Primer Libro de Analisis de Suelo Agua y Planta

Sergio Salgado García David J. Palma López Luz del C. Lagunes Espinoza Mepivoseth Castelán Estrada

MANUAL PARA MUESTREO DE SUELOS PLANTAS Y AGUAS E INTERPRETACIÓN DE ANÁLISIS

Sergio Salgado-García David J. Palma-López Luz del C. Lagunes-Espinoza Mepivoseth Castelán-Estrada

Colegio de Postgraduados Institución de enseñanza e investigación en ciencias agrícolas.

México 2006 Segunda edición 2006

DR © 2006. COLEGIO DE POSTGRADUADOS CAMPUS TABASCO APARTADO POSTAL 24 86500 H. CÁRDENAS, TABASCO, MÉXICO. REGISTRO NUM. 306 DE LA CAMARA NACIONAL DE LA INDUSTRIA EDITORIAL MEXICANA. ISBN PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN PARCIAL O TOTAL SIN PERMISO POR ESCRITO DEL COLEGIO DE POSTGRADUADOS O DE LOS AUTORES. IMPRESO EN MÉXICO/ PRINTED IN MÉXICO. Cita correcta: Salgado-García S, D. J. Palma-López, J. LagunesEspinoza y M. Castelán-Estrada. 2006. Manual para el muestreo de suelos plantas y aguas e interpretación de análisis. Colegio de Postgraduados, Campus Tabasco-ISPROTAB. H. Cárdenas, Tabasco, México. 90 p. Primera edición 1999 Segunda edición 2006

COLEGIO DE POSTGRADUADOS DIRECTORIO Dr. Benjamín Figueroa Sandoval Director General Dr. Félix V. González Cossio Secretario General Lic. Guillermo Díaz Landero Secretario Administrativo

CAMPUS TABASCO DIRECTORIO Dr. David J. Palma López Director Dr. Carlos F. Ortiz García Subdirector de Enseñanza Dr. Sergio Salgado García Subdirector de Investigación Dr. Lorenzo A. Aceves Navarro Subdirector de Vinculación

DE LOS AUTORES Sergio Salgado García. Doctorado en Ciencias en Fertilidad de Suelos, Colegio de Postgraduados, México. Profesor Investigador Asociado, Colegio de Postgraduados – Campus Tabasco. Dirección: Periférico Carlos A. Molina s/n km 3.5 H. Cárdenas, Tabasco México. Nivel 1 del Sistema Nacional de Investigadores y Miembro del Sistema Estatal de Investigadores de Tabasco desde 2000: [email protected] David J. Palma–López. Doctorado en Ciencias en Génesis y Clasificación de Suelos. Institut National Polytecnique de Lorraine, Francia. Profesor Investigador Titular, Colegio de Postgraduados – Campus Tabasco, México. Periférico Carlos A. Molina s/n km 3.5 H. Cárdenas, Tabasco, México. Nivel 1 del Sistema Nacional de Investigadores y Miembro del Sistema Estatal de Investigadores de Tabasco desde 2000: [email protected] Luz del C. Lagunes-Espinoza, Doctorado en Ciencias en Biología y Agronomía, Ecole Nationale Superieure d'Agronomie, Francia. Profesor Investigador Adjunto, Colegio de PostgraduadosCampus Tabasco, México. Nivel 1 del Sistema Nacional de Investigadores y Miembro del Sistema Estatal de Investigadores de Tabasco desde 2001: [email protected]. Mepivoseth Castelán Estrada. Doctorado en Ciencias en Ecofisiología Vegetal, Institut National Agronomique Paris-Grignon, Francia. ProfesorInvestigador Adjunto, Colegio de Postgraduados– Campus Tabasco, México. Periférico Carlos A. Molina s/n km 3.5 H. Cárdenas, Tabasco, México. Candidato del Sistema Nacional de Investigadores y miembro del Sistema Estatal de Investigadores de Tabasco desde 2001: [email protected].

PROLOGO A del partir del establecimiento del programa de manejo de uso sustentable de los suelos de Tabasco, el fortalecimiento de los laboratorios de suelos, plantas y aguas Campus Tabasco y del INIFAP en 1996, así como, la convivencia con técnicos y productores de la región. Incentivaron la inquietud de los autores para elaborar el Manual para el muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis. En esta segunda edición del manual, los autores tomaron en cuenta la Norma Oficial Mexicana-021 RECNAT-2000, para actualizar la parte de suelos, se documenta un mayor numero de deficiencias; además,, se sintetizan los conceptos actuales sobre nutrición vegetal, fertilidad de suelos, calidad de agua para riego, y se ilustra con ejemplos de cultivos del trópico húmedo de México, la bondad de esta herramienta. Con este manual se abre una nueva era en la producción agrícola del Estado, ya que el productor a través de los análisis químicos de suelos, plantas y aguas podrá identificar y corregir las deficiencias nutrimentales de cultivos en suelos de baja fertilidad, mejorar la calidad de los frutos, y determinar la calidad del agua para los sistemas de riego y fertirrigación, de manera cuantitativa, mejorando con ello su capacidad productiva. Este manual, es otro esfuerzo editorial que deriva de la coordinación de acciones entre el Gobierno del Estado, a través del Instituto del Trópico y el Colegio de Postgraduados-Campus Tabasco, instituciones que mantienen vigente su compromiso por sustentar la producción primaria de Tabasco, con el desarrollo, transferencia y uso de mejor tecnología.

MVZ. Vladimir Bustamante Sastré Director General del ISPROTAB

Contenido 1. MUESTREO DE SUELOS……………………..……. 1.1. Importancia del suelo…………………………….. 1.2. Conceptos básicos……………………………….. 1.3. Porqué analizar los suelos?..................................... 1.4.¿Porqué hacer muestreo de suelos?.......................... 1.5. ¿Cuándo realizar el muestreo de suelos?................ 1.6. Herramientas de muestreo………….……….…… 1.7. ¿Cómo realizar el muestreo?.................................. a) Superficie de muestreo………………………. b) Tipo de muestreo…………….………………. c) Número de submuestras……………………… d) Toma de submuestras………………………… e) Profundidad de muestreo…………………….. f) Homogenización de muestras………………… 1.8. Ficha de registro de muestras……………………. 1.9. ¿Qué análisis solicitar?........................................... 1.10. ¿Cada cuanto tiempo muestrear?.......................... 1.11. Interpretar los resultados de laboratorio………… a) Variables que no requieren calibración………. b) Variables que requieren calibración………….. c) Interpretación y recomendaciones…….………

Página 1 1 2 9 13 14 14 15 16 16 18 18 20 22 22 23 23 24 24 26 29

2. MUESTREO DE PLANTAS………………………… 2.1. Importancia de la nutrición vegetal……………… 2.2. ¿Para qué sirven los análisis foliares?.................... 2.3.¿Cómo realizar el muestreo?................................... 2.3.1. Materiales para la toma de muestras………. 2.3.2. Tipo de cultivo……………………….…….. 2.3.3. Definición de áreas para el muestreo….…… 2.4. ¿Qué determinaciones solicitar?............................. 2.5. Interpretación de los resultados de laboratorio…..

34 34 42 43 43 44 44 44 54

3. MUESTREO DE AGUAS……………………………. 3.1. Importancia del agua…………………………….. 3.2. ¿Porqué realizar el análisis de aguas?.................... 3.3. ¿Cómo realizar el muestreo de aguas?................... 3.4. Materiales de muestreo…………..……………… 3.5. ¿Qué análisis solicitar?........................................... 3.6. Registro de muestras de agua para riego agrícola.. 3.7. Interpretar los resultados de laboratorio…………. 3.7.1. Contenido de sales .solubles......................... 3.7.2. Efecto probable del Na sobre las características físicas del suelo……………………

58 58 61 61 62 63 64 65 65 68

3.7.3. Contenido de elementos tóxicos para las plantas…………………………………………….. 3.7.4. Procedimiento para clasificar las aguas de riego………………………………....…………… 3.7.5. Notación abreviada de la calidad del agua de riego……………………………………………….

70 71 76

4. GLOSARIO……………………………………………

77

5. BIBLIOGRAFÍA…………………………………….

84

1 MUESTREO DE SUELOS 1.1. El suelo El suelo, en su concepto moderno se define como “la colección de cuerpos naturales sobre la superficie terrestre, en algunos lugares modificado o incluso hecho por el hombre a partir de materiales terrestres, contiene materia viva y es capaz de soportar el crecimiento de las plantas” (Soil Survey Staff, 1998). En la Figura 1, se muestran dos perfiles de suelos representativos de Tabasco.

a) Suelo Fluvisol b) Suelo Vertisol Figura 1. Perfiles de dos suelos típicos de Tabasco (Salgado et al., 2004).

1

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Los suelos naturales son cuerpos formados por la acción de diferentes factores y se componen de cuatro sustancias principales: minerales, materia orgánica, aire y agua. El suelo es el sustrato que permite el crecimiento de todas las plantas terrestres, ya sean naturales o cultivadas; por lo tanto es importante para la vida en la tierra. Entre mejor se conozcan las propiedades físicas y químicas de los suelos, mejor se podrán entender las respuestas de los cultivos a la aplicación de fertilizantes y los resultados de los análisis de laboratorio. En consecuencia, se podrán manejar mejor los cultivos y obtener mayores beneficios, sin degradar el recurso suelo y permitiendo su conservación. Para comprender el significado de la fertilidad de los suelos, es necesario conocer su naturaleza desde un punto de vista agronómico, así como las principales variables que determinan la fertilidad. Esta es la información que los autores del presente Manual desean proporcionar a los agricultores del sureste de México, esperando que resulte de utilidad práctica. Para facilitar la lectura y comprensión, los términos que se encuentran subrayados en el texto son definidos de manera sintética en el Glosario.

1.2. Conceptos Básicos Textura. Es una propiedad del suelo que está determinada por las proporciones de arena, limo y arcilla que contiene este. La textura se determina en laboratorio mediante el análisis granulométrico de los minerales. Las fracciones minerales que componen el suelo se clasifican según el tamaño de sus partículas (Ortiz y Ortiz, 1980) en arena, limo y arcilla. Arena. La constituyen partículas cuyo tamaño varía de 2.0 a 0.02 mm de diámetro, formadas por granos de sílice que no tienen ninguna cohesión entre ellos, los suelos que la contienen en gran cantidad son muy permeables al aire y agua. Limo. Está formado por partículas minerales cuyas dimensiones fluctúan entre 0.02 y 0.002 mm de diámetro, las cuales tienen propiedades intermedias entre la arcilla y la arena en cuanto a retención de agua y nutrientes. 2

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Arcilla. Se forma de partículas inferiores a 0.002mm de silicatos de aluminio hidratados y óxidos hidratados, de diferentes elementos. Esta fracción es la encargada de los procesos de intercambio de iones y de la contracción y expansión de los suelos. Algunas características de las principales arcillas son (Cuadro 1). Cuadro 1. Principales propiedades generales de las arcillas del suelo. Tamaño relativo CIC Sustitución Arcilla Tipo de partículas cmol(+) kg-1 isomórfica Caolinita

1:1

Grande

8

Poca o ninguna

Ilita

2:1

Intermedia

30

Silicio por Aluminio

Montmorillonita

2:1

Pequeña

100

Aluminio por Magnesio

Adaptado de Foth (1992).

De acuerdo con las proporciones de arena, limo y arcilla que presentan los suelos, estos se clasifican en arcillosos, francos o arenosos cuando predomina la arcilla, limo o arena, respectivamente. La clasificación se realiza en base a los porcentajes de cada fracción y siguiendo el triángulo de texturas (Figura 2).

Figura 2. Triangulo de texturas (Tomado de Buckman y Brady, 1985).

