Trabajo Dirigido de Jesus

 

 

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA GABRIEL RENE MORENO FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS CARRERA MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

MANEJO DE REPRODUCTORAS PESADAS EN LA ETAPA DE CRÍA Y RECRÍA EN AVISUR (granja “La Peñita”) Santa Cruz - Bolivia 2016 Informe de trabajo dirigido presentado por:

JESUS IGNACIO TORRICOS SAUCEDO S AUCEDO Para obtener el título de:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA Docente guía:

Dr. Pablo Rosales Callejas Profesional guía:

Dr. Clovis Sandoval Santa Cruz de la Sierra – Bolivia 2017

 

 

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA GABRIEL RENE MORENO FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS CARRERA MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

MANEJO DE REPRODUCTORAS PESADAS EN LA ETAPA DE CRÍA Y RECRÍA EN AVISUR (granja “La Peñita”) Santa Cruz - Bolivia 2016 Informe de trabajo dirigido presentado por:

JESÚS IGNACIO TORRICOS SAUCEDO S AUCEDO Para obtener el título de:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA Docente guía:

Dr. Pablo Rosales Callejas Profesional guía:

Dr. Clovis Sandoval Santa Cruz de la Sierra – Bolivia 2017

 

 

AGRADECIMIENTOS A Dios por ponerme en este mundo darme felicidad, salud y sabiduría.   A mis Padres Jorge Torricos y María Saucedo, por darme la vida, cuidarme, velar por mí siempre y brindarme el apoyo incondicional para que siga adelante en mis estudios.

A la Facultad De Cie Ciencias ncias Veterinarias Y Zootecnia Por formar profesionales de ética que siempre contribuyan al cuidado de la salud animal, salud pública

A mi docente:  Al Dr. Pablo Rosales Callejas que gracias a él tuvimos la oportunidad de realizar esta práctica, que consta de mucha ayuda para nuestro conocimiento. 

Al Sr. Cnel. Freddy Castro Que nos recibió con las puertas abiertas para nuestro ingreso y aprendizaje, al Dr. Sandoval (Médico Veterinario zootecnista) por toda la paciencia que tuvo al momento de enseñarme, explicarme el manejo de las aves

ii

 

 

ÍNDICE

 AGRADECIMIENTOS ......................... ................................................... ................................................... ....................................... .............. ii ÍNDICE...................... ................................................ .................................................... .................................................... ...................................... ............ iii ÍNDICE DE CUADROS ...... ............................... ................................................... .................................................... ............................. ... vii I. RESUMEN ..................... ............................................... .................................................... .................................................... .............................. .... 1 II INTRODUCCIÓN ..................... .............................................. .................................................. ............................................... ...................... 2 III. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ...................... ............................................... ................................................... .......................... 3 3.1. DEFINICIÓN DE AVICULTURA ...................................................... ............................................................... ......... 3 3.2. SITUACIÓN DE LA AVICULTURA EN BOLIVIA ...................................... ...................................... 3 3.3. BIOSEGURIDAD .......................... .................................................... .................................................... .................................. ........ 4 3.3.1. Definición........................ .................................................. ................................................... .......................................... ................. 4 3.3.2. Plan de bioseguridad ....................... ................................................ ................................................... .......................... 4 3.4. SANIDAD ......................................... ................................................................... ................................................... .................................. ......... 9 3.4.1. Enfermedades más comunes que afectan a las aves ...................... ............................... ......... 9 3.4.1.1. Enfermedad de Newcastle Ne wcastle (ENC) ......................... ................................................... .............................. .... 9 3.4.1.1.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... ...................................... ............ 9 3.4.1.1.2. Periodo de inc incubación ubación ....................... ................................................. ......................................... ............... 10 3.4.1.1.3. Transmisión .................. ............................................ .................................................... .................................... .......... 10 3.4.1.1.4. Signos clínicos........................... clínicos.................................................... ................................................. ........................ 10 3.4.1.1.5. Lesiones macroscópicas ............................ ..................................................... ................................ ....... 11 3.4.1.2. Bronquitis infecciosa ........................ ................................................. ................................................. ........................ 11 3.4.1.2.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 11 3.4.1.2.2. Signos. ......................... ................................................... ................................................... .................................... ........... 12 3.4.1.2.3. Lesiones macroscópicas ......................................................... ............................................................ ... 12 3.4.1.3. Viruela V iruela Aviar .................................... ............................................................. ................................................. ........................ 12 3.4.1.3.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 12 3.4.1.3.2. Transmisión .................. ............................................ .................................................... .................................... .......... 13 3.4.1.3.3. Periodo Per iodo de incubación ....................... ................................................. ......................................... ............... 13 iii

 

 

3.4.1.3.4. Signos ...................... ................................................ ................................................... ........................................ ............... 13 3.4.1.4. Enfermedad de Marek Mar ek .............................................. ...................................................................... ........................ 13 3.4.1.4.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 14 3.4.1.4.2. Transmisión .................. ............................................ .................................................... .................................... .......... 14 3.4.1.4.3. Periodo de inc incubación ubación ....................... ................................................. ......................................... ............... 14 3.4.1.5. Coccidiosis.......................... Coccidiosis.................................................... ................................................... .................................... ........... 14 3.4.1.5.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 15 3.4.1.5.2. Signos ...................... ................................................ ................................................... ........................................ ............... 15 3.4.1.5.3. Tratamiento .................................................................. ................................................................................ .............. 15 3.4.1.5.4. Diagnóstico ....................... ................................................. .................................................... ................................ ...... 15 3.4.1.6. Síndrome de caída d de ep puesta uesta ....................... ................................................ .................................... ........... 16 3.4.1.6.1. Descripción de la enfermedad ... ............................ ................................................. ........................ 16 3.4.1.6.2. Etiologia........................ .................................................. .................................................... .................................... .......... 16 3.4.1.6.3. Signos ...................... ................................................ ................................................... ........................................ ............... 16 3.4.1.7. Enfermedad de Gumboro ................................................................. ................................................................. 17 3.4.1.7.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 17 3.4.1.7.2. Historia y evolución ....................... ................................................ ............................................. .................... 17 3.4.1.7.3. Signos Clínicos .......................... ................................................... ................................................. ........................ 17 3.4.1.7.4. Lesiones macroscópicas ............................ ..................................................... ................................ ....... 18 3.4.1.7.5. Diagnostico ....................... ................................................. .................................................... ................................ ...... 18 3.4.1.8. Coriza infeccioso .......................................... .................................................................... .................................... .......... 18 3.4.1.8.1. Síntomas ............................................................ .................................................................................... ........................ 19 3.4.1.8.2. Prevención y Tratamiento ....................... ................................................ .................................... ........... 19 3.4.1.9. Reovirus ......................... ................................................... ................................................... ........................................ ............... 20 3.4.1.9.1. Etiología ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 20 3.4.1.9.2. Transmisión .................. ............................................ .................................................... .................................... .......... 20 3.4.1.9.3. Signos clínicos........................... clínicos.................................................... ................................................. ........................ 20 3.4.1.9.4. Lesiones macroscópicas ......................................................... ............................................................ ... 20 3.4.1.9.5. Prevención ....................... ................................................. .................................................... ................................ ...... 21 3.4.1.10. Micoplasmas Aviares ......................... .................................................. ............................................. .................... 21 iv

 

 

3.4.1.10.1. Transmisión ............ ...................................... ................................................... ........................................ ............... 21 3.4.1.10.2. Bioseguridad............................ Bioseguridad..................................................... ................................................. ........................ 22 3.4.1.10.3. Uso de vacunas ....................... ................................................ ................................................. ........................ 22 3.4.1.11. Salmonelosis .......................................... .................................................................... ........................................ .............. 23 3.4.1.11.2. Patogenia ......................................... ................................................................... ........................................ .............. 23 3.4.1.12.4. Síntomas y lesione lesioness ............................ ...................................................... ..................................... ........... 24 3.4.1.12.6. Efectos ....................... ................................................. .................................................... .................................... .......... 24 3.4.1.12.7. Diagnóstico ......................... ................................................... .................................................... ............................ .. 24 3.5. MANEJO DE REPRODUCTORAS ....................... ................................................ .................................... ........... 25 3.5.1. Manejo de los pollitos ............ ...................................... ................................................... .................................... ........... 25 3.5.1.1 Preparación para Llegada de los Pollitos ........................ ....................................... ............... 25 3.5.1.2. Iluminación ................................... ............................................................ ................................................. ........................ 26 3.5.1.3. Despique ...................................... ............................................................... ................................................. ........................ 26 3.5.2. Fases de crecimiento.......................... ................................................... ................................................. ........................ 26 3.5.2.1 desarrollo de 0 a 28 días ....................... ................................................. ......................................... ............... 27 3.5.2.2. Desarrollo de 28 a 7 70 0 días ............................................................ ............................................................ 28 3.5.3. Manejo de pro programa grama de luz ... ............................ ................................................... ..................................... ........... 28 3.5.3.1. Crecimiento en galpones oscuros ........................................... ................................................. ...... 30 3.5.3.2. Crecimientos en galpones oscuros y producción en galpones abiertos...................................................... abiertos............................ ................................................... ................................................. ........................ 30 3.5.3.3. Crecimiento en galpones abiertos ......................... ................................................. ........................ 31 3.5.4. Manejo del macho reproductor ............... ........................................ ............................................. .................... 31 3.5.5. Control del peso corporal y alimentación ......................... ............................................. .................... 32 3.5.6. Control de la alimentación ............. ....................................... .................................................... ............................ .. 33 3.5.7. Uniformidad ........................................ ................................................................. ................................................. ........................ 34 IV CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES REALIZADAS ...................... ..................................... ............... 35 V. DESARROLLO DEL TRABAJO DIRIGIDO ........................................ .................................................. .......... 36 5.1. LOCALIZACIÓN Y DIMENSIÓN DEL CENTRO DE TRABAJO ............. ............. 36 5.2. CARACTERIZACIÓN TÉCNICA Y PRODUCTIVA DEL CENTRO ......... 36

v

 

 

