Manual Toma de Muestras Laboratorio Clinico Hggb

HOSPITAL GUILLERMO GRANT BENAVENTE UNIDAD DE LABORATORIO CLINICO DIRECCION TECNICA LABORATORIO CLINICO CAA

MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS EXAMENES DE LABORATORIO CLINICO HOSPITAL GUILLERMO GRANT BENAVENTE CONCEPCION

APL 1.2

2014 - 2019 Elaborado por:

Revisado por:

Aprobado por:

BQ. Laura Ramos Pérez Encargada Característica APL 1.2 Laboratorio Clínico - CAA H.G.G.B.

Dr. Luis Gatica Norambuena Jefe Unidad de Calidad Continua y Seguridad del Paciente H.G.G.B.

Dra. Marina Opazo Riveros Jefe Laboratorio Clínico LaboratOrio Clínico - CAA H.G.G.B.

Fecha: Mayo 2014

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LABORATORIO CLINICO CAA

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COLABORADORES DRA. MARINA OPAZO R. BQ. XIMENA CID C. QF. NORA MILLAN H. QF. PATRICIA RIQUELME S. BQ. CHRISTINE PAQUIEN M. BQ. FRANCISCO PINO A. BQ. HENRIETTE CHABOUTY G. BQ. ROBERTO VEGA M. BQ. IVAN RODRIGUEZ L. TM. HECTOR VENEGAS B. TM. INGRID GUTIERREZ S. a

TM. M LORENA DAVILA D. TM. CAROLINA BAEZA C. TM. LYA MONTECINOS TM. ROLANDO ARIAS A. TM. FELIPE FUENTES R. TM. VANESSA GROSOLLI M. TM. FELIPE LEON V.

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INDICE GENERALIDADES 1. INTRODUCCION………………………………………………………………………………………………. 2. ORGANIZACIÓN DEL PRESENTE MANUAL……………………………………………………………… 3. OBJETIVOS…………………………………………………………………………………………………….. 4. ALCANCE Y CAMPO DE APLICACIÓN…………………………………………………………………….. 5. REFERENCIAS NORMATIVAS………………………………………………………………………………. 6. TERMINOS Y DEFINICIONES………………………………………………………………………………... 7. RESPONSABLES DE SU APLICACIÓN…………………………………………………………………….. 8. RESPONSABLES DE SU SUPERVISIÓN………………………………………………………………….. 9. DISTRIBUCION……………………………………………………………………………………………....... 10. REGISTROS ASOCIADOS………………………………………………………………………………....... 11. BIOSEGURIDAD………………………………………………………………………………………………..

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GENERALIDADES DE LA TOMA DE MUESTRA 1. FORMULARIOS DE SOLICITUD………………………………………………………………………..…. 2. REQUISITOS DE LA SOLICITUD DE EXAMEN……………………………………………………........ 3. PERSONAL AUTORIZADO PARA SOLICITAR EXAMENES…………………………………………... 4. MATERIALES DE TOMA DE MUESTRAS………………………………………………………………… 4.1. Calendario entrega de material …………………….…………………………………………………… 5. ATENCION EN LAS SALAS DE EXTRACCION PACIENTES AMBULATORIOS DEL CAA………… 6. ATENCION EN LAS SALAS DE EXTRACCION PACIENTES HOSPITALIZADOS………………...... 7. UNIDADES DE TOMA DE MUESTRAS…………………………………………………………………….

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PROCEDIMIENTOS PARA LA TOMA DE MUESTRA 1. GENERALIDADES…………………………………………………………………………………………… 2. TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA..………………………………………………………….. TECNICA DE EXTRACCION DE SANGRE POR VACIO 2.1. Descripción Material de extracción por vacio………………………………………………………. 2.2. Procedimiento extracción al vacío…………………………………………………………………….. 2.3. Etapas de la toma de muestras………………………………………………………………………… 2.4. Normas básicas para el llenado de tubos al vacío……………………………………………………. 2.5. Toma de muestras de Hemocultivo……………………………………………………………………. 2.6. Forma de evitar la aparición de hematomas durante la punción venosa…………………………… 2.7. Recomendaciones generales…………………………………………………………………………… 3. TOMA DE MUESTRAS DE ORINA…………………………………………………………………………. 3.1. Orina reciente o de una sola micción………………………………………………………………….. 3.2. Orina de segundo chorro………………………………………………………………………………… 3.3. Orina de 24 horas………………………………………………………………………………………… 3.4. Orina vesical………………………………………………………………………………………………. 3.5. Orina de sonda de Foley………………………………………………………………………………… 3.6. Orina con recolector……………………………………………………………………………………… 3.7. Traspaso de muestras de orina desde frasco a tubos al vacío…………………..………………….

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3.8. Tubos para muestras de orina………………………………………………………………………….. 3.9. Esquema para el correcto uso del sistema de recolección de orina……………………………….. 4. TOMA DE MUESTRA DE LIQUIDOS BIOLOGICOS……………………………………………………… 5. TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES…………………………………………………………….. 5.1. Muestras tomadas con medio de transporte………………………………………………………….. 5.2. Muestras de deposición en frascos con tórula estéril………………………………………………... 6. TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES……………………………………………………………… 6.1. Toma de muestra de Flujo vaginal…………………………………………………………………….. 6.2. Toma de Muestras de Aspirado Nasofaríngeo……………………………………………………….. 6.3. Toma de muestra Torulado Nasofaríngeo……………………………………………………………..

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE PARA LOS EXAMENES: 1. ACIDOS BILIARES…………………………………………………………………………………………. 2. ACIDO URICO………………………………………………………………………………………………. 3. ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO ………………………………………………………………. 4. ADENOSINDEAMINASA (ADA)…………………………………………………………………………… 5. ALBUMINA…………………………………………………………………………………………………… 6. ALFAFETOPROTEINAS…………………………………………………………………………………… 7. AMILASA…………………………………………………………………………………………………….. 8. AMONIO……………………………………………………………………………………………………… 9. ANTICUERPOS ANTI CARDIOLIPINAS IGG E IGM........................................................................ 10. ANTICUERPOS ANTINUCLEARES (ANA) ……………………………………………………………… 11. ANTICUERPOS ANTICITOPLASMA DE NEUTROFILOS (ANCA) ANTI PR3 Y MPO.................... 12. ANTICUERPOS ANTI CITOMEGALOVIRUS IGG E IGM................................................................. 13. ANTICUERPOS ANTI DNA………………………………………………………………………………… 14. ANTICUERPOS ANTI ENA (RO, LA, SM, RNP, SCL-70, JO-1)………………………………………. 15. ANTICUERPOS ANTI ENDOMISIO………………………………………………………………………. 16. ANTICUERPOS ANTI ESTREPTOLISINA O (ASO)……………………………………………………. 17. ANTICUERPOS ANTI LKM-1……………………………………………………………………………… 18. ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRIALES (AMA)……………………………………………………… 19. ANTICUERPOS ANTI MUSCULO LISO (ML)................................................................................... 20. ANTICUERPOS ANTI MPO……………………………………………………………………………….. 21. ANTICUERPOS ANTI PEPTIDOS CITRULINADOS CICLICOS (CCP)………………………………. 22. ANTICUERPOS ANTI PR3………………………………………………………………………………… 23. ANTICUERPOS ANTI RUBEOLA IGG E IGM................................................................................... 24. ANTICUERPOS ANTI TOXOPLASMA GONDII IGG E IGM …………………………………………… 25. ANTICUERPOS ANTI TRASNGLUTAMINASA IGG E IGA…………………………………………..... 26. ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA (TG)………………………………………………………..... 27. ANTICUERPOS ANTI TPO………………………………………………………………………………… 28. ANTICUERPOS ANTI TREPONEMICOS EN SUERO (Treponema pallidum)………………………. 29. ANTICUERPOS ANTI Trypanosoma cruzi (CHAGAS)...................................................................... 30. ANTICUERPOS ANTI VIRUS EPSTEIN BARR IGG E IGM (VCA)................................................... 31. ANTICUERPOS ANTI VIRUS HERPES SIMPLEX 1 Y 2 IGG E IGM ………………………………… 32. ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO LIBRE (APEl)……………………………………………….. 33. ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO TOTAL (APEt)................................................................. 34. ANTITROMBINA III………………………………………………………………………………………….. 35. BETA 2 MICROGLOBULINA………………………………………………………………………………. 36. BHCG, GONADOTROFINA CORIONICA HUMANA FRACCION B…………………………………… 37. BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA…………………………………………………………………… 38. CA19-9………………………………………………………………………………………………………..

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CA125…………………………………………………………………………………………………………. CALCIO……………………………………………………………………………………………………….. CARBAMAZEPINA MINIMO Y MAXIMO …………………………………………………………………. CAROTENO BASAL Y SOBRECARGA…………………………………………………………………... CEA (ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO)…………………………………………………………… CETONEMIA……………………………………………………………………………………………….... CICLOSPORINA MINIMO Y MAXIMO ……………………………………………………………………. COLESTEROL TOTAL……………………………………………………………………………………… COLESTEROL HDL………………………………………………………………………………………… COMPLEMENTO SERICO C3 Y C4……………………………………………………………………… CORTISOL AM Y PM………………………………………………………………………………………. CREATININA……………………………………………………………………………………………....... CREATINQUINASA CK-MB MIOCARDICA ……………………………………………………………… CREATINQUINASA CK TOTAL…………………………………………………………………………… CRIOGLOBULINAS……………………………………………………………………………………….... DESHIDROGENASA LACTICA (LDH)………………………………………………………………….... DHEA-SO4…………………………………………………………………………………………………… DIGOXINA………………………………………………………………………………………………….... DIMERO D……………………………………………………………………………………………………. ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO……………………………………………………... ELECTROLITOS PLASMATICOS (Na, K, Cl)................................................................................... ESTRADIOL…………………………………………………………………………………………………. FACTOR DE VON WILLEBRAND………………………………………………………………………… FACTOR REUMATOIDEO……………………………………………………………………………….... FACTOR V…………………………………………………………………………………………………… FACTOR VII…………………………………………………………………………………………………. FACTORES VIII Y IX……………………………………………………………………………………...... FENITOINA MINIMO Y MAXIMO ………….…………………………………………………………….. FENOBARBITAL MINIMO Y MAXIMO ………………………………………………………………….... FERRITINA…………………………………………………………………………………………………… FIBRINOGENO………………………………………………………………………………………………. FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES………………………………………………………………….. FOSFORO…………………………………………………………………………………………………... FSH (HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE)…………………………………………………………. GALACTOMANANO………………………………………………………………………………………… GAMMA GLUTAMIL TRANSFERASA (GGT)………………………………………………………….... GASES EN SANGRE ARTERIAL Y COOXIMETRIA…………………………………………………… GASES EN SANGRE VENOSA…………………………………………………………………………… GLUCOSA BASAL Y POST PANDRIAL…………………………………………………………………. GOT (ASPARTATO AMINOTRANSFERASA)…………………………………………………………… GPT (ALANINO AMINOTRANSFERASA)……………………………………………………………….. HANTAVIRUS……………………………………………………………………………………………….. HEMOCULTIVO MICOBACTERIAS (HEMOMAC) …………………………………………………….. HEMOCULTIVO PERIFERICO AEROBIO Y ANAEROBIO……………………………………………. HEMOCULTIVO POR CATETER VENOSO CENTRAL………………………………………………… HEMOGLOBINA A1C (HEMOGLOBINA GLICOSILADA)…………………………………………….. HEMOGRAMA………………………………………………………………………………………………. HEPATITIS A (ANTICUERPOS IGM)…………………………………………………………………….. HEPATITIS B (ANTIGENO DE SUPERFICIE)…………………………………………………………… HEPATITIS B (ANTICUERPO ANTI CORE)...................................................................................... HEPATITIS C (ANTICUERPOS TOTALES)……………………………………………………………… HIDATIDOSIS………………………………………………………………………………………………..

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INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN SUERO………………………………………………………. INMUNOGLOBULINAS SERICAS IGG, IGA, IGM E IGE TOTAL…………………………………….. INSULINA BASAL Y 120 MIN……………………………………………………………………………… LACTATO (ACIDO LACTICO)…………………………………………………………………………….. LH (HORMONA LUTEINIZANTE)……………………………………………………………………….... LIPASA……………………………………………………………………………………………………..... LITIO NIVEL MAXIMO Y MINIMO…………………………………………………………………………. MAGNESIO…………………………………………………………………………………………………… METOTREXATO…………………………………………………………………………………………….. PARACETAMOL…………………………………………………………………………………………..... PERFIL BIOQUIMICO………………………………………………………………………………………. PERFIL HEPATICO…………………………………………………………………………………………. PERFIL LIPIDICO (COLESTEROL TOTAL, COLESTEROL HDL, TRIGLICERIDOS)……………… PROCALCITONINA…………………………………………………………………………………………. PROGESTERONA………………………………………………………………………………………….. PROLACTINA Y POOL DE PROLACTINA………………………………………………………………. PROTEINA C ACTIVADA…………………………………………………………………………………… PROTEINA C REACTIVA………………………………………………………………………………….. PROTEINA S………………………………………………………………………………………………… PROTEINAS TOTALES……………………………………………………………………………………. PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL (PTG)………………………………………….. PTH INTACTA………………………………………………………………………………………………. RECUENTO DE PLAQUETAS EN CITRATO…………………………………………………………… RECUENTO DE RETICULOCITOS………………………………………………………………………. SCREENING NEONATAL DE HIPOTIROIDISMO CONGENITO (HC) Y FENILCETONURIA (PKU)……………………………………………………………………………………………………….... TEOFILINA MINIMO Y MAXIMO..………………………………………………………………………… TESTOSTERONA TOTAL…………………………………………………………………………………. TIEMPO DE PROTROMBINA (TP) + INR………………………………………………………………... TIEMPO DE SANGRIA IVY………………………………………………………………………………… TIEMPO PARCIAL DE TROMBOPLASTINA ACTIVADA (TTPA)…………………………………….. TRIGLICERIDOS……………………………………………………………………………………………. T3 (TRIYODOTIRONINA)………………………………………………………………………………….. T4 (TIROXINA)………………………………………………………………………………………………. T4 LIBRE…………………………………………………………………………………………………….. TROPONINA I……………………………………………………………………………………………….. TSH (HORMONA TIROESTIMULANTE)…………………………………………………………………. UREA Y BUN………………………………………………………………………………………………… VANCOMICINA MINIMO Y MAXIMO …………………………………………………………………….. V.D.R.L. EN SUERO……………………………………………………………………………………….. VELOCIDAD DE SEDIMENTACION (VHS)……………………………………………………………… VIH/SIDA…………………………………………………………………………………………………….. VITAMINA B12……………………………………………………………………………………………….

INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE ORINA PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE ORINA…………………………….……………………………….…. 2. CREATININA EN ORINA DE 24 HRS Y CLEARENCE………………………………………………… 3. CULTIVO DE ORINA POR PUNCION VESICAL……………………………………………………….. 4. CULTIVO DE ORINA POR SEGUNDO CHORRO O POR RECOLECTOR..................................... 5. ELECTROFORESIS E INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN ORINA……………………………. 6. ORINA EXAMEN COMPLETO FISICOQUIMICO Y SEDIMENTO URINARIO……………………....

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MICROALBUMINURIA……………………………………………………………………………………… PROTEINAS DE BENCE JONES………………………………………………………………………… QUIMICA DE ORINA CUANTITATIVA DE 24 HORAS O AISLADA…………………………………. SCREENING METABOLICO EN ORINA………………………………………………………………... UROCULTIVO……………………………………………………………………………………………….

INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE DEPOSICIONES………………………………………………...…. 2. COPROCULTIVO………………………………………………………………………………………...... 3. ESTEATOCRITO ACIDO………………………………………………………………………………..... 4. LEUCOCITOS FECALES…………………………………………………………………………………. 5. ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS……………………………………………………..……………………. 6. TOXINA A Y B DE Clostridium difficile EN DEPOSICIONES…………………………………………. 7. NOROVIRUS EN DEPOSICIONES……………………………………………………………………… 8. Helicobacter pylori EN DEPOSICIONES………………………………………………………………… 9. PARASITOLOGICO SERIADO DE DEPOSICIONES (PSD)……………………………………….… 10. SANGRE OCULTA EN DEPOSICIONES (TEST DE WEBER)…………………………………….… 11. TEST DE GRAHAM………………………………………………………………………………………..

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE LIQUIDOS BIOLOGICOS PARA LOS EXAMENES: 1. ADENOSINDEAMINASA EN LIQUIDOS LCR Y PLEURAL……………………………………….….. 2. ALBUMINA, AMILASA, COLESTEROL, LDH, LIPASA Y PROTEINAS TOTALES EN LIQUIDOS BIOLOGICOS………………………………………………………………………………………………. 3. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO, PLEURAL, ASCITICO Y OTROS……………………………………………………………………………………………………… 4. BANDAS OLIGOCLONALES……………………………………………………………………………... 5. CITOQUIMICO DE LCR…………………………………………………………………………………… 6. CITOQUIMICO DE LIQUIDO PLEURAL, ASCITICO Y PERITONEAL, SINOVIAL, PERICARDICO Y OTROS…………………………………………………………………………………………………… 7. CULTIVO CORRIENTE DE LCR………………………………………………………………………… 8. CULTIVO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO POR DERIVATIVA VENTRICULO PERITONEAL 9. CULTIVOS LIQUIDOS ESTERILES NO LCR……………………………………………………….….. 10. CULTIVO LECHE MATERNA………………………………………………………………………….…. 11. ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN LCR………………………………………………………… 12. IGA SALIVAL……………………………………………………………………………………………….. 13. PLEUROCRITO…………………………………………………………………………………………….. 14. V.D.R.L. EN LCR……………………………………………………………………………………………

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA DE ABCESOS Y SECRECIONES……………………………………………………. 2. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE EXPECTORACION…………………………………………………. 3. CULTIVO CAVIDAD OROFARINGEA……………………………………………………………………. 4. CULTIVO CAVIDADES PARANASALES………………………………………………………………… 5. CULTIVO FLUJO VAGINAL…………………………………………………………………………….…. 6. CULTIVO SECRECION BRONQUIAL……………………………………………………………………. 7. CULTIVO SECRECION CONJUNTIVAL…………………………………………………………………. 8. CULTIVO SECRECION DE HERIDAS PROFUNDAS………………………………………………….. 9. CULTIVO SECRECION DE HERIDAS SUPERFICIALES………………………………………………

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CULTIVO SECRECION ENDOCERVICAL………………………………………………………………. CULTIVO SECRECION FARINGEA…………………………………………………………………….... CULTIVO SECRECION INTRAOCULAR………………………………………………………………… CULTIVO SECRECION NASAL…………………………………………………………………………… CULTIVO SECRECION OTICA………………………………………………………………………….... CULTIVO SECRECION TIMPANOCENTESIS………………………………………………………….. CULTIVO SECRECION URETRAL……………………………………………………………………….. ELECTROLITOS DEL SUDOR……………………………………………………………………………. EXAMEN MICOLOGICO DE SECRECIONES, LIQUIDOS Y TEJIDOS………………………………

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE ASPIRADOS Y LAVADO BRONCOALVEOLAR PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE LAVADO BRONQUIAL…………………………………………….. 105 2. CULTIVO ASPIRADO TRAQUEAL CUANTITATIVO………………………………………………….. 105 3. CULTIVO LAVADO BRONCOALVEOLAR……………………………………………………………… 106 4. TEST RAPIDO ADENOVIRUS RESPIRATORIO………………………………………………………. 106 5. TEST RAPIDO VIRUS INFLUENZA A Y B……………………………………………………………… 107 6. TEST RAPIDO VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO………………………………………………….. 107 7. VIRUS RESPIRATORIO (ADV, INFLUENZA A Y B, PARAINFLUENZA Y SINCICIAL)…………… 108

INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE MATERIAL GENETICO PARA EXAMENES: 1. CITOMEGALOVIRUS, CUANTIFICACION ADN……………………………………………………….. 2. FACTOR V DE LEIDEN (Mutación G1691A)…………………………………………………………… 3. FACTOR II DE LA PROTROMBINA (Mutación G20210A)……………………………………………. 4. VIRUS EPSTEIN BARR, CUANTIFICACION ADN…………………………………………………….. 5. VIRUS HERPES SIMPLEX I y II, DETECCION y GENOTIPIFICACION……………………………. 6. Bordetella pertussis, Detección de ADN………………………………………………………………… 7. Mycoplasma pneumoniae, Detección ADN……………………………………………………………… 8. VIRUS INFLUENZA A Y B, Detección ARN……………………………………………………………..

LOS

INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE MATERIAL BIOLOGICO PARA EXAMENES: 1. ACAROTEST……………………………………………………………………………………………...... 2. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE CONTENIDO GASTRICO…………………………………………. 3. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE BIOPSIAS, MATERIAL RESECADO, ENDOMETRIO, GANGLIO, ETC…………………………………………………………………………………………….. 4. CALCULOS URINARIOS…………………………………………………………………………………. 5. CULTIVO DE BIOPSIA DE TEJIDO U ORGANO……………………………………………………… 6. CULTIVO HERIDA/ULCERA PIE DIABÉTICO…………………………………………………………. 7. CULTIVO RASPADO DE CORNEA……………………………………………………………………… 8. CULTIVO CUANTITATIVO DE TEJIDO QUEMADO………………………………………………… 9. CULTIVO TEJIDO OSEO…………………………………………………………………………………. 10. CULTIVO ULCERA POR PRESION…………………………………………………………………….. 11. DEMODEX………………………………………………………………………………………………….. 12. EXAMEN MICOLOGICO DE PIEL , UÑA Y PELO……………………………………………………..

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE PARASITOS PARA LOS EXAMENES: 1. PARASITOS MICROSCOPICOS…………………………………………………………………………

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INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE DISPOSITIVOS PARA LOS EXAMENES: 1. CULTIVO DE CATETER………………………………………………………………………………….. 121 2. CULTIVO DE DISPOSITIVO……………………………………………………………………………… 121 3. CULTIVO DE PUNTA DE CATETER VENOSOS CENTRAL………………………………………… 122 ROTULACION DE MUESTRAS………………………………………………………………………………….

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TRANSPORTE Y CONSERVACION DE LAS MUESTRAS……………………………………………………

124

RECEPCION DE MUESTRAS…………………………………………………………………………………….

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ENTREGA DE RESULTADOS…………………………………………………………………………………….

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CRITERIOS DE RECHAZOS DE MUESTRAS………………………………………………………………….

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ANEXOS ANEXO 1: INSTRUCCIONES A PACIENTES…………………………………………………………………… ANEXO 2: CARACTERISTICAS MATERIALES DE TOMA DE MUESTRAS……………………………….. ANEXO 3: USO DE LA PAGINA WEB…………………………………………………………………………… ANEXO 4: CARTERA DE SERVICIOS LABORATORIO CLINICO…………………………………………… ANEXO 5: NORMATIVA DE LA INFECCION POR VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA VIH/SIDA………………………………………………………………………………………………… ANEXO 6: FORMULARIO DE CONSENTIMIENTO……………………………………………………………. ANEXO 7: TABLA DE MODIFICACIONES…………………………………………………………………….....

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GENERALIDADES 1. INTRODUCCIÓN El Laboratorio clínico presta servicios de exámenes de laboratorio para confirmar y/o descartar un diagnóstico, monitorear un tratamiento, pesquisar alguna patología o factor de riesgo y colaborar con estudios epidemiológicos y de Salud Pública. Nuestra misión es entregar servicios de alta calidad que permita a los clínicos, contar con resultados confiables y precisos que contribuyan a satisfacer las necesidades de los usuarios y favorecer la promoción, prevención, curación y rehabilitación de la salud de las personas. El Laboratorio clínico del Hospital Guillermo Grant Benavente, recibe muestras para análisis de los servicios clínicos, UCIES, Servicio de Urgencia y Centro de Atención Ambulatoria del propio Hospital, muestras derivadas de Hospitales y CESFAM pertenecientes a la red de establecimientos del Servicio de Salud Concepción y Servicio de Salud Arauco. Además, es centro de referencia suprarregional del país para algunos análisis. El laboratorio clínico cuenta con una amplia cartera de servicios a disposición de todos nuestros usuarios, que incluye exámenes de rutina y de especialidades, como también un sistema de Urgencia que funciona las 24 horas del día. El proceso total de análisis de los exámenes, consta de tres etapas; preanalítica, analítica y postanalítica, todas muy importantes para proporcionar un producto de calidad, confiable y oportuno, por lo que es primordial estandarizar y actualizar los procedimientos, que aseguren la calidad y trazabilidad de los exámenes. Este manual está orientado a descripción de los procedimientos de la fase preanalítica de los exámenes, para la obtención de muestras o especímenes de los pacientes que cumplan con las condiciones técnicas necesarias para su posterior procesamiento, incluyendo una adecuada conservación y transporte de ellas al laboratorio. La organización de este manual permite ser una herramienta práctica de consulta y de apoyo técnico para todo el personal clínico que realiza la extracción de muestras de sangre y/u otros especímenes, incluyendo los requisitos específicos para algunos de ellos. También, es aplicable, al personal que entrega información y/o material para la toma de algunas muestras a nuestros pacientes. El presente manual actualiza y reemplaza al Manual de Toma de muestras año 2009, distribuido por Circular Nº3, del 25 de septiembre de 2009; y fe de erratas distribuida por Circular Nº 4 del 13 de noviembre de 2009.

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2. ORGANIZACIÓN DEL PRESENTE MANUAL Los contenidos del presente manual se han organizado de la siguiente forma: 1.- Procedimientos para la Toma de muestras de exámenes de sangre, orina, Líquidos Biológicos, Deposiciones y otros. 2.- Indicaciones específicas para cada examen clasificadas por orden alfabético según el Tipo de espécimen: sangre, orina, líquidos biológicos, deposiciones, fluidos biológicos, etc. Cada examen posee una ficha técnica con la información necesaria para obtener una buena calidad de las muestras.

Sugerencia para el buen uso del presente manual 1.- Buscar en el índice el examen a realizar, ver página:

2- Ir a página indicada para obtener información de ficha técnica del examen:

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3. OBJETIVOS 3.1. General Brindar un instrumento que establezca los procedimientos y actividades de la fase pre-analítica, de la toma, manejo y transporte de muestras y/o especímenes clínicos de pacientes adultos y niños, que den garantías de calidad a las muestras recepcionadas en el laboratorio clínico, para su óptimo procesamiento y resultados.

3.2. Específicos 3.2.1. Estandarizar los procedimientos de la fase pre-analítica, tales como: la solicitud de exámenes, la toma de muestras, instrucciones al paciente, transporte y conservación de las muestras, de manera que permitan garantizar un resultado de calidad y oportuno. 3.2.2. Contribuir a la seguridad del paciente y de las personas involucradas en los procesos de toma, manejo y transporte de muestras.

4. ALCANCE Y CAMPO DE APLICACIÓN El alcance del presente manual, corresponde a la etapa pre-analítica de los exámenes que se realizan en el Laboratorio Clínico del Hospital Guillermo Grant Benavente (HGGB). Está dirigido a los funcionarios que solicitan, toman muestras, entregan instrucciones y transportan muestras desde los servicios clínicos de pacientes hospitalizados, de pacientes ambulatorios provenientes del CAA y del servicio de Urgencia del Hospital Guillermo Grant Benavente, como también, desde establecimientos externos que envían muestras para su análisis en el Laboratorio Clínico del HGGB. Además, esta dirigido al personal del laboratorio que toma y recepciona muestras.

5. REFERENCIAS NORMATIVAS 5.1. Decreto N° 433/2012. Reglamento de Laboratorio s Clínicos y Unidades de Toma de muestras. 5.2. NCh 2547. Of 2003. INN Chile. Laboratorios clínicos. Requisitos particulares para la calidad y la competencia. 5.3. Normas Técnico-Administrativas de Laboratorios Clínicos. División de Salud de las Personas. Minsal 1998. 5.4. Norma técnica nº3. Precauciones para la prevención de infecciones cruzadas (Precauciones estándar y adicionales). Equipo de Prevención y Control IAAS. 2010. 5.5. Ley Nº 19937 del 24/02/2004 Ley de Autoridad Sanitaria y Gestión. 5.6. Ley N°19966 Régimen de Garantías en Salud (AUG E). 5.7. Ley Orgánica Minsal. DFL 1/2005, Art.4° Nº 11 : Estándares de calidad, Nº 12: Sistema de Acreditación. 5.8. DS Nº 15/2007 Minsal Reglamento del Sistema de Acreditación de Prestadores Institucionales de Salud. 5.9. DS Nº 18/2009 Minsal .Aprueba los Estándares Generales de Acreditación para Prestadores institucionales de Salud; Atención cerrada y Atención abierta 5.10. Manual de Bioseguridad Laboratorio Clínico HGGB. 5.11. Murray PR, Baron EJ, Pfaller MA Tenover FC, Yoken RH. Specimen Collection, Transport, and Storage. En: Manual of Clinical Microbiology 7th ed. American Society of Microbiology, Washington DC 1999; 4: 33-63. 5.12. Procedimientos y Técnicas de Laboratorio. ISP. Chile. 5.13. Normas para el óptimo desarrollo de programas de búsqueda masiva de fenilquetonuria (PKU) e hipotiroidismo congénito (HC) y otros errores innatos del metabolismo (EIM). Ministerio de Salud de Chile. Segunda edición. 2007. 5.14. Clinical Laboratory Standards Institute (NCCLS), USA.RBP- EIA: Collecting, processing and handling venous, capillary and blood spot samples. June 2005. PATH a catalyst for global health.

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6.

MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS

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TERMINOS Y DEFINICIONES

6.1. 6.2. 6.3. 6.4. 6.5. 6.6. 6.7. 6.8. 6.9. 6.10. 6.11. 6.12. 6.13. 6.14. 6.15. 6.16. 6.17. 6.18. 6.19.

Ayuno estricto: No ingerir alimentos ni agua, al menos por 8 horas previo al examen. Ayuno relativo: No ingerir alimentos ni agua, al menos 3 a 4 horas previo al examen. CAA: Centro de Atención Ambulatoria Concentración nivel máximo o peak: Concentración máxima de la droga que se alcanza durante un intervalo de dosificación. Concentración nivel mínimo o valle: Concentración mínima de la droga que se alcanza durante un intervalo de dosificación, antes de la administración de la dosis siguiente. Estado estacionario: Equilibrio alcanzado durante una dosificación crónica, de modo que la cantidad de fármaco administrado se iguala a la cantidad eliminada. Examen: conjunto de operaciones que tienen por objeto determinar el valor o característica de una propiedad. HGGB: Hospital Guillermo Grant Benavente. ISP: Instituto de Salud Pública de Chile. LBA: Lavado bronco alveolar. LCR: Líquido cefalorraquídeo. Muestra: Parte representativa de distintos especímenes biológicos destinados a entregar información sobre el sistema biológico, tales como; sangre, orina, líquidos biológicos. Muestra primaria (espécimen): Recolección de una o más partes tomadas inicialmente desde un sistema. Paciente: Todas aquellas personas a las que se les ha solicitado una o varias pruebas analíticas. Según procedencia: Hospitalizados, Ambulatorios, establecimientos externos. PCR: Reacción en Cadena de la Polimerasa. PKU: Fenilcetonuria. Solicitud de examen: Documento normalizado que emite el profesional solicitante y es remitido al laboratorio para la realización de los exámenes. V.D.R.L: Venereal Disease Research Laboratory. Vida media de eliminación: Tiempo necesario para que la concentración de un fármaco disminuya a la mitad.

7. RESPONSABLES DE SU APLICACIÓN 7.1. Profesionales que solicitan exámenes. 7.2. Personal que efectúa toma de muestras. 7.3. Personal que entrega información y/o material al paciente. 7.4. Personal que transporta las muestras. 7.5. Personal que recibe las muestras en el Laboratorio Clínico. 7.6. Personal que procesa las muestras en el Laboratorio Clínico.

8. RESPONSABLES DE LA SUPERVISION 8.1. Jefes de Servicios Clínicos del HGGB. 8.2. Enfermeras Supervisoras de los Servicios Clínicos del HGGB. 8.3. Encargados de las Unidades de Toma de Muestras del HGGB y de los establecimientos de la red. 8.4. Encargados de secciones y de calidad del Laboratorio. 8.5. Jefe Laboratorio Clínico del HGGB.

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9.

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DISTRIBUCIÓN

9.1.