3

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Humus. Es la materia que resulta de la descomposición de los organismos vegetales y animales, por la acción del agua, aire y microorganismos del suelo. El humus y la arcilla se encuentran en el suelo estrechamente ligados en un estado que se denomina floculación, formando lo que se conoce como el complejo arcillo-húmico, con la propiedad de ser más estable que cualquiera de estas sustancias individualmente, debido fundamentalmente a la presencia del calcio en el suelo, con el cual se unen. Estructura. Es la organización de las partículas de suelo en agregados, siendo el complejo arcillo-húmico la sustancia que actúa como adhesivo de las partículas minerales mayores. Los agregados del suelo dan origen a los poros los cuales retienen aire y agua en su interior. Estos agregados a su vez, al unirse entre si, forman los terrones que se observan a simple vista cuando se labra o remueve el suelo. El complejo arcillo-húmico cubre las paredes de los poros evitando que estos se destruyan, por esta razón actúa como estabilizador de la estructura del suelo. La existencia de poros es deseable, ya que entre más poros grandes existan, más se facilita la circulación del agua, aire y la penetración de las raíces de los cultivos en el suelo. El agricultor puede contribuir a mejorar la estructura de su terreno a través de las siguientes prácticas (Cruz, 1986; Guerrero, 1990). 1. Suministrando materia orgánica al suelo periódicamente (residuos de cosecha, cachaza, gallinaza, estiércol, etc.). 2. Evitar el paso de maquinaria agrícola innecesaria en periodos con exceso de agua, para evitar la erosión hídrica (caso de los suelos de sabana que son de textura franca), o la compactación en suelos arcillosos. 3. No aplicar fertilizantes que contengan sodio, pues éste dispersa los agregados del suelo. 4. En suelos ácidos se puede mejorar la estructura con la práctica del encalado (Sánchez, 1981; Tisdale y Nelson, 1985; Núñez, 1985). Absorción de iones. El complejo arcillo-húmico es la principal fracción del suelo que retiene los iones de todos los elementos minerales; estos sirven como nutrientes para los cultivos y son absorbidos a través de las raíces. Los fertilizantes minerales son sales más o menos solubles, la parte soluble se disocia en el agua en dos o más iones. Por ejemplo, el sulfato de amonio [(NH4)2 SO4], se disocia en un anión sulfato (SO42-) y dos cationes amonio (NH4+); estos son asimilados por las raíces y proporcionan azufre (S) y nitrógeno (N) a las plantas (Sánchez, 1981; 4

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Fassbender, 1984). El complejo arcillo-húmico del suelo presenta un exceso de carga eléctrica negativa, por lo que fija los cationes (de carga positiva), los aniones permanecen disueltos en la solución del suelo. Los fertilizantes generalmente aportan los siguientes iones: Nitrogenados. El catión NH4+ (amonio), que es fijado por el complejo arcillo-húmico, y el anión NO3- (nitrato) que se encuentra libre en la solución del suelo; este último es más fácil y rápidamente asimilable por las plantas. Fosforados. Aportan el anión PO4H2- (fosfato monobásico) y otros aniones que en solución reaccionan con la superficie del complejo, de donde es extraído por las raíces. El porcentaje de fósforo que resulta retenido por las reacciones de adsorción depende de las características del complejo arcillo-húmico en cada tipo de suelo (Obrador, 1991). Potásicos. El catión K+ (potasio), al igual que el amonio, es fijado por el complejo arcillo-húmico; los porcentajes de K+ fijado varían según el tipo y composición mineral del suelo (López, 1990; Bolio et al., 2006). Los diferentes cationes no se fijan con la misma energía al complejo; se ha establecido un orden de energía de retención que se conoce como serie liotrópica (Fassbender, 1984): H> Ca > Mg >NH4 > K > Na En la mayoría de los suelos, el catión que se encuentra con mayor abundancia es el calcio; por el contrario, el sodio es poco retenido y tiende a lixiviarse. Al conjunto de reacciones de intercambio de iones del complejo, o intercambio de bases, en la solución del suelo se le conoce como Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC). Por ejemplo, si abonamos un suelo con cloruro de potasio (KCl), éste se disociará en cloro (Cl-) y potasio (K+), el catión pasa a ser fijado por el complejo, desplazando a un catión Ca2+ (calcio) que pasa a la solución. Este mecanismo es el que explica la acción descalcificadora que los abonos producen en los suelos agrícolas con el paso del tiempo (Guerrero, 1990). Sin embargo, descalcificación no quiere decir acidificación, porque los cationes calcio que se liberan pueden ser sustituidos por otros cationes metálicos. Ahora bien, es muy frecuente que esos cationes Ca2+ se vean reemplazados por iones H+ y Al3+, en cuyo caso la descalcificación si coincide con la acidificación. La capacidad total de intercambio de 5

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

cationes, es la capacidad máxima de cationes que un peso de suelo determinado es capaz de retener (Sánchez, 1981), se expresa frecuentemente en meq/100 g de suelo o más recientemente en cmol kg1 de suelo. Reacción del suelo o pH. Además de los cationes minerales, el complejo arcillo-húmico tiene fijados iones H+. La presencia en mayor o menor cantidad de iones H+ en relación a los iones básicos, determina la reacción o acidez del suelo que se expresa por el pH, cuyo valor puede variar teóricamente de 0 a 14; en la práctica, los valores observados en los suelos van de 4 a 9 (Sánchez, 1981; Tisdale y Nelson, 1985; Fassbender, 1984 y Guerrero, 1990). En la Figura 3, se observa la disponibilidad de los nutrimentos en función del pH del suelo. La anchura de las bandas horizontales representa la solubilidad relativa del nutrimento. La disponibilidad del nutrimento para las plantas está en relación directa a la solubilidad del mismo (Bidwell, 1990).

Figura 3. Diagrama de E. Truog adaptado de (NPFI, 1988).

El calcio en el suelo. Este elemento es necesario como nutrimento para todas las plantas, además es regulador de la estructura y de las propiedades físicas del suelo. En suelos arcillosos y pesados aumenta la 6

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

permeabilidad del aire y del agua, disminuyendo la compactación de la tierra. Interviene en la actividad de los microorganismos que transforman el nitrógeno amoniacal (NH4+) en nítrico (NO3-), pues estos no son activos con un pH inferior a 6. Los encalados en suelos de pH ácido favorecen este proceso (Tisdale y Nelson 1985). Encalado del suelo. El encalado es una práctica agrícola que se recomienda cuando el suelo presenta un pH inferior a 5.0 y el cultivo que se desea establecer no es tolerante a suelos ácidos (Figura 4). Los criterios de importancia que ayudan a decidir si se realiza o no el encalado son: a) la acidez intercambiable mayor a 0.5 centi-moles por litro (cmol(+)l-1) es inadecuada para los cultivos; b) la suma de bases (Ca+Mg+K) menor de 5 cmol(+)l-1 produce bajo rendimiento en los cultivos y se relaciona con suelos de baja fertilidad; c) el porcentaje de saturación de aluminio (Al), o acidez intercambiable, mayor de 60% es tolerado por pocos cultivos; el valor deseable es de 10 a 25% (Molina, 1998).

Figura 4. Adaptación de los cultivos al pH del suelo (Guerrero, 1990).

7

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

En una primera aplicación de cal se debe elevar sólo media unidad de pH (0.5); dos años después se debe elevar otra media unidad, y así sucesivamente hasta que el pH alcance el rango de 6 a 6.5 (Guerrero, 1990). Sin embargo, la experiencia de los autores en Tabasco y Chiapas demuestra que suelos ácidos de las sabanas de Huimanguillo y Reforma, con una aplicación de 2 a 4 ton por hectárea de cal dolomítica, incrementaron su pH en casi una unidad (4.8 a 5.7 y 4.5 a 5.5), respectivamente; los cultivos (naranja valencia y tomate) no mostraron signos de ningún tipo de daños y el suelo no presentó alteraciones indeseables (Rodríguez, 1993). Los criterios para realizar un encalado del suelo son (Núñez, 1985; Molina, 1998): 1.

2.

3. 4.

La cal debe incorporarse a la profundidad requerida por el cultivo, para lo cual se distribuye superficialmente la cal en forma manual o mecánicamente, posteriormente se incorpora con la rastra (Figura 5). La aplicación de la cal se puede realizar en cualquier época del año. Sin embargo el suelo debe guardar un mes como tiempo mínimo de reposo, antes de realizar la siembra. De preferencia se recomienda la aplicación de cal dolomítica, por que además del calcio se adiciona magnesio. Para determinar la dosis de aplicación existen varios métodos, siendo los más comunes el de titulación con una base o equilibrio con cal; lavado con una solución amortiguadora (buffer), seguida de análisis del lixiviado para determinar la cantidad de base consumida por reacción con el suelo, y por diferencia entre la capacidad de intercambio catiónico y la suma de bases intercambiables. Cochran et al. (1980) propusieron la siguiente fórmula para calcular la dosis de cal a aplicar en los suelos, según las condiciones específicas: CaCO3 = (1.8 (PSAE – PSAD) (CICE)) / 100 Donde: PSAE: Porcentaje de saturación de Al existente en el suelo PSAD: Porcentaje de saturación de acidez deseado (Cuadro 2). CICE: Capacidad de intercambio catiónico efectiva, considera la suma de bases (Ca+Mg+K) y la acidez intercambiable (Al+H). CaCO3 requerido en t ha-1 8

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

5.

Los criterios para seleccionar los materiales para efectuar el encalado son: valor neutralizante, fineza, contenido de magnesio, pureza y costo.

Figura 5. Ejemplo de encalado del suelo en la sabana de Reforma, Chiapas.

La fertilidad de un suelo depende de las tasa relativas de adición y extracción de nutrimentos por las plantas (Bidwell, 1990), por ello, para desarrollar un programa de fertilización adecuado es necesario saber que elementos y en que cantidad son requeridos por los cultivos a fin de producir cosechas rentables en diferentes tipos de suelo.

1.3 ¿Por que analizar los suelos? Se recomienda realizar análisis de los suelos agrícolas para determinar sus propiedades físicas y químicas a fin de conocer su fertilidad. El conocimiento del nivel de fertilidad edáfica ayuda a tomar decisiones sobre la cantidad de fertilizante que se aporta a cada cultivo, o la necesidad de aplicar cal para incrementar los rendimientos. Los nutrientes primarios para las plantas son: nitrógeno (N), fósforo (P) y potasio (K); se llaman así porque determinan en mayor medida la producción de los cultivos. Los nutrientes secundarios son calcio (Ca), magnesio (Mg) y azufre (S); son requeridos por las plantas en cantidades menores. El silicio (Si), cobre (Cu), hierro (Fe), boro (B), sodio (Na), níquel (Ni) y otros, se llaman micronutrimentos, ya que son requeridos por las plantas en cantidades menores a 50 mg, pero ello no significa que 9

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 2. Porcentaje de saturación de Al (PSAE) tolerado por algunos cultivos en suelos ácidos y valores del porcentaje de acidez deseado (PSAD) para esos cultivos en producción. Cultivo Porcentaje de saturación de Al PSAD† (PSAE) Alto Medio Bajo Arroz X X X Maíz 40 200 22-49 50-300 >300 >1.0 1.0-2.5 >2.5 18-19 20-100 >100

Cultivo: Banano o plátano Número: 15 hojas Parte vegetativa: 7.5 cm de parte central Tiempo: de las hojas viejas (6-9 meses)

Medio Alto (%) 1.6-2.0 >2.0 0.08-0.25 0.26-0.3 0.75-2.0 2.1-2.9 1.0-3.0 3.1-4.0 0.25-0.80 0.9-1.0 0.20-0.60 0.7-1.0 (ppm) 50-100 >100 5-15 16-24 50-200 >200 30-500 501-1000 0.05-1.0 >1.0 30-150 151-300

Elemento: Bajo N P K Ca Mg S

2.50-3.49 0.15-0.19 3.00-3.79 0.50-0.79 0.18-0.24 0.18-0.24

B 20-49 Cu 3-4 Fe 40-49 Mn 15-29 Mo 0.01-0.04 Zn 20-30 Cultivo: Café Número: 100 hojas Parte vegetativa: Ramas de fructificación Tiempo: inicio de floración-madurez

B Cu Fe Mn Zn

7-9 4-5 50-75 75-99 15-19

Elemento:

Alto

Elemento: Bajo

>3.0 >0.2 >2.5 >2.5 >0.4 >0.2

N P K Ca Mg

2.00-2.19 0.10-0.11 0.90-1.19 0.90-1.09 0.20-0.29

B Cu Fe Mn Zn

20-24 4-5 40-59 22-24 22-24

Bajo

N P K Ca Mg S

25 >125 >200 >0.5 >30

Adaptado de Jones et al. (1991).

47

Medio (%) 2.20-3.5 0.12-0.5 1.20-3.0 1.10-4.0 0.30-0.5 (ppm) 25-100 6-100 60-150 25-200 25-200

Alto >3.5 >0.5 >3.1 >4.0 >0.55 >100 >100 >150 >200 >200

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Continuación….. Cultivo: Mango Número: 15 hojas completas Parte vegetativa: hojas maduras de renuevos Tiempo: posterior a la floración

Cultivo: Papaya Número: 15 hojas Parte vegetativa: Pecíolos Tiempo: hojas maduras jóvenes

Elemento:

Elemento: Bajo

Medio Alto (%) N 0.70-0.99 1.00-1.50 >1.50 P 0.05-0.07 0.08-0.25 >0.25 K 0.25-0.39 0.40-0.90 >0.90 Ca 1.00-1.99 2.00-5.00 >5.00 Mg 0.15-0.19 0.20-0.50 >0.50 (ppm) B 20-24 25-150 >150 Cu 5-6 7-50 >50 Fe 25-49 50-250 >250 Mn 25-49 50-250 >250 Zn 15-18 20-200 >200 Cultivo: Piña Número: 20 Parte vegetativa: Primera hoja abierta Tiempo: Inflorescencia sobresaliente Elemento:

Bajo

Bajo

N P K Ca Mg

200 -

Adaptado de Jones et al. (1991).