5.3. DESCRIPCIÓN, EVALUACIÓN Y ANÁLISIS DEL TRABAJO REALIZADO ............................................... ..................... .................................................... ................................................... ................................................. ........................ 37 5.3.1. Bioseguridad y sanidad ...................... ............................................... ................................................. ........................ 37 5.3.1.1. Control Contro l de ingreso ........... ..................................... ................................................... .................................... ........... 37 5.3.1.2. Sanidad ................................................................. ......................................................................................... ........................ 38 5.3.1.3. Limpieza y desinfección ....................... ................................................. ......................................... ............... 39 5.3.2. Manejo .............. ....................................... ................................................... ................................................... ................................ ....... 40 5.3.2.1. Manejo de cortina ........................ ................................................. ................................................. ........................ 40 5.3.2.2. Selección y descarte descar te ............................ ...................................................... ......................................... ............... 40 5.3.2.3. Manejo de luz .......... ................................... .................................................. ............................................. .................... 41 5.3.2.4. Relación de equipos ......................... .................................................. ............................................. .................... 41 5.3.2.5. Preparación del galpón p para ara la rrecepción ecepción ................................... ..................................... .. 42 5.3.2.6. Recepción y cría ...................... ................................................ .................................................... ............................ .. 42 5.3.2.7. Etapa de recría abarca desde las semanas 3 hasta la 21 ............. 43 5.3.3. Registros ....................... ................................................ .................................................. ............................................. .................... 43 5.3.4. Alimentación .......................... .................................................... ................................................... .................................... ........... 44 5.3.4.1. Cantidad de alimento........................ ................................................. ............................................. .................... 44 5.3.4.2. Ajuste del alimento de acuerdo al peso semanal ........... .......................... ............... 45 VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES............................................... ............................................... 46 6.1. CONCLUSIONES .................................. ........................................................... ................................................. ........................ 46 6.2. RECOMENDAIONES ................................................. ........................................................................... ............................ .. 47 VII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ....................................... ........................................................... .................... 48 VIII. ANEXOS......................... ................................................... ................................................... ................................................. ........................ 50 

vi

 

 

ÍNDICE DE CUADROS Cuadro Nº 1 1:: Cr Cronograma onograma de actividades......................... ................................................. ................................ ....... 35 Cuadro Nº 2: calendario de vacunación ........................ ................................................. .................................... ........... 38 Cuadro Nº 3: Manejo de horas luz en la etapa de cría y recr recría ía...................... ......................... ... 41 Cuadro Nº 4: 4 : Relación de equipo en la etapa de cría con espacio físico .......... 41 Cuadro Nº 5: 5 : Relación de equipos y espacio físico en la etapa de recría ......... 41 Cuadro Nº 6: Parametros obtenidos ........... ..................................... ................................................... ............................ ... 74 Cuadro Nº 7: 7 : Requerimiento de alimento en gramos en la etapa de cría ....... ......... .. 75 Cuadro Nº 8: 8 : Incremento de alimento en la etapa de recría r ecría ...................... ............................. ....... 75

vii

 

1

MANEJO DE REPRODUCTORAS PESADAS EN LA ETAPA DE CRIA Y RECRIA EN AVISUR (granja “La Peñita”) Santa Cruz – Bolivia, 20161  Torricos, S. J.2; Sandoval, C.3; Rosales, C. P.4  FACULTAD DE DE CIENCIAS VETERINARIAS - UA UAGRM GRM I. RESUMEN  Durante la realización del trabajo dirigido, en la granja de reproductoras pesadas, se ejecutaron diversas actividades en las etapas de cría y recría encargadas por el Médico Veterinario guía. Las áreas que fueron tomadas en cuenta durante la práctica fueron sobre bioseguridad controlando el paso de personas y de vehículos al lugar, cumpliendo con las normas de limpieza y desinfección, para el ingreso, el de sanidad implementando correctamente con el calendario de vacunación ejecutado para esa zona, los programas de limpieza y desinfección dentro de los galpones, manejo ejecutando un correcto manejo de la pollita en la recepción y después hasta que es trasladada a los galpones de producción, manejo de cortinas para buena ventilación, también efectuando métodos de selección y descarte, para todo esto se necesita registro, los cuales ayudan a saber el comportamiento del lote, en los cuadernos se anotan uniformidad, peso semanal, mortalidad todos estos datos ayudan para proveer la alimentación del lote, la cual es efectuada a la 5 de la mañana para evitar el estrés calórico, para que todos estas áreas sean ejecutadas se necesita observar la infraestructura de los galpones que cumplan con algunos parámetros base como el de orientación que es primordial para evitar hacinamientos, el estado de los galpones los cuales ayudan a evitar la entrada de animales ajenos dentro del mismo.  ______________________________________ 1

Trabajo Dirigido presentado por Jesús Torricos Saucedo, para obtener el título de Médico Veterinario Zootecnista 2 Barrio Braniff Calle Villamontes Cel. 75563364. Santa Cruz – Bolivia 3 Medico Veterinario Zootecnista Gerente Técnico de la Empresa Avícola Avisur 4 Medico Veterinario Zootecnista, Catedrático Titular de la Facultad de Ciencias Veterinarias.

 

2

II INTRODUCCIÓN La crianza de aves a escala industrial es uno de los rubros de la zootecnia que está más avanzado en conocimientos de técnicas de crianza. Hasta el 2016 se manejaban aves de alta genética, alimentadas con una nutrición avanzada, criadas con técnicas de manejo especializadas y protegidas por medidas sanitarias y de bioseguridad estrictas. Estas aves cada año expresan mejores resultados zootécnicos y económicos (ADA, 2016). En el Departamento de Santa Cruz, la crianza de aves reproductoras es más factible debido a las ventajas que proporcionan su clima, la disponibilidad de materia prima y la disponibilidad de tierra (ADA, 2016). Los productos avícolas, como la carne de pollo y el huevo de gallina, representan la fuente de proteína animal con mayor demanda en todos los estratos socioeconómicos de nuestro país, debido a su costo accesible y a la oferta continua en el mercado. Esta industria es una de las más importantes del área pecuaria del país, sin embargo también de los más susceptibles a pérdida económica provocada por factores de mercado y problemas sanitarios (AMEVEA, 2007). Por tanto, el objetivo de este Trabajo Dirigido es el de reforzar los conocimientos en el manejo de reproductoras pesadas en la etapa de cría y recría en la granja “La Peñita” de la empresa  AVISUR, como requisito para acceder al título de Médico Veterinario Zootecnista.

 

3

III. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 3.1. DEFINICIÓN DE AVICULTURA Corresponde al término latín avis , ave, y cultura, cultivo. Actividad que consiste en criar aves domésticas y aprovechar sus productos: carnes, huevos, plumas (EL PAIS, 2010). La avicultura es la crianza racional de ave de corral, todo aquello que el hombre realiza aplicando sus conocimientos en forma inteligente para una producción a bajo costo. Es uno de los rubros más apasionante en lo que se refiere a manejo, salud animal y alimentación dentro del sector pecuario. El conocimiento de estos puntos es un factor determinante que define el éxito y fracaso de producción (ADA 2016)

3.2. SITUACIÓN DE LA AVICULTURA EN BOLIVIA B OLIVIA La avicultura en Bolivia ha crecido mucho, solo en Santa Cruz se genera más de 290 millones de dólares al año, consume 665.026 TM. De productos agrícolas, 420.442 TM entre maíz, sorgo y 192.352 TM entre soya y otros, moviliza 100 camiones de 20 TM diariamente. La actividad avícola ha tenido un franco desarrollo desde sus inicios de la década de los años 50 como respuesta directa de la demanda en el aspecto económico social y nutricional de la población. Genera con la roteina mas barata y de alto valor biológico para la alimentación nacional.

Genera más de 10.000 empleos directos y

50.000indirectos (ADA, 2016).

 

4

3.3. BIOSEGURIDAD 3.3.1. Definición La Bioseguridad es el proceso de implementación y control de higiene en todos los eslabones de la cadena de producción avícola para optimizar la salud del consumidor y las ganancias del productor. Es un proceso integral, constituido de productos, procedimientos y personal. Además, se la define como todas aquellas medidas sanitarias y profilácticas que, utilizadas en forma permanente, previenen y evitan el ingreso y salida de agentes infecto-contagiosos a una granja avícola o explotación agropecuaria (Ortíz, 2010).

3.3.2. Plan de bioseguridad Todo plan de bioseguridad debe ser flexible en su naturaleza, fácil y práctico de aplicar y versátil, de tal manera que pueda adaptarse a los avances en producción animal. En líneas generales cualquier programa de bioseguridad ha de contemplar los siguientes aspectos, de acuerdo a Halvorson (2000):

Personal:  Educado, Capacitado, Motivado, Higiene y que cumpla las Normas de Bioseguridad de la empresa (Halvorson, 2000).

Localización de la granja: En ocasiones el éxito o fracaso del plan de bioseguridad va a depender del lugar de localización de la granja y de su aislamiento. Independientemente de la correcta orientación de la nave en función de la altitud y latitud de la zona, toda nave debe mantenerse lo más alejada posible de otras naves avícolas (distancia mínima 200 m) o de distinta especie (distancia mínima 3 km). Así mismo, la explotación debería mantenerse alejada y aislada de cualquier centro urbano, matadero, basurero, etc (Halvorson, 2000).

 

5

Orientación del galpón: Una correcta orientación debe ser de Este a Oeste, con la finalidad de:   Evitar la entrada de los rayos solares.



  Evitar el hacinamiento.   Controlar la humedad de la cama.

 

  Evitar el recalentamiento de los alimentos (balanceado y agua),



(Halvorson, 2000).

Características constructivas de la nave: Es imprescindible contar con un buen aislamiento tanto de techos como de paredes, no sólo para favorecer el mantenimiento de unas condiciones medioambientales de temperatura y humedad óptimas, sino para poder llevar a cabo un plan de bioseguridad (Halvorson, 2000).

Limpieza y desinfección de la nave y del equipo avícola: Sin una buena limpieza y desinfección de la nave no podemos perseguir el objetivo final de todo plan de bioseguridad que es el mantenimiento de la nave libre de microorganismos (Halvorson, 2000).

