DE FLOTACION 

Se basa en la flotación de quistes, ooquistes y huevos de parásitos en una solución de azúcar, que posee mayor densidad que ellos. Esta técnica es útil para la concentración de quistes y ooquistes de protozoos y huevos de helmintos y se utiliza como método preferencial en el diagnostico de los coccidios.

Materiales: 

Solución flotante



Embudo (40-60 hilos por pulgada cuadrada)



Mortero y su respectivo mango



Laminas porta-objeto



Laminas cubre objetos



Tubos de prueba de 10 ml



Vasos de precipitados.



varilla de vidrio



Frascos de penicilina

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Procedimiento: 1

Extraer con una espátula aproximadamente de 2 a 3 gr. de material fecal de cualquier  especie y depositar en el mortero

2

 Agregar 10 a 15 ml de solución flotadora y homogenizar con el uso del mango del mortero

3

Filtrar a través de una malla (embudo) a un vaso de precipitados

4

El filtrado se transfiere a los tubos de prueba o frasquitos de penicilina, hasta que forme un menisco convexo

5

Colocar la laminilla cubre  – objetos sobre el menisco y espere unos 15 a 20 min.

Interpretación 1

Ningún huevo en la muestra completa

Negativa (-)

2

Pocos huevos (1-5)

Infección moderada (+)

3

Pocos huevos (6-10)

Infección mediana (++)

4

Muchos huevos (20 a más)

Infección masiva o grave.(+++)

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Ciclo de las Eimerias spp 

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Identificación de Eimerias Nombre común de la enfermedad entérica en aves, causada por protozoarios de la familia Eimeriidae: E tenella - E mivati - E brunetti - E maxima - E acervulina Eimeria tenella: la infección se presenta habitualmente en el intestino de las aves. Ocurre principalmente en animales jóvenes. El intestino ciego se presenta inflamado por la acumulación de sangre

Intestino inflamado

Intestino inflamado

Erosión en la mucosa

Oocitos de tres gallinas infectadas por esporas de Eimerias

Eimeria acervulina 17-22 x 13-18 µ

Eimeria maxima 22-44 x 17-32 µ

Eimeria tenella 19-28 x 16-25 µ

Las especies del género Eimeria , se desarrollan en las células epiteliales del intestino delgado .Algunas especies, como E. polita, porci, scabra y spinosa  se mutliplican en las partes finales del intestino delgado, mientras que E. debliecki  se localiza en yeyuno. Los ooquistes (11-35x11-26 um) son eliptícos, u ovoides, piriforme, ovales, o esféricos, con una membrana externa incolora, o ligeramente colorada de color amarillo que rodea a cuatro esporocistos que tienen 2 esporozoítos cada uno cuando han esporulado.

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Los ooquistes, de Isospora suis , son subesféricos o elipsoides (17-25x1621 um), la pared es incolora, no tienen cuerpo de Stieda ni cuerpo residual ooquístico, y forman dos esporoquistes con cuatro esporozoítos cada uno. Esta especie invade el epitelio apical de las vellosidades de todo el intestino delgado, preferentemente del primer tercio y también la zona media del yeyuno, aunque también pueden encontrarse en el fondo de las criptas , en la mitad posterior del intestino delgado y en el duodeno, ciego y colon.

Ooquistes de Eimeria, En el medio ambiente natural tal y como se excretan por el animal a través de la materia fecal.

Los animales contaminan el agua, el pasto, las camas, con la excreción de ooquistes, en el medio ambiente y bajo la influencia de la temperatura y la humedad, el ooquiste se esporula, aproximadamente en 7 días y se convierte en un ooquiste infectivo y si el ooquiste esporulado es ingerido por el animal se reinicia de nuevo el ciclo biológico del parasito. El ooquiste esporulado contiene cuatro esporozoitos y dos merozoitos, que infectan las células epiteliales del intestino.

Oquiste esporulado de Eimeria . Cuatro esporoquistes cada uno con dos Esporozoitos

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Eimeria brunetti, una de las especies que causan coccidiosis en aves domésticas.

Eimerias notificadas en Camélidos Sudamericanos: Especie

Alpacas

LLamas

Guanacos

Vicuñas

E. alpacae 

+

+

-

+

E. lamae 

+

+

-

+

E.macusaniensis 

+

+

+

+

E. peruviana 

-

+

-

-

E. punoensis 

+

+

-

+

E. ivitaensis 

+

-

-

-

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Eimeria lamae

eimeria punoensis

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA LABORATORIO DE PARASITOLOGIA GUIA DE PRACTICAS PRACTICA Nº 5 ENTEROPARASITOS EN PERROS Y GATOS FUNDAMENTO.- La parasitología veterinaria estudia a los parásitos de los animales domésticos de importancia como: vacunos, ovinos, caprinos, porcinos, camélidos sudamericanos, cuyes y aves respectivamente, pero también existe otro tipo de animales considerados como mascotas como el perro y el gato que son de importancia porque transmiten enfermedades zoonoticas al hombre y es necesario conocer a los parásitos que afectan a estas especies.

OBJETIVOS.Reconocer e identificar los tipos de parásitos que se encuentran en las heces del perro y gato  METODO DE FLOTACION 

Materiales: 

Solución flotante



Embudo (40-60 hilos por pulgada cuadrada)

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

Mortero y su respectivo mango



Laminas porta-objeto



Laminas cubre objetos



Tubos de prueba de 10 ml



Vasos de precipitados.



varilla de vidrio



Frascos de penicilina

PROCEDIMIENTO Extraer con una espátula aproximadamente 1

de 2 a 3 gr. de material fecal de cualquier  especie y depositar en el mortero

2

 Agregar 10 a 15 ml de solución azucarada y homogenizar con el uso del mango del mortero

3

Filtrar a través de una malla (embudo) a un vaso de precipitados

4

El filtrado se transfiere a los tubos de prueba o frasquitos de penicilina, hasta que forme un menisco convexo

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5

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Colocar la laminilla cubre  – objetos sobre el menisco y espere unos 15 a 20 min.

CICLO BILOGICO DEL NEOSPORA CANINUM

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RESULTADOS

Aelurostrongylus abstrusus Larva L1 (larva 1) 360-400 µm × 15-20 µm » Gato

Ancylostoma spp  55-76 µm × 34-45 µm » Gato Ancylostoma caninum  55-76 µm × 34-45 µm » Perro

Capillaria aerophila  (superior) 60-74 µm × 35-40 µm » Perro y gato Trichuris vulpis (inferior) 70-90 µm × 32-41 µm » Perro

Cestodes pseudophylideos  67-71 µm × 40-51 µm » Perro y gato

Cryptosporidium spp (coloración Kinyoun) 4-6 µm » Perros y gatos

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Dioctophyma renale  64-68 µm × 40-44 µm » Perro (orina)

Dipylidium caninum  (cápsulas ovígeras) 120 µm × 200 µm » Perro y gato

Giardia spp (quistes) 8-10 µm × 7-10 µm » Perro y gato

Giardia spp (trofozoíto) 10-17 µm × 7-10 µm » Perro y gato

Isospora canis : 34-40 µm × 28-32 µm Isospora ohioensis : 20-27 µm × 15-24 µm » Perro Isospora felis : 38-51 µm × 27-29 µm Isospora rivolta : 21-28 µm × 18-23 µm » Gato

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Sarcocystis (ooquiste) 12-16 µm × 8-18 µm » Perro y gato

Taenia spp  27 µm × 38 µm » Perro y gato

Toxascaris leonina  75 µm × 85 µm » Perro y gato

Toxocara canis  75 µm × 90 µm » Perro