48

Medio (%) 0.80-1.00 1.01-2.5 0.18-0.21 0.22-0.4 2.8-3.2 3.30-5.5 3.0 >1.2 >30 >10 >100 >150 >40

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 29. Rangos críticos de nutrimentos para algunos cultivos de cereales y hortalizas Cultivo: Sorgo Número: 25 hojas Parte vegetativa: hoja más joven Tiempo: 37-56 días de la siembra

Cultivo: Maíz Número: 15 hojas Parte vegetativa: follaje completo Tiempo: 30 cm de altura

Elemento:

Elemento:

N P K Ca Mg

Bajo 40

N P K Ca Mg S

Bajo 0.5

Cultivo: Frijol Número: 10 hojas Parte vegetativa: renuevos desarrollados Tiempo: primeras hojas trifoliadas

B 25 Cu 20 Fe < 50.0 >250 Mn < 20.0 >300 Mo 10 Zn 60 Cultivo: Arroz Número: 25 hojas Parte vegetativa: hoja más joven Tiempo: iniciación de la panícula

Elemento:

Elemento: Bajo

B 15-19 >75 Cu 4-6 >30 Fe 40-49 >300 Mn 15-49 >300 Zn 18-19 >200 Cultivo: Tomate Número: 15 hojas compuestas Parte vegetativa: adyacentes a la floración Tiempo: a media floración

Medio Alto (%) N 2.40-2-50 2.60-3.20 >3.20 P 0.07-0.08 0.09-0.18 >0.18 K 0.80-0.90 1.00-2.20 >2.20 Ca 0.40 Mg 0.30 (ppm) B 4-5 6-7 >7.0 Cu 6-7 8-25 >25.0 Fe 60-69 70-150 >150.0 Mn 100-149 150-800 >800.0 Mo 16-17 18-50 >50.0 Cultivo: Melón Número: 12 hojas Parte vegetativa: quinta hoja de las guías Tiempo: floración-amarre de frutos

Elemento: Bajo

Elemento: Bajo

N P K Ca Mg

Bajo

4.24-4.99 0.25-0.34 2.00-2.24 1.00-1.49 0.25-0.29

N P K Ca Mg S

2.50-3.99 0.20-0.24 1.05-2.89 0.80-0.99 0.25-0.39 0.25-0.39

B Cu Fe Mn Zn

20-24 3-4 30-39 30-39 18-19

Medio (%) 5.00-6.0 0.35-0.75 2.25-4.0 1.50-2.5 0.30-1.0 (ppm) 20-75 7-30 50-300 50-300 20-200

Alto >6.0 >0.75 >4.0 >2.5 >1.0

Medio Alto (%) 4.0-6.0 >6.0 0.25-0.75 >0.75 2.9-5.0 >5.0 1.0-3.0 >3.0 0.4-0.6 >0.6 0.4-1.2 >1.2 (ppm) 25-60 >60 5-20 >20 40-200 >200 40-250 >250 20-50 >50

N P K Ca Mg S

3.50-4.49 0.25-0.29 3.20-3.99 1.20-2.29 0.25-0.34 0.20-0.24

B Cu Fe Mn Zn

22-24 4-6 40-49 40-49 18-19

Adaptado de Jones et al. (1991).

49

Medio (%) 4.50-5.5 0.30-0.8 4.00-5.0 2.30-3.0 0.35-0.8 0.25-1.4 (ppm) 25-60 7-30 50-300 50-250 20-200

Alto 5.6-6.5 0.9-1.2 >5.0 >3.0 >0.8 >1.4 >60 >30 >300 251-00 >200

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Continuación…. Cultivo: Sandía Número: 12 hojas Parte vegetativa: quinta hoja de la guía Tiempo: floración-amarre de frutos

Cultivo: Soya Número: 25 Parte vegetativa: renuevos desarrollados Tiempo: antes del llenado de las vainas

Elemento: Bajo

Elemento:

N P K Ca Mg

3.50-3.99 0.25-0.29 3.50-3.99 1.00-1.69 0.30-0.49

B Cu Fe Mn Zn

20-24 4-5 40-49 5.5 >0.8 >5.0 >3.0 >0.8 >60 >20 >300 >250 >50

Cultivo: Chile Número: 50 hojas sueltas Parte vegetativa: hojas de renuevos Tiempo: primera floración Elemento: Bajo N P K Ca Mg B Cu Fe Mn Zn

3.50-3.99 0.23-0.34 3.60- 3.99 0.80-0.99 0.26-0.29 23-24 4-5 50-59 40-49 18-19

Medio Alto (%) 4.00-6.0 >6.0 0.35-1.0 >1.0 4.00-6.0 >6.0 1.00-2.5 >2.5 0.30-1.0 >1.0 (ppm) 25-75 >75 6-25 >25 60-300 >300 50-250 >250 20-200 >200

Adaptado de Jones et al. (1991).

50

Bajo

N P K Ca Mg S

3.10-4.00 0.16-0.25 1.26-1.70 0.21-0.35 0.11-0.25 0.16-0.20

B Cu Fe Mn Mo Zn

10-20 5-9 31-50 15-20 0.4-0.9 10-20

Medio Alto (%) 4.01-5.5 5.51-.00 0.26-0.50 0.51-0.80 1.71-2.50 2.51-2.75 0.36-2.00 2.01-3.00 0.26-1.00 1.01-1.50 0.21-0.40 >0.40 (ppm) 21-55 56-80 10-30 31-50 51-350 350-500 21-100 101-250 1.0-5.0 5.1-10 21-50 51-75

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 30. Rangos críticos de nutrimentos para pastos, árboles forestales y frutales Cultivo: Pasto Bahía (P. notatum) Número: 50 hojas Parte vegetativa: Hojas abiertas Tiempo: No especificado

Cultivo: Pasto Bermuda (C. dactylon) Número: Necesarias Parte vegetativa: hojas parte alta Tiempo: Forraje de 4-5 meses

Elemento:

Rango exploratorio (%) N 1.0-1.40 2.80 P >0.12 0.40 K 0.55-1.0 1.80 Ca 0.52 Mg >0.15 0.32 S 0.40 (ppm) B >5 9 Cu >3 11 Fe >30 100 Mn 105 Mo 0.8 Zn 31 Cultivo: Pasto Pangola (D. decumbens) Número: 25 Parte vegetativa: parte alta del follaje Tiempo: etapa vegetativa

Elemento: Bajo

Elemento:

Elemento:

Bajo

N P K Ca Mg S

1.80-2.19 0.20-0.24 1.40-1.79 0.5 >31 >25 >350 >300 >50

Cultivo: Eucalipto (E. grandis) Número: Parte vegetativa: Follaje Tiempo: 3 años de plantado

Bajo

Medio Alto (%) N 1.00-1.69 1.70-2.5 >2.50 P 0.10-0.15 0.16-028 >0.28 K 1.10-1.59 1.60-2.20 >2.20 S 0.12-0.19 0.20-0.30 >0.30 Cultivo: Eucalipto (E. globulus) Número: hojas de la parte baja de la copa Parte vegetativa: de árboles maduros Tiempo: época de secas

N P

Rango experimental (%) 1.05-1.49 0.14-0.30

Cultivo: Pino (Pinus radiata) Número: 20 hojas Parte vegetativa: La segunda rama de crecimiento libre Tiempo: 12 años de plantado

Elemento:

Rangos exploratorios (%) N 1.15-1.21 K 0.54-0.72 Ca 1.90-2.30 Mg 0.25-0.29 (ppm) Cu 8.8-10.2 Fe 88-110 Mn 855-1041 Zn 16-18 Na 1300-1500 Adaptado de Jones et al. (1991).

Elemento: N P K Ca Mg

51

Rangos exploratorios (%) 1.75-1.96 0.11-0.21 0.71-1.29 1.18-1.28 0.06-0.15

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Continuación…. Cultivo: Palma de Aceite Número: 3 foliolos de cada lado de la parte central de la hoja Parte vegetativa: hoja 9 para palmas jóvenes; hoja 17 para palmas adultas Elemento:

Medio

Alto (%)

N P K Ca Mg

2.80-3.00 0.19-0.21 1.50-1.80 0.30-0.50 0.30-0.35

Cultivo: Coco Número: 3 foliolos de ambos lados de la parte central de la hoja Parte vegetativa: hojas 4, 9 y 14 Tiempo: Plantas de 4, 7 y mayores de 7 años, Respectivamente. Elemento:

2.7-2.8 0.18-0.19 >1.3 >0.50 (ppm) 10-20 5-8 150-200 0.5-1.0 15-20

N P K

B Cu Mn Mo Zn Cultivo: Hule hevea Número: Necesarias Parte vegetativa: hojas del tercio superior de la copa Tiempo: Elemento:

Rangos exploratorios (%) N 3.0 P 0.20 K 1.0 Adaptado de Jones et al. (1991).

52

Rango exploratorio (%) 1.70 0.10 0.45

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 31. Ficha de registro para toma de muestras vegetales No. de Muestra:__________________ Fecha de muestreo:_________________ Nombre del propietario:_______________________________________________________ Ejido o Localidad:___________________________Municipio:____________________ Estado:_____________________ Cultivo y edad:____________________________________________________ Fecha de fertilización:______________ Fórmula empleada:________________________________________________ Método de aplicación: Manual______________ Mecánico_________________ Forma de aplicación: en banda___ en puntos____ en redondo__ al voleo___ Superficie de la parcela:_____________________________________________

Observaciones al momento de muestrear: Drenaje del terreno: Bueno__________ Regular_________ Malo _____________ Tipo de suelo: Arcilloso___________Franco__________Arenoso_________ Plagas o enfermedades presentes:_______________________________________________________ Productos usados para su control: ____________________________________ Control de malezas: Manual___ Mecánico___ Químico___ (que productos usa) _______________________________________________________________ Cultivo anterior (hace cuantos años cambió): _______________(___________)

53

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

2.5. Interpretación de los resultados de laboratorio Ulrich y Hills (1967) proponen que el nivel crítico, es la concentración nutrimental en las plantas, por debajo de la cual el rendimiento o la calidad de la cosecha disminuyen significativamente (Figura 20); donde el nivel crítico se puede establecer al centro de la zona de transición o en un punto donde ocurre una reducción en el rendimiento del 5 al 10 %. De esta división se derivan los criterios para interpretar el análisis químico vegetal. Los principales criterios para la interpretación de los análisis de tejidos vegetales son el ‘nivel crítico’ para deficiencia y toxicidad, así como los rangos de concentración (Etchevers, 1996). Nivel crítico. Se define como la concentración de un nutrimento en particular, determinado bajo condiciones experimentales, donde todos los factores de crecimiento se encuentran en un nivel óptimo, que se asocia con un valor predeterminado del rendimiento (o calidad) máximo. Generalmente, este valor predeterminado corresponde al 90 o 95% del rendimiento máximo que puede obtenerse del cultivo. Este valor está abajo del rango bajo o marginal. La concentración nutrimental de un cultivo siempre debería mantenerse ligeramente arriba del nivel crítico. Los rangos de concentración de nutrimentos en los cultivos se han dividido en: deficiente, bajo (marginal), adecuado (suficiente), alto y tóxico (excesivo). A continuación se define cada uno de estos rangos. Deficiente. Es el rango de concentración, que se asocia con síntomas visibles de deficiencia en las plantas y con una severa reducción del crecimiento y la producción. Cada vez que se encuentren valores en este rango se deben aplicar medidas correctivas, mediante aplicaciones dirigidas y específicas de los nutrimentos carenciales. Bajo o Marginal. Es el rango de concentración que se asocia con una reducción del crecimiento o producción del cultivo; pero la planta no muestra síntomas visibles de deficiencias, se dice que la planta presenta hambre oculta. Cuando se observen niveles de este tipo es preciso mejorar el programa de fertilización para aportar los nutrimentos en nivel bajo. Adecuado o Suficiente. Dentro de este rango de concentración los cambios que ocurren no provocan aumentos o disminución del crecimiento o producción del cultivo. Si los valores de un análisis de 54

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

planta caen en esta clase, es indicativo de que el programa de fertilización que se sigue en la parcela es adecuado a las necesidades nutrimentales del cultivo. Alto. Esta clase representa el rango de concentración de la parte especificada comprendido entre los rangos adecuado y tóxico o excesivo. En algunos cultivos esta clase puede definirse objetivamente con una tendencia hacia la producción y vigor indeseables. El uso de fertilizantes en los cultivos que muestren concentraciones nutrimentales en este rango debe suspenderse hasta que se ubiquen en un rango conveniente. Este nivel llega a ocurrir en fincas altamente tecnificadas, en las cuales existe un empleo excesivo de los fertilizantes, con consecuencias indeseables sobre el medio y alto coste de manejo (desperdicio). Tóxico. Este nivel manifiesta un exceso en la aplicación de fertilizantes, que daña al cultivo y a la economía del productor (altos costos y bajos rendimientos) se sitúa por arriba del nivel alto y se llega a observar en fincas muy tecnificadas, sobre todo para los elementos menores que son requeridos en pequeñas cantidades por el cultivo. La medida inmediata es suspender las aplicaciones al suelo y foliares de los productos que contienen los elementos minerales en exceso.