Eliminación de la cama y aves muertas: La explotación ha de contar con un sistema de manejo de las deyecciones que cumpla con la normativa vigente incluyendo el registro de descarga en aguas residuales. Igualmente hemos de contar con una fosa para depósitos de cadáveres o con una incineradora (Halvorson, 2000).

Todo dentro, todo fuera: Este método consiste en el ingresar todos los lotes de una sola vez al establecimiento avícola, por otro lado todo afuera consiste en el retiro de todos los lotes en el mismo día. Este procedimiento trae como ventaja el de evitar la propagación de problemas sanitarios, al mismo tiempo

 

6

que mejoran los Índices de Eficiencia Productiva y finalmente nos permite la crianza de un mayor número de lotes ingresados por año (Halvorson, 2000).

Sistema de crianza en Núcleo: Es la crianza que se realiza en una granja mediante el sistema de conjuntos de galpones donde ingresan aves de una misma edad y que se encuentran separadas por distancia entre núcleo de 200 metros (Halvorson, 2000).

Descanso sanitario: Consiste en dejar el establecimiento avícola sin la presencia de aves de ninguna edad, retiro de cama, equipos, limpieza y desinfección de los galpones. Una vez concluido este proceso se puede considerar el inicio del Descanso Sanitario, el mismo que tendrá un tiempo entre 15 a 20 días, entre las ventajas que conlleva este sistema, es que nos permite realizar una mejor limpieza y desinfección de los galpones y de esta manera poder controlar los problemas sanitarios en los planteles que ingresan a la granja (Halvorson, 2000).

Filtros sanitarios: Se deberá considerar lo siguiente: Gabinete hermético para desinfección por gasificación y/o fumigación elementos como herramientas, cuadernos, bolígrafos, cámaras, etc. Puerta de entrada cerrada: Debe permanecer cerrada y con una señaléticas, que indique que están prohibidas las visitas. Rodiluvio o arco de lavado y desinfección: para el lavado y desinfección de vehículos que ingresen a los centros de producción. Filtros duchas (Área sucia y limpia) previstas de agua caliente, shampoo, jabón, ropa de trabajo limpia para el interior de granja. En granjas de reproductoras son necesarios tener dos filtro (duchas), con cambio total de ropa después del paso de cada filtro con indumentaria de diferente color en función al área para poder ingresar al galpón. Luego de realizar la supervisión de las aves, se

 

7

procede al mismo proceso de duchas y cambio de ropa en sentido inverso (Halvorson, 2000).

Control de animales extraños a la explotación: Especial cuidado hemos de tener con los insectos (principalmente moscas y mosquitos) ya que son los principales vehículos transmisores de enfermedades. De ahí que llevemos a cabo un exhaustivo control de los mismos a lo largo del ciclo productivo, así como, los correspondientes tratamientos de prevención aprovechando los días de vacío sanitario (Halvorson, 2000).

Control de visitas y personal ajeno a la explotación: En la medida de lo posible deberíamos reducir al mínimo las visitas de personal extraño a la nave, aunque somos conscientes de que esto es muy difícil de conseguir, por lo que es necesario contar con un programa de bioseguridad en relación a las visitas (Halvorson, 2000).

Controlar los programas de vacunación y medicación de los animales: Hemos de seguir estrictamente el calendario de vacunaciones que a tal fin haya establecido el veterinario, donde se recogerán aquellas enfermedades de vacunación obligatoria y las opcionales en función de la zona que se trate. La persona encargada de la vacunación ha de tener un perfecto conocimiento de la vacuna en cuestión (dosis, forma de aplicación, intervalos de revacunación, etc.). Utilizar siempre el material desinfectado previamente (Halvorson, 2000).

Evitar la contaminación del pienso: En ocasiones es el propio pienso el vehículo transmisor de microorganismos, sobre todo para determinados hongos como  Aspergillus flavus. Hemos de evitar la humedad en los lugares de almacenamiento del pienso y en los silos, ya que el exceso de humedad favorece el crecimiento y multiplicación de los hongos (Soleto, 2004; Halvorson, 2000).

 

8

Otros puntos que se deben considerar dentro de un plan de bioseguridad:   Monitoreo muy preciso mediante un registro de todas las actividades que



se realizan a diario (Tipo de labor, que área, tiempo, vehículo, etc.).   Sentido común  primero se visita lotes jóvenes considerando el grado de



defensas orgánicas que tienen las aves conforme se van desarrollando. Para toma de muestras usar envases estériles y de fácil manejo.   Óptima calidad nutricional  bactericida y toxicológica. Silos y bodegas



limpios, sin filtraciones de agua, herméticos. Al terminar cada ciclo de cría, se procede en mantenimiento, lavado y desinfección de silos, ductos, tolvas, etc. Fecha de elaboración, días de consumo para cada fase en función de la edad. (pre-inicio, inicio, crecimiento y acabado).   Nutriente  (Agua) importante fuente de suministro, confiable y de buena



calidad. Tanques adecuados que deben mantenerse tapados para evitar el sol, pérdida de actividad de desinfectante y acceso a pájaros, insectos, etc. Sistema de desinfección. Monitoreo de calidad físico-químico (6 meses) bacteriológica (mensual). Agua limpia es indispensable para la Producción  Avícola.   Del material de la Cama:  



  Tanto para cama o nido representa un riesgo riesgo potencial potencial de entrada



de contaminantes.   Debe ser completamente seca y sin contaminantes.



  De procedencia conocida.



  Limpia lilibre bre de plásticos, papeles u otros el elementos ementos nocivos para



las aves.

 

9

  Debe e entrar ntrar el galpón totalmente desinfectada, como puede ser ser d de e



 Alphitobius diaperinus, o escarabajo negro, vector de marek,

gumboro, NC, salmonella y pasteurella. 

  Piso de concreto.

  Control de roedores: Conociendo la forma de vida de éstos se debe



establecer

un

control

permanente,

son

vectores

que

diseminan

enfermedades. Uso de raticidas bajo un seguimiento y evaluación permanente de los encargados (Soleto, 2004).

3.4. SANIDAD 3.4.1. Enfermedades más comunes que afectan a las aves 3.4.1.1. Enfermedad de Newcastle (ENC) La EN es una enfermedad viral de muchos tipos de aves tanto Silvestre como industriales caracterizada por una gran variación de morbilidad mortalidad signos y Naciones para simplificar dicha variaciones se define la enfermedad de newcastle en 5 tipos (Girón 2006)

3.4.1.1.1. Etiología Los paramixovirus aviares pertenecen a la familia paramyxoviridae y género rubéola virus en el que se encuentran los virus de las paperas los virus para influenza en mamíferos 2 y 4 y los virus de newcastle y otros paramixovirus hay  APMV-1 al 9 los grupos de los APMV denominados APMV-1 es el más importante en avicultura (Girón 2006) 

 

10

3.4.1.1.2. Periodo de incubación

El período de incubación en Casos naturales varía entre 2 y 15 días depende del tipo de virus, de la edad y sistema inmunitario de las aves de factores ambientales las vías de exposición y la dosis recibida (Girón 2006)

3.4.1.1.3. Transmisión El virus contenido en las secreciones de las aves infectadas Incluyendo los aerosoles contamina el pienso agua botas ropa equipo y el ambiente la exposición de aves susceptible a estas fuentes de virus puede resultar en transmisión la transmisión vertical no está Clara ya que las infecciones experimentales con virus virulentos producen casi un cese de la apuesta los brotes de campo en reproductoras el virus puede existir en el embrión pero éste no nacerá por lo que se debe tener en cuenta la rotura de dichos huevos en la incubadora ya que pueden ser una fuente de infección para los demás pollitos el virus puede atravesar la cáscara una vez puesto ( Girón 2006)

3.4.1.1.4. Signos clínicos Con las cepas velogenicas los signos dependen del tropismo de las mismas la enfermedad puede ocurrir de forma muy rápida con mortalidad alta y sin otros signos aveces las aves están deprimidas mostrando disnea diarrea conjuntivitis y postración y Sobreviviendo la muerte en 2 a 3 días a veces hay edema de los senos orbitarios con descarga nasal otras veces hay cuadros nerviosos temblores opistotonos paresia y muerte por espasmos,

 

11

las cepas mesogenicas suelen cursar con alteración respiratorias nos oliendo existir alteraciones nerviosas en producción pueden tener una caída de las cepas Lentogenicas no suelen cursar con problemas en aves adultas en las  jóvenes Se pueden observar alteraciones respiratorias (Girón 2006)

3.4.1.1.5. Lesiones macroscópicas Como sucede en los signos las lesiones En el caso de la cepa mesogenicase puede encontrar aerosaculitis, conjuntivitis y traqueítis en las cepas velogénicas Se observa: Inflamación de la tráquea aerosaculitis severa con mucosa, lesiones hemorrágicas o necróticas que pueden afectar al tejido linfoide de la mucosa las tonsilas cecales están necróticas y hemorrágicas, pueden existir hemorragias en el proventrículo y mollejas e incluso en la mucosa del esófago

3.4.1.2. Bronquitis infecciosa Es una enfermedad viral aguda muy contagiosa de los pollos se caracterizada por alteraciones respiratorias jadeo estornudo tos y descarga nasal alteraciones renales producida por cepas nefropatogenicas y caídas de producción con alteración en la calidad de los huevos (Girón 2006)

3.4.1.2.1. Etiología El virus de la bronquitis infecciosa pertenece a la familia coronaviridae género coronavirus es un virus con una sola cadena de ARN , diamante variable y con forma pleomorfica en la superficie tiene una serie de espículas o proyecciones , que son muy importantes a la hora de diferenciar los serotipos (Girón 2006)

 

12

3.4.1.2.2. Signos. En los signos tenemos estornudos jadeo, ruidos respiratorios y descarga nasal los ojos están húmedos y las aves pueden estar deprimida letárgicas sin comer ni beber en aves de más de 6 semanas la infección suele cursar de forma inapetente (Girón 2006)

