Practica 1 Toxicologia

January 21, 2019 | Author: Cezar Hernandez Cortes | Category: Cell Membrane, Concentration, Solvent, Cell (Biology), Solubility
Share Embed Donate


Short Description

PRACTICA DE TOXICOLOGIA CLEU OAXACA...

Description

COLEGIO LIBRE L IBRE DE ESTUDIOS UNIVERSI UNIVERSITARIOS TARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

Ciclo escolar 2016  – 2017

LICENCIATURA EN CRIMINOLOGÍA Y CRIMINALÍSTICA

CUATRIMESTRE Y GRUPO  __6°“A” Nombre del Docente QB. ERICK GIOVANNI APARICIO CANELA Nombre del Estudiante: HERNÁNDEZ SANTOS FLOR IVETH. LUIS SANGERMAN KARINA ALEJANDRA. SALINAS GUZMÁN ALICIA EDENIA. FLORES GUILLEN MAYCO. HERNANDEZ CORTES CESAR.

BIBLIOGRAFIA: QUIMICA ORGANICA EXPERIMENTAL, DE H.D DURTS/ G.W. GOKEL, ED. REVERTE.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE L IBRE DE ESTUDIOS UNIVERSI UNIVERSITARIOS TARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

TOXICOLOGIA FORENSE  _________________________________ MATERIA

PRÁCTICA NO: UNO 6 A: FECHA (S): 16/05/2017 HORARIOS: 12:00 – 12:00 – 13:00HRS  13:00HRS 6 H : FECHA (S): 17/05/2017 HORARIOS: 13:00 – 13:00 – 14:00HRS  14:00HRS

TEMA DEL PROGRAMA QUE SE TRABAJA:

 __DIFUSION PASIVA__________

EXTRACCION DE COMPUESTOS LIPOSOLUBLES DE AGUAS CONTAMINADAS. TÍTULO DE LA PRÁCTICA

JUSTIFICACION FORENSE : El alumno debe de conocer cómo se absorben los tóxicos en el organismo. OBJETIVO DE LA PRÁCTICA: El alumno aprenderá las metodologías de extracción de sustancias liposolubles de medios acuosos como son aguas contaminadas. COMPETENCIAS COMPETENCIAS A DESARROLLAR CON LA REALIZACIÓN REALIZA CIÓN DE DE LA PRÁCTICA: PRÁ CTICA:

El alumno comprenderá el concepto c oncepto de coeficiente de partición. Desarrollara habilidades en el manejo del material de laboratorio Conocerá las metodologías de extracción de sustancias liposolubles de medios acuosos INTRODUCCIÓN La extracción líquido-líquido es un método muy útil para separar componentes de una

mezcla. El éxito de este método depende de la diferencia de solubilidad del compuesto a extraer en dos disolventes diferentes. Cuando se agita un compuesto con dos disolventes inmiscibles, el compuesto se distribuye entre los dos disolventes. A una temperatura determinada, la relación de concentraciones del compuesto en cada disolvente es siempre constante, y esta constante es lo que se denomina coeficiente de distribución o de reparto (K = concentración en disolvente 2 / concentración en disolvente 1). Es frecuente obtener mezclas de reacción en disolución o suspensión acuosa (bien porque la reacción se haya llevado a cabo en medio acuoso o bien porque durante el final de reacción se haya añadido una disolución acuosa sobre la mezcla de reacción inicial). En estas situaciones, la extracción del producto de reacción deseado a partir de esta mezcla acuosa “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE L IBRE DE ESTUDIOS UNIVERSI UNIVERSITARIOS TARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

TOXICOLOGIA FORENSE  _________________________________ MATERIA

PRÁCTICA NO: UNO 6 A: FECHA (S): 16/05/2017 HORARIOS: 12:00 – 12:00 – 13:00HRS  13:00HRS 6 H : FECHA (S): 17/05/2017 HORARIOS: 13:00 – 13:00 – 14:00HRS  14:00HRS

TEMA DEL PROGRAMA QUE SE TRABAJA:

 __DIFUSION PASIVA__________

EXTRACCION DE COMPUESTOS LIPOSOLUBLES DE AGUAS CONTAMINADAS. TÍTULO DE LA PRÁCTICA

JUSTIFICACION FORENSE : El alumno debe de conocer cómo se absorben los tóxicos en el organismo. OBJETIVO DE LA PRÁCTICA: El alumno aprenderá las metodologías de extracción de sustancias liposolubles de medios acuosos como son aguas contaminadas. COMPETENCIAS COMPETENCIAS A DESARROLLAR CON LA REALIZACIÓN REALIZA CIÓN DE DE LA PRÁCTICA: PRÁ CTICA:

El alumno comprenderá el concepto c oncepto de coeficiente de partición. Desarrollara habilidades en el manejo del material de laboratorio Conocerá las metodologías de extracción de sustancias liposolubles de medios acuosos INTRODUCCIÓN La extracción líquido-líquido es un método muy útil para separar componentes de una

mezcla. El éxito de este método depende de la diferencia de solubilidad del compuesto a extraer en dos disolventes diferentes. Cuando se agita un compuesto con dos disolventes inmiscibles, el compuesto se distribuye entre los dos disolventes. A una temperatura determinada, la relación de concentraciones del compuesto en cada disolvente es siempre constante, y esta constante es lo que se denomina coeficiente de distribución o de reparto (K = concentración en disolvente 2 / concentración en disolvente 1). Es frecuente obtener mezclas de reacción en disolución o suspensión acuosa (bien porque la reacción se haya llevado a cabo en medio acuoso o bien porque durante el final de reacción se haya añadido una disolución acuosa sobre la mezcla de reacción inicial). En estas situaciones, la extracción del producto de reacción deseado a partir de esta mezcla acuosa “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE L IBRE DE ESTUDIOS UNIVERSI UNIVERSITARIOS TARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

se puede conseguir añadiendo un disolvente orgánico adecuado, más o menos denso que el agua, que sea inmiscible con el agua y capaz de solubilizar la máxima cantidad de producto a extraer pero no las impurezas que lo acompañan en la mezcla de reacción. Después de agitar la mezcla de las dos fases para aumentar la superficie de contacto entre ellas y permitir un equilibrio más rápido del producto a extraer entre las dos fases, se producirá una transferencia del producto deseado desde la fase acuosa inicial hacia la fase orgánica, en una cantidad tanto mayor cuanto mayor sea su coeficiente de reparto entre el disolvente orgánico de extracción elegido y el agua. Unos minutos después de la agitación, las dos fases se separan de nuevo, espontáneamente por decantación, debido a la diferencia de densidades entre ellas, con lo que la fase orgánica que contiene el producto deseado se podrá separar mediante una simple decantación de la fase acuosa conteniendo impurezas. La posición relativa de ambas fases depende de la relación de densidades. Dado que después de esta extracción, la fase acuosa frecuentemente aún contiene cierta cantidad del producto deseado, de seado, se suele repetir el proceso de extracción extrac ción un par de veces más con disolvente orgánico puro. La extracción con disolventes es la técnica de separación de un compuesto a partir de una mezcla sólida o líquida, aprovechando las diferencias de solubilidad de los componentes de la mezcla en un disolvente adecuado. Constituye una de las técnicas de separación de compuestos más utilizada en el laboratorio químico. En un laboratorio químico, es frecuente utilizar mezclas complejas de diferentes compuestos. Casi siempre que se lleva a cabo una reacción de preparación de un compuesto determinado, es necesario separar este producto de la mezcla de reacción donde puede haber subproductos formados en la reacción, sales u otras impurezas. Así, en el laboratorio químico la separación y la purificación del producto deseado son tan importantes como la optimización de su síntesis, con lo cual, además de mejorar las condiciones de reacción buscando un elevado rendimiento de formación del producto deseado, se tienen que plantear procesos eficientes de separación que permitan una recuperación máxima del producto a partir de la mezcla de reacción. La extracción es una te las técnicas más útiles para hacerlo. hacerlo. “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

La separación de un compuesto por extracción se basa en la transferencia selectiva del compuesto desde una mezcla sólida o líquida con otros compuestos hacia una fase líquida (normalmente un disolvente orgánico). MARCO TEÓRICO

Cuando una sustancia se distribuye entre dos líquidos miscibles entre sí o ligeramente miscibles, la relación de las concentraciones de dicha sustancia en las dos fases será constante, independientemente de la cantidad de soluto que se disuelva o del volumen de líquido empleado. Esta distribución está sujeta a las siguientes condiciones: a) El reparto se debe efectuar a temperatura constante durante todo el proceso, puesto que la temperatura influye sobre la cantidad de soluto disuelta en cada líquido, de forma que para cada temperatura de trabajo el equilibrio de distribución del soluto en los distintos disolventes será distinto. b) No debe producirse ninguna reacción química entre ninguno de los componentes del sistema, ya que, si se forma un nuevo producto, esto falsearía los datos referidos a las concentraciones del soluto inicial. c) Las disoluciones deben ser diluidas. A altas concentraciones aparecen interacciones entre soluto y disolventes que interfieren en la proporción en la que el soluto se distribuye en las distintas fases. Bajo estas condicionantes podemos formular la siguiente ley de distribución que podemos considerar un caso particular de la Ley de Henry: K=C1/C2 C1 = Concentración del soluto en la fase I C2 = Concentración del soluto en la fase II K = Constante adimensional denominada Coeficiente de Reparto (también se le puede denominar cte. de Distribución o de Partición).

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

A efectos prácticos, esta ley permitiría predecir la concentración final de soluto en las distintas fases, siempre y cuando conozcamos el valor del Coeficiente de Reparto para un sistema determinado y estemos trabajando bajo las condicionantes en las cuales se cumple esta ley de distribución. Esta característica es estudiada en fármacos, para predecir de qué manera se distribuirá el medicamento en los tejidos. Si su coeficiente de reparto es elevado, tenderá a concentrarse en medios hidrófobos, como por ejemplo la bicapa lipídica de la membrana celular, en cambio si su coeficiente es bajo, tendrá tendencia a distribuirse en entornos hidrófilos, como por ejemplo el plasma sanguíneo. Suponiendo que tenemos una sustancia soluble en un disolvente X1, y esta misma sustancia es aún más soluble en un segundo disolvente no miscible con X1, que llamaremos X2, podemos extraer la sustancia de X1, agregándole el solvente X2, agitando la mezcla y luego separando las dos fases. Este proceso se llama extracción, y es muy usado a nivel industrial, para extracción de aceites, grasas y pigmentos. La extracción nunca será completa, pero se obtienen buenos resultados agregando X2 en fracciones, es decir, agregando un poco de X2, agitando, y luego agregando más X2. Existen diferentes métodos para medir el coeficiente de reparto. Uno de los más usados es el método del frasco de agitación. Se colocan las dos fases en un frasco, por ejemplo, n- octanol y agua, y se disuelve soluto en ellas. Luego se determina la concentración de soluto en cada una de las fases, y se obtiene el coeficiente de reparto. Existen varios métodos para determinar la concentración del soluto en los distintos disolventes. Las concentraciones se pueden medir por ejemplo por espectroscopía, o añadiendo un trazador radioactivo a la muestra.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