Figura 20. Relación entre el crecimiento y el suministro de nutrientes de suelos y plantas.

55

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Para ejemplificar el procedimiento de interpretación de los resultados de laboratorio se presentan los análisis foliares de dos cultivos estudiados por los autores: Plátano (banano). La muestra fue tomada en el tercio medio de la tercera hoja, a los seis meses de edad, en una plantación ubicada en el municipio de Cárdenas, Tabasco. El productor está interesado en conocer la concentración nutrimental del nitrógeno, fósforo y potasio, cuyos resultados se muestran a continuación (Cuadro 32). Cuadro 32. Resultados del análisis Cárdenas, Tabasco.

foliar de banano cultivado en

Elemento Nitrógeno Fósforo Potasio

Concentración (%) 2.65 0.21 3.19

Análisis efectuados en el LASPA-Campus Tabasco.

Comparando los valores del análisis de laboratorio con los valores críticos (Cuadro 28), se observa que la muestra analizada es deficiente en nitrógeno y potasio. El fósforo, se considera suficiente. Por lo anterior el productor deberá revisar su programa de fertilización (qué cantidad de NPK aplicaba anteriormente), para ajustar su dosis de fertilización aumentando los niveles de N y K. Esto a simple vista resulta fácil, sin embargo es necesario contar con el apoyo de especialistas para optimizar la fertilización.

Palma de aceite. En el Cuadro 33, se presentan los datos de un muestreo foliar en palma de aceite, establecida en el ejido Guanal (Pérez et al., 2005). Se observa que los contenidos de K, Mn y B, se encuentran en niveles deficitarios que podrían reducir los rendimientos de racimo fruto fresco (Fairhurst,1998; Jones et al., 1991; Mutert, 1991). Los autores encontraron en este caso que la nutrición foliar mantiene una relación estrecha con los aportes nutrimentales del suelo (elementos escasos en el suelo tienen bajo nivel en las palmas). Para el caso de una plantación ubicada en el ejido Jalapa, las deficiencias fueron N, K, Zn, Mn y B; lo que se explica por la menor fertilidad de este suelo y un pH muy ácido, destacando la presencia de síntomas 56

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

visuales de la deficiencia de B en la época seca (Ortiz et al., 2003). Las concentraciones de Ca fueron altas en ambas plantaciones y las de P, contrariamente a lo esperado, fueron óptimas sin importar el tipo de suelo, lo que indica la habilidad de la palma de aceite para extraer este elemento aun si se encuentra en concentraciones bajas en el suelo.

Cuadro 33. Contenidos nutrimentales en hojas de palma de aceite, cultivada en Tabasco. Ejido Guanal (hoja 9)

Ejido Jalapa (hoja 17)

Nutrimento Concentración

N (%) P (%) K (%) Ca (%) Mg (%) Fe (mg kg-1) Zn (mg kg-1) Mn (mg kg-1) B (mg kg-1)

2.76 ± 0.03† 0.198 ± 0.003 0.77 ± 0.02 1.23 ± 0.1 0.36 ± 0.02 131 ± 26.0 18.8 ± 1.30 30.2 ± 3.80 12.1 ± 0.71

Clasificación

Optimo Optimo Deficiente Exceso Optimo Optimo Deficiente Deficiente

Concentración

2.33±0.08 0.22±0.03 0.47±0.06 0.84±0.13 0.51±0.07 129.5±21.27 14.25±1.47 48.25±5.11 11.3±1.25

Clasificación

Deficiente Optimo Deficiente Exceso Optimo Deficiente Deficiente Deficiente

† cada dato es promedio de tres repeticiones, seguido de su desviación estándar

57

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3 MUESTREO DE AGUAS 3.1. Importancia del agua El interés de las relaciones agua-suelo se debe primeramente a que grandes cantidades de agua almacenadas en el suelo, gracias a las lluvias o el riego, satisfacen las necesidades de evapotraspiración de las plantas. En segundo lugar, el agua actúa como disolvente, y junto con los nutrientes, constituye la solución del suelo. El agua del suelo interactúa con otros dos componentes esenciales y en conjunto determinan el crecimiento de las plantas: la concentración de CO2 en el ambiente y la temperatura del suelo. Retención de humedad por el suelo. Desde un punto de vista práctico nos interesa el movimiento de agua sobre y dentro del suelo, la capacidad de imbibición de estos y la asimilación de humedad por las plantas. Cada uno de estos factores se relaciona directa o indirectamente con el tamaño y distribución de los poros del suelo y con la atracción de los sólidos del suelo para con la humedad. La evidencia de estas relaciones se aprecia si seguimos los cambios que ocurren durante y a continuación de una lluvia, o de la aplicación de riego (Buckman y Brady, 1991). Máxima capacidad retentiva. Cuando el agua llega al suelo el aire es desplazado mientras los poros de aquel se llenan de agua. Se dice que el suelo está saturado y que ha llegado a su máxima capacidad retentiva. El contenido óptimo de humedad del suelo se denomina capacidad de campo (CC) y se refiere al agua retenida por el suelo a 1/3 de atmósfera (atm). Cuando el suelo está saturado se presenta entonces un movimiento de percolación inducido por la fuerza de gravedad, que representa una pérdida del agua almacenada; el agua de los poros del suelo vuelve a ser reemplazada por aire. Coeficiente de Marchitez. Las plantas que crecen en el suelo absorben agua y hacen disminuir la humedad existente en el mismo. El agua absorbida es transportada desde las raíces a las hojas, con pérdida por evaporación y transpiración en la superficie foliar. Un segundo factor de pérdida es la evaporación directa desde la superficie del suelo. A medida 58

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

que este se deseca, las plantas muestran efectos de la falta de agua; tienden a enrollar sus hojas y pierden turgencia. La reserva de agua en el suelo puede llegar a ser tan baja que las plantas presentan marchitez durante el día tanto como por la noche; la vegetación morirá si no se les suministra agua. En esta condición el agua es retenida con una fuerza de 15 atm, superior a la capacidad de extracción de las raíces de cualquier planta (Figura 21).

Coef. higroscópico

Coef. de marchitez

Capacidad de Campo

31 atm

15 atm

1/3 atm

Agua higroscópica

Saturación 0 atm (agua libre)

Agua de capilaridad

Espacio aéreo y agua de drenaje

Zona de humedad óptima

Agua superflua

Agua no aprovechable

Agua aprovechable

Figura 21. Diagrama mostrando la relación de las varias formas de humedad del suelo para con las plantas. Teniendo en cuenta el coeficiente de marchitez, la clasificación del agua del suelo puede convertirse en una clasificación biológica.

Humedad aprovechable. Se considera aprovechable la humedad que está entre la capacidad de campo y el coeficiente de marchitez; es decir, que es retenida por el suelo con una fuerza de entre 1/3 y 15 atm (Figura 21). Coeficiente Higroscópico. Es el agua en fase de vapor, asociada a las partículas coloidales del suelo, la cual no es disponible para ningún tipo de especie vegetal ya que está retenida con una fuerza de 31 atm. El sistema suelo-planta-atmósfera. El movimiento del agua desde el suelo se da a través de la raíz, tallo, hoja y atmósfera formando un sistema continuo. Para que el agua se desplace a través de la planta se requiere un gradiente en el potencial (o fuerza de retención) del agua, de menos a más. No obstante, se presentan diversas resistencias al flujo del agua en el sistema. En la Figura 22, se observa la vía esquemática que sigue el agua a través de la planta (Lira, 1994). 59

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Figura 22. Proceso de absorción del agua por las raíces de las plantas (Lira, 1994).

La absorción del agua ocurre por la raíz; se realiza principalmente por los pelos radicales ya que presentan mayor permeabilidad que las raíces maduras. El agua se mueve desde los pelos radicales hasta la endodermis, para continuar a través de las paredes celulares (vía apoplástica). El agua y los materiales disueltos (iones minerales) son forzados a pasar las membranas celulares y la banda de Caspari, donde se realiza un proceso semi-selectivo de aquellos iones requeridos por las plantas. Para que el agua pase a través de la endodermis debe vencer una resistencia considerable; pero una vez que el agua y los minerales entran al sistema vascular (xilema), la resistencia disminuye. Desde el tejido vascular (vasos, traqueídas y demás elementos conductores), el agua en fase líquida continua viajando hasta llegar al mesófilo (en las hojas) donde se difunde a la cavidad sub-estomática y cambia a la fase gaseosa. Por último, el agua es disipada a la atmósfera en forma de vapor (proceso de transpiración). En la etapa final (interfase hoja-atmósfera) se genera una tensión significativa que favorece el movimiento del agua a lo largo del sistema suelo-planta-atmósfera, debido a que el gradiente entre la atmósfera y la cavidad estomática es muy grande. La capacidad de los estomas de abrirse y cerrarse en respuesta a las condiciones ambientales hace que éstos minimicen la pérdida de agua desde el suelo a la atmósfera.

60

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.2 ¿Porqué realizar el análisis de agua? Un componente importante en la producción de los cultivos es el agua. El análisis de aguas para uso agrícola evalúa su calidad con fines de riego. El objetivo es detectar cantidades elevadas de sales disueltas que pueden dañar el crecimiento y productividad de los cultivos en general. Al medir la cantidad de sales disueltas, se determina la calidad que presenta como agua para riego agrícola. Con la introducción de los sistemas de baja presión (fertirrigación) en la agricultura, la calidad del agua cobra mucha importancia porque de ella dependerá que estos sistemas de riego funcionen eficientemente. Aguas con concentraciones elevadas de sales y sólidos suspendidos provocan taponamientos en los conductos, válvulas y bombas (Hagin y Lowengart, 1996).

3.3 ¿Como realizar el muestreo de aguas? El propósito es muestrear la fuente de interés, de donde proviene el agua que se destina o destinará al riego (Figura 23). La muestra debe ser representativa de la fuente; por lo que se debe colectar un volumen de la parte intermedia del pozo, por ejemplo, o debe dejarse correr el agua 10 minutos si es agua entubada. Si es un río, lago, laguna, etc, el frasco muestreador debe introducirse, llenarse y cerrarse dentro del cuerpo de agua.

Figura 23. Posibles fuentes para la extracción de agua para riego agrícola (Palacios y Aceves, 1994).

61

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

La mejor hora de muestreo es por la mañana (7 a.m.) para asegurarse que las muestras sean entregadas al laboratorio en el transcurso del mismo día. En el caso de tener que guardar las muestras para su posterior traslado al laboratorio, deben conservarse a baja temperatura (5º C ± 1) si se llevan dentro de los dos días siguientes. Si el traslado tomará más tiempo, las muestras deben congelarse a -5° C y entregarse así al laboratorio.

3.4. Materiales de Muestreo La muestra se tomará en un frasco, de plástico o vidrio esterilizado, perfectamente limpio y seco, tomando alrededor de 1 litro de agua. Es recomendable que el frasco y su tapa presenten un cierre hermético. En la Figura 24, se presentan algunos equipos para la toma de muestras de agua.

Abierto

Cerrado

Contenedores para muestras de aguas en ríos.

Toma de muestras en canal de riego del cultivo de la caña de azúcar ingenio Pujilitc, Chiapas. Figura 24. Material necesario para la toma de muestras de agua.

Botellas de plástico para transporte de muestras.

62

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Una vez obtenida la muestra debe ser enviada al laboratorio lo más pronto posible; por lo general, cuanto menos tiempo transcurre entre el muestreo y los análisis, más confiables son las determinaciones. Cualquier tardanza implica la necesidad de conservarlas bien tapadas en frío, de preferencia refrigeradas. Los cambios resultantes de actividades químicas y biológicas pueden alterar la composición de la muestra, por lo que se recomienda determinar el pH y la conductividad eléctrica cuanto antes (Palacios y Aceves, 1994).