3.4.1.2.3. Lesiones macroscópicas Engrosamiento de la mucosa con exudado seroso catarral en los cornetes nasales tráquea bronquios y sacos aéreos. En los pollos muy jóvenes se puede encontrar un tapón gaseoso a nivel de siringe y bronquios (Girón 2006)

3.4.1.3. Viruela Aviar Es una enfermedad de diseminación lenta de de pollos, pavos y de muchas otras especies de aves. Que se caracteriza por lesiones cutáneas en lugares sin plumas o lesiones diftéricas en el aparato respiratorio y la cavidad bucal es una enfermedad que no tiene nada que ver con la viruela humana me causa ningún tipo de problemas en los mamíferos (Girón 2006)

3.4.1.3.1. Etiología El virus de la viruela aviar pertenece a la familia posibilidades y al género avipoxvirus se reconocen 5 virus relacionados como son el de gallina pavo Paloma canario y loros cada uno de los cuales infecta a la especie que ha dado origen a su nombre además de ellos hay otro muchos virus aislados de otras especies codorniz Cuervo pingüino gorrión pavo real Cóndor (Girón 2006)

 

13

3.4.1.3.2. Transmisión El virus de la viruela aviar tiende a persistir más tiempo a pesar de las vacunaciones en zonas de alta densidad con re crías de aves de diferentes edades en los últimos años se ha señalado brotes de forma diftérica en aves vacunadas (Girón 2006)

3.4.1.3.3. Periodo de incubación Período de incubación oscila entre 4 a 10 días para la las gallinas pavos y Palomas y es de 4 días para los canarios el cuadro clínico puede ocurrir en una de las dos formas siguientes cutánea seca obstétrica húmeda (Girón 2006)

3.4.1.3.4. Signos Forma cutánea las aves presentan fiebre disminución del consumo de pienso o caída de producción la mortalidad es baja salvo complicaciones las costras se ven en crestas barbillas párpados y en otras zonas sin plumas la lesión ocular puede impedir la visión del pienso y agua (Girón 2006)

Forma de histérica las lesiones nodulares suceden en las mucosas de la faringe también en la tráquea y esófago los nódulos crecen de tamaño y aparecen membranas diftéricas que dan lugar a disnea e incluso a la muerte por asfixia (Girón 2006)

3.4.1.4. Enfermedad de Marek Es una enfermedad neoplásica producida por herpes virus y caracterizada por una infiltración de células mononucleares en los nervios periféricos tejidos y órganos incluyendo el Iris y la piel (Girón 2006)

 

14

3.4.1.4.1. Etiología Es un ADN Alfa herpesvirus de nucleocápside hexagonal se ha clasificado en 3 serotipo, serotipo 1 serotipo 2 serotipo 3 (Girón 2006)

3.4.1.4.2. Transmisión De forma general incluyendo en este apartado a las ponedoras y reproductoras son los hospederos naturales más importantes pero la codorniz el faisán y los pavos también pueden ser susceptible a ella casi todos los tipos de pollos Incluyendo los selváticos hilos rústicos son susceptibles a la infección y el desarrollo de tumores (Girón 2006)

3.4.1.4.3. Periodo de incubación El período de incubación es variable ya que depende de la virulencia de la cepa del tipo de ave la enfermedad intercurrentes en el campo la mayoría de los casos en aves no vacunadas pueden comenzar a las 8 a 9 semanas pero en otros casos la enfermedad comienza tras el inicio de la puesta (Girón 2006)

3.4.1.5. Coccidiosis La coccidiosis es una enfermedad parasitaria producida por protozoos que afecta especialmente al tracto intestinal de las aves especialmente a las explotadas en sistemas intensivos ya que sean en estabulacion permanente o semiestabulacion las empresas del sector se gastan en tratamiento preventivo aproximadamente al año cerca de 10000000 de euros entre los preventivos farmacológicos y tratamientos biológicos ( Domínguez 2006)

 

15

3.4.1.5.1. Etiología Densidad del hospedador es una un a característica muy importante de la familia de Eimeridae por lo que cada especialidad sucede la infección por determinadas especies aviar sufre la infección de cada especie de eimeria (Domínguez 2006) 

3.4.1.5.2. Signos En el caso de la coccidiosis cecal producida por echerichia tenerla su forma aguda es muy espectacular por la aparición de diarrea hemorrágica en los pollos de rápida propagación así por el estudio de plumaje es erizado alas caídas dorso arqueado ojos hundidos y palidez la forma Crónica puede presentar decaimiento caquexia mal estado del emplume (Domínguez 2006) En la coccidiosis intestinal los siguientes en función de la especie de eimeria que afecta a la vez pero en la práctica estas diferencias sintomatológica no son muy evidentes (Domínguez 2006)

3.4.1.5.3. Tratamiento Los fármacos activos frente a las medias son muchos y de familia farmacológica distintas pueden ser clasificados en dos grandes grupos según sean coccidiostáticos o coccidios idas al asignar un fármaco a un grupo u otro es fácil en algunos y no está del todo Claro en otros dependiendo de la duración del tratamiento de la dosis y a veces de la especie (Domínguez 2006) 

3.4.1.5.4. Diagnóstico Podemos analizarlo o diagnosticar mediante 3 niveles mediante el estudio sintomatológico partiendo de la presencia de diarrea sanguinolenta o del Estado

 

16

general del ave el otro nivel es el estudio de lesiones realizado mediante la correspondiente necropsia otro nivel es el estado físico de las heces (Domínguez 2006)

3.4.1.6. Síndrome de caída de puesta 3.4.1.6.1. Descripción de la enfermedad El virus EDS es el único miembro del subgrupo 3 de los adenovirus aviares relacionado serológicamente con los serotipos 1 y 2 Esta enfermedad afecta a aves en producción ya sean ponedoras o reproductora ocasionando la puesta de huevos con cáscara delgada o sin ella huevos en fárfara (Girón 2006)

3.4.1.6.2. Etiología El virus de síndrome de baja postura se ha clasificado como adenovirus Por su forma morfología y composición química el virus EDS además de gallinas pavos y otros (Girón 2006)

3.4.1.6.3. Signos Es un período de incubación variable de 7 a 10 días Por lo general o hasta 17 días en algunos casos se observa una pérdida de coloración de la cáscara a lo que seguirá una producción de huevos con cáscara delgada o en Fasfara. (Girón 2006)

 

17

3.4.1.7. Enfermedad de Gumboro 3.4.1.7.1. Etiología

Es un virus de doble cadena de ADN y no envuelto pero no pertenece a ninguna familia Birnaviridae aviares conocidas luego se a clasificado dentro de la familia Abivirnavirus género a vivir na virus contiene dos segmentos de doble cadena de ADN el segmento a codifica proteínas virales y el segmento B codifica el virus propio (Girón 2006)

3.4.1.7.2. Historia y evolución El primer caso se señaló en 1957 porque la localidad de Los afectados tenían entre 3 a 4 semanas con una mortalidad y morbilidad del 10% las lesiones más manifestadas eran una nefritis nefrosis en una hipertrofia de la bolsa de Fabricio debido a las lesiones renales de la enfermedad se denominó también como síndrome de nefritis nefrosis de los pollos (Girón 2006)

3.4.1.7.3. Signos Clínicos Las aves más susceptibles son las bolitas comerciales luego los broilers y al final las reproductoras la edad de la afectada oscila entre 3 a 6 semanas tras un período de incubación de dos a cuatro días en lote afectado presenta depresión erizado tendencia a no moverse y disminución del consumo de pienso Aunque el del agua puede estar aumentado lo que produce diarrea (Girón 2006)

 

18

3.4.1.7.4. Lesiones macroscópicas Las lesiones más visibles suelen estar en la bolsa de Fabricio a los 3 días por infección la bolsa está aumentada de tamaño y empezó tiene edema y puede estar cubierta por un exudado amarillento puede tener petequias o hemorragias a los cuatro días suele tener un tamaño doble de lo normal hacia el quinto día vuelve a su tamaño normal el edema desaparece y puede tener una coloración gris a los 8 días el tamaño es un tercio del original (Girón 2006)  

3.4.1.7.5. Diagnostico La forma subclínica enfermedad clínica se diagnostica por el cuadro clínico Un inicio agudo alta morbilidad y mortalidad aves entre 4 a 6 semanas así como por las lesiones observadas hemorragia musculares hipertrofia de la bolsa existen otras herramientas que nos ayudan como son la serología mayoritariamente la determinación de anticuerpos Elisa Hola Búsqueda del virus en la bolsa de Fabricio por la técnica pcr (Girón 2006) 

3.4.1.8. Coriza infeccioso

El coriza infeccioso es una enfermedad del tracto respiratorio superior de los pollos, se caracteriza por producir descarga nasal, estornudos e inflamación facial. el agente etiológico de esta enfermedad en la bacteria avivacterium paragallinarum El impacto económico de esta enfermedad radica en las pérdidas que ocasiona a la avicultura, debido al retraso del crecimiento, pérdida de peso ,incremento en el número de aves eliminadas y predisposición a la enfermedad respiratoria Crónica complicada. En gallinas de postura, la producción de huevo puede reducirse considerablemente (AMEVEA 2017) 

 

19

3.4.1.8.1. Síntomas

Entre los primeros síntomas se presentan estornudos, seguido por una supuración maloliente inflamación de los ojos y senos nasales conforme avanza la enfermedad, el estornudo se vuelve gaseoso (como queso) y se acumula en los ojos; produciendo hinchazón y en muchos casos hasta la pérdida de los ojos. el problema se puede acelerar o agravar cuando se presentan cambios bruscos de las corrientes de aire de temperatura, humedad o por la desparasitación y vacunación. Generalmente disminuye el consumo de alimento y la producción de huevos. (AMEVEA 2017)