Jefes de Servicios Clínicos y enfermeras supervisoras del HGGB; UCI Adulto, UCI Cardioquirúrgica, UCI Quirúrgica, UCI Pediatría, UCI Neonatología, Unidad Quemados, Medicina Adulto, Neurología, Diálisis, Cirugía, Neurocirugía, Urología, Pensionado, Pensionado, Obstetricia, Cirugía Infantil y Plastía, Neonatología, Medicina Niños, Máxilo Facial, Lactantes, Ginecología/Obstetricia, Pabellón, Oftalmología, Oncología, Otorrinolaringología, Psiquiatría, Traumatología. 9.2. Director de establecimientos externos de la red y/o en convenio. 9.3. Encargada de Unidad de Toma de Muestras del Laboratorio clínico y Encargada de Subunidad de Toma de muestras del Centro de Atención Integral de Salud Sexual (CAISS) del HGGB. 9.4. Encargado de Recepción del Laboratorio Clínico HGGB. 9.5. Encargados secciones del laboratorio clínico: Hematología, Química clínica e inmunoanálisis, Serología de Sífilis, Biología Molecular, Inmunología, Técnicas especiales, Microbiología, Tuberculosis, Urgencias y Laboratorio de referencia Programa HC-PKU. 9.6. Jefe Unidad de Laboratorio Clínico. 9.7. Unidad de Calidad del HGGB. 9.8. Subdirector Médico HGGB y CAA. 9.9. Subdirector Gestión del Cuidado del HGGB. 9.10. Jefes de Centros de responsabilidad: Medicina de Adulto, Quirúrgico, Diagnóstico Terapéutico, Urgencia y Paciente Crítico, Materno infantil, Cardioquirúrgico y Psiquiatría y Salud mental del HGGB.

10. REGISTROS ASOCIADOS 10.1. Registros de recepción y de ejecución de los exámenes en sistema informático. 10.2. Registros de la procedencia y tipo de exámenes en sistema informático. 10.3. Registros de rechazos de muestras en sistema informático.

11. BIOSEGURIDAD Todas las muestras de fluidos biológicos se consideran potencialmente contaminadas. El personal que manipula las muestras, debe cumplir con las normas establecidas en el Manual de Bioseguridad del Laboratorio clínico (APL-MB-02-02).

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GENERALIDADES DE LA TOMA DE MUESTRA 1. FORMULARIOS DE SOLICITUD El laboratorio cuenta con solicitudes u órdenes de exámenes impresos, donde el profesional autorizado debe llenar los datos solicitados en el formulario indicado. Además, el laboratorio dispone de los siguientes formularios especiales: 1.1. Formulario solicitud examen VIH. 1.2. Formulario consentimiento informado para examen VIH. 1.3. Formulario solicitud exámenes Virus respiratorios. 1.4. Formulario solicitud examen V.D.R.L. y Planilla Informe V.D.R.L. 1.5. Formulario solicitud de investigación bacteriológica de la tuberculosis. 1.6. Formulario solicitud exámenes de Biología Molecular. 1.7. Formulario General del ISP para estudios parasitológicos: Serología para Hidatidosis. Se encuentra disponible en la página Web del ISP www.ispch.cl/documento/13913(*). 1.8. Formulario para casos sospechosos de infección por Hanta Virus. Se encuentra disponible en la página Web del Ministerio de Salud www.epi.minsal.cl(*). (*): Estos exámenes se realizan en el Laboratorio clínico del HGGB, pero requieren de un formulario proporcionado por el ISP.

2. REQUISITOS DE LA SOLICITUD DE EXAMEN. La solicitud de exámenes autorizada por profesional médico debe completarse con los siguientes datos: 2.1. 2.2. 2.3. 2.4. 2.5. 2.6. 2.7. 2.8. 2.9. 2.10. 2.11. 2.12. 2.13.

Nombres y apellidos del paciente. RUT del paciente Edad del paciente. Fecha de Nacimiento. N° ficha clínica. Procedencia: servicio clínico, consultorio, hospital., etc. Membrete o timbre del servicio o establecimiento solicitante. Diagnóstico. Tratamiento. Exámenes solicitados. Tipo de muestra y sitio anatómico de origen (cuando corresponda). Nombre y firma del profesional solicitante (código cuando corresponda). Antecedentes del paciente relacionados con tratamientos en curso: Nombre, Dosis y Hora última dosis del medicamento para estudios de niveles plasmáticos de drogas, fracción inspirada de oxígeno (Fi02), temperatura (gases en sangre), tratamientos anticoagulante(s) y/o antibióticos.

NOTA: Es importante que el profesional que solicita los exámenes, llene los formularios de solicitud con letra clara y legible (de preferencia letra imprenta), para evitar el rechazo de las muestras.

3. PERSONAL AUTORIZADO PARA SOLICITAR EXAMENES En el nivel secundario y terciario de salud, los exámenes de laboratorio serán solicitados por profesionales médicos cirujanos y odontólogos. En condiciones especiales, la Dirección del establecimiento podrá autorizar a otro profesional para extender la solicitud de examen (matrona, enfermera).

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4.

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MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS El material para la Toma de Muestras se entrega a los usuarios internos y externos, de acuerdo al programa y calendario establecido por el Laboratorio Clínico. Es obligatorio registrar la cantidad de material solicitado y el servicio o Unidad solicitante. 4.1. CALENDARIO ENTREGA DE MATERIAL 4.1.1. Lugar: Laboratorio Clínico, 3º Piso CAA. 4.1.2. Fecha: Primera semana del mes. 4.1.3. Horario: Lunes a Viernes 08:00 – 09:00 Hrs 15:30 – 17:00 Hrs 4.1.4. Servicios: Hospitalizados, Urgencia, Consultorios, Hospitales externos y Unidad de Toma de muestra del Laboratorio. 4.1.5. Materiales: Tubos al vacío, Frascos estériles y no estériles, Agujas múltiples, Jeringa para gases, Kit para aspirados, materiales para la extracción al vacío, Materiales para exámenes microbiológicos.

5. ATENCIÓN EN LAS SALAS DE EXTRACCION PARA PACIENTES AMBULATORIOS DEL CAA 5.1. El paciente debe presentar su carné de identidad y la solicitud de examen en el mesón de atención del subterráneo del CAA. Deberá esperar su turno anunciado por altoparlante y dirigirse a la sala de extracción. 5.2. El funcionario que realiza la extracción deberá: 5.2.1. Recepcionar la orden médica y generar las etiquetas de código de barra. 5.2.2. Preparar el material a utilizar de acuerdo a los exámenes solicitados. 5.2.3. Solicitar al paciente el carné de identidad y verificar los datos con la solicitud de exámenes. 5.2.4. Constatar que el paciente está preparado para tomarse el examen, anímicamente y biológicamente (administración de medicamentos, ayuno, régimen y hora de toma de muestra). 5.2.5. Registrar en la solicitud de examen si el paciente está con tratamiento anticoagulante o ingiere otros medicamentos. 5.2.6. Informar al paciente el procedimiento a realizar y solicitar su consentimiento verbal. 5.2.7. Realizar la toma de muestra utilizando la técnica de extracción por vacío. 5.2.8. Una vez finalizada la extracción, verificar que el lugar de la punción ha dejado de sangrar. 5.2.9. Despedir al paciente sólo si está en condiciones de salir caminando, especialmente si es un paciente que acude a la toma de muestra sin acompañante.

6. ATENCION EN LAS SALAS DE LOS SERVICIOS PARA PACIENTES HOSPITALIZADOS El funcionario que realiza la extracción deberá: 6.1. Comparar la solicitud entregada por el clínico con toda la información requerida (Nombre completo Rut, número de sala, número de cama, ficha clínica y diagnóstico). 6.2. Verificar que la solicitud de exámenes tenga letra clara y legible. 6.3. Corroborar el nombre del paciente. Solicitar que diga su nombre completo y si es poco frecuente que lo deletree. Si el paciente no puede contestar, preguntar a familiares. 6.4. No alterar la solicitud de exámenes sin autorización del médico para evitar rechazo de las muestras. 7. UNIDADES DE TOMA DE MUESTRAS 7.1. Salas de Hospitalizados de los servicios del HGGB. 7.2. Servicios de Urgencia del HGGB. 7.3. Unidad de Toma de Muestras Pediátricas y Adultos del Laboratorio clínico del HGGB. 7.4. Subunidad de Toma de muestras del Centro de Atención Integral de Salud Sexual (CAISS) del HGGB, 7.5. Unidades de toma de muestras de Consultorios y establecimientos externos para pacientes adultos y pediátricos.

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PROCEDIMIENTOS PARA LA TOMA DE MUESTRAS 1. GENERALIDADES 1.1. El personal que manipula muestras o fluidos corporales, deberá cumplir con las precauciones universales establecidas en el Manual de Bioseguridad del Laboratorio clínico (APL-MB 02-02) 1.2. La obtención de líquidos estériles (líquido sinovial, pleural o LCR) por aspiración con aguja percutánea debe ser precedida siempre por la cuidadosa descontaminación de la piel. 1.3. En algunas ocasiones, los pacientes deben participar activamente en la toma de muestra, como en el caso de la obtención de un esputo. Para ello, proporcionar al paciente instrucciones completas y detalladas (ver ANEXO 1 instructivos para pacientes) y tratar de estimular su cooperación. 1.4. Las muestras microbiológicas deben ser tomadas con volumen suficiente para permitir un análisis completo y deben ser puestas en recipientes estériles para evitar riesgos para quienes manipulan las muestras. 1.5. Evitar la contaminación de la superficie externa del material de toma de muestra con sangre, exudados o heces, por la posibilidad de riesgo biológico en su contacto. 1.6. Las muestras para gonococo deben ser inoculadas directamente en medios selectivos provistos por el laboratorio (placas de Thayer-Martin) y transportarlos inmediatamente al Laboratorio.

2.

TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA

Las muestras de sangre son utilizadas como apoyo diagnóstico, control de tratamiento de diversas enfermedades y detección de enfermedades metabólicas y sistémicas. Los métodos y horarios de recogida de las muestras dependen de las pruebas solicitadas por el médico.

TÉCNICA DE EXTRACCIÓN POR VACÍO (Técnica normada por el laboratorio) 2.1. Descripción Material de extracción por vacío Esta técnica permite la extracción de sangre directamente de la vena al tubo, sin manipulación de ella. Se compone de una aguja biselada por los dos extremos, que se adapta a un soporte especial. La aguja, está compuesta de dos partes, la más larga se utiliza para la flebotomía, y la más corta cubierta con teflón, se utiliza para pinchar el tubo colector (o de extracción), que se introduce en el porta tubo o camisa una vez canalizada la vena.

El volumen de llenado de cada tubo dependerá de su tamaño y de la intensidad del vacío de su interior, esto garantiza una proporción entre el volumen de sangre recogida y el anticoagulante de su interior. El tubo de extracción está al vacío, por lo que al atravesar su tapón con la aguja corta se llena automáticamente de sangre El sistema de vacío se complementa con un adaptador luer que permite la extracción desde un catéter.

Aguja de punción

Aguja con teflón

Figura 1: Componentes Aguja biselada.

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AGUJA BISELADA

PORTA TUBO

TUBO AL VACIO

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Montaje del sistema de extracción al vacío

Figura 2: Sistema BD Vacutainer de toma de muestra múltiple.

2.2. Procedimiento extracción por vacío 2.2.1. 2.2.2. 2.2.3. 2.2.4. 2.2.5. 2.2.6. 2.2.7.

2.2.8.

2.2.9. 2.2.10.

2.2.11. 2.2.12. 2.2.13.

Realizar el lavado de manos. Utilizar guantes y pechera plástica. Solicitar al paciente la cédula de identidad y verificar los datos del paciente con los indicados en solicitud de exámenes. Preparar el material a utilizar de acuerdo a los exámenes solicitados. Ligar al paciente y buscar la vena por palpación. Limpiar la zona con un algodón con Etanol al 70%, con movimientos en espiral desde adentro hacia fuera. Colocar la aguja en el portatubo enroscándola por el centro, manteniendo tapada la aguja de punción. Es importante asegurar la correcta colocación de la aguja en el porta tubo, ya que puede desmontarse con la presión ejercida por el vacío del tubo. Luego de puncionar la vena y cuando la sangre deja de fluir, retirar el tubo y mezclar con movimientos suaves. Sucesivamente introducir los tubos que se precisen respetando el orden de llenado y mezclando suavemente para evitar que la muestra se coagule o se hemolice. Desligar antes de retirar la aguja. Retirar el porta tubo de la vena y realizar compresión con tórula de algodón. Si el paciente se encuentra con tratamiento con anticoagulantes, comprimir la zona de punción durante 10 minutos. Si el paciente ingiere ácido acetilsalicílico (aspirina), comprimir la zona de punción durante 5 minutos. Una vez que ha dejado de sangrar poner un parche. Desechar la aguja en un contenedor para la eliminación del material cortopunzante con la mínima manipulación evitando recapsular la aguja. Rotular las muestras indicando el nombre y los dos apellidos del paciente. Ordenar muestras en gradilla para su traslado

No tomar en vena donde se está pasando medicamentos o soluciones terapéuticas. No envolver las muestras con las órdenes de solicitud

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2.3.

MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS

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ETAPAS DE LA TOMA DE MUESTRAS

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Verificar los datos del paciente. Ligar el brazo del paciente. Buscar la vena apropiada para la extracción. Limpiar la zona. Puncionar sosteniendo la unidad completa (portatubos y aguja) entre el dedo índice y el pulgar de la mano derecha.

Cambiar la posición de las manos tan pronto como la aguja este en la vena

Colocar Tubo Situando los dedos índice y medio en las aletas del portatubos mientras se presiona para introducir el tubo dentro del portatubos con el pulgar de la mano derecha

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Esperar el llenado completo y retirar el tubo con la mano derecha apoyando el pulgar sobre una de las aletas del portatubos. Si se requieren más muestras de sangre inserte otro tubo repitiendo el procedimiento.

Soltar ligadura. Homogenizar el tubo muy suavemente. Inviértalo varias veces para asegurar la mezcla de la sangre con el anticoagulante. Retirar aguja y colocar parche

Para reutilizar la camisa, presione el mango de la aguja en el recipiente para desechos (contiene una ranura especial para ello) y gire el portatubos hacia la derecha hasta desechar solo la aguja.

Nota: Si la sangre no fluye en el tubo, girar ligeramente la aguja para descartar que esté ocluida por la pared interna de la vena. Si la sangre sigue sin fluir, posiblemente no se haya encontrado la vena en la punción. Antes de retirar la aguja saque el tubo para preservar el vacío para una utilización posterior. Recomenzar desde el inicio.

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2.4.

MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS

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NORMAS BÁSICAS PARA EL LLENADO DE TUBOS AL VACIO 2.4.1.

NUNCA destapar los tubos al vacío, ya que al volverlos a cerrar se produce un exceso de presión dentro del mismo (la sangre más el vacío) y esto hace que el tapón salte y se derrame la muestra. 2.4.2. Respetar siempre la proporción sangre- anticoagulante. 2.4.3. Dejar resbalar la sangre por la cara interna del tubo, ya que si cae directamente al fondo puede producir espuma con ruptura de hematíes (Hemólisis). 2.4.4. Una vez lleno el tubo, invertir suavemente varias veces (6-8 veces) para mezclarlo y homogeneizarlo con la muestra. (5.14) 2.4.5. Respetar el tiempo de llenado según normativa . El orden de extracción y llenado de los tubos es: a) Frascos de Hemocultivos. b) Tubos de coagulación (tapa celeste). c) Tubos sin aditivos (tapa amarilla/tapa roja) d) Tubos con otros aditivos; Heparina de Litio (tapa verde) e) Tubos de hemograma (tapa Lila) f) Tubos con otros aditivos; Oxalato y fluoruro de sodio (tapa gris) g) Tubos de VHS (tapa negra). Si no se requiere realizar hemocultivo, el orden es el siguiente:

TAPA CELESTE CITRATO DE SODIO TAPA AMARILLA/ TAPA ROJA SIN ANTICOAGULANTE TAPA VERDE HEPARINA DE LITIO TAPA LILA EDTA TAPA GRIS FLUORURO DE SODIO TAPA NEGRA TUBO ESPECIAL PARA VHS

2.2.6. 2.2.7.

El examen de AMONIO, en caso de ser solicitado, debe ser tomado antes de los otros exámenes. Depositar y ordenar los tubos en las gradillas en forma vertical.

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2.5. TOMA DE MUESTRAS DE HEMOCULTIVO 2.5.1. La toma de muestra debe ser efectuada por personal profesional capacitado, con ayudante, siguiendo estrictamente la técnica aséptica. 2.5.2. Rotular frasco de hemocultivo con los datos demográficos del paciente, temperatura corporal, sala, cama, hora y forma de obtención de muestra (punción periférica) evitando escribir sobre el código de barras. 2.5.3. Lavar la zona a puncionar con agua jabonosa. Enjuagar con abundante agua. Secar con tórula de algodón. 2.5.4. Ligar brazo del paciente. 2.5.5. Utilizando guantes estériles, realizar la desinfección de la zona a puncionar. Ayudado de algodón empapado con solución antiséptica. Limpiar la zona elegida realizando un espiral desde el centro hasta la periferia. Se debe esperar los tiempos de secado del antiséptico. 2.5.6. Extraer, por punción venosa, la cantidad necesaria a depositar en el frasco de hemocultivo. Desligar el brazo del paciente. 2.5.7. Luego de extraer la aguja, presionar sitio de punción con un algodón limpio y seco. 2.5.8. Cambiar la aguja de la jeringa. 2.5.9. Abrir el sello del frasco de hemocultivo y desinfectar el tapón de goma para luego introducir el volumen de muestra necesario al frasco por punción. NUNCA sacar tapón de goma. 2.5.10. Si se desea tomar más de una muestra se debe esperar mínimo 30 minutos para puncionar el mismo sitio, o bien se puede obtener al mismo tiempo de ambos brazos.

2.6.

FORMA DE EVITAR LA APARICIÓN DE HEMATOMAS DURANTE LA PUNCIÓN VENOSA 2.6.1. Pinchar solamente la pared superior de la vena. 2.6.2. Quitar la ligadura antes que la aguja. 2.6.3. Usar venas grandes. 2.6.4. Aplicar leve presión en el lugar de la punción durante algunos minutos.

2.7.

RECOMENDACIONES GENERALES 2.7.1. Siempre utilizar sistema al vacío. En casos de pacientes con dificultad para puncionarlos utilizar el sistema tradicional (jeringa con aguja o mariposa). 2.7.2. Si fracasa en la punción debe intentarlo en la otra extremidad “NUNCA INTENTAR DOS VECES EN LA MISMA VENA O EN LA MISMA EXTREMIDAD”

3. TOMA DE MUESTRAS DE ORINA Las muestras de orina son utilizadas como apoyo diagnóstico y control en el tratamiento de las enfermedades del riñón o del tracto urinario y en la detección de enfermedades metabólicas y sistémicas. Los métodos y horarios de recogida de las mismas dependen de las pruebas solicitadas por el médico.

3.1. ORINA RECIENTE O DE UNA SOLA MICCIÓN Utilizada normalmente en el uroanálisis de rutina (fisicoquímico y sedimento). Es la orina recogida al azar en un recipiente estéril. Se recomienda que la muestra sea de la primera micción del día, segundo chorro, porque refleja con más exactitud la concentración de la orina, aunque no son esenciales ni la hora de recogida ni el volumen de la micción.

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3.2. ORINA DE SEGUNDO CHORRO Preferir la primera orina de la mañana, por ser de mayor concentración o retención mínima de 3-4 horas. Realizar aseo genital prolijo con abundante agua y sin secar. Si la paciente es mujer, se debe extremar medidas de cuidado para no contaminar la muestra con secreción vaginal. De ser necesario usar un tampón de algodón. Eliminar el primer chorro. Recoger el segundo chorro de orina directamente en frasco de boca ancha estéril. Tapar el frasco.

3.3. ORINA DE 24 HORAS Es la orina excretada durante todo un día y se usa para las determinaciones cuantitativas de algunos analitos presentes en este medio. 3.3.1.

3.3.2. a) b) c) d) e)

Si el paciente es ambulatorio, es fundamental explicarle el procedimiento de forma clara y precisa verbalmente y por escrito para que pueda realizar la toma de muestra correctamente. (Ver ANEXO 1 instrucciones al paciente). Si el paciente está hospitalizado y no puede recoger el mismo la muestra es importante colocar un letrero en la cama para que todo el personal sepa que se está realizando el examen. Realizar la recogida de la orina en un contenedor limpio (de boca ancha de 2000 a 3000 ml. de capacidad mínima). El período de recolección comienza a las 8 de la mañana. Eliminar la primera orina. Continuar recogiendo la orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente. Homogeneizar el volumen recogido, medir y enviar al laboratorio, un frasco que contenga aproximadamente 30ml. Anotar las diuresis total en la orden de examen y recipiente. Si por alguna razón pierde orina durante la recolección o recolecta más de 24 horas, debe comenzar de nuevo al día siguiente, ya que el resultado obtenido no sería válido.

3.4. ORINA VESICAL Es la orina obtenida por punción suprapúbica o por citoscopia.

3.5. ORINA DE SONDA DE FOLEY La orina obtenida de una sonda vesical desde de la propia vejiga urinaria. Tomando las medidas de asepsia correspondientes, recoger la orina en frasco estéril y evitar que la sonda toque el interior o los bordes del frasco. NUNCA recoger orina en bolsa de recolección.

3.6. ORINA CON RECOLECTOR Muestra adecuada en pacientes que no controlan esfínter (recién nacido y lactante). La muestra debe ser tomada con un recolector dependiendo si es niña o niño. 3.6.1. Niña: a) El personal que toma la muestra debe lavarse las manos con agua y jabón. Enjuagar y secar. b) Separar suavemente con una mano la zona genital externa (vulva) durante todo el procedimiento de limpieza. c) Lavar, solamente el área por la cual pasa la orina d) Enjuagar con abundante agua tibia (jarro) y luego secar. e) Colocar el recolector desde la horquilla hacia arriba sobre los labios mayores, presionándolo por los bordes para que se adhiera a la piel. f) El recolector debe permanecer adherido como máximo 45 minutos. Si tras ese tiempo, la

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paciente no ha orinado, cambiar el recolector e instalar uno nuevo siguiendo el mismo procedimiento anterior. Utilizar como máximo dos recolectores. Evaluar la posibilidad de utilizar un tercer recolector de acuerdo a las características locales del paciente. g) Una vez que la paciente ha orinado, retirar, sellar y colocar el recolector en frasco de boca ancha, etiquetado con nombre del paciente. Sellar bien el envase. h) El tiempo de transporte no debe exceder los 30 minutos, de no ser así, refrigerar la muestra entre 2 y 8 °C no excediendo de una hora. i) No transportar la muestra de orina en el mismo contenedor de las muestras de sangre. j) Si la muestra está refrigerada, transportarla en contenedor con unidades refrigerantes. 3.6.2. Niño: a) El personal que toma la muestra debe lavar sus manos con agua y jabón. Enjuagar y secar. b) Lavar, solamente el área por la cual pasa la orina. Limpiar los genitales con agua y jabón retrayendo suavemente el prepucio. c) Enjuagar con abundante agua tibia. d) Colocar el recolector dejando solo el pene en su interior, presionando los bordes para que se adhiera a la piel. e) El recolector debe permanecer adherido como máximo 45 minutos. Si tras ese tiempo el paciente no ha orinado, cambiar el recolector e instalar uno nuevo. Utilizar como máximo dos recolectores. Evaluar la posibilidad de utilizar un tercer colector de acuerdo a las características locales del paciente. f) Una vez que el paciente ha orinado, retirar, sellar y colocar el recolector en frasco de boca ancha, etiquetarlo con nombre del paciente y fecha. g) Sellar bien el envase. h) El tiempo de transporte no debe exceder los 30 minutos, de no ser así, refrigerar la muestra entre 2 y 8 °C no excediendo de una hora. i) Si la muestra está refrigerada, transportar en contenedor con unidades refrigerantes.

3.7. TRASPASO DE MUESTRAS DE ORINA DESDE FRASCO A TUBOS AL VACIO 3.7.1. Una vez obtenida la orina, tapar el frasco. 3.7.2. Levantar el sello amarillo de la tapa del frasco. 3.7.3. Limpiar con una mota de algodón con alcohol al 70 % la tapa de goma de los tubos que serán ocupados en el traspaso. 3.7.4. Insertar el tubo con la tapa hacia abajo, presionar para que la orina fluya dentro del tubo, hasta alcanzar el nivel óptimo. 3.7.5. Invertir el tubo varias veces para homogenizar la muestra con el aditivo. 3.7.6. Llenar la cantidad de tubos necesarios de acuerdo a los exámenes solicitados: Tubo sedimento urinario, Tubo Urocultivo, Tubo para Química de orina (El orden de los tubos no es relevante). 3.7.7. Rotular los tubos y enviar al laboratorio junto con la orden médica.

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3.8. TUBOS PARA MUESTRAS DE ORINA ORINA COMPLETA

UROCULTIVO

Tubo cónico tapa rojo con amarillo (8ml)

Tubo tapa goma Gris (4 ml)

Examenes: • Análisis Fisicoquímico de orina • Sedimento urinario

Exámenes: • Cultivo de orina • Identificación bacteriana y recuento • Antibiograma

QUIMICA DE ORINA CUANTITATIVA Tubo tapa blanca sin aditivos (6 ml) Exámenes: • Creatinina • Amilasa • Urea • Glucosa • Proteínas • Microalbuminuria • Calcio • Acido úrico • Electrolitos (Na, Cl, K) • Electroforesis de proteínas orina* • Inmunofijación en orina*

Las muestras de orina deben ser traspasadas al tubo correspondiente, dependiendo de los exámenes solicitados. (*): Estos exámenes requieren un tubo exclusivo. Si la solicitud indica sólo electroforésis y/o inmunofijación de proteínas en orina, tomar 2 tubos tapa blanca; uno para análisis de proteinuria y otro para realizar la electroforésis y/o la inmunofijación.

3.9. ESQUEMA PARA EL CORRECTO USO DEL SISTEMA DE RECOLECCION DE ORINA

1

2

Una vez obtenida la orina, tapar el frasco.

Sacar el sello amarillo e insertar la tapa de goma del tubo en el frasco.

3

Invertir el tuvo varias veces para homogenizar con el aditivo

4

Rotular el tubo.

NOTA: El volumen mínimo de orina requerido para realizar los traspasos es de 20 ml.

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4. TOMA DE MUESTRAS DE LIQUIDOS BIOLOGICOS La toma de muestra de líquidos biológicos es realizada por profesional médico en procedimientos quirúrgicos. Los líquidos biológicos más comúnmente analizados son líquido cefalorraquídeo, Pleural, Ascítico, Sinovial, Peritoneal, Pericárdico y otros. 4.1. TOMA DE MUESTRA DE LCR 4.1.1. Explicar el procedimiento al paciente. 4.1.2. Realizar el lavado de manos. 4.1.3. Solicitar al paciente que adopte posición fetal. 4.1.4. Preparar piel según norma para procedimientos invasivos, a la altura de la columna dorso lumbar. 4.1.5. Pincelar con alcohol yodado o povidona yodada en zona a puncionar y esperar que el antiséptico se seque en la piel. 4.1.6. Lavar las manos con técnica quirúrgica (Médico). 4.1.7. Presentar al médico guantes estériles y equipo de ropa n°3 para preparación de campo estéril. 4.1.8. Presentar la ampolla de lidocaína al 2 % y la jeringa de 5 cc para anestesiar el sitio elegido para la punción. 4.1.9. Presentar el Trocar de punción lumbar al médico para introducir en sitio elegido, extraer el mandril del trocar y observar la salida de LCR. 4.1.10. Presentar los tubos estériles envueltos en gasa estéril para la recolección de la muestra. Obtener 3 muestras: Citoquímico: 1 Tubo Lila y 1 Tubo sin aditivos. Cultivo: 1 Tubo sin aditivos. Si además se solicitan exámenes de Biología Molecular o Electroforesis de Proteínas en LCR, no se requieren muestras adicionales (Ver ficha de cada examen solicitado). 4.1.11. Retira el trocar y sellar el sitio de punción con una gasa estéril. 4.1.12. Dejar al paciente en decúbito dorsal, según indicación. 4.1.13. Retirar el equipo y eliminar material cortopunzante. 4.1.14. Realizar el lavado de manos 4.1.15. Enviar las muestras al laboratorio.

5. TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES 5.1. MUESTRAS TOMADAS CON MEDIO DE TRANSPORTE 5.1.1. Toma de muestra en Recién Nacidos, Lactantes y pacientes postrados a) Humedecer la tórula en medio de transporte Cary Blair b) Introducirla 2 cm en el recto con movimiento circular c) Retirar y colocar la tórula con la muestra en el tubo con medio de transporte Cary Blair d) Enviar la tórula al Laboratorio Clínico. e) No tomar la muestra del pañal 5.1.2. Toma de muestras en niños y adultos a) La deposición debe ser emitida en un recipiente limpio y seco b) Con tórula con medio de transporte Cary Blair, tomar la muestra recién emitida directamente de la deposición cuidando de no mezclarla con orina c) Colocar la tórula con la muestra en el tubo con medio de transporte d) Enviar al Laboratorio Clínico.

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5.2. MUESTRAS DE DEPOSICION EN FRASCOS CON TORULA ESTERIL 5.2.1. Toma de muestra a recién nacidos y Lactantes a) En pacientes con pañal, frotar la tórula de madera, humedecida en el buffer, contra la zona del pañal donde se visualiza la muestra. b) Dejar caer la tórula dentro del frasco con buffer PBS c) Cortar el extremo distal de la tórula. d) Enviar inmediatamente al Laboratorio Clínico. 5.2.2. Toma de muestra en niños y adultos 3. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco evitando el contacto con orina y agua. 4. Tomar una pequeña cantidad de muestra con la paleta y depositarla en el frasco. 5. En caso de deposiciones líquidas se debe tomar la muestra en frasco con buffer PBS ayudado de tórulas estériles. 6. Enviar inmediatamente al Laboratorio Clínico.

6. TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES 6.1. Toma de muestras de flujo vaginal 6.1.1. Realizar el lavado de manos. 6.1.2. Poner al paciente en posición ginecológica. 6.1.3. Utilizando guantes, introducir el espéculo lubricado con suero fisiológico. 6.1.4. Introducir la tórula presionando y rotándola contra la pared vaginal impregnándola con el flujo. 6.1.5. Introducir la tórula en el medio de transporte Stuart o Amies. 6.1.6. Retirar el espéculo. 6.1.7. Eliminar los guantes. Realizar el lavado de manos. 6.1.8. En el caso de niñas prepuberales, tomar la muestra desde los labios menores con tórula humedecida con suero fisiológico estéril. 6.2. Toma de muestra de Aspirado nasofaríngeo (ANF) 6.2.1. Realizar el lavado de manos. 6.2.2. Utilizando guantes, romper el sobre que contiene el kit de aspiración y conectar el final del tubo con diámetro menor a una sonda de alimentación estéril. 6.2.3. Conectar el otro extremo de diámetro mayor a la bomba de vacío. 6.2.4. Medir con la sonda de diámetro menor desde la aleta de la fosa nasal hasta el lóbulo de la oreja, medida que se introducirá en la fosa nasal del paciente. 6.2.5. Insertar la sonda de alimentación por la fosa nasal del paciente. 6.2.6. Retirar la sonda, girando suavemente, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. Aspirar un volumen aproximado de 8 - 10 ml de solución tampón pH 7.2 frío a través del tubo colector para arrastrar toda la secreción de la sonda. 6.2.7. Cambiar la tapa del tubo colector, identificar con los datos del paciente. 6.3. Toma de muestra de Torulado Nasofaríngeo (TNF) 6.3.1. Realizar el lavado de manos. 6.3.2. Utilizando guantes, introducir la tórula de dacrón estéril en la fosa nasal y una segunda por boca hasta alcanzar la nasofaringe tratando de obtener la máxima cantidad posible de secreción y células epiteliales. 6.3.3. Colocar las dos tórulas en el tubo con medio de transporte STF cuidando que el algodón quede sumergido en el medio.