3.5 ¿Qué análisis solicitar? En el Cuadro 34 se presentan las determinaciones físicas y químicas más usuales que se practican en muestras de aguas, que permiten definir la calidad del agua para riego agrícola. Sin embargo, de acuerdo a los problemas observados, o a las necesidades particulares de cada productor (riego presurizado, fertirrigación, etc.), los análisis se enfocaran a la situación específica. Cuadro 34. Determinaciones químicas usuales de las aguas para riego agrícola. Parámetro

Símbolo

Rangos

Unidades

Salinidad Conductividad eléctrica Sólidos disueltos totales Calcio Magnesio Sodio Carbonatos Bicarbonatos Cloro Sulfato

CE SDT Ca 2+ Mg 2+ Na+ CO3 2HCO3 ClSO4 2-

0-3 0-2000 0-20 0-50 0-40 0-0.1 0-10 0-30 0-20

dS m-1 mg L-1 meq L-1

Nutrientes Nitrato-N Amonio-N Fosfatos-P Potasio

NO3-N NH4-N PO4-P

0-10 0-5 0-2 0-2

mg L-1

0-2 1-14 0-15

mg L pH

K+ Misceláneos Boro Acidez Relación de absorción de sodio

B pH RAS

Adaptado de Ayers y Wescot (1985).

63

-1

-1

meq L

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.6. Registro de muestras de agua para riego agrícola Una vez obtenida la muestra y antes de enviarse al laboratorio deberá asentarse por escrito la siguiente información, en una ficha que debe acompañar cada muestra (Cuadro 35). Cuadro 35. Ficha de registro para muestras de agua Fecha de Muestreo: ____________ No. Muestra:_______________ Nombre del propietario: __________________________________ Nombre del técnico: _____________________________________ Localidad:

Municipio: __________________

Estado:_________________________________ Muestra tomada en: Canal Pozo____ Otro____

Presa

Arroyo

Lago___

A que profundidad: _________________________________ Si el agua proviene de pozo: Profundidad:____ Diámetro del pozo: ___ Descarga:

Color:

Olor: ________

Superficie que se riega: __________________________ Cultivo(s): ___________________________________________ Textura del suelo: _____________ Pendiente:_______________ Observaciones:

64

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.7. Interpretar los resultados de laboratorio La clasificación del agua de riego presenta actualmente ocho índices que Palacios y Aceves (1994) conjuntaron en un solo sistema (Cuadro 36). Esta clasificación es más precisa que la efectuada en Riverside, la cual solo toma en consideración dos índices: la relación de absorción de sodio y la conductividad eléctrica (Aguilera y Martínez, 1996). En los párrafos siguientes se discutirá cada índice y se explicará la forma de calcularlos. Cuadro 36. Sistema de clasificación del agua para riego agrícola.

Criterio

Índice

Símbolo

Contenido de sales solubles

Conductividad Eléctrica Salinidad Efectiva Salinidad Potencial

CE SE SP

Efecto probable del Na sobre características físicas del suelo

Relación de Adsorción de Na Carbonato de Na Residual Porciento de Na Posible

RAS CSR PSP

Contenido de elementos tóxicos para las plantas

Contenido de Boro Contenido de cloruros

B Cl

Adaptado de Palacios y Aceves (1994).

3.7.1 Contenido de sales solubles El efecto nocivo de altas concentraciones de sales solubles se debe a que la solución del suelo que está en contacto con las raíces produce presiones osmóticas sobre las células, lo que impide la absorción de agua. La presión osmótica muy alta produce disminución en los rendimientos o pérdida total de la cosecha. Estos efectos son diferentes para cada cultivo, según la etapa de desarrollo del mismo. Algunos cultivos y variedades pueden ser tolerantes a la salinidad. El efecto salino es más intenso cuando la concentración de sales solubles en la solución del suelo es más alta. De acuerdo con Palacios y Aceves (1994) el aumento de la concentración de sales, después de fuerte 65

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

evapotranspiración, es aproximadamente 10 veces mayor en relación a un suelo a capacidad de campo y 5 veces en el extracto de saturación del suelo. Por esta razón, los contenidos permisibles de sales en las aguas son aproximadamente cinco veces menores que en el extracto de saturación del suelo. En el Cuadro 37 se presentan datos sobre la tolerancia de ciertos cultivos a las sales en la solución del suelo.

Cuadro 37. Tolerancia de cultivos a la salinidad en el extracto de saturación del suelo (basados en valores de CE), para diferentes porcentajes de reducción del rendimiento. Reducción de rendimiento (%) Cultivos 10 25 50

Cereales Sorgo Soya Arroz Maíz Frijol

6.0 5.0 5.0 5.0 1.0

9.0 7.0 6.0 6.0 2.0

12.0 9.0 8.0 7.0 3.0

Hortalizas Tomate Chile Melón Calabaza Pepino

4.0 2.0 2.5 3.0 2.5

6.5 3.0 3.0 3.5 3.0

8.0 5.0 3.5 4.0 4.0

Frutales Naranja Limonero Aguacate

3.0 2.5 2.0

Otros Caña de azúcar Pasto bermuda

3.8 8.5

5.1 11.0

7.2 15.0

La CE se expresa en dS m-1 x 103. Adaptado de Ayers y Wescot (1985) y Richards (1994).

No se indica si los valores correspondientes a los cultivos es el valor de CE como se indica en la leyenda inferior. Para estimar el contenido de sales solubles en el agua de riego y sus posibles efectos sobre los cultivos, existen los siguientes índices: 66

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

a) Conductividad Eléctrica (CE).- generalmente se expresa en dS m -1 (deci-siemens por metro) a 25 ºC. La CE es una medida indirecta del contenido de sales disueltas en el agua. Una de sus ventajas es que los resultados se pueden correlacionar con los valores de presión osmótica (PO) que dicha agua pudiese generar; la fórmula empírica que correlaciona la PO con la CE expresada en dSm -1 es: PO = 0.36(CEx103), cuyo rango de validez es 3 (CO3+HCO3), entonces: SE = Suma de cationes* - Ca Si Ca < (CO3+HCO3) pero (Ca+Mg) > (CO3+HCO3), entonces: SE = Suma de cationes* - (CO3+HCO3) Si (Ca+Mg) < (CO3+HCO3), entonces: SE = Suma de cationes* - (Ca+Mg) * Si la suma de cationes es menor que la de aniones, deberá emplearse la suma de aniones en lugar de la de cationes. La suma de cationes o aniones se expresa en meqL-1.

c) Salinidad Potencial (SP).- cuando la humedad aprovechable de un suelo es menor del 50%, las últimas sales que quedan en solución son cloruros y sulfatos. La SP es un índice para estimar el peligro de éstas ya que aumentan la PO. Este índice se calcula con la fórmula siguiente y se expresa en meq L-1. SP = Cl + ½ SO4 67

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.7.2. Efecto probable del Na sobre las características físicas del suelo Cuando la concentración de Na en la solución es elevada, en relación con otros cationes disueltos, se provoca la dispersión o la defloculación del suelo, y como consecuencia este pierde su estructura. Esto puede ejercer efectos secundarios importantes sobre el desarrollo vegetal (Guerrero, 1990). La pérdida de la estructura produce aireación y permeabilidad deficientes, así como baja disponibilidad de agua. Para estimar este efecto se han propuesto los índices siguientes: a) Relación de Adsorción de Sodio (RAS). Este índice es fácil de calcular y está correlacionado con el porcentaje de sodio intercambiable (PSI) que tendrá el suelo una vez que se equilibre con el agua. La Figura 25 presenta un nomograma para el cálculo del PSI a partir de la RAS. El PSI se estima con la fórmula: PSI = 100 (-0.0126+0.01475 RAS) / 1 + (0.0126+0.01475 RAS) Entre mayor sea el valor de la RAS, se espera mayor valor de PSI del suelo y mayor peligro por sodificación. La RAS se calcula con la fórmula:

RAS =

Na Ca + Mg 2

donde los valores de Na, Ca, Mg y RAS están dados en meq L-1. b) Carbonato de Sodio Residual (CSR). Cuando en el agua de riego el contenido de carbonatos y bicarbonatos es mayor que el de Ca + Mg, existe la posibilidad de que se forme carbonato de sodio. En estas condiciones, la concentración total y relativa de sodio puede ser suficiente para desplazar al calcio y magnesio del complejo de intercambio, produciéndose la defloculación del suelo (Aguilera y Martínez, 1994). El CSR se calcula con la fórmula: CSR = (CO3 + HCO3 ) − (Ca + Mg ) donde cada componente se expresa en meq L-1. Una diferencia negativa indica que no existe el problema; el valor del CSR puede suponerse igual a cero. 68

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Figura 25. Nomograma para determinar el valor de la RAS del agua de riego y para estimar el valor correspondiente del PSI del suelo que está en equilibrio (Adaptado de Richards, 1994).

c) Porcentaje de Sodio Posible (PSP). El desplazamiento del Ca y del Mg por el sodio en el complejo de intercambio, inicia cuando el sodio en solución presenta más del 50% de los cationes disueltos. El porciento de sodio en solución en el agua de riego no es suficientemente representativo de este fenómeno debido a que, una vez en el suelo, las sales menos solubles (MgCO3 y CaCO3) precipitan y, por lo tanto, el porcentaje de sodio en solución aumenta. Entonces, el PSP se refiere a la salinidad efectiva (Palacios y Aceves, 1994), y se calcula mediante la fórmula: PSP = (Na/ SE) 100 donde Na y SE se expresan en meq L-1. 69

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.7.3. Contenido de elementos tóxicos para las plantas

Dentro de los elementos en solución en las aguas de riego, existen algunos que independientemente de los efectos salinos, aún en pequeñas cantidades son tóxicos para las plantas. Los que se presentan más comúnmente son boro, cloro, litio y sodio; aunque los efectos tóxicos de estos últimos no han sido suficientemente estudiados. a) Contenido de boro (B). El boro en pequeñísimas concentraciones es esencial para el desarrollo de las plantas, sin embargo a concentraciones mayores, produce efectos tóxicos; en el Cuadro 38 se presenta la tolerancia de algunos cultivos a la presencia de B. b) Contenido de cloruros (Cl). El ión cloruro es tóxico especialmente en árboles frutales; como se carece de información sobre la tolerancia de otros cultivos, se recomienda usar este índice cuando se vayan a irrigar los cultivos indicados en el Cuadro 39. Cuadro 38. Tolerancia relativa de algunos cultivos a la presencia de B en aguas para riego agrícola.

Tolerantes (4-2 mg L-1) Frijol Cebolla Lechuga Zanahoria

Semi-tolerantes (2-1 mg L-1) Algodón Tomate Maíz Sorgo Calabaza Chile Camote

Sensibles (1-0.3 mg L-1) Ciruelo Naranja Aguacate Toronja Limón

Adaptado de Palacios y Aceves (1994).

Cuadro 39. Tolerancia relativa de algunos cultivos a la concentración de cloruros en el extracto de saturación del suelo.

Concentración de cloruros (meq L-1) 25 15 10 7-25 5-8

Cultivo Mandarina Limón Naranja Frutales de hueso Aguacate

Adaptado de Palacios y Aceves (1994).

70

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

3.7.4. Procedimiento para clasificar las aguas de riego

Con base en las características químicas del agua, determinadas mediante análisis de laboratorio, y con el empleo de las tablas de valores para cada parámetro de importancia, el técnico debe concluir si las aguas disponibles son adecuadas o no para el riego agrícola. O bien, si se requiere de información adicional sobre tipo de cultivo, suelo y condiciones de manejo donde va a ser utilizada, en cuyo caso el uso del agua quedará condicionado a determinar dichos factores. El agua que ha sido clasificada como ‘Condicionada’ antes de conocer el cultivo, suelo y otras características especificas del cultivo a regar, puede cambiar de categoría, a Buena o No recomendable, una vez que estas son definidas. Al ser modificados los criterios, se determina si el agua es o no conveniente bajo las condiciones particulares (Ayers y Westcot, 1985; Palacios y Aceves, 1994). A continuación se describe el procedimiento de clasificación: a) Partiendo de los resultados del análisis químico, se calcula el porciento de (CO3+HCO3) respecto a la suma total de aniones. b) Para aguas con (CO3+HCO3) < 20%, se determinan los siguientes índices: 1. Para estimar el efecto de sales solubles Conductividad eléctrica (CEx106); cuando éste es mayor de 250 dSm-1, se utilizará el índice de Salinidad Potencial (SP) y Salinidad Efectiva, ver Cuadros 40 y 44.