El método del frasco de agitación tiene como ventajas que es un método preciso para un amplio rango de solutos, y que no tenemos que conocer previamente la estructura química del soluto para conocer su coeficiente de reparto. Entre las desventajas que presente este método, tenemos que lleva bastante tiempo, y que si la sustancia estudiada es altamente hidrófila o hidrófoba, la concentración en una de las dos fases será muy baja, y por lo tanto difícil de cuantificar con precisión. Además, para el método del frasco de agitación, la solubilidad debe ser completa, y puede resultar complicado detectar cantidades pequeñas de soluto sin disolver. Coeficiente De Repartición El paso a través de las membranas biológicas y la distribución en el organismo, son dos factores determinantes en la capacidad de un fármaco para alcanzar la diana biológica con la cual va interaccionar para producir un efecto biológico determinado. El coeficiente de reparto o coeficiente de partición (P) es un parámetro fisicoquímico que permite determinar de modo cuantitativo, el grado de lipofilia (también denominada hidrofobicidad) de una molécula, permitiendo inferir cómo se comportará en el entorno de los fluidos biológicos del organismo y cómo será su paso mediante difusión pasiva a través de membranas biológicas, como se mencionó, el coeficiente de reparto es un parámetro cuantitativo que representa la solubilidad relativa de una sustancia determinada en un sistema compuesto por dos fases inmiscibles entre sí, a una temperatura específica. Dado que generalmente una de las fases está constituida por un disolvente orgánico, se le denomina fase O, que es de baja polaridad, mientras que la otra generalmente acuosa, constituida por agua o buffers, se le denomina fase W cuya polaridad es alta. Es por esto que P representa el grado de lipofilia de una sustancia. La expresión matemática de P es: P = Co/Cw Donde: “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

C o = Concentración (Molar o mg/L) de la sustancia en la fase orgánica C w = Concentración de la sustancia (Molar o mg/L) en la fase acuosa El coeficiente de reparto, se ve afectado por factores como: 1. Naturaleza química del producto: Porque el tipo y número de grupos funcionales polares y no polares que una molécula presenta determinan su carácter lipofílico o hidrofóbico. 2. pH: Sustancias de naturaleza ácida cuyo valor de pKa es bajo y sustancias básicas cuyo valor de pKa es alto, el pH va a influenciar el valor del coeficiente de reparto dado que permite determinar la proporción de fármaco que se encuentra ionizada y que las especies ionizadas son insolubles en la fase orgánica. 3. La temperatura: dado que la temperatura afecta la solubilidad de las sustancias en los diferentes sistemas solventes, determina en qué proporción el fármaco va a estar disuelto en la fase orgánica y en la fase acuosa. 4. El sistema disolvente: Dado que la solubilidad depende del disolvente utilizado, existen diferencias en el valor de Log P determinado entre diferentes sistemas disolventes. Los disolventes empleados en la determinación del coeficiente de reparto deben cumplir con las siguientes características:



Simular lo mejor posible las condiciones de la interfase entre la membrana celular y el medio extracelular.



Baja volatilidad



Ser económico



Baja Toxicidad

Conceptos Básicos “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

Toxicología: ciencia que estudia las sustancias químicas y los agentes físicos en cuanto que

son capaces de producir alteraciones patológicas a los seres vivos, a la par que estudia los mecanismos de producción de tales alteraciones y los medios para contrarrestarlas, así como los procedimientos para detectar, identificar y determinar tales agentes y valorar su grado de toxicidad. Toxicología Forense:  Es la aplicación de la Toxicología con fines legales, la función más

frecuente consiste en identificar cualquier sustancia que haya podido causar una lesión o la muerte de una persona, o daños contra la propiedad. Tóxico : es cualquier sustancia, artificial o natural, que posea toxicidad (es decir, cualquier

sustancia que produzca un efecto dañino sobre los seres vivos al entrar en contacto con ellos). Liposoluble:

Se

llama liposolubles a

las sustancias solubles en grasas, aceites y

otros solventes orgánicos no polares como el benceno y el tetracloruro de carbono Hidrosoluble:  Significa que se puede disolver en agua Molécula: La molécula es la partícula más pequeña que presenta todas las propiedades

físicas y químicas de una sustancia, y se encuentra formada por dos o más átomos. Molécula Hidrofil ia: Una molécula hidrofílica es aquella que puede enlazarse temporalmente

con el agua a través de un enlace hidrógeno. Esto es favorable termodinámicamente, y hace solubles a las moléculas no sólo en agua sino también en otros disolventes polares. Debido a esto también se las conoce como moléculas polares. Algunas sustancias hidrofílicas no se disuelven, y este tipo de mezcla se denomina entonces coloide. Las membranas celulares tienen partes hidrofílicas e hidrofóbicas “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