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INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE ACIDOS BILIARES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Marcador de la función hepática. La concentración sérica se incrementa en pacientes con hepatitis aguda, hepatitis crónica, cirrosis hepática y cáncer hepático. Colorimétrica enzimática Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo. 2 °C a 8 °C hasta 5 días En gradillas en forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas o intensamente lipémicas. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

ACIDO URICO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación cuantitativa de ácido úrico en suero plasma u orina. Uricasa Ayuno no indispensable. Suero o plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C por 3 días 2 °C a 8 °C por 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DE PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas No requiere ayuno Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre venosa por extracción al vacío.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA

SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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Antes de la toma de muestra, el paciente deberá recibir la droga, a lo menos, 3 – 5 vidas media, para lograr el estado estacionario y asegurar la correcta interpretación de la concentración sérica. Esto se obtiene después de 3 – 4 días de tratamiento. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 2 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Se recomienda no ingerir alimentos en este lapso, para no alterar la absorción del medicamento. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 3 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. La toma de muestra está basada en las propiedades farmacocinéticas de la droga, su forma de administración (intramuscular, intravenosa, oral), la posología y el objetivo clínico para el cual se solicita el monitoreo. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

ADENOSINDEAMINASA (ADA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Marcador para enfermedades infecciosas tales como: Mononucleosis, Fiebre tifoidea y Hepatitis. Valores de ADA muy bajos, reflejan una inmunodeficiencia. Espectrofotométrico Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo La muestra debe ser analizada lo antes posible. En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

ALBUMINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

Diagnóstico de insuficiencia hepática, deshidratación aguda, pérdida de proteínas. Verde de bromocresol Ayuno no indispensable. Suero y plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 2 meses 2 °C a 8 °C hasta 5 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Interferencias con medicamentos o sustancias endógenas. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

ALFAFETOPROTEINA (AFP) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación cuantitativa en el tratamiento de pacientes con cánceres testiculares no seminomatosos y como ayuda en la detección de las anomalías congénitas del tubo neural abierto en fetos. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días (se debe separar el suero del coágulo) En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Las muestras no deben presentar fibrina, eritrocitos ni partículas en suspensión. No realizar el examen con muestras recogidas después de una amniocentesis. Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 8 horas Externos: 24 horas

AMILASA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de pancreatitis y otros trastornos pancreáticos que provocan un incremento en la actividad de α-amilasa en suero y orina. actividad de la α-amilasa Sustrato CNPG3 Ayuno no indispensable. Suero y plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C y 20 °C a 25 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas o lipémicas Urgencia Química e Inmunoanálisis Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 8 horas Externos: 24 horas

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AMONIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y seguimiento de patologías relacionadas con daño hepático grave, determinados errores congénitos del metabolismo. Glutamato deshidrogenasa Ayuno no indispensable. Plasma Tubo tapa Lila (EDTA) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Tomar la muestra sin ligadura y en forma atraumática. Debe ser el primer examen extraído. Una vez tomada la muestra introducirla inmediatamente en hielo. Muestras enviadas desde establecimientos externos: centrifugar la muestra y enviar solo el plasma. El volumen que indique el tubo. Una vez separado el plasma de los elementos figurados, la muestra es estable por 2 horas entre 2 ºC y 8 ºC; -20 ºC por 3 semanas. Mantener la muestra refrigerada todo el tiempo desde su recolección. Sangre total: Enviar al Laboratorio antes de 15 minutos. Plasma: Enviar al Laboratorio antes de 2 horas. El amonio es estable en sangre total por aproximadamente 15 minutos. No utilizar muestras hemolizadas Urgencia Unidad crítica:1 hora Hospitalizados: menos de 8 horas Externos: 24 horas

ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINAS IgG e IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico del síndrome antifosfolípido. Relacionado con enfermedades del tejido conjuntivo, LES y enfermedades infecciosas como sífilis, SIDA y fiebre Q. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 5 días hábiles

ANTICUERPOS ANTINUCLEARES (ANA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Diagnóstico de enfermedades del tejido conectivo, entre ellas el Lupus eritematoso sistémico (LES), síndrome de Sjögren, esclerodermia, etc. IFI (Inmunofluorescencia indirecta) Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos)

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TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

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3 1

Fecha vigencia:

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Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras muy hemolizadas, lipémicas o contaminadas. Inmunología 3 días hábiles

ANTICUERPOS ANTICITOPLASMA DE NEUTROFILOS (ANCA) ANTI PR3 Y MPO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de vasculitis autoinmune. Ac. anti PR3 marcador serológico específico para la granulomatosis de Wegener. Ac. anti MPO correlaciona vasculitis idiopática o asociada a glomeluronefritis crecéntrica necrotizante. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 3 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras ictéricas, lipémicas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 3 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI CITOMEGALOVIRUS IgG e IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de la infección por Citomegalovirus ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 1 día hábil

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

Detección de las fases activas del Lupus eritematoso sistémico (LES). IFI (Inmunofluorescencia indirecta) Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 2 días

ANTICUERPOS ANTI DNA

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TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 3 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI ENA (RO, LA, SM, RNP, SCL-70, JO-1) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVCION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de las enfermedades reumáticas sistémicas. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 2 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 3 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI ENDOMISIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de enfermedad celíaca. IFI (Inmunofluorescencia indirecta) Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 5 días hábiles

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infección precedente por estreptococos beta hemolítico tipo A. Nefelometría Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 8 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas Inmunología 1 día hábil

ANTIESTREPTOLISINA O (ASO)

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ANTICUERPOS ANTI LKM-1 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de Hepatitis autoinmune tipo 2 IFI (Inmunofluorescencia indirecta) Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 5 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRALES (AMA) Y MUSCULO LISO (ML) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA UNIDAD DE ANALISIS TIEMPO DE RESPUESTA

AMA: Diagnóstico de Cirrosis biliar primaria. ML: Diagnóstico de hepatitis autoinmune tipo 1 IFI (Inmunofluorescencia indirecta) Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 5 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI PEPTIDOS CITRULINADOS CICLICOS (CCP) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Marcadores específicos para la Artritis reumatoidea. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas Inmunología 1 día hábil

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ANTICUERPOS ANTI RUBEOLA IgG e IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infecciones causadas por el virus de la Rubéola. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas Inmunología 1 día hábil

ANTICUERPOS ANTI TOXOPLASMA GONDII IgG e IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infecciones causadas por el parásito Toxoplasa gondii. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas Inmunología 1 día hábil

ANTICUERPOS ANTITRANSGLUTAMINASA IgG e IgA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de enfermedad celíaca. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas Inmunología 1 día hábil

ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA (TG) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

Ayuda en el diagnóstico de las disfunciones tiroideas autoinmunitarias. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma

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MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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Edición: Revisión:

3 1

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Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 72 horas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química e Inmunoanálisis 72 horas

ANTICUERPOS ANTI TPO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de disfunciones tiroideas autoinmunitarias. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 72 horas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química e Inmunoanálisis 72 horas

ANTICUERPOS ANTI TREPONEMICOS EN SUERO (Treponema pallidum) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de sifilis Inmunocromatografía Ninguno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 3 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas Serología de Sifilis (VDRL) 1 día

ANTICUERPOS ANTI Trypanosoma cruzi (CHAGAS) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Detección cuantitativa de anticuerpos clase IgG anti Trypanosoma cruzi. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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3 1

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2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras contaminadas Inmunología 5 días hábiles

ANTICUERPOS ANTI VIRUS EPSTEIN BARR IgG e IgM (VCA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de mononucleosis infecciosa, está asociado al linfoma de Burkitt, carcinoma nasofaríngeo y síndromes linfático-proliferativos en pacientes inmunodeprimidos. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 1 día hábil

ANTICUERPOS ANTI VIRUS HERPES SIMPLEX 1 y 2 IgG e IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infecciones causadas por el virus Herpes Simplex. ELISA Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas. Inmunología 1 día hábil

ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO LIBRE (APEl) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Porcentaje utilizado como ayuda para diferenciar entre un cáncer de próstata o una enfermedad benigna. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Efectuar antes de procesos que impliquen manipulación de la próstata, como: examen rectal digital, masaje prostático, ecografía o biopsia. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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3 1

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2 °C a 8 °C hasta 24 horas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO TOTAL (APEt) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en la detección de cáncer de próstata utilizado junto con el tacto rectal en hombres a partir de los 50 años. Útil para monitorear el éxito de una cirugía de próstata. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Efectuar antes de procesos que impliquen manipulación de la próstata, como: examen rectal digital, masaje prostático, ecografía o biopsia. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 24 horas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

ANTITROMBINA III USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda al diagnóstico de deficiencias heredadas o adquiridas de antitrombina III, las cuales representan un riesgo elevado de trombosis. Óptico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo. 15 °C a 25 °C hasta 6 horas 2 °C a 8 °C hasta 2 días Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar la hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar dos tubos de tapa celeste para pacientes adultos y tres para pacientes pediátricos. No utilizar muestras hemolizadas Hematología 7 días hábiles

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BETA 2-MICROGLOBULINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Permite diferenciar disfunción glomerular de tubular Turbidimetría Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 8 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas Química e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

BHCG (GONADOTROFINA CORIONICA HUMANA FRACCION B) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Confirmación precoz y monitorización de embarazos, diagnóstico de embarazos ectópicos, molas hidatidiformes, y tumores testiculares. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utiliza muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA

Evaluación de ictericias. Sal de diazonio Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 1 día 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utiliza muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas

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SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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03-05-2019

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Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CA 19-9 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda al diagnóstico de varias condiciones gastrointestinales tales como carcinoma pancreático, colorectal, gástrico y hepático. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días (separar suero del coágulo ) En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hasta 7 días

CA 125 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda a la monitorización de la terapia en pacientes con cáncer ovárico epitelial. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días (separar suero del coágulo ) En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

CALCIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Monitorización del aumento o disminución de los niveles de calcio Arsenazo III Ayuno no indispensable. Suero o plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 3 semanas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas ni contaminadas Urgencia Química e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CARBAMAZEPINA MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA

SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Espectrofotométria No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Antes de la toma de muestra, el paciente debe recibir la droga, a lo menos, 3 – 5 vidas media, para lograr el estado estacionario. Esto se obtiene después de 7 días de tratamiento con Carbamazepina Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 3 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 3 semanas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico. La toma de muestra está basada en las propiedades farmacocinéticas de la droga, su forma de administración (intramuscular, intravenosa, oral), la posología y el objetivo clínico para el cual se solicita el monitoreo. Urgencia Química clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CAROTENOS BASAL Y SOBRECARGA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

Detección de deficiencias de vitamina A y estudios de malabsorción de grasas. Espectrofotometría Caroteno Basal: Ayuno Caroteno sobrecarga: antes de la toma de muestra, tomar durante 10 días una taza de jugo de zanahoria. Presentarse en ayuno. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 41 de 159

El volumen que indique el tubo -20 hasta 3 meses en oscuridad No utilizar muestras hemolizadas Ninguna Biología Molecular y Técnicas Especiales 15 días

CEA (ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el pronóstico y tratamiento de pacientes afectados de cáncer. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días (separar suero del coágulo ) En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

CETONEMIA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de: Cetoacidosis diabética, Cetoacidosis alcohólica, acidosis láctica debido a sepsis, shock, envenenamiento, hipoxia severa, enfermedades malignas (linfoma) e intoxicación con sustitutos del etanol (glicol, metanol). Enzimático Ayuno no indispensable Sangre completa Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo No aplica En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Analizar antes de 30 minutos. Registrar en solicitud de exámenes hora de Toma de Muestras. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

CICLOSPORINA MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

Monitorización de pacientes con transplante de corazón, de hígado y de riñón sometidos a tratamiento con ciclosporina. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas

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LABORATORIO CLINICO CAA

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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No requiere ayuno Plasma Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Nivel C0: Inmediatamente antes de la dosis siguiente. Nivel C2: 2 horas después de la administración del medicamento. Anotar en orden y tubo los niveles C0 o C2 que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico. Otros factores que afectan el tiempo de la toma de muestra son: el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. Química Clínica e Inmunoanálisis 8 días

COLESTEROL TOTAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Indicador de la función hepática, función biliar, absorción intestinal, función tiroídea y de la propensión a arteriopatía coronaria. Útil en el diagnóstico y clasificación de hiperlipoproteinemias Enzimática Dieta libre de grasas y alcohol por 48 hrs. Ayuno estricto por 12 hrs. Consumo de comida liviana el día antes del examen. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

COLESTEROL HDL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Ütil para identificar pacientes con alto riesgo de sufrir cardiopatía coronaria Detergente acelerador específico Dieta libre de grasas y alcohol por 48 hrs. Ayuno estricto por 12 hrs. Consumo de comida liviana el día antes del examen. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo

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3 1

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03-05-2019

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20 °C a 25 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

COMPLEMENTO SERICO C3 y C4 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de alteraciones inmunológicas asociadas con los factores del complemento C3 y C4. Nefelometría Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Utilizar muestras frescas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras contaminadas Inmunología 1 día hábil

CORTISOL AM Y PM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CNSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y monitoreo de tratamientos de trastornos suprarrenales. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (con gel separador) o Tubo tapa roja o Tubo tapa verde (Anticoagulante Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Indicar hora de extracción AM y PM en solicitud de exámenes y tubo de muestra. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 14 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, lipémicas, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

CREATININA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Útil en el diagnóstico de diversas nefropatías. Su control permanente es de gran utilidad en pacientes que requieren de diálisis. Picrato alcalino cinético Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa

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TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

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verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CREATINQUINASA CK-MB MIOCARDICA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y seguimiento de infarto agudo de miocardio y de algunas enfermedades musculares. Método de la IFCC Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CREATINQUINASA CK TOTAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

Diagnóstico y tratamiento de enfermedades asociadas al músculo esquelético, corazón, sistema nervioso central y tiroides. NAC (N-acetil-L-cisteína) Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia

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Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

CRIOGLOBULINAS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de neoplasias Precipitación en frio Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Contactar al profesional de la sección de Inmunología del Laboratorio Clínico, al menos 15 minutos antes de la extracción de la muestra, para preparar baño a 37°C (Anexo 417679). En paralelo, calentar el material de extracción durante 10 - 15 min en baño a 37°C. Realizar la toma de muestra por punción venosa, de acuerdo a la técnica de extracción al vacío. Poner inmediatamente el tubo en recipiente con agua a 37º C con termómetro. Trasladar inmediatamente, en dichas condiciones, a sección de inmunología, junto con orden médica. Llevar la orden médica a recepción del Laboratorio. El volumen que indique el tubo El suero se mantiene entre 2 a 8 °C durante 7 días antes de ser analizada. Debe ser transportada en un baño a 37 °C con termóm etro No utilizar muestras lipémicas, hemolizadas o contaminadas Inmunología 8 días hábiles

DESHIDROGENASA LACTICA (LDH) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de anemia hemolítica y marcador tumoral en algunas enfermedades malignas como el tumor de células germinales Reacción directa: lactato a piruvato Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

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DHEA-SO4 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación del funcionamiento de la glándula suprarrenal. Inmunoensayo de electroquimioluminiscencia Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 2 días -20 °C hasta 2 meses, descongelar solo una vez En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Se debe garantizar una temperatura de 20 – 25 °C pa ra analizar la muestra. Química Clínica e Inmunoanálisis 8 días

DIGOXINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoensayo de electroquimioluminiscencia No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 10 – 12 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 2 días -20 °C hasta 6 meses, descongelar solo una vez En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Se debe garantizar una temperatura de 20 – 25 °C pa ra analizar la muestra. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

DIMERO D USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Determinación cuantitativa de productos de degradación de la malla de fibrina. Utilizado para la exclusión de eventos tromboembólicos como trombosis venosa profunda (TVP), tromboembolismo pulmonar (TEP) y Coagulación Intravascular Diseminada Inmunoturbidimétrico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción al vacío. El volumen que indique el tubo

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CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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15 °C a 25 °C hasta 4 horas 2 °C a 8 °C hasta 24 horas Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar un tubo de tapa celeste para pacientes adultos y dos para pediátricos. No aplica Urgencia Hematología Unidad crítica: 2 horas Pacientes GES: 2 horas Hospitalizados: 2 horas Externos: 24 horas

ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de numerosos síndromes inflamatorios, cirróticos, nefróticos, ciertas infecciones, gammapatías o cánceres. Electroforesis en gel de agarosa Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 ° hasta En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas, lipémicas o contaminadas Inmunología 5 días hábiles

ELECTROLITOS PLASMATICOS (Na, K, Cl)

USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA

Sodio: Evaluación del balance hidroelectrolítico en pacientes con alimentación intravenosa, con tratamiento diurético, falla renal aguda y nefrópatas. Evaluación de enfermedades gastrointestinales, hepáticas, enfermedad de adisson y aldosteronismo. Potasio: Evaluación del balance electrolítico, en pacientes mayores con alimentación intravenosa, tratamiento diurético, falla renal aguda, con hemodiálisis y con nefritis intersticial o nefropatía. Cloro: evaluación de electrolitos, evaluación del balance ácido-base, balance hídrico, y cetosis. El cloro, generalmente, aumenta y disminuye con el sodio. De electrodo selectivo para iones diluidos Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 1 semana 20 °C a 25 °C hasta 1 semana En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas

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SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

ESTRADIOL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación cuantitativa de estradiol. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

FACTOR DE VON WILLEBRAND

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de hemorragias. Apoyo diagnóstico del síndrome de Von Willebrand. Turbidimetría No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío El volumen que indique el tubo 15 °C a 25 °C hasta 6 horas -20 °C hasta 1 mes Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar la hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar un tubo de tapa celeste para pacientes adultos y dos para pacientes pediátricos. No utilizar muestras con hemólisis. Hematología 15 días hábiles

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA

Diagnóstico de artritis reumatoídea Inmunoaglutinación y Nefelometría Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

FACTOR REUMATOIDEO

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 3 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o lipémicas Inmunología 2 días hábiles

FACTOR V USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de estados de déficit de factor V congénitos o adquiridos. Se han observado reducciones de factor V adquiridas en casos de disfunción hepática, coagulopatía por consumo, hiperfibrinólisis y tumores. Optico No es necesario ayuno Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de sodio) Obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Volúmen que indica el tubo 15 °C a 25 °C hasta 3 horas -20 °C hasta 4 semanas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. Las dosis terapéuticas de hidurina u otros inhibidores de trombina pueden dar lugar a una actividad de factor erróneamente más baja. No utilizar muestras hemolizadas. Hematología 7 días hábiles

FACTOR VII USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de estados de déficit de factor VII congénito o adquirido. Diferenciación entre disproteinemias y trastornos en la síntesis de proteínas. Óptico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 °C a 25 °C hasta 3 horas -20 °C hasta 4 semanas Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar un tubo de tapa celeste para pacientes adultos y dos para pacientes pediátricos. No utilizar muestras hemolizadas. Hematología 7 días hábiles

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Código:

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Fecha emisión:

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3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 50 de 159

FACTORES VIII y IX USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de estados de déficit de factor VIII y IX congénito o adquirido. Seguimiento de terapia de sustitución en pacientes con Hemofilia A y B. Óptico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 °C a 25 °C hasta 8 horas -20 °C hasta 4 semanas Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar un tubo de tapa celeste para pacientes adultos y dos para pacientes pediátricos. No aplica Hematología 7 días hábiles

FENITOINA MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Antes de efectuar la toma de muestra, el paciente debe recibir la droga, a lo menos, 3 – 5 vidas media, para lograr el estado estacionario, (15 – 50 días de tratamiento). Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 3 - 9 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 2 días -20 °C hasta 6 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico obtenido. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

FENOBARBITAL MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas No requiere ayuno

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TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Antes de efectuar la toma de muestra, el paciente debe recibir la droga, a lo menos, 3 – 5 vidas media, para lograr el estado estacionario. Esto se obtiene en adultos, entre 10 – 25 días y en niños, entre 8 – 15 días de tratamiento con Fenobarbital. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 2 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 2 días -20 °C hasta 6 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico obtenido. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

FERRITINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de anemias. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

FIBRINOGENO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

Evaluación de hipo o afibrinogenemias adquiridas y enfermedad hepática severa (su disminución podría indicar enfermedad hepática severa). Óptico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 – 25 °C hasta 8 horas

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TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 52 de 159

Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicitan además TP y TTPA, enviar un tubo de tapa celeste para pacientes adultos y dos para pacientes pediátricos. No utilizar la jeringa como método de extracción. Hematología Unidad crítica: 2 horas Pacientes GES: 2 horas Hospitalizado: 2 horas Externos: 24 horas

FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda al diagnóstico en enfermedad obstructiva hepática y en enfermedad metabólica ósea asociada a incremento de la actividad osteoblástica. p-nitrofenil fosfato Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 ªC a 8 ªC y 20 ªC a 25 ªC hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas o lipémicas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

FOSFORO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de hipervitaminosis D, hipoparatiroidismo e insuficiencia renal, raquitismo, hiperparatiroidismo y síndrome de Fanconi Fosfomolibdato Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 1 día 2 °C a 8 °C hasta 4 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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LABORATORIO CLINICO CAA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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FSH (HORMONA FOLICULOESTIMULANTE) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de la homeostasis que regula la fertilidad a través del eje hipotalámicohipofisiario-gonadal. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8°C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

GALACTOMANANO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de enfermedades fúngicas invasoras por Aspergillus spp. Detección de antígeno Galactomanano por técnica de ELISA Ninguno Sangre Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Mínimo dos muestras, deben ser tomadas con 48 horas de diferencia. 2 °C a 8 °C hasta 7 días Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. No utilizar muestras hemolizadas, lipémicas e ictéricas Microbiología 3 días hábiles desde la llegada de la segunda muestra

GAMMA GLUTAMILTRANSFERASA (GGT) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de enfermedades del hígado o las vías biliares. Sustrato de L-gammaglutamil-3-carboxi-4-nitroanilina Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C y 20 °C a 25 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

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GASES EN SANGRE ARTERIAL Y COOXIMETRIA USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de la capacidad de oxigenación. Suministra información acerca del equilibro ácido-básico, el cuál revela indicios importantes acerca del funcionamiento del pulmón, del riñón y del estado metabólico general del cuerpo. La cooximetria detecta patologías relacionadas con el estado de oxigenación. Potenciometría, Amperometría, Espectofotometrìa. Ayuno no indispensable. Plasma Jeringa con Heparina de Litio. Procedimiento realizado solo por profesional capacitado. Extraer la cantidad indicada, eliminar las burbujas de aire, retirar la aguja y sellar con tapón. Agitar la muestra suavemente entre las manos con movimientos rotatorios. Si no cuenta con la Jeringa comercial realizar el siguiente procedimiento: Con una cantidad suficiente de heparina, cebar la jeringa, eliminar el excedente, cambiar la aguja y extraer 1 a 3 ml de sangre, eliminar burbujas de aire, retirar aguja y sellar con tapón. Agitar la muestra suavemente entre las manos con movimientos rotatorios. Registrar la temperatura del paciente y % de oxigeno administrado (FiO2) en la orden de solicitud. El volumen que indique la jeringa. No aplica Enviar la muestra al Laboratorio antes de 1 hora, manteniendo la cadena de frío. Muestras coaguladas, jeringas sin sello de goma y con burbujas de aire. Urgencia Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: 1 hora Policlínico: 24 horas

GASES EN SANGRE VENOSA USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

Evaluación de la capacidad de oxigenación. Suministra información acerca del equilibro ácido-básico, el cuál revela indicios importantes acerca del funcionamiento del pulmón y del riñón y del estado metabólico general del cuerpo. La cooximetria detecta patologías relacionadas con el estado de oxigenación. Potenciometría y Amperometría Ayuno no indispensable. Plasma Jeringa con Heparina de Litio. Procedimiento realizado solo por profesional capacitado. Extraer la cantidad indicada, eliminar las burbujas de aire, retirar la aguja y sellar con tapón. Agitar la muestra suavemente entre las manos con movimientos rotatorios. Si no cuenta con la Jeringa comercial realizar el siguiente procedimiento: Con una cantidad suficiente de heparina, cebar la jeringa, eliminar el excedente, cambiar la aguja y extraer 1 a 3 ml de sangre, eliminar burbujas de aire, retirar aguja y sellar con tapón. Agitar la muestra suavemente entre las manos con movimientos rotatorios. Registrar la temperatura del paciente y % de oxigeno administrado (FiO2) en la orden de solicitud.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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El volumen que indique la jeringa. No aplica Enviar la muestra al Laboratorio antes de 1 hora, manteniendo la cadena de frío. Evitar muestras coaguladas, jeringas sin sello de goma y con burbujas de aire. Urgencia Unidad critica: 45 minutos Hospitalizados: 45 minutos Policlínicos: 24 horas

GLUCOSA BASAL O POST PANDRIAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico y el tratamiento de la diabetes Hexocinasa/G-6-PDH Glucosa Basal: Ayuno estricto de 6 a 8 horas Glucosa Post pandrial: dos horas después de una comida abundante. Plasma Tubo tapa gris (anticoagulante Fluoruro de sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 ºC a 25 ºC hasta 2 días 2 ºC a 8 ºC hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 8 horas

GOT (ASPARTATO AMINOTRANSFERASA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de la magnitud del daño celular en hígado y músculo. Monitoreo de la evolución del daño de los tejidos que la contienen (Hepatopatías, Cardiopatías) NADH (sin P-5’-P) Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 ºC a 25 ºC hasta 4 días 2 ºC a 8 ºC hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utiliza muestras hemolizadas ni lipémicas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

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GPT (ALANINA AMINOTRANSFERASA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación del daño hepatocelular en magnitud y evolución. Monitoreo de terapia hepatotóxica. NADH (sin P-5’-P) Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 30 ºC hasta 3 días 2 ºC a 8 ºC hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utiliza muestras hemolizadas o lipémicas Urgencia Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

HANTAVIRUS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de HANTAVIRUS. Adjuntar el formulario correspondiente para el envío de la muestra al Instituto de Salud Pública. Detección de anticuerpos IgM por técnica de ELISA Ninguno Sangre y Plasma Tubo tapa lila (EDTA) y Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa aséptica utilizando la técnica de extracción por vacío. Llenar completamente el formulario de envío de muestras por sospecha de HANTAVIRUS con los datos solicitados Dos muestras, una en tubo con EDTA (tapa lila) y otra en tubo sin anticoagulante (tapa roja o amarilla). El volumen que indique el tubo. 2 ºC a 8 ºC hasta 7 días Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. Para traslados prolongados, transportar con unidades refrigerantes. No utilizar muestras hemolizadas, lipémicas e ictéricas Microbiología 1 día hábil.

HEMOCULTIVO MICOBACTERIAS (HEMOMAC) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Apoyo diagnóstico de bacteriemia por Micobacterias Hemocultivo para Micobacterias Automatizado Ninguno Sangre Frasco de hemocultivo proporcionado por el laboratorio HEMOMAC Jeringa 10 ml.

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TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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La toma de muestra debe ser efectuada por personal profesional capacitado con ayudante siguiendo estrictamente la técnica aséptica. Ver Toma de muestra para Hemocultivo. Si se desea tomar más de una muestra se debe esperar mínimo 30 minutos para puncionar el mismo sitio, o bien se puede obtener al mismo tiempo de zonas distintas, como por ejemplo ambos brazos. Para cuadros de fungemia, utilizar frasco aerobio e indicar en la orden la sospecha diagnostica. 10 ml Temperatura ambiente. Transportar al laboratorio antes de 30 minutos a temperatura ambiente No aplica Microbiología 30 a 60 días hábiles.

HEMOCULTIVO PERIFERICO AEROBIO Y ANAEROBIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de bacteriemia o Fungemia. Hemocultivo Automatizado Ninguno Sangre Frasco de hemocultivo (Adulto aeróbico, anaerobio, Pediátrico aeróbico) Jeringa, volumen depende de tipo de paciente. La toma de muestra debe ser efectuada por personal profesional capacitado con ayudante siguiendo estrictamente la técnica aséptica. Ver Toma de Muestra para Hemocultivo. Si se desea tomar más de una muestra se debe esperar mínimo 30 minutos para puncionar el mismo sitio, o bien se puede obtener al mismo tiempo de zonas distintas, como por ejemplo ambos brazos. Para cuadros de fungemia, utilizar frasco aerobio e indicar en la orden la sospecha diagnostica. Recién nacidos: 1 muestra. Adultos y Pediátricos: 2 muestras. Frente a la sospecha de Endocarditis, tomar 2 muestras cada vez en dos días consecutivos, especificando en la solicitud del examen la sospecha diagnóstica. VOLUMEN DE SANGRE FRASCO PEDIATRICO R.N. : 0,5 a 1 ml Lactantes : 1 a 1,5 ml De 2 a 15 años : 2 a 3 ml por frasco FRASCO ADULTO : 10 ml por frasco Temperatura ambiente. Transportar al laboratorio antes de 30 minutos a temperatura ambiente No aplica Microbiología 5 a 7 días hábiles

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HEMOCULTIVO POR CATETER VENOSO CENTRAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de bacteriemia asociada CVC sin la necesidad de extraer el dispositivo. Hemocultivo Automatizado. Ninguno Sangre Frasco de hemocultivo (Adulto aerobio, Adulto anaerobio o Pediátrico) Jeringa, volumen depende de tipo de paciente. La toma de muestra debe ser efectuada por personal profesional capacitado siguiendo estrictamente la técnica aséptica. Rotular frasco de hemocultivo con los datos demográficos del paciente, temperatura corporal, además de sala, cama, hora y forma de obtención de muestra (por catéter venoso central) evitando escribir sobre el código de barras. Obtener una muestra de sangre a través del catéter venoso central, si es un catéter con más de un lumen preferir la vía de alimentación parenteral. Colocar aguja nueva a la jeringa. Abrir el sello del frasco de hemocultivo y desinfectar el tapón de goma para luego introducir el volumen de muestra necesario al frasco por punción. NUNCA sacar tapón de goma. Para tiempo diferencial de positividad de hemocultivos, método conservador de evaluación de sepsis por catéter, se deben enviar dos muestras, una periférica y una por CVC tomadas simultáneamente, con igual volumen de muestra. VOLUMEN DE SANGRE FRASCO PEDIATRICO R.N. : 0,5 a 1 ml Lactantes : 1 a 1,5 ml De 2 a 15 años : 2 a 3 ml por frasco FRASCO ADULTO: 8 a 10 ml por frasco Temperatura ambiente. Transportar al laboratorio antes de 30 minutos a temperatura ambiente No aplica. Microbiología 5 a 7 días hábiles.