Cuadro 40. Clasificación de aguas de riego a su Salinidad Potencial (SP).

SP (meq L-1)

Clase Buena Condicionada No recomendable

15

2. Para estimar el efecto del sodio sobre el suelo Relación de Adsorción de Sodio (RAS) ver Figura 25. Carbonato de Sodio Residual (CSR), ver Cuadro 41.

71

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 41. Clasificación de las aguas de riego de acuerdo a su Carbonato de Sodio Residual (CSR).

Valor de CSR (meq L-1) < 1.25 1.25-2.50 > 2.50

Clase Buena Condicionada No recomendable

3. Contenido de elementos tóxicos Una vez que se tienen los resultados de laboratorio, las aguas se clasifican según sus contenidos de boro y cloruros, siguiendo los parámetros establecidos en el Cuadro 42.

Cuadro 42. Clasificación de las aguas de riego de acuerdo a su contenido de boro (B) y cloruros (Cl).

Contenido de B

Clase

(mg L-1)

Buena Condicionada No recomendable

4.0

Contenido de cloruros (meq L-1) < 1.0 1.0-5.0 > 5.0

La salinidad efectiva se clasifica de acuerdo a los valores encontrados, siguiendo las clases del Cuadro 43. Cuadro 43. Clasificación de las aguas para riego agrícola de acuerdo con su Salinidad Efectiva (SE).

SE (meq L-1) 15.0

Clase Buena Condicionada No recomendable 4. Calidad general del agua

Finalmente, con los resultados de laboratorio en mano, el productor o técnico clasificará al agua como Buena, Condicionada o No Recomendable para el riego agrícola, según los criterios de los Cuadros 40 al 44. Para clasificar por CE y RAS se utiliza la Figura 26, donde se establecen 14 clases de aguas para riego agrícola en base a la conductividad eléctrica (CE), (Richards, 1994): 72

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Figura 26. Diagrama para la clasificación de las aguas para riego agrícola (Richards, 1994).

Las aguas que reúnen las cualidades especificadas en el Cuadro 44, pueden ser utilizadas para riego en la mayoría de los cultivos, en la generalidad de los suelos. Requieren un mínimo de cuidados en el manejo de suelos y aguas (Ayers y Westcot, 1985; Richards, 1994). Se consideran aguas de buena calidad para fines de riego agrícola.

73

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Cuadro 44. Características del agua de buena calidad, adecuada para el riego agrícola.

Aguas con < 20% de (CO3+HCO3 ) a) C1S2 b) SP< 3 meq L-1 c) CSR 4.0 mgL-1 e) Cl> 5 meqL-1

a) C4Si y/o CiS4, donde (i = 1,2,3,4) b) SP> 15 meqL-1 c) CSR> 2.5 meqL-1 d) B> 4.0 mgL-1 e) Cl> 5 meqL-1

Conductividad Agua de baja salinidad (C1). Puede usarse para riego de la mayor parte de los cultivos, en casi cualquier tipo de suelo, con poca probabilidad de que se desarrolle salinidad. Se necesita algún lavado, pero éste se logra en condiciones normales de riego; excepto en suelos arcillosos.

Agua de salinidad media (C2). Puede usarse siempre y cuando haya un grado moderado de lavado. En casi todos los casos y sin necesidad de prácticas especiales de control de la salinidad, se pueden producir los cultivos moderadamente tolerantes a las sales. 74

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Agua altamente salina (C3). No puede usarse en suelos cuyo drenaje sea muy deficiente. Aún con drenaje adecuado se pueden necesitar prácticas especiales de control de la salinidad, debiendo, por lo tanto, seleccionar únicamente aquellas especies vegetales muy tolerantes a sales. Agua muy altamente salina (C4). No es apropiada para riego bajo condiciones ordinarias, pero puede usarse ocasionalmente en circunstancias muy especiales. Los suelos deben ser permeables, el drenaje adecuado, debiendo aplicar un exceso de agua para lograr un buen lavado; en este caso, se deben seleccionar cultivos altamente tolerantes a sales. Sodio La clasificación de las aguas de riego con respecto a la RAS, se basa principalmente en el efecto que tiene el sodio sobre las propiedades físicas. No obstante, las plantas sensibles a este elemento pueden sufrir daños a consecuencia de la acumulación de sodio en sus tejidos cuando los valores del sodio intercambiable son más bajos que los necesarios para deteriorar sus propiedades físicas.

Agua baja en sodio (S1). Puede usarse para riego en la mayoría de los suelos con poca probabilidad de alcanzar niveles peligrosos de sodio intercambiable. No obstante los cultivos sensibles como los frutales y aguacate, pueden acumular sodio en cantidades perjudiciales. Agua baja en sodio (S2). En suelos de textura fina el sodio representa un peligro considerable, más aún si dichos suelos poseen una alta capacidad de intercambio catiónico, especialmente bajo condiciones de lavado deficiente, a menos que el suelo contenga yeso. Estas aguas solo pueden usarse en suelos de textura gruesa o en suelos orgánicos de buena permeabilidad. Agua alta en sodio (S3). Puede producir niveles tóxicos de sodio intercambiable en la mayor parte de los suelos, por lo que éstos necesitarán prácticas especiales de manejo como: buen drenaje, fácil lavado y adiciones de materia orgánica. Los suelos yesíferos pueden no desarrollar niveles perjudiciales de sodio intercambiable cuándo se riegan con este tipo de aguas. Puede requerirse el uso de mejoradores químicos para sustituir el sodio intercambiable; sin embargo, tales mejoradores no serán económicos si se usan aguas de muy alta salinidad. Agua muy alta en sodio (S4). Es inadecuada para riego, excepto cuando su salinidad es baja o media y cuando la disolución del calcio del suelo y 75

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

la aplicación de yeso u otros mejoradores no hace antieconómico el empleo de esta clase de aguas.

3.7.5. Notación abreviada de la calidad del agua de riego

Cuando se cuenta con información previa sobre la calidad de las aguas, la clasificación de las mismas debe hacerse conforme a los tres criterios mencionados y con la utilización de 5 a 6 índices (Aguilera y Martínez, 1994). Si se tiene caracterizados el, o los índices, basta hacer mención de ese factor al hablar de la calidad de agua. 1. Agua con < 20% (CO3+HCO3 ) C1S1, SP = 2.8 meq L-1, CSR =1.0 meq L-1, B=0.3 mg L-1, Cl=0.5 meq L-1 .Esta agua es buena para riego de cualquier cultivo en cualquier tipo de suelo, con las prácticas usuales de manejo. 2. Agua con > 20% (CO3+HCO3 ) CEx106=8000, SE=7.5 meq L-1, SP=5.3 meq L-1. Agua condicionada por sales y por cloruros.

76

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

4 GLOSARIO

Acidez intercambiable. Conjunto de iones hidrógeno y aluminio que están adsorbidos a la superficie de las arcillas en los suelos húmedos y que cuando se liberan a la solución del suelo arrojan valores bajos de pH. Aleatorio. Que es determinado por el azar. Cuando se habla de muestreos aleatorios se refiere a aquellos en los que no predomina un criterio técnico o personal en la toma de muestras y todos los sitios a ser muestreados tienen la misma probabilidad de ser seleccionados. Análisis físico. Mediante este son determinadas las propiedades relacionadas con el estado físico del suelo, como textura, densidad aparente y espacio poroso. Análisis químico. Permite determinar la disponibilidad de los nutrientes en el suelo para los cultivos, así como propiedades físicas de este, tales como pH, materia orgánica, nitrógeno (N) total, fósforo (P) asimilable, potasio (K), calcio (Ca) y magnesio (Mg) intercambiables, azufre (S) y aluminio (Al), hierro (Fe), cobre (Cu), zinc (Zn) y otros. Aniones. Son todos los iones con carga eléctrica negativa resultado de la ganancia de electrones. Los elementos minerales que se comportan como aniones en el suelo son; N, P, S, B, Mo y Cl. Autocorrelación. La autocorrelación espacial es una medida de la similitud temática de los objetos geográficos en un área determinada. Cada objeto geográfico tiene valores-atributos descriptivos de sus características (por ejemplo, un tipo de uso del suelo, tipo de vegetación, etc.) y coordenadas espaciales (coordenadas x e y del punto de ubicación del fenómeno). La autocorrelación espacial viene a poner en relación las diferencias temáticas de los objetos en relación con la distancia que presentan entre sí. Axioma. En lógica y matemáticas, es un principio básico que se asume como verdadero sin que se recurra a la demostración. Barrena holandesa. Instrumento de acero inoxidable cuyo diseño permite la extracción de cilindros de suelo por medio de movimientos de rotación y presión sin necesidad de utilizar otras herramientas. Se pueden obtener muestras a profundidades de hasta 1.5m si el material del suelo permite la penetración. Cal dolomítica. Cal de uso agrícola empleada comúnmente para la corrección de suelos muy ácidos. Es rica en calcio y magnesio. Capacidad de Campo (CC). Es la máxima cantidad de agua que puede retener un suelo después que el exceso de esta se ha perdido por efecto de la gravedad.

77

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC). Es una medición de la fertilidad global del suelo la cual está dada por la capacidad máxima que un peso dado de suelo puede retener de cationes; comúnmente se expresa en mili-equivalentes por 100 gramos de suelo (meq/100 g). Otra unidad de uso más reciente para expresar esta característica es en centi-moles por kg de suelo (cmol kg-1). Cationes. Los elementos del suelo que presentan carga eléctrica positiva cuando están en forma de iones, debido a que donaron electrones a los minerales o a otros iones. Los elementos nutritivos en el suelo que se comportan como cationes son; N, K, Ca, Mg, Mn, Zn, Cu y Fe. Clorosis. Se refiere al color verde-amarillento que se observa en el follaje de plantas con deficiencias de nitrógeno. Estas pueden ser causadas por un aporte inadecuado del suelo o por daños en raíces, absorción inadecuada u otras causas. Complejo arcillo-húmico. La arcilla y el humus son dos constituyentes del suelo cuyas partículas individuales presentan un tamaño extraordinariamente pequeño, gran área de dispersión por unidad de peso y cargas eléctricas en su superficie, las cuales atraen iones y moléculas de agua. Estas diferentes partículas interactúan entre sí y determinan en gran parte las propiedades químicas y físicas de los suelos, así como la fertilidad del mismo. Conductividad eléctrica (CE). Habilidad de los materiales y soluciones para conducir la electricidad. Dado que las soluciones salinas conducen más electricidad a mayor concentración, esta cualidad se utiliza para medir el contenido de sales en los suelos. La CE se expresa en deci-siemens por metro (dS.m-1). Cualitativo. Se refiere a todo tipo de pruebas u observaciones que únicamente revelan las características o propiedades de lo observado (cualidades) sin precisar cantidades. Cuantitativo. Se refiere a las pruebas, análisis u observaciones que revelan cantidades de contenido, concentración o valores de las variables sujetas a observación. Cultivos Anuales. Son todos aquellos cultivos cuyo ciclo, natural o de aprovechamiento agrícola, se completa en un año o menos. Ejemplo; maíz, frijol, hortalizas, etc. Cultivos Perennes. Se refiere a los cultivos cuyo ciclo de aprovechamiento agrícola tarda más de un año en completarse. Ejemplo; árboles frutales, palma de aceite, cacao, etc. Defloculación. Perdida de la estructura del suelo por la destrucción de los agregados del suelo; al separase las partículas minerales y orgánicas. Descalcificación. Es la acción de perdida del calcio del complejo de intercambio. Difusión. Movimiento de iones en el suelo de una solución de mayor a menor concentración.