Molécula Hidrofóbica:  Por definición, una sustancia es hidrofóbica si no es miscible con el

agua. Básicamente la hidrofobicidad ocurre cuando la molécula en cuestión no es capaz de interaccionar con las moléculas de agua ni por interacciones ion-dipolo ni mediante puentes de hidrógeno. Tal es el caso de los hidrocarburos saturados. Permeabilidad:   La permeabilidad de las membranas es la facilidad de las moléculas para

atravesarla. Esto depende principalmente de la carga eléctrica y, en menor medida, de la masa molar de la molécula. Pequeñas moléculas y moléculas con carga eléctrica neutra pasan la membrana más fácilmente que elementos cargados eléctricamente y moléculas grandes. Membrana biológica:  Las membranas biológicas son superficies delgadas y flexibles, que

separan a las células y a compartimentos dela célula de su medio. Todas las membranas poseen una composición común, pero pueden tener propiedades diferentes. Las membranas son abundantes en fosfolípidos, los cuales forman una doble bicapa en medio acuoso. Además contienen proteínas, que junto con los lípidos pueden difundirse dentro de la membrana, y así obteniendo propiedades de mosaico fluido. Las membranas son asimétricas, tanto la cara externa como la interna poseen proteínas y propiedades diferentes Célula:   Es la unidad morfológica y funcional de todo ser vivo. De hecho, la célula es el

elemento de menor tamaño que puede considerarse vivo. Pared celular : La pared celular es una capa resistente, y no rígida porque soporta las

fuerzas osmóticas y el crecimiento, que se localiza en el exterior de la membrana plasmática en las células de plantas, hongos, algas, bacterias y arqueas. La pared celular protege el contenido de la célula, y da rigidez a esta, funciona como mediadora en todas las relaciones de la célula con el entorno y actúa como compartimiento celular. Además, en el “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

caso de hongos y plantas, define la estructura y otorga soporte a los tejidos y muchas más partes de la célula. Citoplasma:   sustancia fundamental o matriz de la célula, rodeada por la membrana

plasmática, y que contiene al núcleo, retículo endoplásmatico, mitocondrias y otros orgánulos. MATERIAL A UTILIZAR Y QUE EL ESTUDIANTE DEBERÁ ADQUIRIR: 1.- Guantes de látex 2.- Cubrebocas 6.- Tapones de hule 7.-

3.- Pipetas Pasteur 8.-

EQUIPO O MATERIAL PRESTADO DE LABORATORIO: 1.- Vasos de 2.- Matraces 3.- Pipetas precipitados Erlenmeyer Graduadas 6.- Cloroformo 7.- Embudo de 8.- Balanza separación analítica

4.- Bulbos de Goma 9.-

5.- Muestra 10.-

4.- Probetas

5.- Baño Maria

9.- Arillo Metálico

10.- Soporte Universal.

NECESARIO PRESENTARSE CON LO SIGUIENTE PARA QUE SE LE PERMITA EL ACCESO A LABORATORIO EQUIPO DE SEGURIDAD: 1.- Bata cerrada…………( X) 2.- Cubre bocas…………( X ) 3.- Guantes de látex........( X) 4.- Cabello recogido……( X ) 5.- Lentes de seguridad..( ) 6.- Gorro…………………( ) 7.-Bitacora……………....( X ) 8.- Botas…………………( X )  ÁREA O INSTAL ACIONES QUE REQUIERE PARA LA REALIZACIÓN DE LA PRÁCTICA: LAB. CRIMINAL STICA ( X ) LAB. CRMINOLOG A ( ) CASA DE HECHOS ( ) CUARTO OBSCURO ( ) JARDÍN ( ) LAB. MOVIL ( ) OTRO: ( ) ________________________________________ RECOMENDACIONES A SEGUIR EN CASO DE ACCIDENTES: Salpic adura de reactivos en lo s ojos Lavar con abundante agua y consultar de inmediato con un oftalmólogo  Álcal is sobre la piel

Lavar con agua abundante y una solución diluida al 1% de ácido

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

acético (vinagre)  Ácid os sobre la piel

Lavar con agua abundante y luego colocar una disolución de bicarbonato de sodio diluida al 1%

 Ácid os sobre la ropa

Lavar con agua abundante y luego con disolución diluida al 5% de bicarbonato de sodio

PROCEDIMIENTO PARA LA REALIZACIÓN DE LA PRÁCTICA 1.- El día martes 16 de mayo de 2017, siendo las 12:00 pm, los alumnos del sexto grado, grupo A, nos dimos cita, en las instalaciones del Colegio Libre de Estudios Universitarios, Campus Oaxaca, ubicado en la Avenida Juárez, número 202, con el propósito de llevar a cabo la práctica que lleva por nombre “Extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas”.