HEMOGLOBINA A1C (HEMOGLOBINA GLICOSILADA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Indicador del grado de control de la diabetes mellitus y recomendado como recurso en la evaluación del paciente diabético. Inmunoensayo Turbidimétrico Ayuno no indispensable. Plasma Tubo Tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo. 15 °C a 25 °C hasta 3 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días Transportar en gradillas de forma vertical. No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 – 48 horas

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HEMOGRAMA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Análisis de las variaciones cuantitativas y morfológicas de los elementos constituyentes de la sangre. Screening de leucemias, reacciones e inflamaciones, poliglobulina, anemias, enfermedad hemolítica de RN, etc. Automatizado que utiliza Impedancia, Óptica, Citometría de Flujo Ninguno Sangre total Tubo tapa Lila (EDTA K2 o K3) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente 6 horas 2 – 8 °C 24 horas Transportar en gradillas de forma vertical. No aplica Urgencia Hematología Unidad crítica: 1 hora GES: 2 horas Hospitalizados: 6 horas Externos: 24 horas

HEPATITIS A; Anticuerpos IgM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de infecciones agudas o recientes por el virus de la hepatitis A Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

HEPATITIS B; Antígeno de Superficie USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Diagnóstico de infecciones por virus de Hepatitis B y el cribado de muestras de donantes de sangre y plasma Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio)

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TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 6 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

HEPATITIS B; Anticuerpos Anti Core USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de una infección por el virus de Hepatitis B Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 °C a 30 °C hasta 3 días 2 °C a 8 °C hasta 14 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

HEPATITIS C; Anticuerpos totales USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de una infección por el virus de Hepatitis C Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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HIDATIDOSIS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de HIDATIDOSIS. Adicionar formulario de notificación de muestras al ISP Detección de anticuerpos IgM por técnica de ELISA Ninguno Sangre Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Punción venosa aséptica. Volumen que indique el tubo. 2 °C a 8 °C hasta 7 días. Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. Para traslados prolongados transportar con unidades refrigerantes. No utilizar muestras hemolizadas, lipémicas e ictéricas. Microbiología 7 días hábiles

INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN SUERO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Identificación de componentes monoclonales en suero Inmunofijación Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 1 semana -20 °C hasta 1 mes En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras hemolizadas Inmunología 5 días hábiles

INMUNOGLOBULINAS SERICAS IgG, IgA, IgM e IgE total USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación del sistema inmune. Nefelometría Ayuno relativo Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 ° hasta 8 días -20 °C hasta 3 meses En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas, lipémicas o contaminadas Inmunología 1 día hábil

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INSULINA BASAL Y 120 min USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de diabetes mellitus y el diagnóstico diferencial de hipoglicemia de ayuno, para distinguir entre un insulinoma e hipoglicemia ficticia Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. CURVA DE INSULINA Ayuno estricto para la toma de la primera muestra. Administrar vía oral 75 grs. glucosa disuelta en 250 ml de agua y bebida en un tiempo no superior a 5 minutos después de tomada la 1ra muestra. La segunda muestra debe ser tomada dos horas después de la administración de la glucosa. El paciente debe permanecer en reposo todo el tiempo que dure el examen El volumen que indique el tubo -10 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

LACTATO (ACIDO LACTICO) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de pacientes con acidosis metabólica. Acido láctico a piruvato Ayuno no indispensable. Plasma Tubo tapa gris (Fluoruro de sodio, sin gel separador) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. No utilizar torniquete. Los pacientes no deben ejercitar la mano y el brazo inmediatamente antes y durante este proceso. La muestra debe ser centrifugada antes de 15 minutos. Muestras enviadas desde establecimientos externos: centrifugar la muestra y enviar sólo el plasma. El volumen que indique el tubo 2 ºC a 8 ºC hasta 14 días -20 ºC hasta 4 semanas Sangre total: Enviar al Laboratorio antes de 15 minutos, en cadena de frío. Plasma: Enviar al Laboratorio antes de 2 horas. Muestras hemolizadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

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LH (HORMONA LUTEINIZANTE) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Predice la ovulación para la evaluación de infertilidad y el diagnóstico de los trastornos hipofisarios y gonadales Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

LIPASA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Marcador para el diagnóstico de trastornos pancreáticos y seguimiento de los efectos terapéuticos Colorante de quinona Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

LITIO NIVEL MAXIMO Y MINIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA

Monitoreo de los niveles de litio en pacientes con trastornos mentales en tratamiento Potenciometría ion selectivo Nivel mínimo: al menos 7 días desde el inicio del tratamiento y antes de administrar la primera dosis de la mañana. Nivel 2 horas: toma de muestra dos horas después de administrar la 1ra. dosis del medicamento. Nivel máximo: El especialista deberá indicar la hora de toma de muestra. Suero

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MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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Fecha vigencia:

03-05-2019

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Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 - 25 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

MAGNESIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de problemas renales, afecciones gastrointestinales y nutricionales. Arsenazo Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

METOTREXATO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoensayo de polarización fluorescente No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) o Tubo tapa gris (Fluoruro de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 24, 48 o 62 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días Evitar movimientos bruscos durante el transporte y protegido de la luz No utilizar muestras con fibrina, hiperlipémicas, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: 3 horas

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PARACETAMOL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA

SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Monitorización de las concentraciones del fármaco Colorimétrico No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel máximo: 4, 12 o 24 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 2 - 8 ° C hasta 48 Hrs -20 °C hasta 4 semanas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico obtenido. Otros factores que afectan la selección del tiempo de la toma de muestra son: el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: 3 horas

PERFIL BIOQUIMICO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación general de organismos como los riñones, corazón hígado y algunas glándulas endocrinas, además del metabolismo de lípidos, proteínas y nutrientes. El correspondiente a cada analito. Ayuno no indispensable Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

PERFIL HEPÁTICO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

Evaluación de la función hepática. El correspondiente a cada analito. Ayuno no indispensable Suero y Plasma

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MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Y Tubo tapa celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 1 día. 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

PERFIL LIPIDICO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación del metabolismo de los lípidos. El correspondiente a cada analito. Dieta libre de grasas y alcohol por 48 hrs. Ayuno estricto por 12 hrs. Consumo de comida liviana el día antes del examen. Suero y Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 2 días. 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

PROCALCITONINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Sospecha de sepsis severa o shock séptico Inmunoensayo de electroquimioluminiscencia Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 24 horas En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

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PROGESTERONA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y diferenciación de los trastornos endocrinos Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 – 8°C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizados: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

PROLACTINA y POOL DE PROLACTINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico de la infertilidad masculina y femenina y de trastornos de la hipófisis. Monitorización de los trastornos gonadales femeninos y masculinos y en el tratamiento de la amenorrea y galactorrea Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. POOL DE PROLACTINA: Extraer 3 muestras de sangre a intervalos de 30 minutos, correctamente rotuladas de 30 ,60 y 90 minutos El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

PROTEINA C ACTIVADA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

Su déficit conduce a una alta incidencia de trombosis venosa dependiendo de la edad, por ser inhibidor de la coagulación. Óptico No es necesario ayuno. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 °C a 25 °C hasta 4 horas

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TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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-18 °C hasta 1 mes Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicita más pruebas de coagulación, enviar dos tubos de tapa celeste. No utilizar muestras hemolizadas Hematología 20 días hábiles

PROTEINA C REACTIVA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de inflamación Turbidimetría Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 15 días 2 °C a 8 °C hasta 2 mes En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

PROTEINA S USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Por ser cofactor de la PCA un descenso del porcentaje de proteína S aumenta el riesgo tromboembólico. Optico Ayuno no indispensable. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15 °C a 25 °C hasta 4 horas -18 °C hasta 1 mes Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si se solicita más pruebas de coagulación, enviar dos tubos de tapa celeste. No utilizar la jeringa como método de extracción. Hematología 20 días hábiles

PROTEINAS TOTALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

Diagnóstico de enfermedades del hígado, células plasmáticas, ganglios linfáticos, bazo y médula ósea Biuret

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REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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03-05-2014

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3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 1 semana 2 °C a 8 °C hasta 1 mes En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL (PTG) USO DIAGNOSTICO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y seguimiento de diabetes, resistencia a la insulina, síndrome metabólico entre otros. Ayuno estricto para la toma de la primera muestra. Adultos: Administrar vía oral 75 gr. glucosa disuelta en 250 ml de agua y consumida en un tiempo no superior a 5 minutos, después de tomar la 1ra muestra. Niños: 1.75 gr de glucosa / Kg de peso, hasta llegar a 75 gr (niños menores de 12 años o con peso inferior a 30 Kg) Tomar la segunda muestra dos horas después de la administración de la glucosa. El paciente debe permanecer en reposo, sin ingerir alimentos ni fumar por todo el tiempo que dure el examen. Si la curva solicitada posee 4 puntos, los tiempos de medición serán: 30, 60, 90 y 120 minutos. Plasma Tubo tapa gris (Fluoruro de sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Identificar las dos muestras con las leyendas “basal“ y “post carga“. Indicar la hora de la extracción para cada muestra en el tubo y la orden. El volumen que indique el tubo 20 ºC a 25 ºC hasta 2 días 2 ºC a 8 ºC hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

PTH INTACTA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Evaluación directa de la actividad de las glándulas paratiroídeas Inmunoensayo de electroquimioluminiscencia Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos)

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TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha vigencia:

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Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 15‑25 °C hasta 8 horas 2 ‑ 8 °C hasta 2 días -20°C hasta 1 mes En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis 1 – 2 veces a la semana

RECUENTO DE PLAQUETAS EN CITRATO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación de pseudotrombocitopenia inducida por EDTA Automatizado que utiliza impedancia o Citometría de flujo No es necesario ayuno Sangre total Tubo tapa celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 6 horas 2 – 8 °C hasta 24 horas Transportar en gradillas de forma vertical. No aplica Hematología Unidad crítica: 1 hora GES: 2 horas Hospitalizados: 6 horas Externos: 24 horas

RECUENTO DE RETICULOCITOS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Medición de la actividad eritropoyética de la médula ósea en anemias y otras condiciones hematológicas. Manual (Tinción Supravital). Automatizado (Citometría de Flujo Fluorescente) Ninguno Sangre total Tubo tapa Lila (EDTA K2 o K3) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 48 horas 4 °C hasta 72 horas Transportar en gradillas de forma vertical y llevar a recepción del Laboratorio. No aplica Hematología Hospitalizados: 6 horas Externos: 24 horas

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Fecha vigencia:

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SCREENING NEONATAL DE HIPOTIROIDISMO CONGENITO (HC) Y FENILCETONURIA (PKU) USO DIAGNOSTICO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Examen que se realiza a todo RN nacido en las maternidades de los Hospitales de la Red Pública Nacional de Salud. Recién nacido (RN) con más de 40 horas de vida cumplida. El niño debe estar recibiendo alimentación láctea materna o artificial, por al menos 24 hrs. al momento del examen. Los RN que han recibido plasmaféresis o transfusión sanguínea, se sugiere tomar el examen después de 72 horas del procedimiento. En prematuros tomar el examen a los 7 días y si es < 35 semanas de edad gestacional, repetir a los 15 días. Sangre capilar Papel filtro S&S 903 y tarjeta de identificación Lanceta Frotar la zona plantar externa posterior del talón con algodón humedecido con etanol, esperar secar por 30 segundos. Pinchar con la lanceta estéril desechable la zona previamente preparada. Para disminuir el dolor, se sugiere tomar la muestra de sangre cuando el RN está siendo alimentado. Esperar aproximadamente 15 segundos para que fluya una segunda gota de sangre, presionando y soltando suavemente el sitio de punción. Nunca exprima esta área. Recoger con la tarjeta de papel filtro 5 gotas por separado. No coloque una gota sobre otra. Si el flujo de sangre disminuye y los círculos no pueden llenarse, repetir el procedimiento usando un sitio de punción diferente. Verificar que la sangre atravesó homogéneamente la tarjeta de papel filtro, observando al reverso de ésta. Después de tomar la muestra, elevar el pie sobre el cuerpo y con un algodón seco presionar el sitio de punción hasta que cese el sangrado. No se recomienda vendar la piel del RN Colocar una cinta adhesiva, si es necesario. Deseche y bote en lugar seguro la lanceta, no la use para otro niño. Dejar la tarjeta de papel filtro con las gotas de sangre a Tº ambiente hasta que esté completamente seca. Consultar Norma Ministerial de pesquisa neonatal. (Referencia 4.13). 5 gotas de sangre con un diámetro mínimo de 8 mm Temperatura ambiente Las tarjetas deben ser transportadas con papel desecante y cuando son más de una, se debe ordenar en contraposición unas con otras. No debe exponer la muestra a la luz del sol ni humedad. Screening neonatal 1 día hábil Resultados negativos no serán informados.

TEOFILINA MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. • Nivel C0: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. • Nivel C2: 2 horas después de la administración del medicamento.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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Anotar en orden y tubo los niveles C0 y C2 que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 15 – 25°C hasta 2 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico obtenido. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizados: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

TESTOSTERONA TOTAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico y diferencial los trastornos endocrinos Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

TIEMPO DE PROTROMBINA (TP) + INR USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

Monitoreo del tratamiento con anticoagulantes orales. Evaluación de la función hepática. Screening por sospecha de desórdenes de los factores II, VII, X, V, fibrinógeno o disfibrinogenemias. Screening preoperatorio para detectar un posible desorden hemostático. Óptico No es necesario ayuno. Para control de tratamiento anticoagulante, el día del examen, el paciente debe presentarse sin tomar el medicamento. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 4 horas Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si además se solicita TTPA se realiza con la misma muestra. No utilizar muestras hemolizadas. Urgencia Hematología

Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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TIEMPO DE RESPUESTA

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Fecha vigencia:

03-05-2019

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Unidad crítica: 1 hora GES: 2 horas Hospitalizados: 2 horas Externos: 24 horas

TIEMPO DE SANGRIA IVY USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de la funcionalidad plaquetaria (hemostasia primaria) Tiempo de sangrado No es necesario ayuno. No consumir Aspirina 7 días previos al examen. No consumir anticoagulantes. No utilizar prendas con mangas apretadas y tener un recuento plaquetario > 100 x 3 10 /ul. Coordinar la hora de pacientes hospitalizados con la sección de hematología Sangre total Lanceta - Surgicutt Papel filtro Esfigmomanómetro Cronómetro La muestra debe ser tomada por un Profesional del Laboratorio. Colocar el esfingomanómetro sobre el brazo descubierto del paciente, para medir la presión que debe ser de 40 mmHg durante todo el procedimiento. Realizar una incisión de profundidad estandarizada (1mm de profundidad), en la cara interna del antebrazo del paciente. Poner en marcha el cronómetro. Durante ese tiempo, absorber la sangre cada 30 segundos, con un papel absorbente sin tocar el lugar de la incisión. Tomar el tiempo que transcurre entre el momento en que se realiza la incisión y el término del sangrado. Para pacientes de policlínicos la hora debe ser solicitada en la unidad de toma de muestras. El procedimiento se realiza de 8:00 a 11:00 hrs. Para pacientes hospitalizados, la orden debe ser enviada al laboratorio. El Tecnólogo médico llamará a sala para acordar fecha y hora de la toma de muestra. No aplica No aplica No aplica No aplica Hematología 2 horas

TIEMPO PARCIAL DE TROMBOPLASTINA ACTIVADA (TTPA) USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

Vigilancia del tratamiento con heparina. Ayuda a la detección anticoagulantes circulantes. Detección específica de deficiencias del sistema intrínseco de la tromboplastina y revela defectos en el mecanismo extrínseco de la coagulación. Prueba de detección de trastornos de la coagulación, especialmente antes de intervenciones quirúrgicas. Óptico No es necesario ayuno. Para control de tratamiento anticoagulante, el día del examen, el paciente debe presentarse sin tomar el medicamento. Plasma Tubo tapa Celeste (Citrato de Sodio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 4 horas con plasma previamente separado. Enviar la muestra al laboratorio dentro de 30 minutos. Registrar hora de extracción. Si además se solicita TP y/o INR se realizan con la misma muestra. No utilizar la jeringa como método de extracción. No utilizar muestras hemolizadas. Urgencia Hematología Unidad crítica: 1 hora GES: 2 horas Hospitalizados: 2 horas Externos: 24 horas

TRIGLICERIDOS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de hiperlipidemia Glicerol fosfato oxidasa Dieta libre de grasas y alcohol por 48 hrs. Ayuno estricto por 12 hrs. Consumo de comida liviana el día antes del examen. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 28 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

T3 (TRIYODOTIRONINA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en la evaluación del estado tiroídeo Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 6 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

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03-05-2014

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3 1

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03-05-2019

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T4 (TIROXINA) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en la evaluación del estado tiroídeo Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 6 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

T4 LIBRE USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en la evaluación del estado tiroídeo Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 6 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

TROPONINA I USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

Ayuda en el diagnóstico de infarto de miocardio y para la estratificación del riesgo en pacientes con síndrome coronario agudo con respecto a riesgo relativo de mortalidad, de infarto al miocardio o de probabilidad elevada de episodios de isquemia Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa Lila (EDTA) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 8 horas 2 °C a 8 °C hasta 72 horas

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TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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3 1

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03-05-2019

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En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

TSH (HORMONA TIROESTIMULANTE) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico del estado funcional tiroideo Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 24 horas 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 8 horas Externos: 24 horas

UREA Y BUN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de determinadas nefropatías y metabolopatías. Ureasa Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 20 °C a 25 °C hasta 7 días 2 °C a 8 °C hasta 7 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

VANCOMICINA MINIMO Y MAXIMO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

Monitorización de las concentraciones del fármaco. Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas

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REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA

SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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03-05-2014

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3 1

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No requiere ayuno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Nivel C0: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente. Nivel C2: 2 horas después de la administración del medicamento. Anotar en orden y tubo los niveles C0 y C2 que corresponden. Especificar en la orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. El volumen que indique el tubo 15 – 25 °C hasta 2 días 2 - 8°C hasta 8 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. El tiempo de recolección de la muestra de sangre, en relación a la dosis, es crítico para la correcta interpretación del nivel sérico obtenido. Otros factores que afectan la selección del tiempo de la toma de muestra son: el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo. Urgencia Química Clínica e Inmunoanálisis Hospitalizado: Menos de 4 horas

V.D.R.L. (VENEREAL DISEASE RESEARCH LABORATORY) EN SUERO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo para el diagnóstico de sifilis Floculación Ninguno Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Lo que indique el tubo 2 – 8 °C hasta 3 días Enviar las muestras al laboratorio, adjuntar planilla e indicar el grupo de pesquisa. Si las muestras no se envían el mismo día al laboratorio se deben refrigerar. Serología de Sífilis (VDRL) 1 día

VELOCIDAD DE SEDIMENTACION (VHS) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

Método inespecífico para la detección de procesos inflamatorios, neoplásicos e infecciosos Resultados Equipo SRS 100/II correlacionados con Westergren Ninguno Sangre total Tubo tapa Negra especial (Citrato de Sodio). Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.. Golpear suavemente para obtener una buena homogenización de la muestra. El volumen que indique el tubo Temperatura ambiente hasta 6 horas Transportar las muestras en gradillas de forma vertical. No aplica Hematología

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TIEMPO DE RESPUESTA

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Unidad crítica: 2 horas GES: 2 horas Hospitalizados: 2 horas Externos: 24 horas

VIH/SIDA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de las infecciones por VIH y para el cribado de muestras de donantes de sangre y plasma Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas Ayuno no indispensable. Suero o Plasma Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El procedimiento de examen para la detección del virus de la inmunodeficiencia humana está regulado en la normativa RES Exenta Nº 371 del 02 de Febrero de 2001. (ver ANEXO 5) El volumen que indique el tubo 2 °C a 8 °C hasta 14 días En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Urgencia Química clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: Menos de 4 horas Externos: 24 horas

VITAMINA B12 USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de anemia megaloblástica y trastornos carenciales Inmunoensayo de electroquimioluminiscencia Ayuno no indispensable. Suero Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. El volumen que indique el tubo 2°C a 8 °C 24 horas -20°C hasta 1 mes En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte. No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas Química Clínica e Inmunoanálisis 1 – 2 veces a la semana

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INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA DE MUESTRAS DE ORINA BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE ORINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Régimen seco la tarde anterior desde las 18 hrs. en adelante Orina Envase estéril con cierre hermético Obtención en forma espontánea de la primera micción de la mañana, segundo chorro, previa higiene externa con agua corriente en envase limpio, de preferencia estéril y de boca suficientemente ancha para posibilitar la recolección directa. Para diagnóstico obtener 6 muestras matinales, tomadas en días sucesivos. Para control de tratamiento obtener 3 muestras matinales tomadas en días sucesivos en el mes. La orina se puede obtener por cateterismo o por post masaje prostático. Mínimo 50 ml de orina Mantenerlas refrigeradas a 4º C hasta el momento de su procesamiento. Preservar las muestras de la luz solar y el calor. Procesar las muestras inmediatamente para evitar interferencias de Mycobacterias atípicas. Bacteriología de la Tuberculosis Baciloscopía: 48 hrs Cultivo: 60 días

CREATININA EN ORINA DE 24 HORAS y CLEARENCE USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA

Evaluación de la filtración glomerular Picrato alcalino cinético Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón, luego enjuagar con abundante agua. Orina de 24 hrs. Envase de propileno con capacidad para recolectar la orina de 24 hr, de un volumen aproximado de 2 a 3 lt El período de recolección comienza a las 8 de la mañana, eliminando la primera orina. A partir de ese momento, juntar toda su orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente. Utilice un envase limpio y seco. Mantener el envase cerrado y en lugar fresco hasta el momento de llevar al laboratorio. El día que termine la recolección llevar la totalidad de su orina al laboratorio. Durante el día de recolección el paciente debe permanecer en reposo relativo (no realizar esfuerzos) Anotar la diuresis en la orden (volumen exacto de orina), talla y peso del paciente. Toda la orina recolectada durante 24 hr. 20 °C a 25 °C hasta 2 días 2 °C a 8 °C hasta 6 días Llevar la muestra al laboratorio antes de 2 horas de recolectada. Evitar la exposición directa a la luz solar. Muestras con partículas deben ser centrifugadas

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SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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Urgencia Química e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora Hospitalizado: 1 hora Externos: 24 horas

CULTIVO ORINA POR PUNCION VESICAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico para infecciones urinarias. Método de referencia para urocultivo para evitar la contaminación con flora uretral. Cultivo cuantitativo Retención de orina por 3 horas o más. Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento Orina Aguja calibre 19 Jeringa de 10 ml Antiséptico Anestesia local La toma de muestra debe ser realizada por profesional médico. El paciente debe tener la vejiga palpable. Desinfectar la zona y colocar anestesia local. Ubicar al paciente en posición decúbito supino. Puncionar la vejiga a 1,5 cm de la sínfisis pubiana, en la línea media con una jeringa de 10 ml y con aguja larga (calibre 19). Aspirar el contenido vesical. Toma de muestra recomendada en pacientes pediátricos donde no sea posible o fiable tomar muestra por recolector Mínimo 1 ml Unidades refrigerantes. Enviar la jeringa sellada sin aguja inmediatamente al laboratorio con unidades refrigerantes. No aplica Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO ORINA DE SEGUNDO CHORRO O POR RECOLECTOR (UROCULTIVO) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

Apoyo diagnóstico para infecciones urinarias. Cultivo con recuento semicuantitativo Retención de orina por 3 horas o más Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Orina Frasco estéril con tapa rosca Tubo tapa gris de goma para urocultivo Muestra tomada por personal capacitado, pacientes o familiares. Recomendada en adultos y niños que controlan esfínter. Preferir la primera orina de la mañana o retención mínima de 3-4 horas. Realizar aseo prolijo de la zona con abundante agua y jabón. Depositar la orina directamente en el frasco de boca ancha estéril. En caso de recolectores, enviar el recolector dentro de un frasco de orina sin manipular al laboratorio. Traspasar a tubo tapa gris para urocultivo El volumen que indique el tubo

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio en un tiempo no superior a 4 horas No aplica. Microbiología 24 a 72 horas hábiles

ELECTROFORESIS E INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN ORINA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de la función renal y detección de proteínas monoclonales Electroforesis e Inmunofijación Ninguno Orina de 24 horas Envase de propileno con capacidad para recolectar la orina de 24 hr, de un volumen aproximado de 2 a 3 lt Frasco de plástico con tapa rosca Tubo tapa blanca o roja (Sin aditivos) Indicaciones procedimiento de toma de muestra de orina de 24 horas (pág 22) El volumen que indique el tubo. 2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 1 mes Enviar dos tubos de muestras al Laboratorio antes de 2 horas. Una muestra para procesar la Electroforésis o Inmunofijación y una segunda muestra para cuantificar las proteínas totales. Ninguna Inmunología 5 días hábiles

ORINA EXAMEN COMPLETO: FISICOQUIMICO Y SEDIMENTO URINARIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico diferencial de alteraciones nefro-urológicas Tira reactiva y Microscopía Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón, luego enjuagar con abundante agua. Primera orina de la mañana o de 8 horas de retención Frasco de plástico estéril. Tubo tapa rojo con amarillo (8 ml) para sedimento urinario Primera orina de la mañana. Segundo chorro colectado directamente en el envase. Realizar traspaso a Tubo para sedimento urinario. En lactantes y niños de corta edad utilizar recolectores pediátricos. En pacientes con sonda permanente aspirar muestra de orina con jeringa, puncionar en el punto de unión con el tubo de drenaje; vaciar al envase. 20 ml en frasco de plástico estéril Mantener a temperatura ambiente si la muestra ha sido traspasada a tubo para sedimento urinario. Pacientes ambulatorios: mantener la muestra refrigerada antes de ser transportada al Laboratorio. Enviar la muestra al laboratorio antes de 2 horas de recolectada evitando la exposición directa a la luz solar. No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis 24 horas

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Fecha vigencia:

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MICROALBUMINURIA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Evaluación de daño glomerular. Turbidimétrica Ninguno Orina de 24 horas Envase de propileno con capacidad para recolectar la orina de 24 hr, de un volumen aproximado de 2 a 3 lt Frasco de plástico con tapa rosca. Tubo tapa blanca o roja (Sin aditivos) Indicaciones procedimiento de toma de muestra de orina de 24 horas (pág 22) Traspasar a tubo sin aditivos. Indicar en solicitud de exámenes que es orina de 24 hrs. El volumen que indique el tubo. Análisis inmediato después de la recogida 4 °C hasta 2 semanas Enviar la muestra al laboratorio antes de 2 horas. Ninguno Química Clínica e inmunoanálisis Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas

PROTEINAS DE BENCE JONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Marcador para diagnóstico y pronóstico de Mieloma Múltiple, Enfermedad por depósito de cadenas livianas. Termoprecipitación Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón, luego enjuagar con abundante agua. Orina de 24 horas Envase de propileno con capacidad para recolectar la orina de 24 hr, de un volumen aproximado de 2 a 3 lt Frasco de plástico con tapa rosca. Tubo tapa blanca o roja (Sin aditivos) Indicaciones procedimiento de toma de muestra de orina de 24 horas (pág 22) Traspasar a tubo sin aditivos. Indicar en solicitud de exámenes que es orina de 24 hrs. En volumen que indique el tubo. Muestra refrigerada Enviar la muestra al laboratorio lo antes posible. No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis 24 horas

QUIMICA DE ORINA CUANTITATIVA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE

Diagnóstico diferencial de alteraciones nefro-urológicas El correspondiente a cada analito Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón, luego enjuagar con abundante agua.

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TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Página 83 de 159

Primera orina de la mañana o de 8 horas de retención Orina de 24 horas Envase de propileno con capacidad para recolectar la orina de 24 hr, de un volumen aproximado de 2 a 3 lt Frasco de plástico con tapa rosca. Tubo tapa blanca o roja (Sin aditivos) Orina Aislada: Primera orina de la mañana. Segundo chorro colectado directamente en el envase. Realizar traspaso a Tubo sin aditivos En lactantes y niños de corta edad utilizar recolectores pediátricos. En pacientes con sonda permanente aspirar muestra de orina con jeringa, puncionar en el punto de unión con el tubo de drenaje; vaciar al envase. Indicar en solicitud de exámenes que es orina aislada. Orina de 24 horas: Seguir indicaciones procedimiento de toma de muestra de orina de 24 horas (pág 22) Traspasar a tubo sin aditivos. Indicar en solicitud de exámenes que es orina de 24 hrs. Orina aislada: volumen que indica el tubo Orina de 24 horas: Toda la orina recolectada durante 24 horas. Muestra refrigerada Enviar la muestra al laboratorio antes de 2 horas de recolectada evitando la exposición directa a la luz solar. No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis 24 horas

SCREENING METABOLICO EN ORINA USO DIAGNOSTICO

METODO UTILIZADO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Pesquisa de enfermedades metabólicas. Cloruro Férrico (FeCl3) 2-4 Dinitrofenilhidrazina (2-4 DNFH) Benedict Cualitativo Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón, luego enjuagar con abundante agua. Orina fresca Frasco de propileno con tapa rosca. Colector de orina Primera orina de la mañana. Segundo chorro colectado directamente en el envase y colocar la tapa. En lactantes y niños de corta edad se utilizan colectores pediátricos. En pacientes con sonda permanente aspirar muestra de orina con jeringa, puncionándola en el punto de unión con el tubo de drenaje; vaciar al envase. Volumen mínimo de 4 ml 2 ºC a 8 ºC hasta 6 horas Enviar la muestra al laboratorio antes de 2 horas de recolectada evitando la exposición a la luz solar. Las muestras se recepcionan en laboratorio de screening neonatal (PKU),3º piso del CAA, hasta las 11:00 Hrs No utilizar orinas con más de 2 horas a temperatura ambiente Screening neonatal (PKU) 1 día hábil

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INDICACIONES ESPECIFICAS DEPOSICIONES

PARA

TOMA

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DE

MUESTRAS

DE

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE DEPOSICIONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ninguno. Deposiciones Envase limpio, no necesariamente estéril, de boca ancha y cierre hermético Examen restringido a solicitud del médico especialista; por su alta contaminación y bajo rendimiento. No agregar conservantes (formol) para preservar la viabilidad de las micobacterias. 3 muestras de días consecutivos, de cantidad no superior a 5 ml. Mantenerlas refrigeradas a 4º C hasta el momento de su procesamiento. Preservar las muestras de la luz solar y el calor. Muestra naturalmente muy contaminada. Tuberculosis Baciloscopía: 48 hrs. Cultivo: 60 días

COPROCULTIVO USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección del agente etiológico y estudio de susceptibilidad antimicrobiana en síndrome diarreico agudo. Cultivo para búsqueda de Shigella spp., Salmonella spp. Yersinia spp. Cultivo para búsqueda de Vibrio spp. Tinción de Hucker para Campylobacter spp. (Solo si es solicitado) Paciente sin tratamiento antibiótico Deposiciones Tórula con medio de transporte CARY BLAIR. Suero fisiológico estéril Tomar la muestra de deposición en etapa aguda de la enfermedad. La deposición debe ser fresca, recién emitida y debe incluir, si los hay, trozos de epitelio o mucus con sangre. La técnica de recolección depende de la edad del paciente. Ver toma de muestra para coprocultivo. Muestra única Temperatura ambiente. Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas No aplica. Microbiología Coprocultivo: 3 días. Tinción de Hucker: 3 días hábiles.

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ESTEATOCRITO ACIDO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación de grasas en deposiciones Micrométodo semicuantitativo El paciente no debe suspender ningún tipo de tratamiento ni modificar su dieta. Deposiciones Frasco de plástico limpio y seco con paleta. Depositar la primera deposición del día en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Se debe recolectar la primera deposición del día . Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco. La cantidad debe ser aproximadamente la mitad del frasco de plástico Mantener frasco refrigerado hasta su traslado al laboratorio Muestra única 2 a 8° C Transportar inmediatamente con unidad refrigerante. Enviar las muestras de Lunes a Jueves hasta las 11:00 hrs. No aplica Microbiología 5 horas

LEUCOCITOS FECALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

La presencia de Leucocitos en las deposiciones puede estar estrechamente relacionada con un cuadro de infección gastrointestinal. Tinción con azul de metileno, observación microscópica. Ninguno. Deposiciones Frasco limpio y seco con paleta Recolectar deposición fresca en un frasco limpio y seco con ayuda de una paleta Evitar el contacto de la deposición con orina y agua Muestra única No aplica. Transportar inmediatamente a temperatura ambiente No aplica. Microbiología 2 días hábiles

ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

Detección de Rotavirus y Adenovirus en deposiciones Inmunocromatografía Ninguno Deposiciones Frasco de plástico limpio con paleta, con o sin buffer PBS dependiendo del tipo de muestra. Tórulas estériles. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco.