3.4.1.8.2. Prevención y Tratamiento La bacterinización de parvada susceptible es la estrategia más eficaz en la prevención de la coriza infecciosa. Se ha desarrollado en modelos experimentales con aves susceptibles para evaluar la protección Cruzada entre distintas serovariedades, o bien el grado de protección conferido por diferentes bacterinasexperimentales

o

comerciales

combinadas

en

planes

de

bacterinizacion el mejor control es mediante la prevención , criando nuevos lotes de pollitas en galpones alejados de las aves vieja o de aquellas sospechosa de ser portadoras de la enfermedad. No existe un tratamiento específico, aunque se recomienda el uso de antibióticos para evitar posibles infecciones secundarias. Se puede aplicar antibiótico como la estreptomicina por vía intramuscular en una dosis única de 200 miligramos por pollo gallina, o de 300 a 400 miligramos por gallo, la eritromicina en el agua de bebida, en dosis de 0,5 g /galon (3,785 l ) durante siete dias , o en el alimento a razón de 92,5 g por tonelada, durante 7 a 14 dias. (AMEVEA 2017)

 

20

3.4.1.9. Reovirus 3.4.1.9.1. Etiología Es un virus ARN no envuelto de replocaiion citoplasmatica son resistente al calor 60 a 80 °C durante 8 a 10 horas 37°C durante 15 semanas resisten un ph 3 y los desinf desinfectantes ectantes mas usados para su inactivacion son los aldehidos (Giron. 2006)

3.4.1.9.2. Transmisión El virus se transmiten por vía vertical y horizontal por vía vertical se ha señalado transmisión durante 18 días después de la infección que ha afectado a un pequeño número de huevos en caso naturales dicha eliminación puede suceder desde 8 días a ocho semanas la transmisión horizontal a través del aparato respiratorio y digestivo existen por lo menos durante 10 días pero se cree que la eliminación fecal es más prolongada. (Giron. 2006)

3.4.1.9.3. Signos clínicos Los signos clínicos más comunes con cojeras e hinchazón de los tendones por encima de la articulación carpiana en algunos casos los tendones están enrojecidos y calientes con afectación uni o bilateral en algunos casos hay ruptura del tendón gastrocnemio (Giron. 2006)

3.4.1.9.4. Lesiones macroscópicas Hay tumefacción de los tendones metatarsianos y flexor de los dedos posteriormente atrofia del tejido fibroso y líquido seroso ojeroso hemorrágico en

 

21

las articulaciones tibiotarsiana al final puede existir una difusión de las vainas tendinosas (Giron. 2006)

3.4.1.9.5. Prevención Para evitar la transmisión vertical hay que molestar a los reproductores pesados con vacunas vivas e inactivadas las vacunas vivas se pueden aplicar Tan pronto como el primer día de vida junto con la vacuna de marek en la primera semana por inyección o por spray durante la recreación cejas dos vacunas inactivadas para producir alta inmunidad humoral (Giron. 2006)

3.4.1.10. Micoplasmas Aviares El mycoplasma es un agente infeccioso que afecta grandemente a la agricultura y su control es difícil de lograr ya que se involucran varios correctamente para evitar el ingreso a una paciente. (AMEVEA 2017) En esta ocación se encontrará el micoplasma gallinarum y el mycoplasma synoviae (AMEVEA 2017)

3.4.1.10.1. Transmisión Factores a tener en cuenta en la transmisión y de esto depende también la manera cómo se 30 enfermedades que afectan el control y tratamiento del tipo de animal que afecta. (AMEVEA 2017) La transmisión puede ser vertical a través del huevo incubable es una ruta importante de difusión esto puede ocurrir a pesar de que la temperatura erradicación del mycoplasma patógeno. (AMEVEA 2017)

 

22

Otro tipo de transmisión es la horizontal puede ocurrir de diferentes etapas en la etapa el de la incubación o en la etapa si tenemos un lote infectado de mycoplasma. (AMEVEA 2017)

3.4.1.10.2. Bioseguridad En todo programa de control se debe tener en cuenta Cuáles son las posibilidades y herramientas con la que se cuenta conocer sus ventajas y desventajas y finalmente comparar Cuál es el progreso o programa que se acomoda al tipo de crianza y necesidad que se requiere lo bueno es tener un buen control de bioseguridad y un buen manejo de antibióticos (AMEVEA 2017)

3.4.1.10.3. Uso de vacunas En las vacunas actualmente Existen varios tipos de vacunas con diferentes tecnologías a cada una tiene un objetivo primordial que es proteger la producción sin embargo se debe considerar Cuál es el objetivo y cuáles son las condiciones de mi producción para elegir el programa de vacuna adecuado. Vacunas inactivadas son bacterias reducen las pérdidas de producción de huevo pero proveen protección limitada frente a una infección por mycoplasma gallinarum de campo porque no impiden la colonización del tracto respiratorio superior por el mycoplasma tiene la ventaja de no ser infecciosas no tener el riesgo de transmitirse a otra parvada y de no revertir la virulencia. Vacunas vivas tienen la capacidad de colonizar las vías respiratorias de las aves y por lo tanto estimular una respuesta inmune protectora local sin embargo dependiendo de la cepa tienen diferente capacidad de prevenir la colonización y el nivel de protección obtenido está relacionado a la virulencia de la cepa vacunal (AMEVEA 2017)

 

23

3.4.1.11. Salmonelosis La percepción de una infección por salmonella como un problema de la agricultura Industrial ha sufrido los mismos cambios que la propia industrialización del sector incluyendo factores como la seguridad alimentaria los conocimientos microbiológicos de la salmonela y los que tenemos en la epidemiología del germen en las personas y en las aves han diferido los patrones control para eliminar salmonella de la cadena alimentaria. El control de la salmonella pullorum y la salmonella gallinarum son los principales patógenos de los inicios de la producción aviar intensiva se ha conseguido mediante políticas coordinar la higiene junto con controles serológicos y sacrificios consiguiendo la erradicación de las mismas en la mayoría de los países (Ordoñez 2006)

3.4.1.11.1. Etiología El género salmonella Está compuesto por un grupo de bacilos gram negativos no esporulados la clasificación etiológica de la salmonella gallinarum y salmonella pullorum ácido confusa se ha cambiado los últimos años pasando de ser especie diferentes a considerarse una única especie salmonella gallinarum pullorum es una bacteria que crece bien en medio Agar nutritivo aerobia o facultativamente anaerobia y los mejores crecimientos se producen a 37 grados centígrados (Ordoñez 2006) 

3.4.1.11.2. Patogenia Para conocer la naturaleza de la cifosis o pullorosis debe conocerse la fase clínica de la enfermedad donde la salmonella pasa desde el intestino al torrente sanguíneo y produce hemogluteninas muchos aspectos de la patogénesis de la enfermedad se encontraron idénticos concluyendo la diseminación es oral fecal

 

24

o sea transmisión horizontal como ruta principal aunque también está claramente definida la transovárica transmisión vertical con infección a través del huevo a la descendencia (Ordoñez 2006 ) 

3.4.1.12.4. Síntomas y lesiones La sintomatología de la cifosis O pullorosis es muy similar en los pollitos como consecuencia de la transmisión vertical de la enfermedad y sólo la polio dosis puede dar lugar a infecciones subclínicas las aves manifiestan somnolencia debilidad anorexia crecimiento retrasado y cloacas empastadas Qué quiere decir material fecal blanquecino adherido a la cloaca la mortalidad puede aparecer a los 5 a 10 días de vida alcanzando un pico máximo a la 2 a 3 semanas de vida (Ordoñez 2006 ) 

3.4.1.12.6. Efectos Se observa exudado purulento gaseoso en la cámara anterior del ojo hígado inflamado con focos puntiformes necróticos bazo inflamado pericarditis fibrinopurulenta cojeras con exudado purulento contenido casioso en ciegos y retención del saco vitelino (Ordoñez 2006) 

3.4.1.12.7. Diagnóstico La sintomatología canciones que aparecen durante la primera semana de vida pueden confundirse con otras infecciones como el chery chacoli por lo que es necesario el aislamiento e identificación del germen Igualmente es aconsejable el aislamiento como autocontrol de todos los lotes por si fuera una infección subclínica asintomática autocontrol

como medida de prevención de

toxiinfecciones alimentarias (Ordoñez 2006)

 

25

3.5. MANEJO DE REPRODUCTORAS 3.5.1. Manejo de los pollitos 3.5.1.1 Preparación para Llegada de los Pollitos La clave para levantar con éxito está en un efectivo programa de manejo que comienza mucho antes de que los pollitos lleguen al sitio.   Cuando se importa un lote de reproductoras de un día de edad de otro país,



es aconsejable que usted cuente con personal entrenado, que conozca la reglamentación aduanera y los procedimientos y documentación necesaria para asegurar su retiro de la aduana lo más pronto posible.   El transporte de los pollitos desde el aeropuerto, se debe hacer en vvehículos ehículos



limpios, desinfectados, adecuadamente ventilados y con temperatura controlada. Se deben hacer todos los esfuerzos posibles para coordinar los horarios de manera que una vez que lleguen los pollitos, sean retirados de la aduana y transportados en el menor tiempo posible.   Crié los pollitos en una granja de una sola edad. Asegúrese que las granjas



de crianza estén bien aisladas de las granjas de producción. Crié los pollitos con un programa todo-adentro, todo afuera, con un buen programa de seguridad de las granjas. El encargado debe trabajar solamente en la granja de crianza.   Las instalaciones para levante deben estar limpias y libres de patógenos



antes de la llegada de los pollitos. Más adelante en esta guía, se describen procedimientos detallados de higiene y limpieza. Recuerde que se debe mantener la bioseguridad en el sitio a toda hora y que las reglas de bioseguridad deben aplicarse 365 días al año, incluyendo los periodos en que la granja esté desocupada.

 

26

  Las granjas de reproductoras deben ser seguras. Los vvehículos ehículos que



ingresen a la granja deben haber llevado a cabo los procedimientos de limpieza de llantas. Solamente pueden ingresar a las instalaciones, visitantes y personal autorizado y se les debe solicitar que sigan los procedimientos correctos de bioseguridad, incluyendo el uso de las duchas y de la ropa de protección que se les suministre. Las puertas de los galpones deben mantenerse cerradas cuando no estén en uso ( Cobb-Vantress, Inc. 2012).