2.-Una vez ahí reunidos, procedimos a formar los equipos correspondientes, para dar inicio con dicha práctica, así mismo reunimos el material necesario para la realización de la práctica. 3.-Al iniciar con la práctica lo primero que hicimos fue colocar 20 mililitros de diésel en un matraz Erlenmeyer, sustancia que fue debidamente medido con ayuda de una pipeta. PLACA FOTOGRAFICA N°. 1 VISTA MEDIA SE PROCEDE A EXTRAER EL LÍQUIDO COMBUSTIBLE DENOMINADO “DIÉSEL” DE COLORACIÓN AMARILLA, TRANSPARENTE CON UNA PIPETA GRADUADA DEL RECIPIENTE.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRAFICA N°. 2 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA CANTIDAD DEL LÍQUIDO DENOMINADO DIÉSEL EN LA PIPETA GRADUADA LA CUAL SERÁ UN TOTAL DE 20 MILÍMETROS.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

4.-Posteriormente se le agregó al matraz Erlenmeyer que contenía los 20 mililitros de diésel. 20 mililitros de cloroformo, esto para que ambas sustancias se mezclaran entre sí, puesto que el cloroformo es un solvente de las grasas, por lo que tiene la capacidad de unirse al diésel. PLACA FOTOGRAFICA N °. 3 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL MATRAZ ERLENMEYER CON LIQUIDO COLOR AMARILLO DENOMINADO DIESEL CON UNA CANTIDDAD DE 20 MILILITROS.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRAFICA N °. 4 VISTA MEDIA SE PROCEDE A EXTRAER EL TRICLOROMETANO (CLOROFORMO) LÍQUIDO INCOLORO, CON UNA PIPETA PASTEUR DE UN ENVASE DE VIDRIO. EL CUAL CONSISTIRÁ EN 20 MILILITROS.

PLACA FOTOGRAFICA N°. 5 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA AGREGACIÓN DEL TRICLOROMETANO (CLOROFORMO) AL MATRAZ ERLENMEYER QUE CONTIENE PREVIAMENTE EL COMBUSTIBLE “DIÉSEL”, SE AGREGA 20MILILITROS DE TRICLOROMETANO.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

5.-Asi mismo se le agregó al matraz que contenía la mezcla, 20 mililitros de agua destilada, para observar, que sustancia pesaba más, si el agua o la mezcla ya realizada. PLACA FOTOGRAFICA N °. 6 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA AGREGACION DE AGUA DESTILADA AL MATRAZ ERLENMEYER QUE EN SU CONTENDO TIENE 20 MILILITROS DE COMBUSTIBLE DIESEL Y 20 MILILITROS DE TRICLOROMETANO EN UNA MEZCLA HOMOGENEA.

6.- Una vez que se tuvo al diésel y al cloroformo en el matraz, se agitó durante 3 a 5 minutos, hasta que se logró mezclar ambas sustancias y se obtuvieron como una especie de perlas en forma de círculos, debido a que las sustancias se adhirieron entre sí, sin embargo, el color no se lograba definir claramente. PLACA FOFOGRAFICA N °. 7 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL MATRAZ ERLENMEYER CON ELEMENTOS LIQUIDOS EN UNA MEZCLA HOMOGENEA (AGUA DESTILADA, COMBUSTIBLE “DIESEL” Y TRICLOROMETANO).

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRÁFICA N °. 8 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA SOLUCIÓN EN EL MATRAZ ERLENMEYER DONDE SE PUEDE OBSERVAR LA DENSIDAD DE LAS SUSTANCIAS LIQUIDAD, LAS QUE SON MAYOR A UNO, SE UBICAN A BAJO DE LA SUPERFICIE DEL AGUA Y LAS QUE SON MENOR A UNO, SE UBICAN ARRIBA DE LA SUPERFICIE DEL AGUA.

7.- para poder observar con claridad se le coloco genciana, la cual se utilizó únicamente como colorante, pero se denoto que dicha sustancia era más soluble en grasas, ya que se adhiero a la sustancia grasosa, así se logró observar las perlas de color lila. PLACA FOTOGRAFICA N °. 9 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA SUSTANCIA QUIMICA CLORURO DE METILROSANILINA (VIOLETA DE GENCIANA) UN COLORANTE DERIVADO DEL TRIFENILMETANO.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRAFICA N °. 10 VISTA MEDIA SE PROCEDE CON LA PIPETA PASTEUR EXTRAER LA SUSTANCIA QUÍMICA CLORURO DE METILROSANILINA (VIOLETA DE GENCIANA) CON UNA CANTIDAD DE 4 MILILITROS.

PLACA FOTOGRAFICA N °. 11 VISTA MEDIA SE PROCEDE DISOLVER LA SUSTANCIA QUÍMICA CLORURO DE METILROSANILINA (VIOLETA DE GENCIANA) MATRAZ ERLENMEYER QUE PREVIAMENTE TIENE UNA MEZCLA HOMOGÉNEA DE ( AGUA DESTILADA, COMBUSTIBLE “DIESEL” Y TRICLOROMETANO).

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRAFICA N °. 12 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL MATRAZ ERLENMEYER CON LA SUNTANCIA DE VIOLETA DE GENCIANA.

PLACA FOTOGRAFICA N °. 13 VISTA MEDIA SE PROCEDE A MEZCLAR LAS SUSTANCIAS DEL VASO PRECIPITADO CON MOVIMIENTOS LATERALES DE LA MUÑECA.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

PLACA FOTOGRAFICA N °. 14 VISTA MEDIA SE OBSERVA EN EL MATRAZ ERLENMEYER EN LA PARTE DE A BAJO DE LA SUPERFICIE DEL AGUA UNA SOLUCION LIPOSOLUBLE CON UNA DENSIDAD MAYOR A UNO.