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LABORATORIO CLINICO CAA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 86 de 159

En caso de deposiciones líquidas se debe tomar la muestra en frasco con buffer PBS ayudado con tórulas estériles. En paciente con pañal, frotar la tórula de madera, humedecida en el buffer, contra la zona del pañal donde se visualiza la muestra. En paciente sin pañal, evacuar la deposición en un recipiente limpio y seco desde el cual se tomará la muestra con dos tórulas de madera. Cortar el extremo distal de la tórula. Dejar caer la tórula dentro del frasco con buffer PBS. Muestra única, mayor a 0.5 gramos 2 a 8° C. Transportar inmediatamente con unidad refrigerante. No aplica. Microbiología 2 horas hábiles

TOXINA A Y B DE Clostridium difficile EN DEPOSICIONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnostico en casos de diarreas agudas causadas por Clostridium difficile Inmunocromatografía No aplica. Deposiciones Frasco de plástico limpio y seco con paleta. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco. Muestra única. No aplica Transportar inmediatamente con unidad refrigerante Solo se procesarán muestras frescas, con menos de 3 horas de emisión. Microbiología 2 horas hábiles

NOROVIRUS EN DEPOSICIONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de Norovirus en deposiciones Inmunocromatografía Ninguno Deposiciones Frasco de plástico limpio y seco con paleta. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco. Muestra única. No aplica Transportar inmediatamente con unidad refrigerante No aplica Microbiología 8 horas hábiles

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3 1

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03-05-2019

Página 87 de 159

Helicobacter pylori EN DEPOSICIONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de Helicobacter pylori en deposiciones Inmunocromatografía Ninguno Deposiciones Frasco de plástico limpio y seco con paleta. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco. Mantener frasco refrigerado hasta su traslado al laboratorio Muestra única. No aplica Transportar inmediatamente con unidad refrigerante No aplica Microbiología 8 horas hábiles

PARASITOLOGICO SERIADO DE DEPOSICIONES (PSD) USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

Búsqueda de enteroparásitos. Búsqueda dirigida de Cystoisospora belli; Cryptosporidium spp; Cyclospora cayetanensis y Fasciola hepática. Técnica de Burrows modificado. Tinción de ZiehlNeelsen. El paciente no debe ingerir antibióticos, quimioterapéuticos, purgantes oleosos, medicamentos con calcio, bario o carbón ni antiparasitarios en los dos días previos al examen Deposiciones 3 frascos con solución fijadora. Utilizar muestras de deposición emitidas día por medio. Depositar muestra de deposición fresca, del tamaño de un poroto, a cada frasco con fijador, mezclar con ayuda de la paleta. Evitar el contacto de la muestra con orina. Repita el procedimiento las veces indicadas (por lo menos tres) Depositar 1 muestra por frasco, los que deben ser almacenados en un lugar fresco y seco durante el periodo que dure la toma de muestra. En lactantes, obtener la muestra recién emitida desde el pañal, asegurando que no entró en contacto con orina. Si el paciente es lactante hospitalizado obtener la muestra de deposición con sonda rectal. El volumen máximo de deposición debe ser la mitad de la cantidad de fijador que contiene el frasco. Coproparasitológico seriado de deposiciones: 3 muestras, una por frasco. Cystoisospora belli: 5 muestras en frascos distintos. Cryptosporidium spp: de 3 a 5 muestras en frascos distintos. Cyclospora cayetanensis: de 3 a 5 muestras en frascos distintos. Fasciola hepática: mínimo 5 muestras en frascos distintos. Temperatura ambiente Hasta una semana luego de la última muestra. No aplica Microbiología

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TIEMPO DE RESPUESTA

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3 1

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03-05-2019

Página 88 de 159

Coproparasitológico: 3 días hábiles. Cystoisospora belli: 5 días hábiles. Cryptosporidium spp: 5 días hábiles. Cyclospora cayetanensis: 5 días hábiles. Fasciola hepática: 5 días hábiles.

SANGRE OCULTA EN DEPOSICIONES (TEST DE WEBER) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de sangre oculta en deposiciones Inmunocromatografía Ninguno. Deposiciones Frasco de plástico limpio y seco con paleta. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco, evitar el contacto con orina y agua. Tomar una pequeña muestra con la paleta y depositarlo en el frasco. Repetir el proceso durante 3 días consecutivos. Depositar las muestras en el mismo contenedor. Mantener frasco refrigerado hasta su traslado al laboratorio 3 muestras en un frasco Conservar refrigerado hasta su transporte al laboratorio. Transportar inmediatamente luego de la última muestra con unidades refrigerantes. No aplica. Microbiología 8 horas

TEST DE GRAHAM USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Examen para el apoyo diagnóstico de infecciones causadas por Enterobius vermicularis (Oxyuriasis). Examen microscópico No utilizar pomadas, talco ni loción en la región anal la noche anterior Muestra perianal. 5 láminas de vidrio con cinta adhesiva. La toma de muestra debe ser realizada por familiar o cercano al paciente. Obtener las muestras a primera hora de la mañana, sin aseo genital y antes de defecar u orinar. Desprender la cinta adhesiva de la lámina de vidrio, entreabrir la zona peri anal y adherir la cinta en los alrededores del ano y entre las nalgas. Si observa algún gusano también adhiéralo a la cinta. Pegar nuevamente la cinta adhesiva bien estirada en la lámina de vidrio. Repetir este procedimiento durante 5 días consecutivos utilizando una cinta adhesiva diferente cada mañana. 5 muestras (una diaria) Temperatura ambiente Llevar las muestras al mismo tiempo al laboratorio en el mismo envoltorio en las que fueron entregadas No se aceptaran muestras con deposiciones. Microbiología 3 días hábiles.

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INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA DE MUESTRAS EN LIQUIDOS BIOLOGICOS ADENOSINDEAMINASA EN LIQUIDOS LCR Y PLEURAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Un incremento de la enzima en líquidos es sugerente de derrame tuberculoso o de una meningitis tuberculosa. Además se eleva en otras infecciones. Espectrofotométrico No se requiere ayuno LCR o plural Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Toma de muestra realizada solo por profesional médico. Líquido pleural: muestra obtenida por punción. Líquido cefalorraquídeo: muestra obtenida por punción lumbar o, con menor frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular. Volumen que indique el tubo con un margen de 10% De no ser procesada a la brevedad, conservar refrigerado Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio. No utilizar muestras hemolizadas Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 1 hora GES: 2 horas Hospitalizados: 6 horas Externos: 24 horas

ALBUMINA, AMILASA, COLESTEROL, LDH, LIPASA Y PROTEINAS TOTALES EN LIQUIDOS BIOLOGICOS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de inflamaciones, infecciones o procesos malignos. El correspondiente a cada analito Ninguno Líquidos biológicos Líquidos pleural, ascítico y peritoneal: Tubo tapa verde (Heparina de Litio) Toma de muestra realizada solo por profesional médico. Líquidos pleural, ascítico y peritoneal: muestra obtenida por punción. Si se solicita pH en un líquido de derrame, hay que recoger anaeróbicamente la muestra en una jeringa heparinizada, mantenerla refrigerada, y realizarlo si es posible en los siguientes 20 minutos desde su extracción Líquidos pleural, ascítico y peritoneal: 3 ml de muestra. De no ser procesado a la brevedad conservar refrigerado Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio. No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis Unidad crítica: 2 horas GES: 4 horas Hospitalizados: 4 horas Externos: 24 horas

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3 1

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03-05-2019

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BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE Koch DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO, PLEURAL, ASCITICO Y OTROS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ninguno Líquido biológico Envase estéril. La obtención de la muestra está reservada a profesional médico. Se procesan todas las muestras extraídas. Mínimo 2 ml de muestra. Enviar las muestras inmediatamente al laboratorio. Transportar inmediatamente al laboratorio En caso que el retraso sea inevitable, el líquido debe ser refrigerado a 4ºC para evitar crecimiento bacteriano y la alteración de los componentes celulares y la composición química. Preservar las muestras de la luz solar y el calor Tuberculosis Baciloscopía: 48 hrs Cultivo: 60 días

BANDAS OLIGOCLONALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Ayuda en el diagnóstico principalmente de Esclerosis Múltiple Isoelectroenfoque Ninguno LCR y suero Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos) Tubo tapa amarilla (gel separador) o Tubo tapa roja (sin aditivos) LCR: La obtención de la muestra está reservada a profesional médico. Suero: obtenida por punción venosa utilizándola técnica de extracción por vacío. Las muestras de LCR y suero deben ser tomadas al mismo tiempo. LCR: Mínimo 1 ml de muestra. Suero: Volumen que indique el tubo LCR: -20 °C hasta 1 mes Suero: -20 °C hasta 3 meses Enviar las muestras inmediatamente al laboratorio junto con la orden médica. Ninguna Inmunología 20 días hábiles

CITOQUIMICO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO (LCR) (Glucosa, Proteínas totales y Cloro) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Diagnóstico de Meningitis Bacteriana, viral y tuberculosa, Tu cerebral, Síndrome de Guillain Barré Físico-Químico: el correspondiente a cada analito. Citológico: lectura en cámara de Nebauer Ninguno Líquido cefalorraquídeo y plasma Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos)

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TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 91 de 159

Tubo tapa Lila (EDTA) LCR: Muestra obtenida por punción lumbar, cisternal, cervical o ventricular y realizada profesional médico capacitado. No utilizar guantes empolvados con talco cuando se está extrayendo líquido cefalorraquídeo, ya que podría alterar el examen citológico del mismo. Plasma: obtenida por punción venosa utilizándola técnica de extracción por vacío. Las muestras de LCR y plasma deben ser tomadas al mismo tiempo. LCR: volumen de 2-3 ml Plasma: volumen que indique el tubo. Para cultivo microbiológico se requieren 2 muestras adicionales. Para examen adicional de electroforesis en LCR, se utiliza la misma muestra. De no ser procesado a la brevedad conservar refrigerada entre 2 a 8 °C Una vez obtenida la muestra debe ser enviada inmediatamente al laboratorio. No aplica Hematología Unidad crítica: 2 horas GES: 4 horas Hospitalizados: 4 horas Externos: 24 horas

CITOQUIMICO DE LIQUIDO PLEURAL, ASCITICO Y PERITONEAL, SINOVIAL, PERICARDICO Y OTROS USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Recuento diferencial de las células que contiene un trasudado (de origen no inflamatorio) o un exudado (de origen inflamatorio) particularmente de origen pleural o peritoneal. El predominio de leucocitos polinucleares (glóbulos de pus) indica un proceso infeccioso agudo. El predominio de linfocitos significa generalmente TBC. El predominio de células mesoteliales, es seguro de trasudado. Físico-Químico: el correspondiente a cada analito. Citológico: lectura en cámara de Nebauer Ninguno Líquidos biológicos Tubo tapa Verde (Heparina de Litio) Tubo tapa Lila (EDTA) Muestra obtenida por punción. Toma de muestra realizada solo por profesional médico. Si se solicita pH en líquido de derrame, recoger la muestra anaeróbicamente en una jeringa heparinizada, mantenerla refrigerada y realizarlo si es posible en los siguientes 20 minutos desde su extracción. El volumen que indique el tubo. Si se solicitan pruebas bioquímicas especiales o un estudio microbiológico o citológico extenso, se requerirá una muestra de 3-5 ml. De no ser procesado a la brevedad conservar refrigerado Una vez obtenida la muestra enviarla inmediatamente al laboratorio No aplica Hematología Unidad crítica: 2 horas GES: 4 horas Hospitalizados: 4 horas Externos: 24 horas

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03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 92 de 159

CULTIVO CORRIENTE DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO (LCR) USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de meningitis bacteriana o fúngica. Cultivo de LCR Tinción de Gram Tinta china (solo si es solicitada) Látex LCR (solo si es solicitada) Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. LCR Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos) Toma de muestra obtenida por punción lumbar realizada por profesional médico. Mínimo 1 ml de líquido. No aplica. Transportar inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. No serán procesadas muestras con medio de transporte o anticoagulante. Microbiología Cultivo: 72 horas. Tinción de Gram: 1 hora. Látex: 2 horas. Tinta China: 2 horas.

CULTIVO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO POR DERIVATIVA VENTRICULO PERITONEAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de meningitis bacteriana o fúngica en paciente con derivativa ventrículo peritoneal. Cultivo de LCR Tinción de Gram Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. LCR Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos), de preferencia 2 tubos. Muestra obtenida por punción lumbar realizado por profesional médico. Desinfectar zona sobre el reservorio con antiséptico, respetando los tiempos de acción. Mínimo 1 ml de líquido No aplica. Las muestras deben ser transportadas inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. No serán procesadas muestras con medio de transporte o anticoagulante. Microbiología 72 horas

CULTIVO DE LIQUIDOS ESTERILES NO LCR USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

Detección de microorganismos patógenos en líquidos de cavidades estériles. Tinción de Gram Cultivo de líquido estéril Cultivo Anaeróbio. Cultivo automatizado (Opcional) Ninguno

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TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 93 de 159

Líquidos Pleural, Ascítico, Pericárdico, Peritoneal, Sinovial o Articular y Amniótico. Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos) Frasco de hemocultivo automatizado (Opcional) Toma de muestra realizada por profesional médico, siguiendo la técnica aséptica. Para volúmenes de muestra superior a 5 ml, se puede inocular el líquido en un frasco de Hemocultivo aerobio o anaerobio. 3 ml de muestra 5-10 ml para frasco de hemocultivo No aplica. La muestra debe ser transportada inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. No serán procesadas muestras con medio de transporte o anticoagulante. Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO LECHE MATERNA USO DIAGNOSTICO MÉTODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de microorganismos patógenos en leche materna. Tinción de Gram Cultivo de cuantitativo de Leche Materna. Ninguno Leche materna. Frasco estéril de plástico tapa rosca Muestra debe ser tomada por profesional. Limpiar cuidadosamente la zona con solución jabonosa. Secar con tórulas estériles. Presionar la mama, sin tocar el pezón, para que la leche caiga directamente al frasco estéril. 1 ml de muestra Temperatura ambiente La muestra debe ser transportada inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. No aplica Microbiología 72 horas hábiles

.

ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN LCR USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCIÓN TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de proteínas monoclonales. Electroforesis en gel de agarosa Ninguno LCR Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos) La toma de muestra se realiza por punción lumbar y debe ser realizada por profesional médico. 2 ml de LCR -20 °C hasta 3 meses Enviar inmediatamente al laboratorio Ninguna Inmunología 5 días hábiles

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LABORATORIO CLINICO CAA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 94 de 159

IGA SALIVAL

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación de la susceptibilidad a infecciones principalmente del tracto respiratorio. Nefelometría Ninguno Saliva Tubo tapa amarilla (con gel separador) o tubo tapa roja (sin aditivos) Introducir una mota de algodón debajo de la lengua, una vez empapada con saliva, estrujar el algodón en el tubo. Repetir la operación hasta completar el volumen requerido 1 ml mínimo 2 °C a 8 ° hasta 8 días En gradillas de forma vertical. No aplica Inmunología 1 día hábil

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Hemotorax, Hematocrito pleural > 50 % hematocrito en sangre Automatizado (analizador hematológico) Ninguno Líquido Pleural Tubo tapa Lila (EDTA) Muestra obtenida por punción, realizada solo por profesional médico Lo que indique el tubo De no ser procesado a la brevedad conservar refrigerado. Deben ser transportadas en gradillas de forma vertical. No aplica Hematología 6 horas

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA

PLEUROCRITO

V.D.R.L. (VENEREAL DISEASE RESEARCH LABORATORY) EN LCR USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo para el diagnóstico de sifilis Floculación Ninguno LCR Tubo tapa blanca estéril (sin aditivos) Muestra obtenida por punción y realizada solo por profesional médico 1 ml 2 – 8 °C hasta 7 días Adjuntar planilla e indicar el grupo de pesquisa. Ninguna Serología de Sifilis 1 día

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INDICACIONES SECRECIONES

ESPECIFICAS

PARA

TOMA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 95 de 159

DE

MUESTRAS

DE

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE ABCESOS Y SECRECIONES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ninguno Abcesos y secreciones Envase estéril de volumen adecuado Utilizar aguja, pipeta Pasteur o tórula estéril para su obtención. Recolectar en envase estéril de volumen adecuado. Se procesan todas las muestras extraídas al paciente. Mínimo de 2 ml de muestra. Mantenerlas refrigeradas a 4º C hasta el momento de su procesamiento No utilizar tubos con medio de transporte. Enviar al laboratorio inmediatamente. Preservar las muestras de la luz solar y el calor No aplica. Tuberculosis Baciloscopía 48 hrs. Cultivo 60 días

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE EXPECTORACION USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen En ayunas y sin aseo bucal, solamente enjuague de la boca con agua. El paciente debe obtener esputo bronquial “de las profundidades del pecho” y no saliva. Si está en tratamiento antituberculoso, no debe suspenderlo para exámenes de control. Expectoración Cajas cierre hermético, fondo negro. Expectoración espontánea: considerada la muestra ideal por su buen rendimiento. Tomar dos muestras para diagnóstico: una inmediata en el momento de la consulta y otra matinal al día siguiente. Realizar la toma de muestra en un espacio ventilado, en forma individual, para evitar contaminación con aerosoles que se producen en el momento de toser. Expectoración inducida: en pacientes que no producen muestra espontánea o en niños, inducir la expectoración con maniobras kinésicas o por nebulización laríngea. 2 ml por muestra 4 °C hasta 5 días protegidas de la luz Enviar al laboratorio en medio de transporte establecido, dentro de un máximo de 3-4 días desde su recolección y deben ser refrigeradas mientras esperan el envío. Preservar las muestras de la luz solar, la desecación y el calor. No aplica Tuberculosis Baciloscopía 48 hrs. Cultivo 60 días

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LABORATORIO CLINICO CAA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 96 de 159

CULTIVO CAVIDAD OROFARINGEA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de Angina de Vincent en muestras de mucosas orales. Cultivo Cavidad Orofaringea Tinción de Gram Cultivo para Anaerobios Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción cavidad orofaríngea No aplica Toma de muestra realizada por profesional capacitado del laboratorio. Contactar con la sección de Microbiología para programar fecha y hora de toma de muestra (Anexo 417693). No aplica No aplica No aplica No aplica Microbiología 96 horas hábiles

CULTIVO CAVIDADES PARANASALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Determinación del agente etiológico en infecciones de los senos paranasales. Tinción de Gram Cultivo Cavidad Paranasal. Cultivo para Anaerobios Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción cavidades paranasales Antiséptico Frasco estéril Medio de transporte de anaerobios. Material quirúrgico de O.R.L. Toma de muestra realizada por médico especialista Otorrinolaringólogo por punción aspirativa. 1 ml de muestra Temperatura ambiente hasta su transporte al laboratorio. Enviar al Laboratorio inmediatamente a temperatura ambiente. No aplica Microbiología 72 horas hábiles.

CULTIVO FLUJO VAGINAL USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

Estudio de cuadros de vaginitis y vaginosis bacteriana y búsqueda de portación de microorganismos potencialmente infecciosos para los recién nacidos. Cultivo de Flujo Vaginal Cultivo de hongos Examen directo al fresco Tinción de Gram El día del examen NO realizar duchas vaginales. No debe estar en periodo menstrual, en caso de estarlo esperar mínimo cinco días.

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TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 97 de 159

Dos días antes de la toma del examen no colocar tampones, espumas anticonceptivas, cremas u otros medicamentos por vía vaginal. No tener relaciones sexuales 24 horas antes de la toma de la muestra. Secreción vaginal Tórula de algodón con medio de transporte Stuart. Espéculo vaginal estéril. La toma de muestra debe ser realizada por profesional capacitado. Ver toma de muestra para flujo vaginal. Muestra única Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas Muestra no útil para estudio de Chlamydia Trachomatis, Neisseria gonorrhoeae ni Mycoplasma y Ureaplasma Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO SECRECION BRONQUIAL USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de infecciones del árbol respiratorio. Tinción de Gram Cultivo Secreción Bronquial Cultivo para Hongos Tinción de Kinyoun para Nocardia spp. (Solo si es solicitado) Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción Bronquial Frasco estéril de boca ancha. Suero fisiológico estéril Toma de muestra efectuada por profesional capacitado. Enjuagar enérgicamente la boca exclusivamente con agua hervida o estéril. Toser profundo y obtener la muestra por expectoración espontánea o con ayuda de Kinesiólogo, especialmente matinal. Depositar el desgarro directamente en frasco de boca ancha estéril. Proceso agudo extra-hospitalario: Única Proceso crónico: Deseable 2 o 3 del mismo día con intervalos de media hora. Proceso intrahospitalario: 2 o más en días consecutivos Volumen de muestra: de 2 a 10 ml Temperatura ambiente Enviar inmediato al laboratorio sin medio de transporte a temperatura ambiente. No aplica Microbiología Cultivo Secreción Bronquial: 72 horas hábiles Tinción de Kinyoun (Nocardia spp): 3 días hábiles

CULTIVO SECRECION CONJUNTIVAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Determinación de la etiología de conjuntivitis bacteriana Cultivo Secreción Conjuntival Paciente sin aplicación previa de anestésicos tópicos, colirios o antibióticos. Secreción conjuntival Tórula estéril con medio de transporte Stuart

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TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 98 de 159

Suero fisiológico estéril. Para sospecha de Chlamydia, utilizar tórula especial sin medio de transporte y lámina de vidrio proporcionadas por el laboratorio. Toma de muestra efectuada por personal profesional capacitado. Humedecer la tórula con suero fisiológico estéril y frotar sobre la conjuntiva tarsal inferior y del fondo de saco conjuntival, de afuera hacia dentro. Para la investigación de Chlamydia trachomatis, invertir el párpado y frotar con tórula proporcionada por el laboratorio la superficie conjuntival. Inocular lamina con esta muestra. Muestra única por secreción Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas No aplica Microbiología 72 horas

CULTIVO SECRECION DE HERIDAS PROFUNDAS USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de agentes etiológicos y susceptibilidad antibiótica en heridas profundas infectadas. Útil para estudio de anaerobios si la toma de muestra se efectúa de manera correcta. Cultivo heridas profundas Cultivo para anaerobios El paciente debe estar sin terapia antibiótica tópica u oral. Secreción de heridas Tórula con medio de transporte Stuart Jeringa 3ml Suero fisiológico, Ringuer o agua bidestilada. Médio de transporte para anaeróbios. Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Limpiar la superficie dañada con suero estéril, Ringer o agua bidestilada. Tomar con tórula de la parte más profunda de la herida. Para estudios de anaerobios: Desinfectar la superficie y bordes de la herida con antiséptico Aspirar alrededor de 0,5 cc de secreción de la zona más profunda de la herida con jeringa estéril con o sin aguja. Si no es posible aspirar el material, tomar un trocito de tejido (6mm) con pinza estéril en forma aséptica. Inocular en el medio de transporte para anaerobios o llevar de inmediato al laboratorio. Dos muestras. Una para cultivo corriente y otra para cultivo de anaerobios. Temperatura ambiente. Muestra para cultivo de anaerobios enviar inmediatamente al laboratorio. Muestra para cultivo corriente transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas a temperatura ambiente con medio de transporte Stuart. No aplica Microbiología 72 horas hábiles.

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03-05-2019

Página 99 de 159

CULTIVO SECRECION DE HERIDAS SUPERFICIALES USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de agentes etiológicos y susceptibilidad antibiótica en heridas infectadas de poca profundidad. Cultivo Corriente El paciente debe estar sin terapia antibiótica tópica u oral. Secreción de heridas Tórula de algodón con medio de transporte Stuart. Suero fisiológico, Ringuer o agua bidestilada. Toma de muestra realizada por profesional capacitado. Limpiar la herida, eliminar toda secreción purulenta por arrastre mecánico con suero fisiológico, Ringer o agua bidestilada. Con Tórula estéril frotar el centro y bordes internos en zigzag en varios puntos de la herida. Colocar la tórula en el medio de transporte. Única por herida. Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas a temperatura ambiente en medio de transporte Stuart Muestra no útil para estudio de anaerobios. Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO SECRECION ENDOCERVICAL USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

Estudio de diversos agentes etiológicos causales de infecciones de transmisión sexual (ITS) en mujeres. Cultivo de flujo vaginal. Cultivo de hongos Examen directo al fresco Tinción de Gram Estudio de Chlamydia Trachomatis por inmunofluorescencia Directa (Solo si es solicitado) Cultivo para Neisseria gonorrhoeae (solo si es solicitado) Mycoplasma y Ureaplasma (solo si es solicitado) El día del examen NO hacerse duchas vaginales No tener periodo menstrual, en caso de tenerlo esperar mínimo cinco días. Dos días antes de la toma del examen no colocar tampones, espumas anticonceptivas, cremas u otros medicamentos por vía vaginal. No tener relaciones sexuales 24 horas antes de la toma de la muestra. Secreción endocervical Tórula de algodón con medio de transporte Stuart. Lamina de vidrio (porta objetos) Espéculo vaginal estéril Medio de transporte Stuart para Neisseria gonorrhoeae (solo si es solicitado) Tórula, lámina especiales y fijador para Chlamydia trachomatis proporcionados por el laboratorio (solo si es solicitado) Medio de transporte para Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp (solo si es solicitado) Toma de muestra realizada por profesional capacitado. Introducir espéculo lubricado en suero fisiológico. Exponer el cuello uterino, limpiar el cérvix con tórula estéril para remover secreción vaginal y mucus.

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CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

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Edición: Revisión:

3 1

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03-05-2019

Página 100 de 159

Introducir tórula 1-2 cm. a través canal cervical y rotar con firmeza. Repetir el procedimiento con otra tórula y realizar una extensión en la lámina de vidrio para tinción de Gram Para estudio de Neisseria gonorrhoeae tomar otra tórula Stuart y trasladar la muestra inmediatamente al laboratorio. Para estudio de Chlamydia trachomatis tomar otra muestra, con un tórula especial, e inocular un círculo de la lámina de vidrio proporcionada por el laboratorio. Fijar la muestra con una gota de Metanol. Para estudio de Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp tomar otra muestra e inocular el medio de transporte especial para estos microorganismos. Muestra única. Para estudios especiales se debe tomar una nueva muestra. Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas a temperatura ambiente. Para cultivo de Neisseria gonorrhoeae trasladar de inmediato al laboratorio. No aplica. Microbiología 72 horas hábiles Chlamydia Trachomatis: 3 días hábiles. Neisseria gonorrhoeae: 5 días hábiles. Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp: 3 días hábiles.

CULTIVO SECRECION FARINGEA USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

Muestra para apoyo diagnóstico de faringitis, frente a sospecha de presencia de Streptococcus beta-hemolítico del grupo A (S. pyogenes) y otros grupos beta hemolíticos como C y G. Excepcionalmente se puede requerir búsqueda de otros patógenos (Neisseria gonorrhoeae, Corynebacterium diphtheriae), consultar al laboratorio. Cultivo Secreción Faríngea. Tinción de Gram (solo si es solicitado) Cultivo para Neisseria gonorrhoeae (solo si es solicitado) Búsqueda de Corynebacterium diphtheriae (solo si es solicitado) Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción faríngea Baja lenguas Tórulas con medio de transporte Stuart. Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Bajo visión directa, con la ayuda del baja lengua, tocar con el hisopo en todas los lugares con exudado, membranas o inflamación. Frotar las criptas tonsilares y la faringe posterior. En lo posible no tocar la mucosa oral, lengua, úvula ni dientes. Para sospecha de Difteria (Corynebacterium diphtheriae) tomar dos muestras con tórula estéril seca por el reborde de las pseudomembranas insinuando la tórula por debajo de ellas. Dar aviso de sospecha de Difteria al laboratorio. Muestra única. Para muestras especiales y Tinción de Gram enviar dos tórulas. Temperatura ambiente. Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas a temperatura ambiente. En caso de sospecha de Corynebacterium diphtheriae envío inmediato de muestra sin medio de transporte a temperatura ambiente.

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Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 101 de 159

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

No aplica Microbiología 72 horas hábiles

USO DIAGNOSTICO

Estudio de la etiología infecciosa de contenido ocular. Cultivo Secreción intraocular Cultivo para Anaerobios Cultivo para Hongos Paciente sin aplicación previa de colirios o antibióticos locales. Secreción intraocular. Jeringa Toma de muestra realizada por especialista. Realizar la siembra en pabellón en medios de cultivo proporcionados por el laboratorio, para ello coordinar con laboratorio. La mayor cantidad posible. No aplica No aplica No aplica Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO SECRECION INTRAOCULAR METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

CULTIVO SECRECION NASAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Búsqueda de portadores de S. aureus o en diagnóstico de impétigo. No es útil en el diagnóstico de rinitis o rinosinusitis. Cultivo de Secreción Nasal Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción cavidad nasal. Tórula de algodón con medio de transporte Stuart. Espéculo nasal Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Realizar aseo de la zona con suero fisiológico estéril. Obtener muestra profunda de ambas fosas nasales, ayudado con espéculo nasal. Utilizar tórulas distintas por fosa nasal. Muestra única por fosa nasal. Temperatura ambiente hasta traslado al laboratorio. Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas No aplica Microbiología 72 horas hábiles.

CULTIVO SECRECION OTICA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE

Muestra importante para conocer etiología infecciosa de Otitis externa. Cultivo Corriente. Cultivo para microorganismos fastidiosos Cultivo para Hongos Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento.

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TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

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Secreción cavidades paranasales Tórula estéril con medio de transporte Stuart Suero fisiológico estéril Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Efectuar aseo del pabellón auricular, con agua o suero fisiológico estéril y tórula, eliminando restos de secreción o pus. Tomar muestra de oído indicado, frotando con la tórula las paredes de conducto auditivo externo. Muestra única por conducto auditivo Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas No es útil para el estudio de anaerobios. Microbiología 78 horas hábiles

CULTIVO SECRECION TIMPANOCENTESIS USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de la etiología infecciosa de Otitis Media Aguda que no ha respondido al tratamiento, pacientes inmunodeprimidos o en otitis crónica. Cultivo Corriente. Cultivo para microorganismos fastidiosos Cultivo para anaerobios Cultivo para Hongos Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Secreción Tórula estéril con medio de transporte Stuart Frasco estéril Medio de transporte para anaerobios Antiséptico La muestra debe ser tomada por médico especialista. La mayor cantidad de muestra posible Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas No aplica Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO SECRECION URETRAL USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

Estudio de diversos agentes etiológicos causales de infecciones del tracto genitourinario masculino e infecciones de transmisión sexual (ITS). Cultivo Secreción Uretral. Cultivo de hongos Examen directo al fresco Tinción de Gram Estudio de Chlamydia Trachomatis por inmunofluorescencia Directa (Solo si es solicitado) Cultivo para Neisseria gonorrhoeae (solo si es solicitado) Mycoplasma y Ureaplasma (solo si es solicitado) El paciente debe estar sin terapia antibiótica.

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TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION

TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 103 de 159

Secreción uretral Agua jabonosa. Suero fisiológico estéril. Tórula fina de algodón con medio de transporte Stuart. Lamina de vidrio (porta objetos) Medio de transporte Stuart para Neisseria gonorrhoeae (solo si es solicitado) Tórula, lámina especiales y fijador para Chlamydia trachomatis proporcionados por el laboratorio (solo si es solicitado) Medio de transporte para Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp (solo si es solicitado) Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Tomar la muestra en la mañana y antes de que el paciente orine o en su defecto, esperar al menos una hora antes de tomar la muestra. Realizar aseo genital externo con agua jabonosa enjuagando con abundante suero fisiológico estéril o agua. Exprimir la uretra desde la base del pene hacia el glande, recolectar la muestra que secreta. Si no se obtiene buen resultado con lo anterior, introducir una tórula fina (seca o humedecida con suero fisiológico estéril) a través del meato urinario y rotarla suavemente. Colocar la tórula en el medio de transporte. Repetir este procedimiento y frotar la tórula contra una lámina de vidrio (porta objetos) para tinción de Gram. Para estudio de Neisseria gonorrhoeae tomar otra tórula Stuart y trasladar la muestra inmediatamente al laboratorio. Para estudio de Chlamydia trachomatis tomar otra muestra, con tórula especial, e inocular un círculo de la lámina de vidrio proporcionada por el laboratorio. Fijar la muestra con una gota de Metanol. Para estudio de Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp tomar otra muestra e inocular el medio de transporte especial para estos microorganismos. Muestra única. Para estudios especiales tomar una nueva muestra. Temperatura ambiente Transportar inmediatamente al laboratorio, en un tiempo no superior a 24 horas. Para cultivo de Neisseria gonorrhoeae trasladar de inmediato al laboratorio. No aplica Microbiología 72 horas hábiles Tinción de Gram: 4 horas Chlamydia Trachomatis: 3 días hábiles. Neisseria gonorrhoeae: 5 días hábiles. Mycoplasma spp. y Ureaplasma spp: 3 días hábiles.

ELECTROLITOS DEL SUDOR USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE

TIPO DE MUESTRA

Ayuda en el diagnóstico de Fibrosis quística. Test cuantitativo por coulometría en clorhidrómetro digital. Niño hidratado, se recomienda que el día anterior ingiera más líquido de lo normal. Traer mamadera con líquido para el procedimiento. No debe presentar fiebre ni haber tenido vómitos o diarreas en los días anteriores. Los pacientes ambulatorios no deben estar con tratamiento con antibióticos, corticoides ni con ingesta de alimentos ricos en sal (6 horas antes del examen). Sudor

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MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 104 de 159

Macroduct Kit Sistema de inducción de sudor. Toma de muestra realizada por profesional del laboratorio. Pacientes Hospitalizados y Pensionado: El servicio solicita el examen con orden para electrolitos y el profesional del laboratorio acuerda el día y la hora de la toma de muestra. Pacientes ambulatorios: Se agenda la hora disponible para todo el mes. No plica No aplica No aplica Muestra insuficiente. Pacientes que no responden al estímulo. Química Clínica e Inmunoanálisis 8 horas.

EXAMEN MICOLOGICO DE SECRECIONES, LIQUIDOS Y TEJIDOS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de infecciones micológicas en muestras de secreciones, líquidos y tejidos. Examen microscópico directo al fresco. Cultivo de hongos Paciente sin terapia antifúngica local o sistémica Depende del tipo de muestra que se requiera estudiar Depende del tipo de muestra que se requiera estudiar La toma de muestra dependerá del tipo de muestra que se requiera estudiar. No aplica Temperatura ambiente Menor a 24 horas, a temperatura ambiente No se procesarán Secreciones Bronquiales Microbiología Examen micológico directo: 24 horas. Cultivo de hongos: 15 días.