3.5.1.2. Iluminación La iluminación debe ser continua durante las primeras 48 horas siguientes al alojamiento. La intensidad de la luz debe ser de un mínimo de 20 lux (2.0 pie candela) para asegurar que los pollitos encuentren alimento y agua fácilmente. Todos los galpones de reproductoras deben ser a prueba de luz (galpones oscuros), (Cobb-Vantress, Inc. 2012).

3.5.1.3. Despique El despique usualmente no es necesario para reproductoras que se mantengan bajo iluminación totalmente controlada. El despique puede ser necesario para controlar el picaje agresivo en galpones de lados abiertos o en situaciones en las cuales la intensidad de la luz no puede ser controlada

(Cobb-Vantress,

Inc. 2012).

3.5.2. Fases de crecimiento Es importante entender la curva de peso corporal durante el periodo de levante y básicamente ésta puede dividirse en tres fases. La primera es de 0 - 6

 

27

semanas en la que parte del tamaño del esqueleto y la uniformidad, se determinan para la mayor parte de la vida del lote. La segunda fase es de la semana 6 a la 16 de edad, período durante el cual las aves deben mantenerse bajo un cuidadoso programa de alimentación controlada, diseñado para evitar el sobrepeso. La tercera fase es después de las 16 semanas cuando el lote necesita acelerar el crecimiento para prepararse para el desarrollo sexual y lograr una uniformidad sexual adecuada (Cobb-Vantress, Inc. 2012).

3.5.2.1 desarrollo de 0 a 28 días Los primeros 14 días es el periodo más importante de la vida de un ave. Recuerde los cuatro puntos fundamentales: Alimento, Agua, Temperatura y Calidad del aire. La importancia del período de crianza nunca es demasiado enfatizada. Los primeros 14 días en la vida de los pollitos determinan si hay un buen desarrollo posterior. Los esfuerzos realizados al inicio de la fase de cría serán recompensados en el comportamiento final del lote.   Se debe tener disponible para los pollitos alimento y agua fresca a su



llegada al galpón de levante.   Las criadoras y los calentadores deben ser chequeados regularmente



para asegurarse que están operando correctamente.   Se recomiendan bebederos complement complementarios arios desde el primer al séptimo



día de edad. Use mini bebederos o fuentes para pollitos, no bandejas abiertas. Esto ayudará a prevenir problemas de infecciones en las patas. No coloque bebederos directamente bajo las criadoras.   Todas las cajas de pollitos deben ser colocadas en en el galpón, con el



número apropiado de cajas alineado con cada criadora antes de soltar los pollitos. Haga lo posible para una distribución llenas dentro del área de cría.

 

28

  Los pesos al séptim séptimo o dí día a son un ex excelente celente indicador general de qué tan



exitoso ha sido el manejo de cría. Los efectos del estrés temprano no pueden verse sino hasta mucho más tarde y pueden afectar negativamente el comportamiento reproductivo posterior del lote (CobbVantress, Inc. 2012).

3.5.2.2. Desarrollo de 28 a 70 días El período de 28 a 70 días (de 4 a 10 semanas) es de rápido crecimiento y desarrollo para las reproductoras, por lo que es esencial un buen control de la ganancia de peso, usando cantidades crecientes de alimento. Durante esta etapa, los pequeños incrementos en la cantidad de alimento consumido pueden tener grandes efectos sobre el peso corporal. De ahí la importancia de monitorear el peso de los animales. El programa de alimentación es sólo una guía sobre la cantidad de alimento que las aves requieren. Los cambios en las cantidades de alimento que habrán de suministrarse, se deben calcular usando la desviación del peso corporal con respecto a las curvas de peso meta y la cantidad de alimento que se esté administrando en ese momento (Cobb Vantress, Inc. 2012).

3.5.3. Manejo de programa de luz La luz puede tener una influencia decisiva en el crecimiento de las pollonas por lo cual, los programa de iluminación deben tenerse en cuenta en el desarrollo del programa de alimentación. El programa de iluminación debe ser coordinado, continuo y debe programarse para comenzar la producción con el peso y el desarrollo adecuado, teniendo como objetivos; ajustar la madures sexual y el inicio de la producción a la edad y al nivel de desarrollo correctos, obtener mejores índices de producción de huevos y alcanzar un tamaño óptimo de los mismos ( Aviagen,  Aviagen, 2010 2010).

 

29

La respuestas al estímulo lumínico por parte de las reproductoras, dependerá mucho de sus condiciones físicas, peso corporal y edad. En galpones de luz controlada, se debe retrasar el estímulo lumínico si el lote todavía tiene un número importante de aves bajas de peso corporal. Dependiendo de qué curva de peso corporal este usándose, la edad para la primera estimulación lumínica puede ser entre las 20 y 21 semanas de edad. Cuando se van a transferir las aves de un galpón oscuro a un galpón de lados abiertos las aves deben estar con el peso correcto en el momento de la transferencia ( Aviagen,  Aviagen, 2010 2010). El programa de luz artificial no deberá iniciarse en las semanas ya descritas si el peso promedio de las aves del lote es menor a 2050 gr. Según Cobb-Vantress, Inc. (2012), se conocen los siguientes principios:  

La madurez sexual es estimulada por el aumento del número de hora de



luz del día y se atrasa con la disminución del periodo de día.  

La intensidad de luz nunca debe ser reducida cuando las aves son



trasladas del galpón de crecimiento al galpón de producción.  

El programa de iluminación para pollonas y gallos deberá estar



desarrollado para estimular el proceso de reproducción antes aumentar sustancialmente el consumo de la ración.  

Cuando se usa luz artificial, es esencial tener un reloj automático a fin de proveer iluminación suplementaria tanto para la mañana como por la



noche.   Una vez que la parvada haya iniciado su postura, nunca disminuy disminuya a el



total de hora de luz más bien incrementar conforme a la producción (Cobb-Vantress,

Inc. 2012).

Las reproductoras pesadas tienden a iniciar postura cuando son estimuladas con más horas de luz, siempre y cuando el estímulo se haga en el momento apropiado. Para alargar las horas de luz diaria, se recomienda prender las luces

 

30

temprano en la mañana. Por ejemplo, si la luz natural del día dura 8 horas y las luces se prenden a las 7:00 am, para agregar 3 horas de luz, las luces deben prenderse a las 04:00 am (Aviagen, 2010).

3.5.3.1. Crecimiento en galpones oscuros Las reproductoras cobb 500 deben ser levantadas en galpones oscuros. Intensidad de luz debe ser menor a 0.5 lux (0.05 pie candela) lux cuando apagan las luces (Aviagen, 2010). Los galpones de lados abiertos pueden ser adaptados a galpones oscurecidos eliminado toda entrada de luz externa utilizando cortinas negras para el oscurecimiento. Se debe entonces instalar ventiladores en el galpón para asegurar una correcta ventilación de éste. Los ventiladores y las entradas de aire al galpón también deben estar cubiertos por trampas de luz (Aviagen, 2010).

3.5.3.2. Crecimientos en galpones oscuros y producción en galpones abiertos

Inicie con 24 horas de luz reduciendo á 8 horas cuando los pollitos tengan 2 a 3 semanas de edad. La edad en la cual las aves estarán con 8 horas de luz dependerá de su tasa de crecimiento. Las horas de luz se mantienen en 8 horas hasta las 20 semanas de edad (140 días), momento en el cual se aplican los programas escalonados de luz. La intensidad de la luz durante el periodo de producción debe ser 80-100 lux (g- 10 pies candela) pero también depende del tipo de fuente de luz usado. Luz de sodio de alta presión requiere en general la recomendación de 80-100 lux. La luz debe ser uniforme a través de todo el galpón (Aviagen, 2010).

 

31

3.5.3.3. Crecimiento en galpones abiertos Según, Aviagen, (2010):   Provea 23 horas de luz durante los 3 primeros días.



  Use lla a luz natural desde el 3"'día hasta las 20 semanas..



  A las 20 semanas provea 14 horas de luz, si la luz natural es de 13 horas



o menos.   Si la duración de la luz natural a las 20 semanas es de 14 horas o más,



provea esa cantidad de luz total.   Aumentar una hora adicional de luz a ras 22, 24 y 26 semanas de edad.



  No exceder 17 horas de luz total.



3.5.4. Manejo del macho reproductor La clave para obtener una buena fertilidad de las reproductoras hoy en día, es desarrollar programas de alimentación y manejos que permiten un desarrollo correcto del sistema reproductivo de los machos. La recría y la alimentación de los machos son por separado de las hembras es un programa de manejo que ofrece ventajas, tales como mejor control del peso y selección, transferencia más temprana a galpones de producción y un mayor porcentaje de nacimiento como resultado de la mejor calidad del semen, mayor habilidad en el apareamiento y viabilidad. Las hembras y machos son criados separadamente en el mismo galpón en algunos casos. La ración de iniciación y de crecimiento para el macho es el mismo del de las a pollonas ( Aviagen,  Aviagen, 2010). 2010).  La cantidad de machos iníciales dependerá de la mortalidad prevista durante el periodo de crecimiento, la presión de selección que debemos ejercer y él número requerido para maximizar la fertilidad. Generalmente 13 a 15% deben

 

32

corresponder a machos en un lote de reproductoras iníciales cumplirán con estos criterios. El perfil de crecimiento del macho es el factor individual más importante que se correlaciona con la fertilidad del lote. Los machos deben pesarse por lo menos semanalmente desde la cuarta semana hasta la semana 30 de edad y por lo menos cada tercera semana de ahí en adelante (Aviagen, 2010).