78

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Encalado Practica agrícola que consiste en aplicar cal al suelo a fin de elevar el pH del mismo. Tiene el propósito de corregir suelos extremadamente ácidos a fin de mejorar su fertilidad. Antes de la aplicación de cal deben hacerse estudios para determinar las cantidades adecuadas a aplicar. Elementos móviles. Se refiere a la movilidad que presentan aquellos nutrimentos dentro de la planta, en el momento de presentarse una carencia, los cuales se movilizan hacia las hojas jóvenes, por lo que los síntomas de deficiencia se presentan en las hojas viejas. Elementos no móviles. Cuando se presenta una carencia no se movilizan dentro de la planta, por lo que los síntomas de deficiencia aparecen en las hojas jóvenes. Erosión hídrica. Es la perdida de suelo de un terreno o región, debida al arrastre de este por la fuerza del agua. La erosión es indeseable debido a que siempre se traduce en pérdida de fertilidad. Esencial. Se refiere a los elementos naturales que sirven como nutrimentos en el metabolismo vegetal y que son imprescindibles para el crecimiento, desarrollo y producción normal de las plantas cultivadas en general. Estos elementos son C, O, H, N, P, K, S, Ca, Mg, Zn, Mn, Cu, Cl, Fe, B, Ni y Mo. Exportación. Designa la cantidad de nutrimentos que son extraídos del suelo por un cultivo dado, durante un ciclo de cultivo, y que no se reincorporan a este debido a que están en la parte cosechada que se lleva fuera de la parcela, por lo cual los nutrimentos se pierden junto con la cosecha. Fertilidad. Es la capacidad de un suelo para proporcionar nutrientes de manera oportuna y en cantidad adecuada al cultivo que se encuentra creciendo en el. La fertilidad global de un suelo se mide mediante la Capacidad de Intercambio Catiónico y otras variables del suelo. Floculación. Es un proceso de agregación de partículas coloidales, que forma gránulos o flóculos; puede ocurrir en el suelo con efectos benéficos sobre la fertilidad (caso del Ca) o indeseables (caso del Na). El mayor agente floculante en el suelo es la MO. Flujo de masas. Es un tipo de desplazamiento de los nutrientes en el suelo. Se refiere al transporte en solución, rápido y en grandes cantidades, por la acción del agua dentro del perfil. Fluvisol. Suelos formados por materiales acarreados por el agua, y constituidos por materiales disgregados, es decir, son suelos poco desarrollados. Se encuentran en todos los climas y regiones de México, cercanos a los lagos o sierras, desde donde escurre agua a los llanos, así como en los lechos de los ríos. Muchas veces presentan capas alternadas de arena, arcilla o gravas. Pueden ser someros o profundos, arenosos o arcillosos, fértiles o infértiles, en función del tipo de materiales que lo forman. Geoestadística. La geoestadística ofrece una manera de describir la continuidad espacial, que es un rasgo distintivo esencial de muchos fenómenos naturales, y

79

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

proporciona adaptaciones de las técnicas clásicas de regresión para tomar ventajas de esta continuidad. Es una aplicación de la teoría de probabilidades a la estimación estadística de variables espaciales. Gradiente. Se denomina gradiente a la variación de intensidad de un fenómeno por unidad de distancia entre un lugar y un centro (o un eje) dado. Granulometría. Se refiere al análisis del tamaño de las partículas que conforman el suelo arena, limo y arcilla. Inmovilización. Se refiere a los procesos que hacen que los elementos minerales no estén disponibles para ser asimilados por las plantas. Ya sea por reacciones químicas de fijación en el suelo, o por incorporación de estos elementos a los organismos vivos que los retienen mientras su biomasa no se descompone. Iones. Los átomos que poseen carga eléctrica. Lixiviación Proceso que ocurre en el suelo con las partículas y solutos; estos son arrastrados a la parte profunda del perfil por la acción de lavado del agua que desciende. Logaritmo. En matemáticas, el logaritmo es la función inversa de la potenciación y, por lo tanto, expresa cuántas veces un número x debe ser dividido por la base b para obtener 1. De esta forma, el logaritmo de x con base b es el exponente o potencia a la que la base se ha de elevar para dar un número determinado. Para la ecuación bn = x, el logaritmo es la función que obtiene n. Esta función es escrita como n = logb x. Materia orgánica Son todos los materiales provenientes de organismos vivos. Cuando se incorporan al suelo en forma de residuos de cultivos, vegetación natural o animales muertos, siguen un proceso de mineralización que libera nutrimentos susceptibles de ser asimilados por las raíces de las plantas en crecimiento. Mineralización Es un conjunto de procesos por los cuales la materia orgánica se descompone por acción de los microorganismos del suelo. Los productos finales de la mineralización son componentes químicamente simples como CO2, NH3, H2PO4, Ca, Mg, y otros elementos minerales que se incorporan al suelo y pueden ser asimilados por la vegetación en crecimiento. Molisol Son suelos oscuros, asociados a praderas naturales, con contenido importante de MO. Aún cuando presentan lixiviación ligera su contenido de bases es alto; el pH tiende a ser alcalino. En general son importantes para la agricultura ya que son muy productivos si se maneja adecuadamente la fertilización. En Tenosique son cultivados con caña de azúcar. Rendoll es uno de lo siete subórdenes de los molisoles. Muestra Es una porción de un todo que permite estudiar las características o propiedades de este y elaborar su caracterización. En el caso de los suelos, aguas y plantas, la muestra permite determinar la capacidad de aporte de nutrimentos, aptitud para el riego y estado nutrimental, respectivamente.

80

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Muestra compuesta Es aquella formada por varias submuestras obtenidas en diferentes puntos del sitio a muestrear. El volumen o peso las porciones debe ser equivalente entre ellas para que los resultados de laboratorio sean útiles. Necrosis. Se refiere a la parte muerta del tejido foliar Nivel Crítico. Se refiere a la concentración de un nutrimento en el tejido foliar de las plantas, relacionado con el 90% del rendimiento. Nutriente o Nutrimento Cualquier sustancia que proporciona energía, aporta materiales para la formación de nuevas células o funciona como aceptor de electrones en la respiración de los organismos. En general, los nutrimentos requeridos por las plantas son 17 elementos minerales, que estas obtienen del suelo y del agua mediante las raíces. Nutrientes mayores Son los elementos que las plantas requieren en mayor cantidad para su crecimiento y desarrollo. De acuerdo a las necesidades relativas se clasifican en primarios (N, P, K) y secundarios (Ca, S, Mg). Nutrientes menores Son elementos que las plantas requieren en cantidades muy pequeñas, pero aún así son imprescindibles para el crecimiento y desarrollo normales de los cultivos; estos elementos son Fe, Cu, Mn, Zn, B, Cl y Mo. Algunas especies vegetales en particular requieren además Si, I, V y Na. Perfil Es un corte vertical en el suelo, en profundidad, que sirve para observar las diferentes capas, estratos u horizontes, que lo forman a fin de estudiar, muestrear y clasificar los suelos. pH (potencial Hidrógeno) Mide el grado de acidez o alcalinidad de cualquier sustancia; expresa la cantidad de iones reactivos libres en solución. Substancias con pH de 0 a 7 son ácidas (a valor más pequeño, mayor acidez), de 7 a 14 son alcalinas (a valor mayor, más alcalinidad); aquellas con valor 7 son neutras. Matemáticamente, el pH se expresa como el logaritmo inverso de la concentración de los iones H+. Por ejemplo, si un suelo de la sabana tiene un pH de 6.0, es debido a que contiene una concentración de iones hidrógeno de una parte por millón, es decir 1 X 10-6, el logaritmo de 1 X 10-6, es -6; invirtiendo su signo, será 6. Porcentaje de Sodio Intercambiable (PSI) Se define como el grado de saturación del complejo de intercambio del suelo con sodio. Punto de Marchitez Permanente (PMP). El agua es retenida por el suelo con una fuerza de 15 atmósferas. A esta succión las plantas no pueden absorber el agua del suelo y se marchitan. ppm partes por millón; es una medida de la concentración de una sustancia, en peso o en volumen, en una solución o en una mezcla. Equivale a 1 g en 1000 kg, o 1 ml en 1000 L Reducción Es el proceso por el cual un ión gana electrones para formar moléculas más complejas, mediante reacciones químicas o bioquímicas.

81

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Relación carbono/nitrógeno (C/N) Es la proporción de carbono presente en la materia orgánica por cada unidad de nitrógeno. Materiales con valores altos indican contenido elevado de carbono, y por lo tanto, baja disponibilidad para la descomposición microbiana. Sabana Formación geográfica del paisaje consistente en planicies o lomeríos suaves, cubiertos de vegetación herbácea, con predominancia de gramíneas, y arbustos de porte bajo. Los suelos de estos sitios tienden a ser muy ácidos, poco fértiles y poco profundos. Salinidad Se refiere al contenido de sales totales en los suelos. Contenidos muy elevados de sales son indeseables para la mayoría de los cultivos ya que inducen estrés hídrico, bajo rendimiento y daños fisiológicos a las plantas. La salinidad se mide a través de la conductividad eléctrica del extracto de saturación del suelo; mayores valores de conductividad indican más salinidad. Serie liotrópica Es el orden de energía de retención de los cationes minerales en el complejo arcillo-húmico del suelo. Ordenados de manera decreciente presentan la siguiente secuencia: H > Ca > Mg > NH4 > K > Na, donde el primero es más fuertemente retenido y el último tiene menor fuerza de retención. Sodificación. Se refiere al proceso de enriquecimiento del suelo con el ión sodio. Submuestras Porciones de suelo, plantas o aguas provenientes de un terreno, cultivo o cuerpo de agua que se mezclan entre si, en cantidades equivalentes, para obtener una muestra destinada al análisis de laboratorio, llamada ‘muestra compuesta’. El propósito es reducir el tiempo y costo de los análisis. El resultado obtenido de la muestra compuesta es un promedio de las características del objeto muestreado. Ultisol Son suelos ácidos, lixiviados e intemperizados, con bajo contenido de bases (menos de 35%), de baja fertilidad, comunes en las zonas de sabana. Son buenos suelos agrícolas si se maneja el encalado y la fertilización. En Tabasco se localizan en la sabana de Huimanguillo y están cultivados con cítricos. Variable Es cualquier característica susceptible de ser medida mediante algún instrumento o técnica de medición, que toma diferentes valores según el objeto, estado del objeto o momento de la medición. Se habla de variable o variables para caracterizar rasgos del suelo, plantas, animales, personas y demás objetos. Vertisol Son suelos profundos, con más de 35% de arcillas, con predominio de arcilla dilatable 2:1; presentan mucha contracción cuando están secos, lo que lleva a la aparición de grandes grietas durante la estación seca. Cuando están húmedos se dilatan completamente. Su pH va de neutro a alcalino y son de mucho interés agrícola. Estos suelos son aptos para pastos, arroz y otros cultivos que requieren o toleran la retención de humedad. Este tipo de suelos son de los más comunes en el estado de Tabasco. Viscosidad. La viscosidad es una propiedad de los fluidos que es de gran importancia en múltiples procesos industriales, además de ser una variable de gran influencia en las mediciones de flujo de fluidos, el valor de viscosidad se usa como punto de referencia en la formulación de nuevos productos, facilitando la reproducción

82

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

de la consistencia de un lote a otro. A nivel internacional, la referencia a partir de la cual se construye la escala de viscosidad es 1,003 4 mm2/s, correspondiente a la viscosidad cinemática del agua, a una temperatura de 20 ºC; a partir de este valor se construye la escala de medición de viscosidad empleando la técnica conocida como de escalamiento sucesivo.

83

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

5 BIBLIOGRAFIA AGUILERA, C.M. y MARTÍNEZ, E.R. 1996. Relaciones agua suelo atmósfera. Departamento de Irrigación-UACH. Chapingo, México. 256 p. ARNON, D.I. y P.R. STOUT. 1939. The essentiality of certain elements in minute quantity for plants with special reference to copper. Plant Physiol.14: 371-375. AYERS, R.S. y D.W. WESCOT. 1985. Water quality for agriculture. FAO, Irrigation and Drainage paper 29 Rev.1. Roma, Italia. 174 p. BERTSCH, F. 1995. La fertilidad de los suelos y su manejo. San José de Costa Rica. Sociedad Costarricense de la Ciencia del Suelo. 157 p. BIDWELL, R. G. S. 1990. Fisiología Vegetal. A.G.T. Editor. pp. 245-292. BOLE, J., B.y V. J. PITTMAN.1976. sampling southen Alberta soils for N and P soil testing. Can. J. Soil Sci. 56:531-535. BOLIO L. G. I., S. SALGADO G. D. J. PALMA L., L. C. LAGUNES-E., M. CASTELÁN E., J.D. ETCHEVERS-B. 2006. Dynamic of potasium in mexican soils under sugarcane. Soil & Tillage Research. 17 p. BUCKMAN, H.O. y N.C. BRADY. 1991. Naturaleza y propiedades de los suelos. UTEHA Grupo Noriega Editores. México, D.F. 590 p. CLINE, M.G. 1944. Principles of soil sampling. Soil Science. 52:275-288 COCHRAN, T., J. SALINAS. y P. SANCHEZ. 1980. An equation for liming acid mineral soil to compensate crops aluminium tolerance. Tropical Agriculture. 57(2):133-140. COPE, J.T. y C.E. EVANS. 1985. Soil testing. Advances in Soil Science. Vol 1. Springer Verlag-New York.pp.201-228 COTTENIE, A. 1984. Los análisis de suelos y de plantas como base para formular recomendaciones sobre fertilizantes. Boletín de suelos 38. FAO. Roma, Italia.115 p. CRUZ, M. S. 1986. Abonos orgánicos. UACh. Chapingo, México. 129 p. CSTPA. 1980. Handbook on reference methods for soil testing. Council on Soil Testing and Plant Analysis. Athens, Georgia.USA. ETCHEVERS, B. J.D., W. ESPINOSA G., E. RIQUELME. 1971. Manual de Fertilidad y fertilizantes. 2a. Edición Corregida. Universidad de Concepción,Facultad de Agronomía, Chillán, Chile.