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INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA ASPIRADOS Y LAVADO BRONCOALVEOLAR

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 105 de 159

DE

MUESTRAS

DE

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE LAVADO BRONQUIAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ninguno. Muestra biológica. Envase estéril. Secreción broncoalveolar o lavado broncoalveolar esta muestra se obtiene a través del procedimiento médico de fibrobroncoscopía; las muestras, que tienen indicación de cultivo, deben procesarse precozmente, antes de las 4 horas. No inferior a 5 mL. Mantenerlas refrigeradas a 4º C hasta el momento de su procesamiento Preservar las muestras de la luz solar y el calor Los anestésicos empleados en la broncoscopía disminuyen la viabilidad del bacilo y pueden producir un retardo en el desarrollo o un cultivo falso negativo Tuberculosis. Baciloscopía: 48 hrs Cultivo: 60 días

CULTIVO ASPIRADO TRAQUEAL CUANTITATIVO USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de NAVN (Neumonia asociada a ventilación mecánica). Tiene una sensibilidad y especificidad comparable a las estrategias diagnósticas basadas en estudios Fibrobroncoscopio (LBA). Tinción de Gram Cultivo Cuantitativo de aspirado traqueal Cultivo para Hongos Examen micológico directo (Solo si es solicitado) Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Aspirado traqueal Frasco estéril de boca ancha hermético Suero fisiológico estéril Equipo de aspiración Muestra obtenida con técnica aséptica, por personal profesional capacitado. Introducir sonda de aspiración por el tubo endotraqueal y conectar el otro extremo de la sonda a un tubo de aspiración. No instilar suero fisiológico para evitar diluir la muestra y facilitar la recolección. Si las secreciones son espesas, aplicar aspiraciones intermitentes hasta conseguir la muestra. Especificar en la solicitud de examen que es un cultivo cuantitativo. Muestra única, idealmente del último líquido aspirado. Temperatura ambiente Inmediato, sin medio de transporte a temperatura ambiente. No aplica Microbiología 72 horas hábiles

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Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 106 de 159

CULTIVO LAVADO BRONCOALVEOLAR USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio microbiológico completo para bacterias, virus, hongos y parásitos. Tinción de Gram Cultivo Cuantitativo de LBA Cultivo para Hongos Examen micológico (Solo si es solicitado) Tinción de azul de toluidina para Pneumocystis jiroveci (solo si es solicitado) Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Lavado Broncoalveolar Cánula o catéter de aspiración Suero fisiológico Frasco estéril Broncoscopio Toma de muestra realizada por médico especialista. Instalar y aspirar secuencialmente alrededor de 100 ml de solución fisiológica estéril, a través del broncoscopio enclavado en un bronquio segmentario. El miniBAL usa 10 a 20 ml de esta solución. Después de cada instilación realizar una aspiración, para recuperar el máximo de volumen posible. El volumen de muestra obtenido debe ser superior al 30 % del instilado para que tenga eficacia diagnóstica. Recuperar al menos 5 ml de la solución. Descartar, idealmente, la primera aspiración ya que suele contener un exceso de células escamosas y ciliadas. La primera porción es la más contaminada y sirve para estudio de hongos y micobacterias. El último líquido aspirado es el que mejor representa el contenido alveolar. Muestra única, idealmente del último líquido aspirado. Temperatura ambiente Inmediato, sin medio de transporte a temperatura ambiente. No aplica Microbiología Cultivo Cuantitativo de LBA: 72 horas hábiles. Tinción de azul de toluidina (Pneumocystis jiroveci): 3 días hábiles.

TEST RÁPIDO ADENOVIRUS RESPIRATORIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

Diagnóstico rápido de infecciones causadas por adenovirus respiratorio (horarios inhábiles, festivos, turnos de noche) Inmunocromatografía Ninguno. Aspirado o Hisopado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Tórula Nasofaríngea (TNF) Tubos con medio de transporte 2 Tórulas de drácon o polipropileno flexible Realizar el Aspirado Nasofaríngeo (ANF) y Torulado Nasofaringeo (TNF) de acuerdo a instrucciones de toma de muestra.

Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 107 de 159

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

2 – 8 ml 2 – 8 °C hasta 3 días Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre. Técnicas especiales 2 horas

USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

Diagnóstico rápido de infecciones causadas por virus Influenza A y B Inmunocromatografía Ninguno. Aspirado o Hisopado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Tórula Nasofaríngea (TNF) Tubos con medio de transporte 2 Tórulas de drácon o polipropileno flexible Realizar el Aspirado Nasofaríngeo (ANF) y Torulado Nasofaringeo (TNF) de acuerdo a instrucciones de toma de muestra. 2 – 8 ml 2 – 8 °C hasta 3 días Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre. Técnicas especiales 2 horas (horarios inhábiles, festivos, turnos de noche)

TEST RÁPIDO VIRUS INFLUENZA A Y B

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

TEST RÁPIDO VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA

Diagnóstico rápido de infecciones causadas por virus sincicial respiratorio Inmunocromatografía Ninguno. Aspirado o Hisopado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Tórula Nasofaríngea (TNF) Tubos con medio de transporte 2 Tórulas de drácon o polipropileno flexible Realizar el Aspirado Nasofaríngeo (ANF) y Torulado Nasofaringeo (TNF) de acuerdo a instrucciones de toma de muestra. 2 – 8 ml 2 – 8 °C hasta 3 días Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre.

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SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

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Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 108 de 159

Técnicas especiales 2 horas (horarios inhábiles, festivos, turnos de noche)

VIRUS RESPIRATORIO (ADV, INFLUENZA A Y B, PARAINFLUENZA Y SINCICIAL) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infecciones causadas por virus respiratorios Inmunofluorescencia Ninguno Aspirado o Hisopado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Tubo de centrífuga de 15 ml Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Recipiente con solución desinfectante Tórula Nasofaríngea (TNF) Tubos con medio de transporte 2 Tórulas de drácon o polipropileno flexible Realizar el Aspirado Nasofaríngeo (ANF) y Torulado Nasofaringeo (TNF) de acuerdo a instrucciones de toma de muestra. 2 – 8 ml 2 – 8 °C hasta 3 días -20 °C hasta 12 meses Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre Técnicas especiales 6 horas

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 109 de 159

INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA DE MUESTRA EN MATERIAL GENETICO CITOMEGALOVIRUS, CUANTIFICACION ADN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infecciones por Citomegalovirus PCR en tiempo real Ninguno Sangre LCR Tejido Sangre: Tubo tapa Lila (anticoagulante EDTA) LCR: Frasco plástico estéril con tapa rosca. Tejido: Frasco plástico estéril con tapa rosca y/o 1 ml suero fisiológico Sangre: obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. LCR: Toma de muestra realizada por profesional médico. Muestra obtenida por punción lumbar o, con menor frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular. Tejido: Toma de muestra realizada por profesional médico Volúmen mínimo de muestra de 1 ml 2 °C – 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 12 meses La muestra debe enviarse inmediatamente al laboratorio. Ninguna Biología Molecular 3 días

FACTOR V DE LEIDEN (Mutación G1691A) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de Trombosis Venosa PCR en tiempo real Ninguno Sangre Tubo tapa Lila (anticoagulante EDTA) Obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Toda muestra debe ser exclusiva para la sección de Biología Molecular Volúmen que indica el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 12 meses La muestra debe enviarse inmediatamente al laboratorio Ninguna Biología Molecular 15 días

FACTOR II DE LA PROTROMBINA (Mutación G20210A) USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

Detección de pacientes con riesgo de sufrir trombosis venosa o arterial. PCR en tiempo real Ninguno Sangre

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MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 110 de 159

Tubo tapa Lila (anticoagulante EDTA) Obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Toda muestra debe ser exclusiva para la sección de Biología Molecular Volúmen que indica el tubo 2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 12 meses La muestra debe enviarse inmediatamente al laboratorio. Ninguna Biología Molecular 15 días

VIRUS EPSTEIN BARR, CUANTIFICACION ADN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de infecciones causadas por virus Epstein Barr Cuantificación por PCR en tiempo real Ninguno Sangre LCR Tejido Sangre: Tubo tapa Lila (anticoagulante EDTA) LCR: Frasco plástico estéril con tapa rosca. Tejido: Frasco plástico estéril con tapa rosca y/o 1 ml suero fisiológico Sangre: obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Mezclar suavemente por inversión para evitar hemólisis. LCR: Toma de muestra realizada por profesional médico. Muestra obtenida por punción lumbar o, con menor frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular. Tejido: Toma de muestra realizada por profesional médico Volúmen mínimo de muestra de 1 ml 2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 12 meses La muestra debe enviarse inmediatamente al laboratorio Ninguna Biología molecular 3 días

VIRUS HERPES SIMPLEX I y II, DETECCION y GENOTIPIFICACION USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA

Detección de infecciones causadas por el virus Herpes simplex. Detección y Genotipificación por PCR en tiempo real Ninguno Sangre LCR Sangre: Tubo tapa Lila (anticoagulante EDTA) LCR: Frasco plástico estéril con tapa rosca. Sangre: obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. LCR: Toma de muestra realizada por profesional médico. Muestra obtenida por punción lumbar o, con menor frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular. Volúmen mínimo de muestra de 1 ml

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CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 111 de 159

2 °C a 8 °C hasta 7 días -20 °C hasta 12 meses La muestra debe enviarse inmediatamente al laboratorio Ninguna Biología Molecular 3 días

Bordetella pertussis, DETECCION DE ADN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de infección por Bordetella pertussis, causante de tos convulsiva PCR en tiempo real Ninguno Aspirado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Gradilla para tubos Caja con unidad refrigerante Bomba de vacío Tubo de centrífuga de 15 ml Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Recipiente con solución desinfectante Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Romper el sobre que contiene el kit de aspiración y conectar el final del tubo con diámetro menor a una sonda de alimentación estéril. Conectar el otro extremo de diámetro mayor a la bomba de vacío. Medir con la sonda de diámetro menor desde la aleta de la fosa nasal hasta el lóbulo de la oreja, medida que se introducirá en la fosa nasal del paciente. Insertar la sonda de alimentación por la fosa nasal del paciente. Retirar la sonda, girando suavemente, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. Aspirar un volumen aproximado de 8 - 10 ml de solución tampón pH 7.2 frío a través del tubo colector para arrastrar toda la secreción de la sonda. Cambiar la tapa del tubo colector, identificar con los datos del paciente. En caso de requerir análisis de PCR para Influenza, completar el formulario de Notificación Inmediata. 8 - 10 ml 2 – 8 °C hasta 3 días -20 °C hasta 12 meses Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre Biología Molecular 6 horas (el examen se procesa 1 vez al día)

Mycoplasma pneumoniae, DETECCION DE ADN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

Diagnóstico de infección pulmonar causada por Mycoplasma pneumoniae PCR en tiempo real Ninguno Aspirado Nasofaríngeo Expectoración

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MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 112 de 159

Lavado broncoalveolar Líquido Cefalorraquídeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Tubo de centrífuga de 15 ml Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Expectoración: Frasco de plástico estéril Lavado broncoalveolar: Cánula o catéter de aspiración Frasco estéril Broncoscopio LCR: Frasco de plástico estéril con tapa rosca Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Ver toma de muestra para aspirado Nasofríngeo. En caso de requerir análisis de PCR para Influenza, completar el formulario de Notificación Inmediata. Expectoración: Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Enjuagar enérgicamente la boca exclusivamente con agua hervida o estéril. Toser profundo y obtener la muestra por expectoración espontánea o con ayuda de Kinesiólogo, especialmente matinal. La saliva no sirve para realizar este estudio. Recoger el desgarro en frasco de boca ancha estéril. LBA: Toma de muestra realizada por médico especialista. Instalar y aspirar secuencialmente de alrededor de 100 ml de solución fisiológica estéril, a través del broncoscopio enclavado en un bronquio segmentario. El miniBAL usa 10 a 20 ml de esta solución. Después de cada instilación realizar una aspiración, para recuperar el máximo de volumen posible. LCR: Toma de muestra realizada por profesional médico. Muestra obtenida por punción lumbar o, con menor frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular. Toda muestra debe ser exclusiva para la sección de Biología Molecular Volúmen mínimo de 1 ml 2 – 8 °C hasta 3 días -20 °C hasta 12 meses Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Si esto no fuera posible la muestra debe ser conservada en refrigeración (2 - 8 °C) hasta 48 horas. No se aceptan muestras de sangre hemolizada, debido a que algunas proteínas celulares inhiben las reacciones de PCR. Biología Molecular 3 días

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 113 de 159

VIRUS INFLUENZA A Y B, DETECCION DE ARN USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

Se utiliza para el diagnóstico de infecciones causadas por virus de Influenza A y B PCR en tiempo real Ninguno Aspirado o Hisopado Nasofaríngeo Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Kit de aspiración traqueal Sondas de alimentación estériles Bomba de vacío Tubo de centrífuga de 15 ml Solución tampón fosfato (STF) pH 7.2 en tubos con 8 - 10 ml c/u Tórula Nasofaríngea (TNF) Tubos con medio de transporte 2 Tórulas de drácon o polipropileno flexible Aspirado Nasofaríngeo (ANF) Ver toma de muestra para Aspirado Nasofaríngeo Para el caso en que se requiera análisis de PCR para Influenza, completar el formulario de Notificación Inmediata. Tórula Nasofaringea (TNF):

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION

TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

No usar tórula con varillas de madera, ya que inhiben la reacción de PCR y son demasiado rígidas pudiendo producir daño en el paciente. Introducir la tórula de dacrón estéril en la fosa nasal y una segunda por boca hasta alcanzar la nasofaringe tratando de obtener la máxima cantidad posible de secreción y células epiteliales. Colocar las dos tórulas en el tubo con medio de transporte STF cuidando que el algodón quede sumergido en el medio. En caso de requerir análisis de PCR para Influenza, completar el formulario de Notificación Inmediata. Toda muestra debe ser exclusiva para la sección de Biología Molecular Volumen mínimo de 1 ml 2 – 8 °C hasta 3 días -20 °C hasta 12 meses Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio, manteniéndola en baño con hielo. Si esto no fuera posible la muestra debe ser conservada en refrigeración (2 - 8 °C) hasta 48 horas. Muestras con restos de alimentos o exceso de sangre Biología Molecular 2 días

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 114 de 159

INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMAS DE MUESTRAS DE MATERIAL BIOLOGICO (ESCAMAS, CONTENIDO GASTRICO, HUESO, ETC) ACAROTEST USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Apoyo diagnóstico de sarna, lesiones cutáneas producidas por Sarcoptes scabiei Examen microscópico directo al fresco No lavar la zona antes de asistir al examen, ni utilizar cremas o lociones. Escamas de piel No aplica Toma de muestra realizada por personal profesional de laboratorio. Contactar con la sección de Microbiología para programar fecha y hora de toma de muestra. No aplica No aplica No aplica No aplica Microbiología 2 horas.

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE CONTENIDO GASTRICO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE

LIMITACIONES DE MUESTRA

SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ayuno de 12 horas. El paciente no debe beber agua al tragar la sonda. Contenido gástrico. Envase estéril. Toma de muestra realizada por profesional de enfermería. Se requieren dos muestras obtenidas en dos días consecutivos Mínimo 10 ml de muestra. Las muestras deben ser envidas inmediatamente al laboratorio. Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio para ser procesada dentro de las 4 horas siguientes. Preservar las muestras de la luz solar y el calor Si bien es posible realizar un análisis microscópico del material obtenido, este tiene poco valor debido al escaso número de bacilos y alta frecuencia de contaminación con Mycobacterias no patógenas, por lo cual se recomienda cultivar siempre la muestra. No se recomienda para el control de tratamiento anti tuberculosis. Tuberculosis. Baciloscopía 48 hrs Cultivo 60 días

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 115 de 159

BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE BIOPSIAS, MATERIAL RESECADO, ENDOMETRIO, GANGLIO, ETC. USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Diagnóstico de tuberculosis causadas por el agente Mycobacterium tuberculosis Baciloscopia: Método de Ziehl-Nielsen Cultivo: medio de cultivo Lowenstein-Jensen Ninguno. Muestra biológica. Envase estéril. Toma de muestra realizada por profesional médico. Recoger el material en envase estéril en suero fisiológico o agua destilada estéril para preservar la vialidad del bacilo, no agregar conservadores (formol). En caso de biopsia de endometrio, la muestra debe consistir preferentemente en raspado uterino tomado durante la primera fase del ciclo menstrual. Lo obtenido. Mantenerlas refrigeradas a 4º C hasta el momento de su procesamiento Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio, preferentemente refrigerado. Preservar las muestras de la luz solar y el calor No recomendable sangre menstrual, por bajo rendimiento. Tuberculosis. Baciloscopía 48 hrs. Cultivo 60 días

CALCULOS URINARIOS USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Causas de su formación, condiciones de su nucleación, crecimiento, actividad reciente o antigua de la litiasis y la existencia de procesos litogénicos particulares. Determinación volumétrica Determinación colorimétrica / evaluación visual Ninguno Calculo seco Frasco sin preservantes ni aditivos Toma de muestra reservada a personal médico. Muestra recogida en envase estéril y rotulado No aplica Temperatura ambiente Enviar inmediatamente al laboratorio No aplica Química Clínica e Inmunoanálisis 7 días

CULTIVO DE BIOPSIA DE TEJIDO U ORGANO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

Aislamiento de microorganismos de un probable cuadro infeccioso. Cultivo corriente Cultivo para anaerobios Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Tejido u órgano Suero fisiológico estéril Bisturí

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TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 116 de 159

Pinza quirúrgica Frasco estéril. Medio de transporte para anaerobios Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Obtener dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja, utilizando un bisturí estéril con ayuda de una pinza quirúrgica. Depositar una de las muestras en el fondo del medio de transporte para anaerobios, la otra debe ser enviada en frasco estéril. Si no cuenta con medio de transporte para anaerobios, tomar dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja y depositarlos en frasco estéril. Dos, una para cultivo corriente y otra para cultivo anaerobio. Temperatura ambiente Transportar la muestra inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. Las muestras superficiales tomadas con tórulas no son útiles para estudio microbiológico. Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO HERIDA/ULCERA PIE DIABETICO USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Muestra para cultivo microbiológico · Ulceras de Grado II a V con síntomas y signos de infección localizada o generalizada. · Lesiones con compromiso de hueso Cultivo de herida/ulcera pie diabético. Cultivo para anaerobios Paciente sin aplicación previa de antibióticos, cremas tópicas. Tejido Suero fisiológico estéril Cureta o bisturí Pinza quirúrgica Frasco estéril. Medio de transporte para anaerobios Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Tomar muestra con técnica aséptica previo lavado con suero fisiológico. En úlceras con tejido necrótico o esfacelado y tejido de granulación, la muestra debe ser tomada en el lugar en que exista tejido necrótico previo desbridamiento de éste. Obtener dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja, utilizando una cureta o bisturí estéril con ayuda de una pinza quirúrgica. Depositar una de las muestras en el fondo del medio de transporte para anaerobios, la otra debe ser enviada en frasco estéril. Si no cuenta con medio de transporte para anaerobios, tomar dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja y depositarlo en frasco estéril. Dos, una para cultivo corriente y otra para cultivo anaerobio Temperatura ambiente Transportar la muestra inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. Muestras superficiales tomadas con tórulas no son útiles. Microbiología 72 horas hábiles

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 117 de 159

CULTIVO RASPADO DE CORNEA USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de etiología infecciosa de lesiones cornéales. Tinción de Gram Cultivo Raspado de Cornea Cultivo para Hongos Paciente sin aplicación previa de anestésicos tópicos, colirios o antibióticos. Raspado de córnea No aplica La muestra debe ser tomada por un médico especialista. Realizar la siembra en pabellón en medios de cultivo proporcionados por el laboratorio. Coordinar con laboratorio. De 3 a 5 muestras No aplica No aplica No aplica Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO CUANTITATIVO DE TEJIDO QUEMADO USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio microbiológico cuantitativo. Se recomienda en pacientes gran quemados, con quemaduras menores profundas o lesiones graves de partes blandas con sospecha de infección. Cultivo cuantitativo. Cultivo para hongos. Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Tejido Frasco estéril de peso conocido, proporcionado por el laboratorio. Suero fisiológico estéril Sacabocado nº4 o bisturí estéril Pinza anatómica Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Realizar aseo de la zona con abundante suero fisiológico estéril en pabellón. Con ayuda de sacabocado nº4, o bisturí, y pinza anatómica tomar muestra de tejido en zona vital de la piel quemada. Esta muestra debe tener un peso entre 0.02 y 0,06 g. equivalente a dos muestras obtenidas con sacabocado nº4. Depositar la muestra dentro del frasco estéril teniendo cuidado de manipular este frasco siempre con guantes. Muestra única, debe estar dentro del siguiente rango de peso: 0.02 - 0.06 g de tejido. Temperatura ambiente Transportar la muestra inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente, sin medio de transporte. Enviar las muestras de Lunes a Viernes hasta las 12:00 hrs. Tejidos fuera del rango de peso (0.02 – 0.06) serán sembrados como cultivo no cuantitativo Microbiología 72 horas hábiles

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LABORATORIO CLINICO CAA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 118 de 159

CULTIVO DE TEJIDO OSEO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Aislamiento de microorganismos de un probable cuadro infeccioso. Cultivo de tejido óseo Cultivo para anaerobios Paciente sin tratamiento antibiótico, en caso contrario especificar tratamiento. Tejido óseo Frasco estéril. Medio de transporte para anaerobios Toma de muestra realizada por personal médico capacitado, en pabellón, siguiendo la técnica aséptica. Obtener al menos dos muestras Depositar tejido en frasco estéril. Para estudio de anaerobios depositar un trozo en caldo tioglicolato o frasco estéril. Dos, una para cultivo corriente y otra para cultivo anaerobio. Temperatura ambiente Transportar la muestra inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. Enviar trozos de menos de 2 cm de diámetro. Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO ULCERA POR PRESION USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA

MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Detección de microorganismos que pudieran estar involucrados en un posible cuadro infeccioso, además, es útil en lesiones con compromiso de hueso Cultivo Ulcera por presión Cultivo para anaerobios Paciente sin aplicación previa de antibióticos, cremas tópicas. Tejido Suero fisiológico estéril Cureta o bisturí Pinza quirúrgica Frasco estéril. Medio de transporte para anaerobios Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Realizar toma de muestra con técnica aséptica previo lavado con suero fisiológico y en el lugar en que exista tejido necrótico previo desbridamiento de éste. Obtener dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja, utilizando una cureta o bisturí estéril con ayuda de una pinza quirúrgica. Depositar una de las muestras en el fondo del medio de transporte para anaerobios, la otra debe ser enviada en frasco estéril. Si no cuenta con medio de transporte para anaerobios, tomar dos trozos de tejido vital, del porte de una lenteja y depositarlo en frasco estéril. Dos, una para cultivo corriente y otra para cultivo anaerobio. Temperatura ambiente Transportar la muestra inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. Muestras superficiales tomadas con tórulas no son útiles. Microbiología 72 horas hábiles

Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 119 de 159

DEMODEX USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de Demodex spp. en muestras de piel y pestañas Examen microscópico directo al fresco No lavar la cara antes de asistir al examen ni aplicar ningún tipo de crema o loción por lo menos 24 horas previas. Raspado de piel y pestañas. No aplica Toma de muestra realizada por personal profesional de laboratorio. Contactar con la sección de Microbiología para programar fecha y hora de toma de muestra. No aplica No aplica No aplica No aplica Microbiología 2 horas.

EXAMEN MICOLOGICO DE PIEL, UÑA Y PELO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO

REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio de micosis superficiales en muestras de piel, uñas y pelo Examen microscópico directo al fresco. Cultivo de hongos prolongado No lavar la zona antes de asistir al examen, ni utilizar cremas o lociones. No utilizar ningún tipo de terapia antifúngica, oral un mes, ni tópica una semana previo al examen Escamas de Piel, escamas de Uña o Pelo No aplica Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado del laboratorio Contactar con la sección de Microbiología para programar fecha y hora de toma de muestra No aplica No aplica No aplica No aplica Microbiología Examen micológico directo: 24 horas. Cultivo de hongos: 30 días hábiles.

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LABORATORIO CLINICO CAA

INDICACIONES PARASITOS

ESPECIFICAS

PARA

TOMA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 120 de 159

DE

MUESTRAS

DE

PARASITOS MACROSCOPICOS USO DIAGNOSTICO

METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Estudio macroscópico de agentes parasitarios. Se realiza tanto a endoparásitos (gusanos intestinales) como ectoparásitos (piojos, pulgas, arañas y otros artrópodos). Examen microscópico Examen macroscópico No aplica Parasito Frasco contenedor limpio y seco Agua potable Endoparásitos: si se observan gusanos u otras formas parasitarias en las heces colocar en un frasco limpio con abundante agua potable. Ectoparásitos: recolectar los parásitos que se necesiten analizar en un frasco limpio y seco. La mayor cantidad posible Temperatura ambiente A la brevedad. En caso de endoparásitos solo utilizar agua potable como medio de transporte No se procesaran muestras en cloro o alcohol. Microbiología 72 horas hábiles

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LABORATORIO CLINICO CAA

INDICACIONES DISPOSITIVOS

ESPECIFICAS

PARA

TOMA

Código:

APL-MTM-DT-03

Fecha emisión:

03-05-2014

Edición: Revisión:

3 1

Fecha vigencia:

03-05-2019

Página 121 de 159

DE

MUESTRAS

DE

CULTIVO DE CATETER USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Cultivo de catéter no venoso central, útil para ver colonización de estos dispositivos. Cultivo de Catéter Ninguno Catéter Frasco estéril Material quirúrgico estéril Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado siguiendo la técnica aséptica. Desinfectar la zona que rodea al catéter. Retirar catéter. Depositarlo en frasco estéril. Única. Temperatura ambiente Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente sin medio de transporte. No aplica Microbiología 72 horas hábiles

CULTIVO DE DISPOSITIVO USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

Cultivo de material no orgánico para estudio de colonización. Cultivo de dispositivo Ninguno Válvula, Perno, Clavos, Perlas, Prótesis, otras. Frasco estéril Material quirúrgico estéril Toma de muestra realizada por personal médico capacitado siguiendo la técnica aséptica. Depositarlo en frasco estéril. Única. Temperatura ambiente Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente sin medio de transporte. El dispositivo no debe sobrepasar los 2 cm de diámetro. Microbiología 72 horas hábiles

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CULTIVO DE PUNTA CATETER VENOSO CENTRAL USO DIAGNOSTICO METODO DE ESTUDIO REQUISITOS DEL PACIENTE TIPO DE MUESTRA MATERIALES

TOMA DE MUESTRA

CANTIDAD DE MUESTRA CONSERVACION TRANSPORTE LIMITACIONES DE MUESTRA SECCION TIEMPO DE RESPUESTA

El test de Maki permite detectar la colonización del catéter venoso central, que puede estar asociado a un cuadro de bacteriemia. Método no conservador ya que se necesita la remoción del CVC. Cultivo semicuantitativo (Test de Maki) Ninguno Punta de Catéter Venoso Central (CVC) Frasco estéril Material quirúrgico estéril Toma de muestra realizada por personal profesional capacitado. Desinfectar la zona que rodea al catéter. Retirar catéter. En condiciones asépticas cortar de 3 a 5 cm de la punta del catéter. Depositarlo en frasco estéril. Única, de 3 a 5 cm de largo. No aplica Transportar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente sin medio de transporte. No aplica Microbiología 72 horas

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ROTULACION DE MUESTRAS 1. PACIENTES HOSPITALIZADOS, HOSPITALES EXTERNOS Y CONSULTORIOS 1.1. Toda muestra debe ser rotulada en forma manual en los servicios correspondientes. 1.2. La rotulación de los tubos o recipientes recolectores de las muestras deben especificar: 1.2.1. Nombres y apellidos del paciente (Paterno y Materno) 1.2.2. RUT del paciente Realizar la rotulación de los recipientes recolectores previo a la toma de muestra.

1.3. Las Ordenes de solicitud de exámenes deben especificar: Nombres y apellidos del paciente (Paterno y Materno) RUT del paciente. Procedencia o Servicio clínico, indicando, en el caso de pacientes hospitalizados, sala y cama. Nombre del médico solicitante Diagnóstico Fecha de toma de muestra Hora de toma de muestra 1.3. En la recepción del laboratorio se hará ingreso de los datos del paciente en sistema informático en uso y se emitirá etiqueta con código de barra para cada orden de solicitud y muestra.

2. PACIENTES POLICLÍNICOS 2.1. Rotular los tubos o recipientes recolectores de las muestras o especímenes con las etiquetas de códigos de barra emitidos por el sistema informático, de acuerdo al tipo de tubo. 2.2. Realizar la rotulación de tubos con las etiquetas, antes de realizar la extracción de las muestras. 2.2. Será función de la persona encargada de realizar la extracción, identificar al paciente, emitir códigos de barra y etiquetar los tubos, previo a la extracción.

NOTA: El sistema informático del laboratorio genera una o varias etiquetas de identificación para pegar en él o los tubos que deben ir correctamente pegadas para que puedan ser leídos en los equipos automatizados.

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TRANSPORTE Y CONSERVACION DE LAS MUESTRAS El transporte de muestras biológicas debe cumplir con la normativa de la OMS, publicada en el Manual de Bioseguridad del Laboratorio clínico. Para el envío a través de tubo neumático, utilizar los contenedores habilitados para tal efecto por el proveedor del sistema. Quienes realizan la actividad: Técnico paramédico, auxiliares de apoyo de unidades, auxiliares de enfermería, quienes deben conocer las normas básicas de bioseguridad y los cuidados especiales de transporte de muestras biológicas. NOTAS: Para evitar ruptura de envases o volcamiento, con el consiguiente derrame de muestras, los tubos deben ubicarse en recipientes secundarios, en posición vertical. El personal encargado del transporte debe utilizar las barreras de protección correspondientes ( Delantal y guantes) Se debe agilizar al máximo el transporte de las muestras al laboratorio, pues existen factores que pueden alterar o deteriorar su estado, tales como: tiempo, luz, temperatura y hemólisis. En el siguiente cuadro se muestran algunos exámenes, que pueden ser alterados por dichos factores. Examen

Cuidado especial

Forma de traslado

Tiempo de traslado

Tiempo: A fin de evitar el sobre crecimiento bacteriano. Temperatura Luz

· En frascos de recolección de orina con tapa rosca y evitando la exposición a la luz. · Dentro de depósitos de plástico aislantes que contengan hielo o unidades refrigerantes. · Si bien no es necesario un transporte especial para evitar la exposición a la luz; las muestras no deben ser expuestas por más de 2 horas a la luz ambiental.

30 minutos. De no ser así, se puede refrigerar entre 2 y 8ºC no excediendo el plazo de una hora.

Tiempo Temperatura

Dentro de depósitos de plástico aislantes que contengan hielo o unidades refrigerantes

Inmediato

Tiempo Temperatura

Dentro de depósitos de plástico aislantes que contengan hielo o unidades refrigerantes

Inmediato. Una vez centrifugada la muestra y separado el plasma de los elementos figurados, la muestra es estable por 3 horas entre 2 y 8ºC

Orina (orina completa, urocultivo )

Gases arteriales

Amonio

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Examen

Cuidado especial

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Forma de traslado

Tiempo de traslado

Luz

En frasco oscuro, envuelto en bolsa plástica

Enviar las muestras el mismo día de su obtención y almacenadas en refrigerador

Temperatura

En un recipiente con agua a 37ºC ( con termómetro)

Inmediato. Informar al profesional 15 minutos antes de la toma de muestra para que esté preparado el baño termorregulado.

Hemólisis

En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos, ya que estos pueden provocar hemólisis de la muestra

Expectoración

Crioglobulinas

Muestras de sangre en general

5.4.1

Transportar las muestras microbiológicas en envases de plástico cerrados, separadas de la solicitud de examen, en el tiempo mínimo posible ( máximo 2 horas). Las muestras de células epiteliales para Chlamydias y muestras de deposición para rotavirus o toxina de Clostridium difficile deben mantener una cadena de frío con unidades refrigerantes.

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RECEPCION DE MUESTRAS 1. LUGAR DE RECEPCION: TERCER PISO CAA, Unidad de Laboratorio Clínico. CESFAM VICTOR MANUEL FERNÁNDEZ; exámenes bacteriología de la TBC.