3.5.5. Control del peso corporal y alimentación Controlar el desarrollo de las reproductoras a todo lo largo de la etapa de levante para alcanzar el máximo rendimiento reproductivo. Establecer y mantener el peso corporal para la edad y la buena uniformidad de la parvada mediante un control preciso de la cantidad y la distribución del alimento suministrado (Aviagen, 2010). El crecimiento y el desarrollo de una parvada se evalúa y maneja, pesando muestras representativas de aves y comparándolas con el estándar de peso para la edad. Existen varios tipos de básculas que se pueden usar para pesar a las aves con una precisión de 20 g. Las básculas mecánicas convencionales o de aguja giratoria son las más laboriosas y, además, con ellas es necesario anotar los registros y hacer los cálculos manualmente. El pesaje de las muestras de aves se debe realizar cada semana, comenzando desde el primer día de vida. A los 0, 7 y 14 días (0, 1 y 2 semanas) de edad, las aves de una muestra se deben pesar en conjunto, de 10 a 20 animales a la vez. La muestra total no debe ser inferior al 5% de la parvada. En las parvadas que tengan problemas de crecimiento al principio de su crecimiento tal vez sea necesario realizar los pesajes con mayor frecuencia. Inmediatamente después del pesaje se deben calcular los siguiente parámetros:

 

33

  Pesos promedio de la parvada



  Rango de pesos de la parvada



  Distribución del peso en la parvada



  Coeficiente de variación, % (Aviagen, 2010).



3.5.6. Control de la alimentación Lograr los pesos estándar a todo lo largo de la vida de las reproductoras pesadas. Asegurar el correcto crecimiento y desarrollo permitiendo que las aves alcancen la madurez sexual de manera uniforme y coordinada, tanto entre las del mismo sexo como entre ambos sexos. Minimizar la variación entre la parvada para poder manejarla con mayor facilidad. Todas las decisiones que se tomen sobre la cantidad de alimento a suministrar se deben basar en el peso promedio de las aves de cada corral, con respecto al peso estándar. La cantidad de alimento se puede mantener o incrementar, pero nunca se debe disminuir durante el período de desarrollo. Es esencial contar con equipo preciso para pesar a las aves, con el fin de hacer los cálculos del alimento por ave, al gramo más próximo. Durante el período de desarrollo se debe proporcionar el espacio adecuado de comedero, según se muestra en el Cuadro 8. Si se utilizan comederos de plato es esencial asegurar que las aves tengan acceso irrestricto a ellos, espaciando los platos lo suficiente para que las aves de platos adyacentes no se obstruyan el acceso entre sí. Para mantener una buena uniformidad en las parvadas  jóvenes, es necesario alimentarlas ad libitum durante suficiente tiempo hasta alcanzar o exceder el peso objetivo a los 14 días (Aviagen, 2010).

 

34

3.5.7. Uniformidad Separar la parvada en 2 ó 3 subpoblaciones de diferente peso promedio a los 28 días (4 semanas) de edad, de tal manera que cada grupo pueda ser manejado durante el período de desarrollo a fin de lograr la mayor uniformidad de la parvada al inicio de la postura. Una parvada uniforme es más fácil de manejar que una con variaciones, debido a que la mayor parte de las aves presentará un estado fisiológico similar y responderá a los cambios en los niveles de alimento o de iluminación, cuando sea necesario. Una parvada uniforme reaccionará en forma predecible a los aumentos de ración y producirá buenos resultados de manera consistente. La uniformidad de la parvada se puede optimizar aplicando altos estándares de manejo durante las primeras 4 semanas (Aviagen, 2010).

 

35

IV CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES REALIZADAS El trabajo dirigido se desarrolló desde el 22 de agosto del 2016 hasta el 5 de diciembre del mismo año en la empresa AVISUR (granja “LA PEÑITA”)  en la parte de manejo de reproductoras pesadas en la etapa de recría las actividades fueron planificadas por el médico veterinario encargado de la granja.

Cuadro 1: Cronograma de actividades ACTIVIDADES Bioseguridad

DETALLES Control de ingreso

Ago x

Sep xxx

Oct xxx

Nov xxx

Vacunación Vacunac ión

x

xxx

xxx

xxx

Limpieza y Desinfección Vitaminas Manejo de cortinas Selección y descarte Manejo de luz Relación de equipos Preparación del galpón para la recepción Recepción y cría Etapa de recría Control de peso Control de uniformidad Registro de mortalidad Cantidad de alimento adecuada  Ajuste del del alimento d de e acuerdo al peso semanal

x

xxx

xxx

xxx

x X X X X X

xxx xxx xxx xxx xxx xxx

xxx xxx xxx xxx xxx xxx

xxx xxx xxx xxx xxx xxx

X X X X

xxx  xxx xxx xxx xxx

xxx xxx  xxx xxx xxx xxx

xxx  xxx xxx xxx xxx

X

xxx

xxx

xxx

Sanidad

Manejo e infraestructura

Registro Alimentación

Fuente: elaboración propia 

X X

 

36

V. DESARROLLO DEL TRABAJO DIRIGIDO 5.1. LOCALIZACIÓN Y DIMENSIÓN DEL CENTRO DE TRABAJO La granja de aves reproductoras se encuentra a 36 km de la ciudad de santa Cruz de la Sierra, sobre la carretera a Rio Grande Brecha 4. La ubicación geográfica de la propiedad es en la provincia Andrés Ibáñez del departamento de Santa Cruz a 47° 45” de latitud sur y 63° 10” de longitud oeste; en esa zona la precipitación pluvial es de 1200 mm, y una temperatura promedio de 24°C con una humedad relativa del 72 %. Sus dimensiones de la empresa AVISUR es de 500 ha de los cuales

20 ha

corresponde a la granja La Peñita.

5.2. CARACTERIZACIÓN TÉCNICA Y PRODUCTIVA DEL CENTRO La granja “La Peñita” ocupa un promedio de 20 ha para el programa de recría y producción.

La granja es utilizada para la producción de huevos para luego ser incubados dentro de sus mismos establecimientos seguida de la venta de pollitos bb. El lugar consta de 18 galpones de los cuales 6 son utilizados para el área de cría y recría cuyas dimensiones son de 120 m de largo x 12 m de ancho, constan de cortinas plateadas que oscurecen el interior del galpón de esa forma se utiliza la modalidad de galpones semioscuros.

 

37

Los galpones están separados por corrales de tal manera que se cría los machos separados de las hembras cuya alimentación es diferente también y es ejecutada a las 4 am. Durante la recepción de los pollitos bb se utilizó corros de metal, estufas, bebederos comederos, cartón corrugado como base y focos.

5.3. DESCRIPCIÓN, EVALUACIÓN Y ANÁLISIS DEL TRABAJO REALIZADO 5.3.1. Bioseguridad y sanidad 5.3.1.1. Control de ingreso Todo personal que que ingresó a la granja se registró en el

libro de visitas

especificando: Nombre, procedencia, hacia qué lugar de la granja se dirige, hora de llegada y de salida, número de celular, y firma del que ingresa. El personal antes de ingresar se bañó y cambió de ropa luego se colocó uniforme del lugar.

 Antes de ingresar a los galpones el personal pas pasó ó por los filtros y se cambió de ropa nuevamente. En las entradas de los galpones se colocó hay pediluvios con desinfectantes. También se controló la entrada de vehículos los cuales se registraron de la siguiente manera: nombre del chofer, contenido del camión, motivo, procedencia, hacia donde se dirige, hora de entrada y de salida, firma del chofer.

 

38

El vehículo se lavó completo con una agua utilizando una bomba a presión sobre todo las ruedas para que salga la tierra, después de eso el vehículo es desinfectado con creolina 1 L para 100 L de agua.

5.3.1.2. Sanidad La empresa maneja un calendario sanitario que consta de un calendario de vacunación para las aves en la etapa de recría, hay vacunas que se suministran en agua, otras que son aplicadas de forma intramuscular, subcutánea, punción alar, en el siguiente cuadro se muestra el programa de vacunación.

Cuadro 2: Calendario de vacunación Sem día 0 1 0 2 1 4 1 6 1 6 2 17 4 28

Tipo de vacuna Marek Salmonella enteritidis coccidiosis Gumboro + Newcastle + bronquitis Tenosynovitis Gumboro + Newcastle + bronquitis Hepatitis por cuerpo de inclusión

Vía SC Oral Oral Ocular SC Ocular SC

4 5

28 35

Gumboro + Newcastle + bronquitis Laringotraqueitis + viruela

Ocular PA

6 6 7 7 8

42 42 49 49 56

Neumovirus Tenosynovitis Hepatitis/pasterella Newcastle + bronquitis Salmonella enteritidis

Ocular SC SC Ocular Oral

9 10

63 70

Gumboro Anemia infecciosa

Oral Oral

11 11

77 77

Encefaloviruela Newcastle + bronquitis

PA Ocular

 

39

12

84

Gumboro + Newcastle + bronquitis+ Reovirus

SC

13 14

91 98

Coriza Salmonella gallinarum 9R

IM SC

15 16

105 112

Neumovirus Hepatitis/pastereulla

SC SC

18

126

IM

19

134

Gumboro + Reovirus + Newcastle + bronquitis + coriza Salmonella enteritidis

Oral

Fuente: granja LA PEÑITA

5.3.1.3. Limpieza y desinfección Los bebederos existentes en los galpones son lavados diariamente con agua y detergentes, el tanque es lavado una vez a la semana utilizando detergente y agua. Las camas se movían una vez por semana o las veces que sea necesario y desinfectada con yodo 400 ml en 20 L de agua. Se retiró las aves de los galpones, se retiró la cama y fue llevada por camiones para su uso como abono para otras granjas, luego se barrió lo que queda de la cama, con una bomba a presión y agua se lavó el techo las cortinas y de ultimo el piso, luego se desinfecto con creolina al 2%. Lo último que se hizo el calear el galpón y mantenerlo cerrado  A la entrada de cada galpón hay pediluvios que contenían agua con desinfectante cuyo formula base es el glutaraldehido y amonio cuaternario, este desinfectante se cambiaba cada día.

 

40

Se limpió los depósitos todos los días evitando así la propagación de roedores.

5.3.2. Manejo 5.3.2.1. Manejo de cortina Se utilizó cortinas plateadas las cuales eran abiertas cuando la temperatura pasaba los 26 °C esto ayudaba en la ventilación del galpón eliminando la presencia del amoniaco dentro del galpón. Con las cortinas cerradas fué posible manejar también intensidad lumínica, hay sombritis en los laterales del galpón que evitaban la entrada de rayos de luz pero dan paso a la circulación del aire.