84

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

ETCHEVERS B.J.D. 1988. Interpretación de los análisis químicos de suelo. Notas del curso Diagnóstico Visual. Centro de Edafología, Colegio de Postgraduados. Chapingo, México. ETCHEVERS B.J.D. 1996. Los análisis de agua-suelo-planta en apoyo a la fertirrigación. pp. 35-58. In Memorias del Simposium Internacional de fertirrigación. INIFAP, Fundación Produce Sonora, A.C., PIEAES, A.C. Hermosillo, Sonora, México. FASSBENDER, W.H. 1984. Química de suelos con énfasis en suelos de América Latina. IICA. San José, Costa Rica. 398 p. FINCK, A. 1985. Fertilizantes y fertilización: fundamentos y métodos para la fertilización de los cultivos. Editorial REVERTÉ, S.A. España. 439 p. FOTH, H.D. 1992. Fundamentos de la ciencia del suelo. 5a. Reimpresión. CECSA. México, DF. 433 p. GUERRERO, G. A. 1990. El suelo, los abonos y la fertilización de los cultivos. Ediciones Mundi-Prensa. España.206 p. HAGIN, J. y A. LOWENGART. 1996. Fertigación for minimizing environmental pollution by fertilizers. Fertilizer Research. 43:5-7. HAUSER, G.F. 1980. Interpretación de los análisis de suelos al formular recomendaciones sobre fertilizantes. Boletín de suelos de la FAO No.18.Roma, Italia. HENRIQUEZ C., F. BERTSCH y R. SALAS. 1998. La fertilidad de suelos: manual de laboratorio. Asociación Costarricense de la ciencia del Suelo. San José, Costa Rica. 64 p. INPOFOS. 1993. Diagnóstico del estado nutricional de los cultivos. Quito, Ecuador. 55 p. JACKSON, M.L. 1958. Soil Chemical Analysis. Prentice-Hall, Inc.Englewood-Cliffs., N.J. JUÁREZ, H.J. 2005. Estudio agrofisiológico y nutricional de la producción de materia seca y contenido de proteína en pastos tropicales. Tesis doctoral. Universidad Central “Marta Abreu” de las Villas. Facultad de Ciencias Agropecuarias. República de Cuba. 109 págs. JONES, B. J., B.WOLF. y H. A.MILLS. 1991. Plant Analisys Handbook: a practical sampling, preparatión, analysis and interpretación guide. Micro-Macro publishing, Inc.USA. LETELIER A., E. 1967. Manual de fertilizantes para chile. Banco del Estado. Santiago de Chile. LIRA, A. R. H. 1994. Fisiología vegetal Edit. Trillas. México D.F. 237 p.

85

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

LOPEZ, N. U. 1990. El estudio del potasio como nutriente en los suelos del estado de Tabasco. Tesis profesional. Instituto Tecnológico de Villahermosa, Tabasco.114 p. MARSCHNER, H. 1995. Mineral nutrition of higher plants. Second edition. Academic Press. San Diego, CA, USA. 889 p. MCINTYRE, G.A. 1967. Soil sampling for soil testing. J. Austral. Inst. Agric. Sci. 33:-309-320. MOLINA, R. E. 1998. Encalado para la corrección de la acidez del suelo. Asociación Costarricense de la Ciencia del Suelo. Costa Rica. 45 p. MORENO D., R. 1978. Clasificación de pH del suelo, contenido de sales y nutrientes asimilables. INIA-SARH, México, D.F. NPFI.1988. Manual de fertilizantes. Ed. LIMUSA. México, D.F. 292 p. NUÑEZ, E.R. 1985. Efectos de la acidez del suelo sobre la producción de cultivos y su corrección mediante el encalado. Serie de Cuadernos de Edafología 2. CEDAF-CP. Chapingo, México. 20 p. OBRADOR, O.J.J. 1991. Dinámica del fósforo en unidades de suelos del estado de Tabasco. Tesis profesional. Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Veracruzana. Orizaba, Ver. 67 p. ORTIZ, V.B. y ORTIZ S.C.A. 1980. Edafología. Suelos. UACh. Chapingo, México. 331 p. ORTIZ-GARCÍA C. F., S. SALGADO-GARCÍA y D. J. PALMA-LÓPEZ. 2003. Diagnostico de las plantaciones de palma de aceite (Elaeis guineensis) afectadas por el síndrome de la torcedura del raquíz de la hoja en la región centro-sierra de Tabasco, México. In. Memorias de la XVI RCFAT. Villahermosa, Tabasco. PALACIOS, V.O. y ACEVES, N.E. 1994. Instructivo para el muestreo registro de datos e interpretación de la calidad del agua de riego agrícola. Centro de Hidrociencias-CP. Montecillo, México. 49 p. PALMA L.D.J., SALGADO,G.S., TRUJILLO, N.A., OBRADOR O.J.J., LAGUNES, E.L.D.C., ZAVALA,C.J., RUIZ, B.A. Y CARRERA, M.M.A. 1995. Diagnóstico de la fertilidad de los suelos cañeros del área de abastecimiento del ingenio Tenosique, Tabasco. Campus Tabasco-PYCSA. H. Cárdenas, Tabasco.40 p. PÉREZ P.C., M. CASTELAN E., S. SALGADO G. Y D.J.PALMA LÓPEZ, 2005. Estado nutrimental NPK en palma de aceite en jalapa, Tabasco. In: memoria de la XVIII Reunión Científica Tecnológica Forestal y Agropecuaria Tabasco 2005. Villahermosa, Tabasco. pp. 466-472. PETERSEN, R.G. y L.D. CALVIN. 1965. Sampling. In: Black,C. (Ed.). Methods of soil Analysis. Agronomy 9. Part 1. ASA. Madison, Wisconsin, USA.

86

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

PRITCHETT W.L.1979. Properties and managament of forest soils. John willey and Sons, New York. QUIROZ M., J.L. y AVILA, A.C. 1994. Síndrome de decaimiento del limonero (SIDELI) en la Sabana de Huimanguillo, Tabasco. pp 69-70. In: Memorias de los Avances de Investigación. Campus Tabasco-CP. H. Cárdenas, Tab. RICHARDS, L.A. 1994. Diagnóstico y rehabilitación de suelos salinos y sódicos. Laboratorio de salinidad de los E.U.A.UTEHA Noriega Editores, México, D.F. REISENAWUER, H.M., WALSH, L.M. and HOEFT, R.G. 1973. Testing soils for sulphur, boron, molybdenum and chlorine, P. 173-200. In. L.M. Walsh and J.D. Beaton (eds.) Soil testing and plant analysis. Soil Science Society of America.Madison, Wisconsin, USA. RODRIGUEZ Q., A.1993. Efecto del encalado sobre las propiedades químicas de un suelo ácido de la Sabana de Huimanguillo, Tabasco. pp 64-66. In Memorias de Avances de Investigación CEICADES 92/93. CEICADES-CP. H. Cárdenas, Tab. RODRIGUEZ F. y BURGUETE, F. 1987. Muestreo de suelos. pp. 1-15. In Aguilar A., S., J. D. B. Etchvers y J. Z. R. Castellanos (eds.). Análisis químico para evaluar la fertilidad del suelo. Publicación especial 1. SMCS. Chapingo, México. ROSOLEM, C. A. 1994. Interpretaçáo de análise de solo e desenvolvimiento radicular da cana de açúcar. In: I seminario sobre tecnologias de manejo de solo e adubaçáo da cana de açúcar. Ribeiráo Preto, SP, Brasil. pp. 54-73. SABBE, W. E. y MARX, D.B. 1987. Soil sampling: Spatial and temporal varibility. pp.1-14. In Brown, J.R.(eds.) Soil testing: sampling, correlation, calibration and interpretation. Special Publication Number 21. Soil Science Society of América, In. Madison, Wisconsin, USA. SANCHEZ, A.P. 1981. Suelos del trópico, características y manejo. IICA. San José, Costa Rica. 660 p. SALGADO G., S. 1991. Manejo de la fertilización nitrogenada en arroz de temporal en la Chontalpa, Tabasco. Tesis de Maestría, Centro de Edafología, Colegio de Postgraduados, Montecillo, México. 163 p. SALGADO, G.S., NUÑEZ E.R., PEÑA C.J.J., ETCHEVERS B. J.D., PALMA L.D.J. Y SOTO H.M. 1997. Dinámica del NH4+ y NO3- en un vertisol cultivado con caña de azúcar. In. Memorias de la X Reunión Científica Forestal y Agropecuaria del INIFAP. Villahermosa, Tabasco. pp 20-22. SALGADO G. S., D.J. PALMA L., L.C. LAGUNES E., C.F. ORTIZ G., J.M. ASCENCIO R. 2005. Bases para generar un programa sustentable de fertilización en un ingenio de Tabasco, México. Interciencia. 30(7): 395-403.

87

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

SARH. 1983. Instructivo para la toma de muestras de suelos. México. SOIL SURVEY STAFF. 1998. Keys to soil taxonomy. 6th Edition. USDA-SCS. Washington, D.C. USA. 306 p. TAVERA G., G. 1985. Criterios para la interpretación y aprovechamiento de los reportes del laboratorio para las áreas de asistencia técnica. Publicación 3, SMCS, Delegación la Laguna, Matamoros Coahuila. TISDALE, S.L. y NELSON, W.L. 1985. Fertilidad de suelos y fertilizantes. Edit. LIMUSA. México, D.F. VELASCO C., R. y S. MARTINEZ, D. 1985. Evaluación de métodos de muestreo para dos manejos de suelo diferentes en Valles centrales de Oaxaca. Tesis profesional. UACH, Chapingo, México. VIETS, F.G. y W.L. LINDSAY. 1973. Testing soils for zinc, copper, manganese and iron, pp.153-172. In L.M. Walsh and Bealon (eds.).Soils testing and plant analysis, revised edition. Soil Science Society of América, Madison, Wisconsin, USA. WILDING, L.P. y R.L. DRESS. 1983. Spatial variability and pedology. In: Wilding, L. P., Semeck, N.E. and Hall, G. F. (Eds.). Pedogenesis and soil taxonomy. 1. Concepts and interactions. pp. 83-116. Developments in soil science. Elsevier, New York. ULRICH, A. y F.J. HILLS. 1967. Principles and practices of plant analysis.pp.11-24. In. Soil testing and plant analysis. Part II, SSSA Special Publ. serie No. 2 Soil Sci. Soc. Amer. Madison, Wisconsin, USA.

88

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

Para mayor información sobre la toma de muestras de suelos, plantas y aguas, análisis químico e interpretación de resultados; visite, escriba o llame al Laboratorio de Análisis de Suelos, Plantas y Aguas (LASPA) del Campus Tabasco. Los investigadores del área de ciencia ambiental y del laboratorio están en la mejor disposición para orientarlo.

CAMPUS TABASCO Km 3.5 Periférico Cárdenas-Huimanguillo 86500 Cárdenas, Tabasco Tel. 91 (937) 2 23 64 Fax. 91 (937) 2 22 97

Visite nuestro sitio internet: http://www.colpos.mx/tabasco/espanol/home_sp.htm

89

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

CREDITOS EDITORIALES EDITOR Instituto para el Desarrollo de Sistemas de producción del Trópico Húmedo de Tabasco

DISEÑO EDITORIAL Edición Dr. Sergio Salgado García MC. Raúl castañeda Ceja

Esta obra se terminó de imprimir en el mes de septiembre de 2006, El tiraje fue de 1000 ejemplares, más sobrantes de reposición.

Este libro se realizo con las más estrictas normas de redacción; sin embargo, es un sistema perfectible, por lo que los autores mucho agradecerán cualquier sugerencia o comentario que contribuya a mejorarlo, por favor enviar sus comentarios a: [email protected]

90

Salgado et al. 2006. Manual para muestreo de suelos, plantas y aguas e interpretación de análisis

GOBIERNO DEL ESTADO DE TABASCO

INSTITUTO PARA EL DESARROLLO DE SISTEMAS DE PRODUCCION DEL TROPICO HUMEDO DE ASCO TAB91