2. RECEPCIÓN DE MUESTRAS DE PACIENTES HOSPITALIZADOS Y UNIDAD DE EMERGENCIA (AP) EXAMENES Muestras para Análisis Químico y orinas (Ver listado de exámenes de urgencia) Urocultivo (Sólo siembra) Hemocultivo (Sólo incubación) LCR ( Gram, Látex y siembra)

DIAS

HORARIO

Lunes a Domingo

24 horas

Lunes a Domingo

20:00 a 8:00 hrs

Entregar las muestras en la recepción del Laboratorio clínico. Personal de laboratorio, verificará que el paciente se encuentra hospitalizado o registra atención de Urgencia en Asistencia Pública. Luego se comprobará la calidad de las muestras y el cumplimiento de los registros de la solicitud.

3. RECEPCIÓN DE MUESTRAS DE PACIENTES POLICLÍNICOS ADOSADOS. De Lunes a Viernes de 8:00 a 16:20 horas. Entregar las muestras en el área de recepción. Personal del laboratorio verifica la calidad de las mismas y el cumplimiento de los requisitos de solicitud que debe consignar Nombre completo, RUT, fecha de nacimiento y exámenes solicitados al paciente. Las ordenes de exámenes deben presentar el timbre de recaudación.

4. RECEPCIÓN DE MUESTRAS PROCEDENTES DE CONSULTORIOS EXTERNOS. De Lunes a Viernes de 8:00 a 13:00 horas en modalidad de rutina. De Lunes a Viernes de 13:01 a 16:00 horas en modalidad de urgencia. Las muestras deben venir con orden de solicitud y acompañada de una planilla que debe consignar Nombre completo, RUT, fecha de nacimiento y exámenes solicitados al paciente.

5. RECEPCIÓN DE MUESTRAS PROCEDENTES DE HOSPITALES EXTERNOS. De Lunes a Viernes de 8:00 a 12:00 horas en modalidad de rutina De Lunes a Viernes de 12:01 a 16:30 horas modalidad de urgencia. Las muestras deben venir con orden de solicitud y acompañada de una planilla que debe consignar Nombre completo, RUT, fecha de nacimiento y exámenes solicitados al paciente.

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6. RECEPCIÓN DE MUESTRAS PARA VIRUS RESPIRATORIOS POR IF De Lunes a Viernes de 8:00 a 10:00 horas para la determinación de los 5 virus respiratorios preferentemente. En caso de sospecha de Influenza, el horario de recepción es durante las 24 hrs., en cuyo caso se realizará Test rápido. Entregar las muestras en el área de recepción. Personal del laboratorio verifica la calidad de las mismas y el cumplimiento de los requisitos de solicitud. Durante el periodo de campaña de invierno, el horario de atención se extenderá a los días sábados, domingos, festivos y según lo dispuesto por las autoridades.

7. RECEPCIÓN DE MUESTRAS PARA BORDETELLA PERTUSSIS POR IF De Lunes a Viernes de 8:00 a 10:00 horas. Entregar las muestras en el área de recepción. Personal del laboratorio verifica la calidad de las mismas y el cumplimiento de los requisitos de solicitud.

8. RECEPCIÓN DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA. De Lunes a Viernes de 8:00 a 20:00 hrs Biopsias de tejido quemado de Lunes a Viernes de 8:00 a 12:00 horas Esteatocrito acido de Lunes a Jueves 8:00 a 11:00 horas Entregar las muestras en el área de recepción. Personal del laboratorio verifica la calidad de las mismas y el cumplimiento de los requisitos de solicitud.

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ENTREGA DE RESULTADOS 1. Tiempo de entrega de resultados exámenes 1.1. Exámenes de rutina se entregarán durante el día (Hematológicos, química sanguínea, química de orina, inmunodiagnóstico, serología sífilis). 1.2. Exámenes procedentes de las unidades de Urgencia (UCIs, APs y Pabellones) se entregarán en el lapso de una hora. 1.3. Las enzimas miocárdicas de Asistencia Pública se entregarán según protocolo GES. 1.4. Exámenes específicos o de baja demanda se entregarán dentro de 2 a 3 días hábiles (exámenes inmunológicos de especialidad, electroforesis de proteínas, IF Bordetella pertussis) 1.5. Exámenes enviados a confirmación al ISP (VIH; Hepatitis B, Hepatitis C y otros), el tiempo de entrega de resultados depende del Instituto de Salud Pública de Chile. 1.6. Pruebas especiales de coagulación: factores V, VII, VIII, IX, AT III, factor Von Willebrand, 1 vez por semana. 1.7. Pruebas especiales de coagulación: Proteína C activada y Proteína S se entregarán 1 vez al mes. 2.

Modalidad de entrega resultados

2.1. Los resultados de los exámenes puedes ser visualizados e impresos a través del sitio web del HGGB (ver anexo 3) Los resultados de exámenes de pacientes hospitalizados y de policlínicos del HGGB, que no tienen acceso a página Web, se imprimen, encasillan y son retirados por funcionario encargado de cada servicio. 2.2. Los resultados de exámenes de pacientes de establecimientos externos que no tienen acceso a página Web, se entregan bajo firma del estafeta. 2.4. Las copias de informes deben ser solicitadas por escrito y su entrega se realiza entre las 15.00 y 16.50 horas.

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CRITERIOS DE RECHAZO DE MUESTRAS En caso de no cumplimiento de los requisitos de las muestras, se retiene la muestra y la orden de solicitud de examen, generando un registro en sistema informático el cual puede ser visualizado vía web, donde se consigna la causa del rechazo. Además, se consignan todos los datos de paciente, procedencia y motivo del rechazo, en registros internos del laboratorio. De acuerdo a esto se establecen los siguientes criterios de no conformidad de muestras: 1. Muestra Mal Rotulada 2.1. Discordancia entre los datos de la solicitud y del tubo que contiene la muestra. 2.2. Etiqueta de tubo enmendada, o corregida con corrector (Muestra con doble rotulo) 2. Muestra Sin Rotulo 3. Muestra mal tomada. No cumple con normativa 4. Volumen Inadecuado Proporción inadecuada de sangre-anticoagulante, cuando se requiere plasma. 5. Tubo No Corresponde 6.1. Empleo de tubos de recolección que no corresponde. 6.2. Anticoagulante que no corresponde. 6. Muestras coaguladas 7. Muestras hemolizadas 8. No Cumple con Requisitos de Bioseguridad 9.1. Transporte inapropiado*. 9.2. Recipientes no herméticos 9.3. Muestras de Gases con aguja 9.4. Muestras de Gases sin tapa 9.5. Orden de examen manchada con sangre u otro líquido biológico. 9. Sin Muestra Examen solicitado y no enviado. 10. Muestra Sin Orden Médica Examen enviado y no solicitado. 11. Frasco Inadecuado. 12. Material de toma de muestra no estéril. 13. Falta de insumos. 14. No hay reactivo para efectuar examen. 15. Vencimiento de material de muestra. 16. Tipo de muestra no concuerda con solicitud de examen 17. Formulario VIH incompleto 18. Muestra se transporta sin cadena de frio 19. Muestra escasa 20. Muestra de deposición tomada en frasco sin fijador 21. Otros.

*Muestras que no pueden ser enviadas por tubo neumático o Hemocultivos o Orinas de 24 horas. o Muestras de alto volumen.

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ANEXO 1: INSTRUCCIONES A PACIENTES 1.1. INFORMACIÓN GENERAL PARA LOS ANÁLISIS DE SANGRE: a) No ingerir alimentos 8 horas antes de la toma de muestra. b) No beber alcohol ni fumar 8 horas antes de la toma de muestra. c) Está permitido beber sólo agua entes del examen. d) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. e) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de Resultados: Exámenes de rutina: 24 horas Exámenes de especialidad: 3 – 5 días

1.2. PRUEBA DE TOLERANCIA PARA LA GLUCOSA ORAL (PTGO): Curva de Tolerancia de Glucosa y/o Curva de Insulina. a) No ingerir alimentos 12 horas antes de la toma de muestra. b) No beber alcohol ni fumar 12 horas antes de la toma de muestra. c) Traer 75 grs. de Glucosa y 1 limón. d) Deberá permanecer en reposo a lo menos 20 minutos antes del examen. e) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. a) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. f) Debe programar su día con anticipación ya que debe disponer de a lo menos 3 horas para realizar el examen. Entrega de Resultados: 24 horas

1.3. PERFIL LIPIDICO (colesterol, HDL, triglicéridos) a) Esta prueba requiere ayuno estricto de 12 horas. b) No ingerir alimentos 12 horas antes de la toma de muestra. c) No fumar 12 horas antes de la toma de muestra. d) Consumo de comida liviana el día anterior al examen. e) Dieta libre de grasas y alcohol por 48 horas (2 días antes del examen) f) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. g) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 24 horas

1.4. ANTIGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO (APS) a) No ingerir alimentos al menos 3 a 4 horas antes de la toma de muestra. b) No tener relaciones sexuales una semana antes de la toma de muestra c) No andar en bicicleta, motocicleta o a caballo al menos 48 horas antes de la toma de muestra. d) La toma de muestra debe ser practicada antes de una biopsia prostática, masaje prostático , o prostatectomía, o 10 días después de realizados estos procedimientos e) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 1 día hábil

1.5. a) b) c)

DROGAS TERAPÉUTICAS MINIMO Y MAXIMO No ingerir alimentos al menos 3 a 4 horas antes de la toma de muestra. La toma de muestra debe ser realizada posterior al inicio del tratamiento. Indicar al profesional de Toma de Muestras la dosis que recibe y los horarios de medicación.

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d) NIVEL MINIMO: se realiza en ayuno e inmediatamente antes de recibir la siguiente dosis del medicamento. e) NIVEL MAXIMO: se realiza 2 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. f) En general, se recomienda no ingerir alimentos en este lapso, para no alterar la absorción del medicamento. g) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 1 día hábil

1.6. CLEARANCE DE CREATININA Esta prueba requiere recolectar la orina durante 24 horas. Si por alguna razón pierde orina durante la recolección o recolecta más de 24 horas, debe comenzar de nuevo al día siguiente, ya que el resultado puede salir alterado. a) No beber alcohol ni fumar durante las 24 hrs de la toma de muestra. b) No realizar ejercicios vigorosos durante 3 días antes de la toma de muestra ni durante las 24 hrs de la toma de muestra. c) Comience el período de recolección a las 8 de la mañana, eliminando la primera orina (orine entonces en el WC). d) A partir de ese momento, junte toda su orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente. e) Utilice una botella limpia y seca de aproximadamente 2 a 3 litros.(de ser necesario puede usar otra botella para juntar toda su orina) f) Mantenga la botella cerrada y en un lugar fresco hasta el momento de llevarla al laboratorio. g) El día que termine la recolección llevar la totalidad de su orina al laboratorio y presentarse con 8 horas de ayuno para la toma de muestra de sangre. h) Durante el día de recolección de su orina, debe permanecer en reposo relativo (no realizar esfuerzos). i) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. j) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 24 horas

1.7. ORINA COMPLETA a) Previo a la toma de la muestra, efectuar aseo genital con agua y jabón y luego enjuagar con abundante agua. b) Saque la tapa del frasco estéril de boca ancha que le fue entregado por el Laboratorio. c) No retire el sello amarillo de la tapa del frasco. d) Elimine el primer chorro de orina en el WC, y sin dejar de orinar, reciba el segundo chorro de orina en el frasco. e) Llene el frasco hasta la mitad; tape el frasco con precaución, evitando contaminar la muestra y/o derramarla. f) Evite mojar la etiqueta del frasco para no borrar los datos impresos. g) En la unidad de toma de muestra, informe si está tomando algún medicamento (analgésico, antibióticos). h) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. i) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. NOTA: Si obtiene la muestra de orina en su casa, debe traer el frasco entregado por el laboratorio, lo antes posible. En caso de ser mujer: a) Evitar tener relaciones sexuales hasta 12 horas antes del examen. b) No realizar el examen durante el período menstrual. Entrega de resultados: 24 horas

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1.8. ORINA DE 24 HORAS Esta prueba requiere recolectar la orina durante 24 horas. Si por alguna razón pierde orina durante la recolección o recolecta más de 24 horas, debe comenzar de nuevo al día siguiente, ya que el resultado puede salir alterado. a) No beber alcohol ni fumar durante las 24 hrs de la toma de muestra. b) No realizar ejercicios vigorosos durante 1 día antes de la toma de muestra ni durante las 24 hrs de la toma de muestra. c) Comience el período de recolección a las 8 de la mañana, eliminando la primera orina (orine entonces en el WC). d) A partir de ese momento, junte toda su orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente. e) Utilice una botella limpia y seca de aproximadamente de 2 a 3 litros (de ser necesario puede usar otra botella para juntar toda su orina) f) Mantenga la botella cerrada y en lugar fresco hasta el momento de llevar al laboratorio. g) El día que termine la recolección llevar la totalidad de su orina al laboratorio. h) Durante el día de recolección de su orina, debe permanecer en reposo relativo (no realizar esfuerzos) i) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. j) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 24 horas

1.9. PROTEINA DE BENCE JONES Esta prueba requiere recolectar la orina durante 24 horas. Si por alguna razón pierde orina durante la recolección o recolecta más de 24 horas, debe comenzar de nuevo al día siguiente, ya que el resultado puede salir alterado. a) No beber alcohol ni fumar durante las 24 hrs de la toma de muestra. b) No realizar ejercicios vigorosos durante 1 día antes de la toma de muestra ni durante las 24 hrs de la toma de muestra. c) Comience el período de recolección a las 8 de la mañana, eliminando la primera orina (orine entonces en el WC). d) A partir de ese momento, junte toda su orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente. e) Utilice una botella limpia y seca de aproximadamente de 2 a 3 litros (de ser necesario puede usar otra botella para juntar toda su orina) f) Mantenga la botella cerrada y en lugar fresco hasta el momento de llevar al laboratorio. g) El día que termine la recolección llevar la totalidad de su orina al Laboratorio. h) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. i) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 24 horas

1.10. UROCULTIVO a) Se sugiere NO estar en terapia con antibióticos. b) Tomar la primera orina de la mañana. c) Realice un aseo genital: Mujeres: separar cuidadosamente los labios mayores y realizar un aseo prolijo utilizando abundante agua. Puede usar, si tiene disponible, motas de algodón empapadas en agua deslizándola de adelante hacia atrás. Durante todo el procedimiento separe los labios mayores (genitales externos) con una de sus manos. Hombres: deslice el prepucio (piel que cubre el pene) hacia atrás y realice un aseo minucioso del glande con abundante agua. Puede ayudarse con algodón empapado en agua. Durante todo el procedimiento mantenga retraído el prepucio.

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Saque la tapa del frasco estéril de boca ancha que le fue entregado por el Laboratorio. No retire el sello amarillo de la tapa del frasco Comience a orinar y elimine el primer chorro en la taza del baño. Continúe orinando (segundo chorro) directamente en el frasco, llenándolo hasta aproximadamente la mitad de su capacidad. Tape cuidadosamente el frasco y compruebe que quedó bien cerrado. Evite mojar la etiqueta del frasco para no borrar los datos impresos. Traslade el frasco antes de dos horas después de obtenida la muestra a su Unidad de Toma de Muestra. Mientras, mantenga la muestra refrigerada o en un lugar fresco sin exposición a luz solar. Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado antes de la toma de muestras. Entrega de resultados: 24 a 72 horas hábiles

BACILOSCOPÍA Y CULTIVO EN ORINA Régimen seco la tarde anterior, desde las 18 hrs. en adelante. Recolectar la primera orina de la mañana. Lave muy bien los genitales con agua y jabón. Luego enjuague con abundante agua y seque con una toalla limpia. En el caso de las mujeres que se encuentren en el período menstrual, colóquese un tampón o una mota de algodón haciendo taponamiento vaginal, para impedir contaminación con sangre menstrual. Saque la tapa del frasco estéril de boca ancha que le fue entregado por el laboratorio. Elimine el primer chorro de orina en el WC y sin dejar de orinar, reciba el segundo chorro de orina en el frasco. Llenar el frasco con cantidad no inferior a los 50 cc. (mitad del frasco aproximadamente); tape el frasco con precaución, evitando contaminar la muestra y/o derramarla. Ponga su nombre y apellidos en el frasco con orina. Informe en la unidad de toma de muestra si está tomando algún medicamento (antibióticos o analgésicos). Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado al momento de la entrega de la muestra. Nota: Si está en tratamiento antituberculoso. No suspender su tratamiento para los exámenes de control. Entrega de resultados: Baciloscopía: 48 horas; Cultivo: 60 días

1.12. BACILOSCOPÍA EN SECRECIÓN BRONQUIAL (expectoración) a) Apenas despierte, en ayunas, enjuagarse la boca solo con agua (no usar pasta dental), “obtener una expectoración de la profundidad del pecho y sin saliva”. b) Deposite la muestra obtenida directamente en frasco estéril entregado por el laboratorio. c) Debe repetir esta operación con un mínimo de tres veces y depositar las muestras en el mismo frasco. d) Guardar la muestra protegida de la luz. e) Llevar las muestras al laboratorio antes de las 10:30 horas. f) Si presenta alguna enfermedad debe indicar su condición al momento de llegar a la toma de muestra. g) Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado al momento de la entrega de la muestra Nota: Si está en tratamiento antituberculoso, No suspender su tratamiento para los exámenes de control. Entrega de resultados: Baciloscopía: 48 horas; Cultivo: 60 días

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PARASITOLOGICO SERIADO DE DEPOSICIONES Los frascos contienen líquido y la tapa tiene adosada una cucharita para la obtención de las muestras. El líquido no debe ser ingerido. NO usar laxantes mínimo 5 días previos a la realización del examen. No debe haber ingerido medicamentos antiparasitarios, al menos los últimos tres días anteriores al examen. Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. Si la deposición tiene sangre o mucosidad se recomienda tomar la muestra de esa zona. Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. Si la muestra es líquida colocar la cantidad de cuatro cucharitas. Coloque la deposición en el primer frasco mezclándola con el líquido. Mantener la muestra en un lugar fresco o refrigerada. Este procedimiento se repite día por medio, en frascos diferentes cada vez.. Debe tomar tres muestras en total. En caso de encontrar elementos blanquecinos (gusanos), depositarlos en otro frasco con agua de la llave. Traslade la caja con los 3 frascos, después de obtenida la última muestra a su Unidad de Toma de Muestra y/o Entrega de Material. Mantenga la caja a temperatura ambiente durante el traslado. Debe llevar su Carné de Identidad que será solicitado al momento de la entrega de la muestra. Entrega de resultados: 3 a 5 días hábiles

1.14. COPROCULTIVO a) El material posee un envoltorio transparente con un tubo que contiene gel y una tórula con algodón en uno de sus extremos. b) No abrir el envoltorio transparente hasta el momento de tomar la muestra. c) NO debe estar con terapia antibiótica previo a la realización del examen. d) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. e) Abra el envoltorio y retire la tórula tomándola desde el extremo plástico color rojo. f) Introduzca la punta con algodón en la deposición. g) Luego destape el tubo, elimine la tapa e introduzca la tórula de manera que el algodón quede en contacto con el gel. h) Cierre el tubo herméticamente ( la tórula lleva adherida la tapa ) i) Si el paciente usa pañal o tiene deposiciones muy líquidas siga las siguientes instrucciones: a. Introduzca cuidadosamente la tórula en el ano unos 2 centímetros (como colocando un termómetro) y gírela 3 o 4 veces. b. Luego destape el tubo elimine la tapa e introduzca la tórula de manera que el algodón quede en contacto con el gel. c. Cierre bien el tubo (la tórula lleva adherida la tapa) j) Una vez tomada la muestra lleve el tubo a la Unidad de Toma de Muestra antes de 12 horas después de obtenida la muestra k) Mantenga el tubo a temperatura ambiente. Entrega de resultados: 3 días

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1.15. SANGRE OCULTA a) Utilizar un frasco limpio y seco que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras. b) Se puede recolectar las muestras desde tres días después del periodo menstrual. c) Si tiene sangramientos por hemorroides recolectar las muestras hasta tres días después de terminado el sangramiento. d) Si presenta hematuria (sangre en la orina) recolectar las muestras hasta tres días después de terminado el sangramiento. e) Evitar el consumo de aspirina, vitamina C o antiinflamatorios siete días antes y durante la recolección de muestras. f) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. g) Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. h) Colocar la deposición en el frasco y cerrarlo bien. i) Mantenga el frasco a temperatura ambiente. j) Repita el procedimiento día por medio, agregando una cucharadita de deposición al mismo frasco cada vez. Cuide que el frasco se mantenga siempre cerrado. Debe tomar tres muestras en total. k) Traslade el frasco después de obtenida la última muestra a su Unidad de Toma de Muestra. l) Mantenga el frasco a Temperatura ambiente durante el traslado. Entrega de resultados: 8 horas

1.16. LEUCOCITOS FECALES a) Utilizar un frasco limpio y seco que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras. b) NO debe estar en terapia con antibióticos ni usando laxantes previos a la realización del examen. c) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. d) Si la deposición presenta sangre o mucosidad, tome la muestra desde esa zona. e) Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. f) Colocar la deposición en el frasco y ciérrelo bien. g) Si la deposición es líquida, tome la cantidad de cuatro cucharitas y colóquelas en el frasco. h) Mantenga el frasco a temperatura ambiente. i) Traslade el frasco a su Unidad de Toma de Muestra. j) Mantenga el frasco a temperatura ambiente durante el traslado Entrega de resultados: 2 días hábiles

1.17. TEST DE GRAHAM a) Utilizar 5 placas de vidrio que llevan adherida a su superficie una tira de cinta adhesiva (scotch) para la obtención de las muestras. b) La muestra se toma en la mañana al despertar. c) La noche anterior debe efectuar aseo de la región anal sin colocar pomada, polvos o talcos. d) NO usar laxantes previos a la realización del examen. e) No debe haber ingerido medicamentos antiparasitarios, al menos los últimos tres días anteriores al examen. f) Debe tomar la muestra, al despertar en la mañana, antes de efectuar aseo y antes de defecar u orinar. g) Saque un paquete pequeño y ábralo sin eliminar el papel de envolver. h) Desprenda de la plaquita de vidrio la cinta adhesiva (scotch) y aplíquela por el lado engomado haciendo presión en todos los alrededores del ano y entre las nalgas. i) Pegue nuevamente el scotch sobre la plaquita de vidrio cuidando que quede bien estirado. Si ve algún gusano, colóquelo también entre el scotch y la plaquita de vidrio. La muestra no debe contener deposición.

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j) Envuelva la plaquita de vidrio con la muestra utilizando el papel de envolver entregado. k) Lávese las manos y escobille las uñas cuidadosamente con abundante agua y jabón. l) Repita el procedimiento durante 5 días seguidos, cada mañana, usando una plaquita de vidrio cada vez y envolviéndola en su papel. m) Coloque las cinco plaquitas envueltas en el paquete entregado y transpórtelo dentro de una bolsa de plástico anudada o dentro de un sobre cerrado. n) Identifique el paquete con el nombre completo de paciente. o) Después de obtenida la última muestra traslade el paquete con las 5 plaquitas de vidrio envueltas a su Unidad de Toma de Muestra. p) El traslado debe efectuarse a temperatura ambiente. Entrega de resultados: 8 días hábiles

1.18. ROTAVIRUS a) Utilizar un frasco con líquido que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras. Además, se le entregará un paquete que contiene dos tórulas (palo de madera con punta de algodón). b) Se sugiere NO estar en terapia antibiótica ni usando laxantes previos a la realización del examen. c) Recolección de la muestra con deposiciones semi sólidas. d) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. e) Si la deposición presenta sangre o mucosidad tome la muestra desde esa zona. f) Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. g) Colocar la deposición en el frasco y cerrarlo bien. h) Si la deposición es semi-líquida tome la cantidad de cuatro cucharitas y colóquelas en el frasco que se le entregó. i) Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes. j) Si el paciente usa pañal o emite deposiciones muy líquidas siga las siguientes instrucciones: a. Tome una tórula y humedézcala introduciéndola en el líquido del frasco que se le proporcionó. b. Frote con la tórula húmeda la zona del pañal en que se visualiza la muestra. c. Coloque la tórula dentro del frasco con líquido. d. Con la segunda tórula proceda de la misma forma para tomar una segunda muestra desde el pañal. e. Finalmente Ud tendrá dos tórulas dentro del frasco con líquido, asegúrese que quede bien cerrado y no ocurran filtraciones. f. Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes. g. Traslade el frasco lo antes posible (antes de dos horas), después de obtenida la muestra al Laboratorio de Microbiología h. El traslado debe ser con unidades refrigerantes. Entrega de resultados: 2 horas hábiles

1.19. TOXINA A/B CLOSTRIDIUM DIFFICILE a) Utilizar un frasco limpio y seco que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras b) NO debe estar en terapia antibiótica ni usando laxantes previos a la realización del examen. c) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. d) Observar si la deposición presenta sangre o mucosidad, si es así, tome la muestra desde esa zona. e) Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. f) Colocar la deposición en el frasco y cerrarlo bien. g) Si la deposición es líquida tome la cantidad de cuatro cucharaditas y colóquelas en el frasco que se le entregó. h) Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes

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i) j)

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Traslade el frasco lo antes posible, antes de una hora después de obtenida la muestra al Laboratorio de Microbiología. El traslado debe ser con unidades refrigerantes. Entrega de resultados: 2 horas hábiles

1.20. ESTEATOCRITO ACIDO a) Utilizar un frasco limpio y seco que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestra b) NO debe suspender ningún tratamiento. c) NO debe cambiar su dieta. d) La muestra consiste en una muestra de la primera deposición del día. e) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. f) Recolectar con la cucharita una muestra de la deposición hasta completar la mitad del recipiente plástico entregado. g) Cierre bien el frasco y anote el nombre del paciente, nombre del examen y fecha de la recolección. h) Mantenga el frasco refrigerado, si no dispone de refrigerador manténgalo a temperatura ambiente y trasládelo lo antes posible a su Unidad de Toma de Muestra. i) La recepción de la muestra se realiza de Lunes a Viernes de 8:00 a 11:30 horas. Entrega de resultados: 5 horas hábiles

1.21. NOROVIRUS a) Se sugiere NO estar usando laxantes previos a la realización del examen. b) Paciente con deposiciones sólidas o semi sólidas: a. Utilizar un frasco limpio que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras. b. Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. c. Si la deposición presenta sangre o mucosidad tome la muestra desde esa zona. d. Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. e. Colocar la deposición en el frasco y ciérrelo bien. f. Si la deposición es semi-sólida tome la cantidad de cuatro cucharitas y colóquelas en el frasco. g. Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes. c) Paciente con deposiciones líquidas a. En el Laboratorio de Microbiología se le entregará un frasco con líquido que tiene adosada a su tapa por la parte interior una cucharita y que contiene dos tórulas (palo de madera con punta de algodón). b. Tome una tórula y frote con ésta la zona del pañal en que se visualiza la muestra. c. Coloque la tórula dentro del frasco con líquido. d. Con la segunda tórula proceda de la misma forma para tomar una segunda muestra desde el pañal. e. Finalmente Ud. tendrá dos tórulas dentro del frasco con líquido, asegúrese que quede bien cerrado y no ocurran filtraciones. f. Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes. d) Traslade el frasco lo antes posible (antes de dos horas), después de obtenida la muestra al Laboratorio de Microbiología. e) El traslado debe ser con unidades refrigerantes. Entrega de resultados: 8 horas hábiles

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1.2. HELICOBACTER PYLORI a) Se sugiere suspender el uso de laxantes, antibióticos y antiácidos dos semanas previas a la realización del examen. b) Utilizar un frasco limpio que en la tapa tiene una cucharita adosada para la obtención de las muestras. c) Defecar en un recipiente limpio y seco sin mezclar con la orina. d) Recolectar con la cucharita una muestra del tamaño de una almendra. e) Colocar la deposición en el frasco y cerrarlo bien. f) Si la deposición es semi-sólida tome la cantidad de cuatro cucharitas y colóquelas en el frasco que se le entregó. g) Mantenga el frasco refrigerado o en contacto con unidades refrigerantes. h) Traslade el frasco lo antes posible (antes de dos horas), después de obtenida la muestra al Laboratorio de Microbiología. i) El traslado debe ser con unidades refrigerantes. Entrega de resultados: 8 horas hábiles

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ANEXO 2: CARACTERISTICAS DEL MATERIAL DE TOMA DE MUESTRAS MATERIAL 1.- Tubo tapa Amarilla (Gel separador de suero)

Imagen de referencia

2.- Tubo Tapa Lila (Anticoagulante EDTA K2)

EXAMENES ASOCIADOS OBSERVACIONES Tubo al vacío, sin anticoagulante. Exámenes Bioquímicos Contienen activador del coágulo y gel Exámenes Inmunológicos separador (que atrapa el coagulo y lo Vigilancia Sarampión y Rubéola separa del suero definitivamente). Uso Diagnóstico Leptospirosis para estudio en suero. Vigilancia Virus Influenza Código de colores regulado por la Diagnóstico Hidatidosis norma ISO 6710. Diagnóstico de Hanta vírus (se debe Volumen tubo: 3.5 - 4.5 ml. adicionar um tubo Lila) Exámenes hematológicos Líquidos serosos y LCR (Sinovial, pleural, ascítico, pericárdico, etc.) Diagnóstico de Hanta vírus (se debe adicionar um tubo amarillo)

Imagen de referencia

3.- Tubo Tapa Celeste (Anticoagulante Citrato)

Pruebas de coagulación

Imagen de referencia

4.- Tubo Tapa Gris (Anticoagulante Fluoruro de sodio)

Glicemia

Imagen de referencia

5.- Tubo tapa Verde (Anticoagulante Heparina de Litio)

Estudio de parámetros bioquímicos en plasma.

Tubo al vacío El EDTA K2 es sal dipotásica del ácido etilendiaminotetraacético, tiene un efecto quelante sobre el calcio. Permite demoras de hasta 4 horas para realizar el estudio e incluso de 24 horas si se conserva a 4ºC. Código de colores regulado por la norma ISO 6710. Tubos adultos: 2 – 3 ml Tubos pediátricos: 1 ml Tubo al vacío Su acción anticoagulante se basa en la reacción de los iones de calcio con la sal; se usa en forma acuosa para estabilizar el pH del plasma. Código de colores regulado por la norma ISO 6710. Tubos adultos: 2.5 – 3.5 ml Tubos pediátricos: 1 ml Tubo al vacío El fluoruro es el anticoagulante utilizado para realizar estudios de glucosa sérica, ya que actúa como inhibidor de la glucólisis, permitiendo demoras de más de dos horas después de extraída la muestra. Código de colores regulado por la norma ISO 6710. Tubos adultos: 2.-3 ml Tubos pediátricos: 0.25 ml Tubo al vacío La heparina acelera la inhibición del factor Xa por la antitrombina, impidiendo así la activación de la coagulación en el tubo. Código de colores regulado por la norma ISO 6710.

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MATERIAL 6.- Tubo Tapa negra (Anticoagulante Citrato)

EXAMENES ASOCIADOS VHS

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OBSERVACIONES Código de colores regulado por la norma ISO 6710.

Imagen de referencia

7.- Tubo tapa Blanca (Sin aditivos)

Imagen de referencia

8.- Frasco de plástico transparente con tapa rosca

Citológico y Físico-químico de LCR Electroforésis de proteínas en LCR y Bandas oligoclonales Cultivo bacteriológico y micológico de LCR Análisis molecular de meningitis bacteriana Tinta China en LCR para búsqueda de Cryptococcus spp Latex de LCR para: Meningitis bacteriana Cryptococcus neoformans Cultivo bacteriológicos y micológicos de Líquidos estériles: Ascítico, Pleural, Pericárdico, Articular, Sinovial Sedimento de Orina Urocultivo Química de orina

Tubo al vacío estéril. Volumen: 5 ml.