8.- Mientras tanto se procedió a pesar el vaso de precipitado, el cual dio como resultado 105.975.1 g, esto dado a que más adelante se utilizaría y es necesario saber el peso original del vaso. PLACA FOTOGRAFIA N°. 15 VISTA MEDIA SE OBSERVA LA BALANZA ANALÍTICA LA CUAL TIENE EN SU CONTENEDOR UN VASO PRECIPITADO SIN LÍQUIDO, CON LO CUAL SE CALIBRA LA BALANZA ANALÍTICA EN 0 PARA PODER CALCULAR EL PESO EN GRAMOS DEL VASO PRECIPITADO SIENDO EL PESO 105.975.1GRAMOS.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

9.- Se vertió la mezcla del matraz Erlenmeyer a un embudo de separación, esperando a que se asentara, para poder obtener la sustancia grasosa. PLACA FOTOGRAFICA N °. 16 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL MATRAZ ERLENMEYER CON LAS SUSTANCIAS EN DECANTACION PARA VERTIRLAS EN EL EMBUDO DE SEPARACION.

PLACA FOTOGRAFICA N °. 17 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL EMBUDO DE SEPARACION DONDE EN LA PARTE SUPERIOR TIENE UNA BOCA PROVISTA DE UN TAPÓN QUE LO CIERRA HERMÉTICAMENTE. SE PROCEDE A MEZLCAR LAS SUSTANCIAS CON MOVIMIENTOS LATERALES DE LA MUÑECA.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

10.- Una vez que la sustancia grasosa se asentó en el fondo del embudo de separación, se colocó únicamente la sustancia grasosa en el vaso de precipitado. PLACA FOTOGRAFICA N °. 18 VISTA MEDIA SE MUESTRA EL EMBUDO DE SEPARACION CON LAS SUTANCIAS DONDE LA DENSIDAD MAYOR A UNO SE UBICAN DEBAJO DE LA SUPERFICE DEL AGUA SIENDO ESTA LIPOSOLUBLE.

PLACA FOTOGRAFICA N °. 19 VISTA MEDIA SE OBSERVA EL EMBUDO DE SEPARACION EN SU PARTE EN SU PARTE INFERIOR SE LOCALIZA UNA LLAVE DE TEFLÓN QUE PERMITE REGULAR LA SALIDA DEL LÍQUIDO LIPOSOLUBLE QUE SE DEPOSITARA EN EL VASO PRECIPITADO.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

11.- Teniendo la sustancia grasosa en el vaso de precipitado, se colocó este en baño maría, esto para calcular la parte grasosa. 1.- El alumno procederá a tomar 20 mililitros de la muestra a analizar y la colocara en un matraz Erlenmeyer. 2.- Agregar 20 mililitros de Cloroformo y agitar por 3 a 5 minutos y vaciarlo en un embudo de separación. 3.- recolectar la fase clorofórmica en un vaso de precipitados previamente pesado. 4.- colocar a sequedad en baño María o a la intemperie 5.- Pesar nuevamente el vaso de precipitados y por diferencia de peso obtener la cantidad de grasas y aceites extraídas del agua estudiada. DESCRIPCIÓN DE LO OBSERVADO: Durante la realización de la práctica que lleva por nombre “extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas” se pudo observar minuciosamente antes que todo la

consistencia de los líquidos que se iban a manejar durante la práctica, en este caso se utilizó el diésel para disolverlo con otras sustancias, así como también se observó el material que iba a ser utilizado se prosiguió con pesar el vaso de precipitado (105.9761g) posteriormente al hacer la mezcla se observó que al tenerla entre sustancias químicas una hidrofóbica (grasa) y la otra hidrofilica (agua) y al añadirse también agua contaminada obtuvo una consistencia aceitosa, al momento de unirse estas sustancias no se apreciaba nada atrayente, luego de comenzar agitar la mezcla obtuvo un color menta traslucido y se comenzó a separar mientras en el fondo de la sustancia se formaban una clase de burbujas semejantes a las perlas, luego de esto se le agrego a la sustancia una gota de violeta de genciana a lo cual observamos que el color cambio y disminuía mientras se agitaba pero que el color violeta era más fuerte en la grasa por lo que se apreciaban mejor las burbujas y la separación de las sustancias, también se pudo apreciar las mezclas de los compañeros las “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

cuales fueron diferentes a la ya mencionada y se encontró que en unas sustancias fueron distintas a la utilizada por este equipo, las mezclas fueron diferentes, en una se encontraron igualadas ambas sustancias es decir no había separación, otras el agua se encontraba por debajo de la sustancia y cada una tenía una consistencia diferente, procedimos a observar esta mezcla en el embudo de separación y como la separación de las sustancias era más legible (el agua de la grasa) se procedió a sacar del embudo la grasa para después colocarla en el vaso y enseguida llevarlo al baño maría, con la grasa se contempló por unos minutos el proceso y al terminar se pesó nuevamente el vaso con la sustancia y se observó que hubo un aumento del peso del vaso (110.97g).  ACTIVIDAD DE EVAL UACIÓN:

Desempeño de habilidad individual en el desarrollo de la práctica. Desempeño colectivo en el desarrollo de la práctica Reporte de la práctica Cuestionario proporcionado por el docente. CUESTIONARIO: 1. ¿Qué es toxicología? Parte de la medicina que se ocupa del estudio y los efectos de los productos tóxicos o venenosos sobre el organismo. 2. ¿Qué es toxicología forense? Es la rama de la toxicología que estudia los métodos de investigación médico-legal en los casos de envenenamiento y muerte. 3. ¿Qué es un toxico? Tóxico o toxicidad es el grado de efectividad que poseen ciertas sustancias, ya sea por su composición o lo que produce. Es una medida que se usa para saber cuál el nivel tóxico que posee ciertos fluidos y que afectan el organismo en su totalidad. 4. ¿Qué es un veneno? Ese mismo agente que el toxico, pero cuando su empleo es intencionado. 5. ¿Qué es liposoluble? Se llama liposoluble a las sustancias solubles en grasas, aceites y otros solventes orgánicos no polares como el benceno y el tetracloruro de carbono. 6. ¿Qué es la toxicomanía? Es el hábito de consumir drogas, del que no se puede prescindir o resulta muy difícil hacerlo por razones de dependencia psicológica o incluso fisiológica. “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

7. ¿Qué es la biodisponibilidad? Se define como: la fracción (porcentaje) de una dosis administrada de fármaco inalterado que llega al flujo sanguíneo (circulación sistémica). 8. ¿Qué es la absorción? La absorción es el paso de una sustancia del medio ambiente al organismo. Por lo general se entiende no sólo como el hecho de atravesar la barrera tisular sino también como su llegada ulterior a la circulación sanguínea. 9. ¿Qué es la distribución? La distribución de una sustancia dentro del organismo es un proceso dinámico que depende de las velocidades de absorción y eliminación, así como del flujo sanguíneo en los diferentes tejidos y de las afinidades de éstos por la sustancia. 10. ¿Qué es la biotransformacón? La biotransformación es un proceso que lleva a una conversión metabólica de los compuestos extraños (xenobióticos) presentes en el organismo. 11. ¿Qué es la eliminación? La eliminación es la desaparición de una sustancia del cuerpo. Puede consistir en su excreción al exterior del organismo o en su transformación en otras sustancias que no son captadas por un determinado método de medición. 12. ¿Qué es un xenobítico? Xenobióticos. “Sustancias extrañas”, es decir, extrañas al organismo. Lo contrario son los compuestos endógenos. Entre los xenobióticos figuran los fármacos, las sustancias químicas industriales, los venenos presentes en la naturaleza y los contaminantes del medio ambiente. 13. ¿Qué es toxicidad? La capacidad intrínseca que posee un agente químico de producir efectos adversos sobre un órgano. 14. ¿Qué es la endocitosis? La endocitosis se define como un mecanismo de transporte en el que la membrana celular rodea material invaginándose para formar una vesícula que lo transporta por la célula. 15. ¿Qué es la pinocitosis? La pinocitosis es un proceso biológico que permite a determinadas células y organismosunicelulares obtener líquidos orgánicos del exterior para ingresar nutrientes o para otra función. 16. ¿Qué es el órgano diana? La célula diana, también conocida como célula blanco, es un término usado popularmente dentro de la rama de la endocrinología para referirse a cualquier célula que tenga un receptor que reaccione con una hormona, sin importar si esta unión genera o no una respuesta fisiológica. 17. ¿Qué es la anafilaxia? La anafilaxia es una reacción alérgica grave en todo el cuerpo a un químico que se ha convertido en alergeno. Un alergeno es una sustancia que puede ocasionar una reacción alérgica. “SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

18. ¿Qué es la parestesia? Sensación o conjunto de sensaciones anormales de cosquilleo, calor o frío que experimentan en la piel ciertos enfermos del sistema nervioso o circulatorio. 19. ¿Qué es la profilaxis? Conjunto de medidas que se toman para proteger o preservar de las enfermedades. 20. ¿Qué es la ataxia? "Trastorno caracterizado por la disminución de la capacidad de coordinar los movimientos". Por tanto, "ataxia" puede utilizarse indistintamente para referirse al signos clínico de una coordinación defectuosa del movimiento muscular, o para nombrar una enfermedad degenerativa concreta del sistema nervioso de cuantas cursan con tal signo; en este segundo caso, debiera usarse esa palabra seguida de un nombre o numeración que identifique el desorden. 21. ¿Qué es una membrana? Lámina de tejido orgánico, generalmente flexible y resistente, de los seres animales o vegetales, entre cuyas funciones están la de recubrir un órgano o un conducto o la de separar o conectar dos cavidades o estructuras adyacentes. CONCLUSIONES DEL ESTUDIANTE:

Conclusión general: Al finalizar la práctica, si bien se logró obtener el resultado del problema planteado al inicio de la práctica, que radicaba en conocer el coeficiente de partición que se hallaba en una sustancia grasosa, en nuestro caso era la mezcla de diésel y cloroformo, pudiéndose denotar que debido a la diferencia de peso encontrada entre el vaso de precipitado previamente pesado, sin contener alguna sustancia y que dio un resultado de 105.97 g, y que después fue nuevamente pesado con la sustancia grasosa en su interior, dando como resultado 110.97 g; observando una diferencia de 5g. Como coeficiente de partición.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