5.3.2.2. Selección y descarte Durante la etapa de cría y recría se realizó tres selecciones al 100 %:   A las 4 semanas de edad



  A las 9 semanas de edad



  A las 14 semanas de edad



Esta selección al 100%, conforme a las edades citadas previamente, es mediante el peso de las aves y características fenotípicas del ave. Durante a selección tomamos en cuenta que no haya defectos físicos en las aves como dedos torcidos en los machos, buen aplomo, cuellos torcidos, observar si fueron bien sexada,

 

41

5.3.2.3. Manejo de luz Cuadro 3: Manejo de horas luz en la etapa de cría y recría Semanas

Horas luz

1 2

24 horas luz 22 horas luz

3

Luz natural (galpón semi oscuro)

5 hasta la semana 21 (machos)

12 horas de luz (galpón semi oscuro)

5 hasta la semana 22 (hembras)

12 horas de luz (galpón semi oscuro)

21 (machos)

14 horas de luz

22 (hembras)

14 horas de luz

Fuente: elaboración LA PEÑITA

5.3.2.4. Relación de equipos En la granja se utilizó comederos tolvas y bebederos niples de metal

Cuadro 4: Relación de equipo en la etapa de cría con espacio físico  Aves/bebedero Aves/Comederos

Aves/m2 

Macho

80

60

40

Hembra

80

60

40

Fuente: granja LA PEÑITA

Cuadro 5: Relación de equipos y espacio físico en la etapa de recría  Aves/bebedero Aves/Comederos

Aves/m2 

Macho

50

8

3

Hembra

50

10

3.5

Fuente: granja LA PEÑITA

 

42

5.3.2.5. Preparación del galpón para la recepción Los galpones son convencionales, convencionales, con pisos de ladrill ladrillos os y mallas olímpicas a los costados, techos de calamina y estaban separados por dentro en corrales. Luego que el galpón fue fue limpiado y desinfectado, lo siguiente que se realizo fue introducirle chala de arroz dentro la altura de 5 a 7 cm. Posteriormente se fumigó con yodo al 3% 400 ml en 20L de agua. Finalizado esto se preparó todo el equipo los comederos y bebederos fueron lavados con ase, enjuagado con agua y por ultimo desinfectado con solución desinfectante, una vez terminado con este proceso se armó los comederos y bebederos. 

5.3.2.6. Recepción y cría Esta etapa abarca desde la recepción hasta las 3 semanas de edad Inicialmente se colocó cartón corrugado sobre la cama y encima del cartón se armó los corros utilizando un espacio físico de 40 aves por metro cuadrado. Luego se colocaron las cortinas tanto dentro como fuera del galpón para que la temperatura del galpón sea óptima para la llegada de la pollita.  A continuación se ubicó las estufas para calentar el ambiente y la cama antes de la llegada del pollito a una temperatura de 31° C. Se utilizó bebederos 80 aves por bebedero y bandejas como comederos a razón de 60 aves por bandeja.

 

43

Las pollitas fueron esperadas con alimento pesado y la primera vacuna es salmonella enteritidis que fue administrada vía oral mediante el agua.

El cartón corrugado se retiró al tercer día y el corro es ampliado a razón de 30 aves por metro cuadrado, el corral es ampliado cada tres días con el objetivo que a las 6 semanas las pollitas ocupen todo el galpón Se armó el galpón completo con comederos y bebederos antes que las aves cumplan seis semanas de edad, los estándares que se utilizó para la relación de equipos están en el cuadro 4

5.3.2.7. Etapa de recría abarca desde las semanas 3 hasta la 21 En esta etapa se intentó mantener una buena uniformidad, conformación de las aves y que el galpón se mantuviera lo más oscuro posible siempre estando atento a la temperatura dentro de los galpones

5.3.3. Registros Los registros que se utilizó en la granja nos ayudaron a saber cómo se está manejando los lotes, estos registros son: Control de peso, de uniformidad y de mortalidad . Las aves fueron pesadas cada que cumplieron semanas, se muestreó el 3% de población luego se sacó peso promedio por corral y en general, luego analizamos uniformidad por corral y en general. Con estos datos se pudo aumentar el alimento de acuerdo a los estándares establecidos. Las gallinas flacas fueron separadas de las gordas en corrales diferentes donde la cantidad de alimento varia, esto se hace para mejorar la uniformidad del lote

 

44

tanto en hembras como en machos. Se maneja un libro de cada galpón donde se anota la mortalidad por día para la distribución correcta del alimento.

Semana 1 3 5 7 9 11 13 15

Peso 167 434 704 874 1017 1258 1385 1574

Cuadro 6: parámetros obtenidos Hembra Macho Uniformidad Mortalidad Peso Uniformidad Mortalidad Uniformidad 50 0.01 149 50 0.01 75 0.14 536 62.3 0.15 76 0.16 922 81 0.16 73 0.6 1279 80 0.55 75 0.67 1595 76 0.67 78 0.78 1656 74 0.80 80 0.90 1914 72.6 0.96 81 1 1895 78 1

Fuente: granja LA PEÑITA

5.3.4. Alimentación 5.3.4.1. Cantidad de alimento Calculamos el alimento por ave mediante la tabla de referencia dependiendo de la línea genéticas (Cobb o Ross). Para calcular el alimento total a utilizar por día en el galpón hicimos lo siguiente: gr de alimento de cada ave x cantidad de aves. La alimentación era a las 5 de la mañana se observó que el alimento sea distribuido uniformemente en todos los comederos, se indica a los galponeros que hagan todo lo posible de no derramar alimento sobre la cama.

 

45

5.3.4.2. Ajuste del alimento de acuerdo al peso semanal Luego del pesaje semanal se ajustó el alimento para esa semana de acuerdo a los estándares establecido en la tabla de referencia usadas en la granja.

Cuadro 7: Requerimiento Requerimiento de alimento en gramos utilizado en la etapa de cría Días 1 2 3 4 5

Hembras 12 15 18 21 24

Machos 12 16 20 24 28

6 7 8 a 14 14 a 21

27 30 30 a 35 36 a 41

34 38 40 a 45 45 a 55

Fuente: granja LA PEÑITA

Cuadro 8: Incremento de alimento utilizado en la etapa de recría semanas

Hembra

Macho

4a8

1 a 2 gr

2 a 3 gr

9 a 16 17 a 21

2 a 3 gr 4 a 5 gr

3 a 4 gr 4 gr

Fuente: granja LA PEÑITA

 

46

VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 6.1. CONCLUSIONES El tiempo permanecido en la granja fue de gran importancia, ya que se pudo afianzar las competencias en producción avícola, lo cual refuerza la formación como Médico Veterinario Zootecnista. Se ejecutó el calendario de vacunación de acuerdo al programa de sanidad preventiva que maneja la empresa, siempre revisando la fecha de caducidad de las vacunas y que su vía de inoculación sea la adecuada. La uniformidad durante el traslado al galpón de producción del lote 120 fue de 84 % para hembras y 79 % para machos; asimismo, la mortalidad en hembras fue de 3 % y 2,9 % en machos. Referente a la infraestructura de los galpones, se pudo evidenciar deterioro de la misma, lo cual influye en los niveles de bioseguridad de la granja.

 

47

6.2. RECOMENDAIONES Basados en las conclusiones, se recomienda lo siguiente:   Capacitar a los trabajadores en áreas técnicas propias de esta actividad



avícola (sanidad, alimentación, bioseguridad, manejo de luz y control de la uniformidad).   Realizar un mayor mantenimiento de la infraestructura, especialmente de



los galpones.



  Realizar una mejor gestión de los registros, con el fifin n de dar un mayor control a los lotes.   Finalmente, se recomienda mejorar el sistema de ventilación,



proporcionando la cantidad adecuada de ventiladores en cada galpón.

 

48

VII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS  ADA, GOBERNACION, 2016. Censo avícola comercial 2016 en el departamento de Santa Cruz –Bolivia.  AMEVEA, 2007. 4to Curso Nacional en Sanidad y Producción Avícola. Santa Cruz  – Bolivia. Documento.

 AMEVEA, 2017. 7to Curso Nacional en Sanidad y Producción Avícola. Santa Cruz  – Bolivia. Documento PP. 54 - 66

 Aviagen, 2010. Manual de manejo de las reproductoras Ross 308. Fecha de www.aviagen.com..  acceso: 12/06/2017. Disponible en. www.aviagen.com Cobb-Vantress, Inc. 2012. Guía de Manejo de Reproductoras COBB. Fecha de www.cobb-vantress.com..  acceso: 12/06/2017. Disponible en: Website:  Website: www.cobb-vantress.com EL

PAIS.

2017.

Fecha

de

consulta

20/01/2017.

Disponible

en:

(http://www.elpais.com/diccionarios/castellanos/avicultura http://www.elpais.com/diccionarios/castellanos/avicultura)). Domínguez B. F 2006. Higiene y Patología Aviar, 2da Edición. Real escuela de avicultura Pp. 190 - 200 Giron S.I. 2006. Higiene y Patología Aviar, 2da Edición. real escuela de avicultura Pp. 109 - 180 Halvorson, DA. 2000. La importancia de la Bioseguridad In: Avicultura profesional .Volumen 18 N 8. Holanda-Países Bajos. Pp. 15 -29. Ordoñez O.G. 2006. Higiene y Patología Aviar, 2da Edición. Real escuela de avicultura Pp. 46 - 53

 

49

Ortíz R., J. 2010. Evaluación de niveles de bioseguridad en granjas avícolas de Santa Cruz – Bolivia. Asociación Departamental de Avicultores (ADA), Santa Cruz. Soleto, A.W., 2004. III Curso Nacional en Sanidad y Producción Avícola Santa  –  Cruz - Bolivia. Pp. 45  – 54.

 

50

VIII. ANEXOS

Lavado de vehículos para entrar a la granja 

Comederos y bebederos para la recepción

 

51

Cartón corrugado para la recepción

Galpón caleado

 

52

Depósito de alimento.

Jeringa con aguja para vacunación

 

53

Planillas de la granja

Registro del lote 121

 

54

Curva de ganancia de peso del lote 120

Preparación del galpón para la recepción

 

55

Recepción de pollito BB