Frasco estéril con sistema de traspaso de muestra a tubos al vacío. Volumen máximo: 120 ml

Imagen de referencia

9.- Tubo tapa de goma rojo con amarillo para orina

Sedimento de orina Análisis Fisicoquímico de orina

Tubo al vacío con preservantes. Volumen: 8 ml

Imagen de referencia

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MATERIAL 10. Tubo tapa gris para orina

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EXAMENES ASOCIADOS Urocultivo Antibiograma

OBSERVACIONES Tubo al vacío con preservantes. Volumen: 4 ml

Gases y cooximetría

Jeringa comercial

Imagen de referencia

11. Jeringa heparinizada

Imagen de referencia

12. Frasco tapa rosca

Cálculos Gram, cultivo micológico de:

bacteriológico

y

Frasco estéril Volúmen Frasco: 60 a 100 ml

Secreción bronquial y Lavado bronco alveolar (LBA)

Tinciones de:

Imagen de referencia

Kinyoun para Nocardia secreción bronquial y LBA. Azul de Toluidina para Pneumocystis jiroveci en secreción bronquial Toluidina para Pneumocystis jiroveci en LBA

Cultivos: Aeróbico y anaeróbico de tejidos blandos y óseos. Con recuento semi cuantitativo de punta de catéter venoso central (test Maki) Cualitativo de punta de catéter. De Heridas de pie diabético Para hongos dimórficos

13. Colector de orina pediátrico

• Sedimento de Orina • Química de orina • Urocultivo

Material estéril

Imagen de referencia

14. Papel filtro S&S 903

Pesquisa de PKU y TSH neonatal

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MATERIAL 15. Lanceta

EXAMENES ASOCIADOS Pesquisa de PKU y TSH neonatal

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OBSERVACIONES

Imagen de referencia

16. Tórula con medio de trasporte CARY BLAIR

Coprocultivos para: Salmonella spp , Shigella spp , Vibrio spp., Aeromonas spp, Yersinia spp, Levaduras, Staphylococcus aureus Tinción para Campylobacter

Mantener a temperatura ambiente. Este medio de Transporte NO SIRVE para toma de muestra de secreciones, tejidos y líquidos.

Gram para secreciones Cultivo bacteriológico y micológico para secreción:

Mantener a Temperatura ambiente. Este medio de Transporte NO SIRVE para toma de muestra de líquidos , tejidos o secreciones bronquiales.

Imagen de referencia

17. Tórulas con medio de transporte STUART o AMIES

Ocular, Ótica, Nasal, faríngea, vaginal, uretral

Investigación de gonococos en secreción uretral y vaginal (Dos Imagen de referencia

tórulas estériles, una para gram y otra para siembra).

Cultivo bacteriológico de: Loquios, Secreción de herida operatoria, Secreción de herida superficial, Herida profunda.

18. Tórula con punta de Rayon.

Mango plástico: Detección de Chlamydia trachomatis en secreción conjuntival y canal cervical. Mango de metal: Detección de Chlamydia trachomatis en secreción uretral.

Material utilizado para La obtención de células epiteliales

Imagen de referencia

19. Frasco de vidrio estéril tarado o Pre pesado

Cultivo aeróbico con recuento de tejido de quemado

Imagen de referencia

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MATERIAL 20. Frasco tapa rosca con cuchara

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21.- Frascos con Fijador Parasitológicos

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EXAMENES ASOCIADOS Leucocitos fecales Toxina A y B de Clostridium difficile Rotavirus Adenovirus Norovirus Helicobacter pylori Parálisis flaccidas Esteatocrito ácido Tinción para Campylobacter Coproparasitológico seriado (PSD) Tinción de Ziehl Nielsen para Cryptosporidium sp Tinción de Safranina para Isospora belli

OBSERVACIONES Enviar inmediatamente a laboratorio o refrigerar. Pacientes pediátricos solicitar frasco con buffer PBS y obtener la muestra desde el pañal con tórula.

Cultivo secreción vaginal y uretral para aislamiento de Neisseria gonorrhoeae

Mantener refrigeradas (4°C). Sólo para uso de pacientes sospecha de gonorrea

Hemocultivos: Aerobios adulto y pediátrico Anaerobios adulto y pediátrico Para hongos adulto y pediátrico Para Mycobacterias Grupo MAC

Para aislamiento de bacterias y hongos en sangre. Mantener a temperatura ambiente. Frascos utilizados en la toma de muestra de otros líquidos corporales (peritoneales, pleurales, ascíticos, pericárdicos, sinoviales) cuando son tomados fuera del horario de trabajo del Laboratorio de Microbiología, pero tienen la desventaja de no poder realizarse una tinción de Gram de la muestra directa. Estos frascos NO SIRVEN para la toma de muestra de LCR (líquido cefalorraquídeo).

Imagen de referencia

22. Placas Thayer Martin

con

Imagen de referencia

23.Frascos para Hemocultivos

Imagen de referencia

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MATERIAL 24. Jeringa

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25. Bisturí

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EXAMENES ASOCIADOS Urocultivo a través de catéter Urocultivo por punción suprapúbica Secreciones de drenaje en casos excepcionales, en general no se recomienda tomar de esta forma este tipo de muestras Cultivo de Hongos de heridas fistulizadas Directo para hongos Cultivo Dermatofitos Mohos Levaduras

OBSERVACIONES Mantener a temperatura ambiente.

Sólo para toma de muestras, no para transporte.

Imagen de referencia

26. Espátula de Kimura

Gram de úlcera corneal Cultivo bacteriológico micológico de úlcera corneal

y

Imagen de referencia

27. Frasco oscuro

Sólo para toma de muestra, no para transporte. Examen realizado en pabellón de oftalmología por médico especialista y se siembra en placas preparadas con medio de cultivo.

Baciloscopía y cultivo para detección de bacilo de Koch (Tuberculosis)

Imagen de referencia

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ANEXO 3. USO DE PAGINA WEB 1. SITIO WEB DE RESULTADO La finalidad de éste sitio web es revisar los resultados de los exámenes ingresados en el Laboratorio Clínico del Hospital Gmo. Grant Benavente. Además de revisarlos, estos se podrán imprimir cuando han sido validados previamente por el laboratorio, para ello se han diseñado 5 formas de búsquedas de pacientes.

2. PÁGINA DE INICIO

Página de inicio de resultado IMPORTANTE Para un mejor funcionamiento es recomendable utilizar el navegador Internet Explore El ingreso para acceder a revisar los resultados se puede hacer por SERVICIOS Y MEDICOS, cada uno de ellos contará con un usuario y contraseña para poder acceder a la página de resultados.

Ingreso de usuarios

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IMPORTANTE

La opción MEDICO para revisar los resultado solo está disponibles para algunos clientes

3. FILTROS DE BÚSQUEDA DE RESULTADOS Cuando ingresamos el usuario y contraseña podemos ver que tenemos la siguiente pantalla. En ella se visualizan las 5 formas de buscar los resultados de un paciente.

Filtros de búsqueda de pacientes Las opciones de búsqueda son: • Fecha • Rut • Nombres y apellidos • Numero de orden • Servicio 4. REPORTE En el reporte se visualiza la información demográfica del paciente y los resultados de los exámenes.

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ANEXO 4. CARTERA DE SERVICIOS LABORATORIO CLINICO EXAMENES LABORATORIO URGENCIA 24 HORAS A.- EXAMENES HEMATOLOGIA. DIMERO D HEMOGRAMA AUTOMATIZADO. PROTROMBINA, TIEMPO DE. TROMBOPLASTINA, TIEMPO DE. B.- EXAMENES BIOQUÍMICA SANGRE. ACIDOS BILIARES ÁCIDO ÚRICO ( SERVICIO DE OBSTETRICIA ) ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO ADENOSINDEAMINASA (ADA) ALBÚMINA. AMILASA. AMONIO. BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA. BILIRRUBINA TOTAL. CALCIO. CARBAMAZEPINA MINIMO Y MAXIMO CETONEMIA (acetona cualitativa) CK- MB, ACTIVIDAD CK TOTAL, ACTIVIDAD CLORO CREATININA. DIGOXINA ELECTROLITOS PLASMATICOS (Na, K, Cl) FENITOINA MINIMO Y MAXIMO FOSFATASAS ALCALINAS GAMMA GT GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE EN SANGRE ARTERIAL GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE EN SANGRE VENOSA GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE Y COOXIMETRIA EN SANGRE ARTERIAL GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE Y ELECTROLITOS PLASMATICOS EN SANGRE ARTERIAL GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE Y ELECTROLITOS PLASMATICOS EN SANGRE VENOSA GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE, ELECTROLITOS PLASMATICOS Y COOXIMETRIA EN SANGRE ARTERIAL GLUCOSA LACTATO (ACIDO LACTICO) LDH LIPASA MAGNESIO ( UCI ) METOTREXATO NITRÓGENO UREICO PARACETAMOL Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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POTASIO PROCALCITONINA. PROTEÍNA C REACTIVA. PROTEÍNAS TOTALES. SODIO TEOFILINA MINIMO Y MAXIMO TRANSAMINASA GLUTÁMICO OXALACÉTICA (GOT) TRANSAMINASA GLUTÁMICO PIRÚVICA. (GPT) TROPONINA UREA. VANCOMICINA MINIMO Y MAXIMO C.- EXAMENES BIOQUÍMICA ORINA. CUERPOS CETÓNICOS. GLUCOSA. ORINA FÍSICO QUÍMICO. ORINA FÍSICO-QUÍMICO Y SEDIMENTO ( AP, OBSTETRICIA, PEDIATRÍA.) PH PROTEÍNA D.- EXAMENES LIQUIDOS BIOLÓGICOS. CITOLOGICO CON O SIN TINCION DE LCR. FÍSICOQUIMICO DE LCR FISICOQUIMICO EN LIQUIDO PERITONEAL.( S. DE PEDIATRÍA) GLUCOSA EN LIQUIDO PERITONEAL. ( S. DE PEDIATRÍA) PH EN LÍQUIDO PERITONEAL PROTEÍNA EN LIQUIDO PERITONEAL. ( S. DE PEDIATRÍA) E.- EXAMENES MICROBIOLOGIA. UROCULTIVO. CULTIVO DE LCR. ( SIEMBRA ) HEMOCULTIVO AEROBIO, RECEPCIÓN E INCUBACIÓN. LÁTEX EN LCR. TINCION DE GRAN EN LCR ( SOSPECHA DE MENINGITIS BACTERIANA ) F.- EXAMENES INMUNOQUIMICA. BHCG. ( EMBARAZO ECTÓPICO ). MACADORES HEPATITIS B. CORE. ( DONANTE DE ÓRGANOS, PREDIALISIS ). MARC. HEPATITIS B. SUP ( DONANTE ÓRGANOS, PREDIALISIS , FUENTE AC. CORTOPUNZANTE) MARC. HEPATITIS C ( DONANTE ÓRGANOS, PREDIALISIS, FUENTE ACC. CORTOPUNZANTE) VIH. ( FUENTE DE ACCIDENTE CORTOPUNZANTE, DONANTE DE ÓRGANOS, PREDIALISIS, OBSTETRICIA.) G.-VIRUS REPIRATORIOS TEST RAPIDO PARA ADENOVIRUS TEST RAPIDO PARA VIRUS INFLUENZA A TEST RAPIDO PARA VIRUS INFLUENZA B TEST RAPIDO PARA VIRUS SINCICIAL Documento digital administrado por el Sistema de Gestión de Calidad del Laboratorio Clínico del HGGB. Cualquier impresión total o parcial de este Manual se considerará “Copia no Controlada”.

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F. EXAMENES MICROBIOLOGICOS ASOCIADOS A CEPAS IDENTIFICACION ESPECIE BACTERIANA C/U IDENTIFICACION SEROLOGÍA BACTERIANA C/U IDENTIFICACION SEROLÓGICA DE E COLI O157 IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SALMONELLA ENTERITIDIS IDENTIFICACION SEROLOGICA DE SALMONELLA GRUPO IDENTIFICACIÓN SEROLOGICA DE SALMONELLA PARATYPHI A IDENTIFICACIÓN SEROLOGICA DE SALMONELLA PARATYPHI B IDENTIFICACIÓN SEROLOGICA DE SALMONELLA TYPHI IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SALMONELLA TYPHIMURIUM IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SHIGELLA BOYDII IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SHIGELLA DYSENTERIAE IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SHIGELLA FLEXNERI IDENTIFICACIÓN SEROLÓGICA DE SHIGELLA SONNEI EXAMENES HEMATOLOGICOS Y LIQUIDOS BIOLOGICOS A. SANGRE HEMATOLOGIA ANTITROMBINA III DIMERO-D FACTOR V FACTORES IX FACTORES VII FACTORES VIII FIBRINOGENO HEMOGRAMA PROTEINA C PROTEINA S RECUENTO DE PLAQUETAS RECUENTO DE RETICULOCITOS TIEMPO DE PROTROMBINA TIEMPO DE SANGRIA DE IVY TIEMPO DE TROMOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA VELOCIDAD DE SEDIMENTACION VON WILLEBRAND, AG DE (FACTOR VIII AG) B. EXUDADOS, LIQUIDOS, CITOQUIMICOS CITOLOGICO LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO, ASCITICO,PLEURAL, SINOVIAL, ARTICULAR, PERITONEAL FISICOQUIMICO LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO,ASCITICO,PLEURAL, SINOVIOAL, ARTICULAR, PERITONEAL EXAMENES QUIMICA CLINICA E INMUNOANALISIS A. SANGRE, EXAMENES BIOQUIMICOS ACIDO URICO, EN SANGRE ADENOSINDEAMINASA EN SANGRE U OTRO FLUIDO BIOLOGIC

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ALBUMINA AMILASA, EN SANGRE BILIRRUBINA DIRECTA BILIRRUBINA TOTAL (PROC. AUT) BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA CALCIO EN SANGRE CETONEMIA (acetona cualitativa) CLORO EN SANGRE COLESTEROL HDL (PROC. AUT. COLESTEROL TOTAL (PROC.AUT.) CREATININA EN SANGRE CREATININA, DEPURACION DE (CLEARENCE) (PROC.AUT.) CREATINQUINASA CK - MB MIOCARDICA CREATINQUINASA CK - TOTAL DESHIDROGENASA LACTICA TOTAL (LDH ELECTROLITOS PLASMATICOS (SODIO, POTASIO, CLORO) C/U FERRITINA FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES FOSFORO (FOSFATOS) EN SANGRE GAMMA-GLUTAMIL-TRANSFERASA (GGT) GLUCOSA EN SANGRE GLUCOSA POST PRANDIAL GOT GPT HEMOGLOBINA GLICOSILADA A1C LIPASA MAGNESIO NITROGENO UREICO Y/O UREA, EN SANGRE PERFIL BIOQUIMICO (DETERMINACION AUTOMATIZADA DE 12 PARAMETROS) PERFIL HEPATICO (TIEMPO DE PROTROMBINA, BILIRRUBINATOTAL Y CONJUGADA, FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES, GGT TRASAMINASAS GOT/AST Y GPT/ALT PERFIL LIPIDICO (INCLUYE: COLE TOTAL, HDL, LDL, VLDL Y POTASIO EN SANGRE PROCALCITONINA PROTEINA C REACTIVA PROTEINAS FRACCIONADAS ALBUM/GLOBUL INC COD 0302060 PROTEINAS TOTALES O ALBUMINAS, C/U, EN SANGRE PRUEBA DE TOLERANCIA A GLUCOSA ORAL (PTGO) (DOS DET) SODIO EN SANGRE TRIGLICERIDOS TROPONINA I VITAMINA B12 B. NIVELES PLASMATICOS MEDICAMENTOS ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO CARBAMAZEPINA MINIMO Y MAXIMO CICLOSPORINA MAXIMO

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CICLOSPORINA MINIMO DIGOXINA FENITOINA MAXIMO FENITOINA MINIMO FENOBARBITAL MAXIMO FENOBARBITAL MINIMO LITIO, LITIO NIVEL MINIMO Y MAXIMO METOTREXATO PARACETAMOL TEOFILINA VANCOMICINA MINIMO Y MAXIMO C. HORMONAS EN SANGRE ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA (TG) ANTICUERPOS ANTI TPO CORTISOL AM CORTISOL PM DHEA-S4 ESTRADIOL GONADOTROFINA CORIONICA (BHCG) HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE (FSH) HORMONA LUTEINIZANTE (LH) HORMONA TIROESTIMULANTE (TSH) INSULINA 120 MINUTOS INSULINA BASAL INSULINA, CURVA DE (MINIMO CUATRO DETERMINACIONES) PARATHORMONA PROGESTERONA PROLACTINA PROLACTINA POOL T4 LIBRE TESTOSTERONA TIROGLOBULINA TIROXINA O TETRAYODOTIRONINA (T4 TRIYODOTIRONINA (T3) D. MARCADORES TUMORALES ALFAFETOPROTEINA ANTIGENO CARCINO EMBRIONARIO (CEA) ANTIGENO PROSTATICO LIBRE (APE) ANTIGENO PROSTATICO TOTAL (APE) BETA 2 MICROGLOBULINA CA 125 CA 19-9 E. MARCADORES HEPATITIS ACIDOS BILIARES

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Anticuerpos anti Virus Hepatitis C (anti-VHC) ANTICUERPOS VIH Antigeno superficie de virus Hepatitis B (HBsAg) VIRUS HEPATITIS A, ANTICUERPOS IGM DEL VIRUS HEPATITIS B, ANTICORE TOTAL DEL (ANTI HBC TOTAL) F. ORINA, EXAMENES BIOQUIMICOS ACIDO URICO EN ORINA , AC. URICO ORINA 24 HORAS CALCIO EN ORINA , ORINA DE 24 HS CALCULO URINARIO CREATININA EN ORINA, ORINA 24 HORAS CUERPOS CETONICOS ELECTROLITOS (SODIO, POTASIO, CLORO) C/U, EN ORINA ELECTROLITOS EN ORINA 24 HRS FOSFORO CUANTITATIVO EN ORINA GLUCOSA (CUANTITATIVO), EN ORINA, GLUCOSA ORINA DE 24 HORAS MICROALBUMINURIA CUANTITATIVA, MIROALBUMINURIA DE 24 HORAS NITROGENO UREICO O UREA EN ORINA (CUANTITATIVO DE 24 HORAS ORINA COMPLETA (INCLUYE FISICOQUIMICO Y SEDIMENTO) ORINA, FISICOQUIMICO ORINA, SEDIMENTO PROTEINURIA PROTEINURIA, 24 HORAS G. LIQUIDOS, EXAMENES BIOQUIMICOS LIQUIDO ALBUMINA LIQUIDO AMILASA LIQUIDO COLESTEROL LIQUIDO LDH LIQUIDO LIPASA Ph EN LIQUIDOS PROTEINAS TOTALES Y/O ALBÚMINA EN LÍQUIDOS EXAMENES DE INMUNOLOGIA ANTICUERPOS ANTI PEPTIDOS CITRULINADOS CICLICOS (CCP) ANTICUERPOS ANCA ANTICUERPOS ANTI DNA ANTICUERPOS ANTI ENA (Ro, La, Sm, RNP, Scl-70, Jo-1) ANTICUERPOS ANTI ENDOMISIO ANTICUERPOS ANTI LKM ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRIAL (AMA) ANTICUERPOS ANTI MUSCULO LISO ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINAS IgG ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINAS IgM ANTICUERPOS ANTINUCLEARES (ANA) ANTICUERPOS IGA ANTITRANSGLUTAMINASA

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ANTICUERPOS IGG ANTITRANSGLUTAMINASA ANTIESTREPTOLISINA O BANDAS OLIGOCLONALES COMPLEMENTO C3 COMPLEMENTO C4 CRIOGLOBULINAS ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN ORINA, LCR ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO FACTOR REUMATOIDEO POR TECNICA DE LATEX FACTOR REUMATOIDEO POR TECNICA NEFELOMETRICA INMUNOFIJACION INMUNOGLOBULINAS EN SUERO, ORINA INMUNOGLOBULINA (IGA) SALIVAL INMUNOGLOBULINA IGA INMUNOGLOBULINA IGE INMUNOGLOBULINA IGG INMUNOGLOBULINA IGM

EXAMENES DE BIOLOGIA MOLECULAR VIRUS EPSTEIN BARR BORDETELLA PERTUSSIS CITOMEGALOVIRUS ( CMV) FACTOR II PROTROMBINA O GEN 20210A FACTOR V DE LEIDEN O GEN 1691A MYCOPLASMA PNEUMONIAE VIRUS HERPES 1 VIRUS HERPES 2 VIRUS INFLUENZA A Y B EXAMENES SEROLOGIA INFECCIOSA ANTICUERPOS ANTITREPONEMA PALLIDUM POR INMUNOCROMATOGRAFIA ANTICUERPOS IGG ANTI CITOMEGALOVIRUS ANTICUERPOS IGG ANTI TOXOPLASMA GONDII ANTICUERPOS IgG anti Trypanosoma cruzi (CHAGAS) ANTICUERPOS IGG ANTI VIRUS DE LA RUBEOLA ANTICUERPOS IGG ANTI VIRUS EPSTEIN BARR ANTICUERPOS IGG ANTI VIRUS HERPES-1 ANTICUERPOS IGG ANTI VIRUS HERPES-2 ANTICUERPOS IGM ANTI CITOMEGALOVIRUS ANTICUERPOS IGM ANTI TOXOPLASMA GONDII ANTICUERPOS IGM ANTI VIRUS DE LA RUBEOLA ANTICUERPOS IGM ANTI VIRUS EPSTEIN BARR ANTICUERPOS IGM ANTI VIRUS HERPES-1 ANTICUERPOS IGM ANTI VIRUS HERPES-2 VDRL EN SANGRE, LCR

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EXAMENES MICROBIOLOGICOS A. EXAMENES MICROSCOPICOS EXAMEN MICROSCOPICO DIRECTO AL FRESCO CON O SIN TINCION EXAMEN MICROSCÓPICO DIRECTO AL FRESCO HONGOS TINCION DE GRAM LIQUIDOS, SECRECIONES, ETC TINTA CHINA EN LCR, EXAMEN DIRECTO AL FRESCO B. CULTIVOS COPROCULTIVO C/U CULTIVO CORRIENTE DE HERIDAS PROFUNDAS, HERIDAS SUPERFICIALES CULTIVO CORRIENTE DE LCR CULTIVO CORRIENTE DE LÍQUIDOS; AMNIOTICO, ASCITICO, PERICARDICO,PERITONEAL, PLEURAL, SINOVIAL, ARTICULAR, LOQUIOS, ENDOTRAQUEAL, LAVADO BRONCOALVEOLAR, INTRAOCULAR, , CONDUCTO AUDITIVO EXTERNO, TEJIDO BLANDO,CULTIVO RASPADO DE CORNEA CULTIVO CORRIENTE SECRECIONES; SECRECION BRONQUIAL, CONJUNTIVAL, FARINGEA, FARINGEA SOSPECHA DIFTERIA, NASAL, CAVIDADES PARANASALES. OIDO MEDIO CULTIVO DE FLUJO VAGINAL O SECRECION URETRAL CULTIVO LIQUIDO PERITONEAL DE BOLSA DIALISIS CULTIVO PUNTA DE CATETER SEMICUANTITATIVO ( TEST DE MAKI) CULTIVO Y RECUENTO BACTERIANO EN PIEL QUEMADO SIN ANTIBIOGRAMA CULTIVO Y RECUENTO MINIBAL( minilavado bronquialveolar) SIN ANTIBIOGRAMA CULTIVOS DE SUPERFICIES SIN ANTIBIOGRAMA HEMOCULTIVO AEROBICO PEDIATRICO C/U HEMOCULTIVO AEROBIO ADULTO C/U HEMOCULTIVO ANAEROBIO C/U HEMOCULTIVO PARA HONGOS C/U HEMOCULTIVO PARA MYCOBACTERIAS (HEMO MAC) HEMOCULTIVO POR CATETER HEMOCULTIVOS CON ESTUDIO DE TIEMPO DIFERENCIAL (2) UROCULTIVO POR CATETER VESICAL PERMANENTE, VESICAL TRANSITORIO, MICCION EXPONTANEA, VESICAL, RECOLECTOR C. CULTIVOS ESPECIFICOS CULTIVO ANAEROBIO DE LIQUIDOS, TEJIDOS, TEJIDO PIE DIABETICO, TEJIDO BLANDO Y OSEOS CULTIVO CAMPYLOBACTER, DETERMINACIÓN DE CULTIVO MICOLÓGICO DE BIOPSIA CULTIVO MICOLÓGICO DE PELO, PIEL, UÑA CULTIVO MYCOPLASMA HOMINIS, SECR. CERVICO UTERINA CULTIVO NEISERIA GONORRHOEAE CULTIVO PARA E COLI ENTEROHEMORRAGICO CULTIVO PARA ENTEROCOCO RESISTENTE A VANCOMICINA (ERV) CULTIVO PARA HONGOS FILAMENTOSOS CULTIVO PARA LEVADURAS CULTIVO PARA LISTERIA CULTIVO PARA NEISSERIA MENINGITIDIS (MENINGOCOCO)

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CULTIVO PARA NOCARDIA CULTIVO PARA VIBRIO CULTIVO UREAPLASMA SPP SECRECION CERVICO UTERINA CULTIVO UREAPLASMA SPP SECRECION URETRAL CULTIVO YERSINIA ENTEROCOLITICA D. ANTIBIOGRAMAS MUESTRAS Y CEPAS ANTIBIOGRAMA CORRIENTE POR DIFUSION ANTIBIOGRAMA CORRIENTE POR DILUCION (CIM) ANTIBIOGRAMA CORRIENTE POR EPSILOMETRIA ANTIBIOGRAMA E. PORTACION STAPHYLOCOCCUS AUREUS METICILINO RESISTENTE (SAMR) CIM ANTIFUNGIGRAMA POR CIM Y EPSILOMETRIA BETALACTAMASA DE ESPECTRO EXTENDIDO POR DIFUSION, DETERMINACION DE E. PARASITOLOGICOS ACAROTEST, EXAMENE MICROSCOPICO DE RASPADO DE PIEL COPROPARASITARIO SERIADO CON TECNICA PARA CRISTOSPORIDIUM SP (TINCION) COPROPARASITARIO SERIADO PARA FASCIOLA HEPATICA COPROPARASITARIO SERIADO, TÉCNICA PARA ISOSPORA Y SARCOCYSTIS DEMODEX SPP(ACAROS) , BUSQUEDA DE DIAG. PARASITOS JUGO DUODENAL Y/O BILIS, EX MACROSCOP Y MICROSC DIAGNOSTICO PARASITARIO EXUDADOS, SECRECIONES Y OTROS LIQUIDOS ORG EX MACRO Y MICROSCOPICO GRAHAM, EXAMEN DE (INC DG GUSANOS MACROS Y EX MICROS 5 MUESTR GUSANOS MACROSCOPICOS, DIAGNOSTICO DE F. SEROLOGICOS BACTERIAS Y HONGOS ANTICUERPOS VIRUS HANTA POR ELISA CHLAMYDIA TRACHOMATIS SECRECIÓN CONJUNTIVAL, EPITELIO URETRAL POR IF CLOSTRIDIUM DIFFICILE, DETERMINACION COTOTOXINA A Y B POR INMUNOCROMATOGRAFÍA CRYPTOCOCCUS NEOFORMANS , DETERMINACION DE ANTIGENO DETERMINACION ANTICUERPOS ASPERGILUS ELISA (GALACTOMANANO) HIDATIDOSIS, DIAGNOSTICO POR ELISA INDIRECTA LATEX LCR :ANTIGENO BACTERIANO HAEMOPHILUS INFLUENZAE ,NEISSERIA MENINGITIDIS GRUPO A,GRUPO B, GRUPO C, STREPTOCOCCUS AGALACTIAE, STREPTOCOCCUS PNEUMONIAE G. SEROLOGICOS VIRUS DEPOSICIONES ADENOVIRUS EN DEPOSICION, D. ANTIG.VIRALES INMUNOCROMATOGRAFÍA ROTAVIRUS EN DEPOSICIÓN, D. ANTIGE. VIRALES INMUNOCROMATOGRAFIA H. OTROS EXAMENES DEPOSICIONES Y SECRECIONES LEUCOCITOS FECALES PH PH BENEDICT,DETERMINACIÓN DE AZUCARES REDUCTORES SANGRE OCULTA, DIAGNÓSTICO POR INMUNOCROMATOGRAFÍA TINCIÓN DE AZUL DE TOLUIDINA LBA ; PNEUMOCYSTIS JIROVECI TINCION DE KINYOUN LBA (NOCARDIA)

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EXAMENES VIROLOGICOS POR IF Y OTROS ANTIGENOS VIRALES ,TEST RAPIDO INFLUENZA A Y B ANTIGENOS VIRALES DETERMINACION DE ADENOVIRUS POR IF ANTIGENOS VIRALES DETERMINACION DE INFLUENZA A POR IF ANTIGENOS VIRALES DETERMINACION DE INFLUENZA B POR IF ANTIGENOS VIRALES DETERMINACION DE METAPNEUMOVIRUS POR IF ANTIGENOS VIRALES DETERMINACION DE PARAINFLUENZA POR IF ANTIGENOS VIRALES VIRUS RESPIRATORIO SINCICIAL POR IF CAROTENO BASAL CAROTENO SOBRECARGA TEST RAPIDO ADENOVIRUS RESPIRATORIO TEST RAPIDO VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO EXAMENES BACTERIOLOGIA DE LA TUBERCULOSIS BACILOSCOPÍA FLUORESCENCIA BACILOSCOPÍA ZIEHL –NEELSEN BACILOSCOPÍA ZIEHL–NEELSEN POR CONCENTRACIÓN (ORINA U OTROS) CULTIVO DE KOCH PROGRAMA TSH-PKU Y SCREENING METABOLICO ORINA AMINOACIDOS EN ORINA CUERPOS CETONICOS EN ORINA FENILALANINA EN SANGRE MELANOGENURIA (TEST DE CLORURO FERRICO) TSH NEONATAL EN SANGRE PROCEDIMIENTOS (TOMA DE MUESTRAS) O DETERMINACIONES DIRECTO CON PACIENTE TEST DEL SUDOR (PROCEDIMIENTO COMPLETO) TEST DEL SUDOR (PROCEDIMIENTO COMPLETO) CON CLORIDOMETRIA TOMA DE MUESTRA PELO PARA ESTUDIO MICOLOGICO TOMA DE MUESTRA SANGRE ARTERIAL EN NIÑOS Y LACTANTES TOMA DE MUESTRA SANGRE VENOSA EN NIÑOS Y LACTANTES TOMA DE MUESTRAS CON TECNICA ASEPTICA HEMOCULTIVOS TOMA DE MUESTRAS RECOLECTOR ORINA Y OTROS TOMA DE MUESTRAS SANGRE ARTERIAL EN ADULTO TOMA DE MUESTRAS SANGRE VENOSA EN ADULTO TOMA MUESTRA RASPADO DE PIEL PARA ESTUDIO MICOLOGICO TOMA MUESTRA UÑA PARA ESTUDIO MICOLOGICO

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ANEXO 5. NORMATIVA DE LA INFECCION INMUNODEFICIENCIA HUMANA VIH/SIDA

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POR

VIRUS

DE

LA

La normativa que regula el procedimiento de examen para la detección del virus de la inmunodeficiencia humana es la RES Exenta Nº 371 del 02 de Febrero de 2001. Las disposiciones determinadas por el Instituto de Salud Pública para garantizar la calidad de este diagnóstico son: 1.1. El examen de VIH es voluntario. Si la persona accede a realizarse el examen debe dejar constancia escrita de su consentimiento y el laboratorio debe cerciorarse que reciba consejería previa. 1.2. Se debe garantizar la confidencialidad del examen. Sin embargo, deben verificarse con la cedula de identidad del paciente los datos utilizados para construir la Clave de Identidad: Inicial del primer nombre, Inicial del primer apellido, Inicial del segundo apellido, Fecha de nacimiento; últimos tres dígitos del RUT más el código verificador. 1.3. Las muestras que resulten reactivas con la técnica de tamizaje o screening, deben repetirse en duplicado en el mismo laboratorio. Si se repite la reactividad positiva en al menos 2 de 3 exámenes, enviar la muestra al Centro Nacional de Referencia de VIH/SIDA del ISP, para realizar la confirmación Serológica, utilizando Pruebas de confirmación o Suplementarias. 1.4. Las muestras de niños menores a 2 años, serán diagnosticadas por PCR en el ISP. Por disposición del Hospital, cada servicio coordina el envío de las muestras directamente al ISP.

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ANEXO 6. FORMULARIO CONSENTIMIENTO INFORMADO PARA VIH

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ANEXO 7. TABLA DE MODIFICACIONES MODIFICACION

PAGINA

FECHA

RESPONSABLE

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