FLORES GUILLEN MAYCO. En esta práctica realizada de extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas, aprendimos como realizar la metodología necesaria para poder separar los elementos grasosos de un líquido como el agua, aprendimos que dependiendo de la densidad del líquido más pesado se ira al fondo del recipiente y el que tenga su densidad menos pesada se ira a la superficie, el hecho de que posean densidades distintas permite que un líquido flote por encima del otro. 1°- Las densidades de los líquidos no miscibles están en relación inversa a las alturas de sus columnas sobre la superficie de separación en el tubo en forma de U. 2°- Queda demostrado que los líquidos son no miscibles porque tienen diferentes densidades. 3°- Mediante nuestra practica realizada, la cual nos da a conocer las densidades de los líquidos analizados está dentro del rango permitido lo cual ha sido comprobado con loa teoría dada. 4°- Concluimos que los líquidos no miscibles que el petróleo es menos denso que el aceite y este es menos denso que el agua. Gracias a la distinta densidad de los líquidos, los productos extraídos se pudieron separar por niveles, quedando en la parte exterior los más pesados. Concluyo que el objetivo principal de la práctica era conocer lo que es la densidad, obtener las densidades del diésel, cloroformo y el agua.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

HERNÁNDEZ SANTOS FLOR IVETH. Al finalizar la práctica, de “Extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas”, pude concluir que el hecho de que ciertas sustancias se mezclen puede implicar alguna contaminación perjudicial para los seres vivos, en el caso de la actividad que realizamos se pudo observar que al mezclar diésel y cloroformo (siendo el cloroformo un solvente de grasas), estas se unieron en forma de perlas, y al añadir agua destilada observé que debido a que las sustancias tenían una densidad menor a 1 se colocaron por debajo del agua, ya que como bien sabemos la densidad del agua es 1, por lo que se mantuvo por encima de la sustancia grasosa, además añadimos genciana, para darle color a la mezcla, y con esto observé detalladamente la forma característica que tomo la sustancia grasosa, puesto que la genciana se unió a esta, denotando que es más soluble en grasa que en agua; por último al realizar la separación por decantación en el embudo, y verter únicamente la sustancia grasosa en el vaso de precipitado y colocarlo en el baño maría se pudo obtener el coeficiente de partición (es decir que parte del soluble contiene más grasas) que se encontraba en la grasa, esto lo obtuvimos debido a que en un principio pesamos el vaso de precipitado, el cual arrojó un resultado de 105.97 g, sin tener ninguna sustancia en su interior, pero al volverlo a pesar con la sustancia grasosa, dio un resultado de 110.97 g, pudiéndose decir que la diferencia de peso fue de 5 g, el cual es el coeficiente de partición hallado en la grasa.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

LUIS SANGERMAN KARINA ALEJANDRA  Al dar por terminada esta práctica que lleva por nombre “Extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas” se concluyó que al disolver una serie de sustancias

esta mezcla puede llegar a ser un toxico; el cloroformo añadido a la sustancia (diésel) fue de suma importancia ya que disolvió las grasas. Al observar esto se pudo describir la separación de sustancias hidrosolubles (Agua) y sustancias liposolubles (grasa). La explicación del porque las sustancias se separaron y la sustancia hidrosoluble permaneció arriba se debe a la densidad de agua ya que la densidad del agua es igual a 1 y cuando es mayor a 1 estas sustancias son más pesadas que el agua y van debajo de ella, en la parte profunda y cuando es menor a 1 las sustancias son más ligeras y van arriba del agua, con esta información se pudo resolver la incógnita de la colocación de las sustancias. La Genciana que se le añadió a la mezcla fue para darle color y las grasas se unieron a ella porque es más soluble con esto se pudo observar claramente las grasas. Las grasas que contengan una barrera biológica natural en su estructura se mezclara con la membrana y lo llevara dentro de la célula, esta barrera biológica son las burbujas que se ven en la sustancia. Esto de la barrera biológica natural en otras palabras es la permeabilidad de la pared celular. Para finalizar hay que tener el conocimiento de que si el soluble no es grasoso se mantendrá arriba y no será absorbido por la célula.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS COORDINACIÓN DE LABORATORIOS PLAN DE PRÁCTICA CAMPUS OAXACA

HERNANDEZ CORTES CESAR La práctica de compuestos de extracción de extracción de compuestos liposolubles de aguas contaminadas comprende una metodología para extraer compuestos químicos en el agua lo cual consiste en la separación de elementos grasosos del líquido por medio de diferentes pasos y químicos, al igual que diversos materiales de laboratorio donde las sustancias donde las densidades mayores a uno se ubican debajo de la superficie del agua siendo esta liposoluble, siendo este método con el centrifugado poder determinar la cantidad de grasa en el agua en este caso y poder determinar si el agua está contaminada o no y de que cantidad es, esto con una formula llamada coeficiente de partición el cual Si consideramos una que la sustancia que es capaz de disolverse en el solvente que no se pueden mezclar entre sí, la relación entre las concentraciones de esta sustancia en los distintos solventes es el llamado coeficiente de reparto , el cual se logró determinar ya que se colocó la sustancia en el baño maría para quedar reducido solamente la sustancia grasosa.

“SISTEMA DE GESTION DE CALIDAD, CERTIFICADO EN ISO 9001:2008” Revisión No. 4 Sistema CLEU

Fecha de revisión: 07 de Agosto de 2014 Derechos Reservados

No. HCLA 50.08 Archivado en CLA 50.09- CLA 50.09.2

View more...

Comments

Copyright ©2017 KUPDF Inc.
SUPPORT KUPDF