Manual de Prácticas Fisiología Vegetal

 

 

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA CÁTEDRA DE FISOLOGÍA VEGETAL

MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO TERCER SEMESTRE

 

REGLAMENTO INTERNO DEL LABORATORIO  

Las prácticas se inician a la a hora señalada en el horario correspondiente, por lo que el alumno debe estar a tiempo. La tolerancia máxima será de 5 minutos, después de transcurrido este tiempo ya no se permitirá la entrada al laboratorio.

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El uso de mandil es obligatorio.

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Cada grupo, limpiará la mesa de trabajo antes de iniciar la práctica y al finalizarla.

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Para el desarrollo de cada práctica, el grupo se organizará en equipos de 6 a 8 personas.

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Para el desarrollo de cada práctica cada grupo debe traer el material debido para la práctica correspondiente especificado en la guía de práctica.

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Para el desarrollo de las prácticas, es indispensable el uso de material vegetal de diferente tipo, de diferentes orígenes de este modo los resultados obtenidos tendrán mayor amplitud de interpretación, lo cual además abrirá debate para la discusión de resultados.

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El reporte de cada práctica se entregará a los 8 días de finalizada la práctica (salvo algunas excepciones que se indicaran por el Ayudante de Cátedra).

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En caso de no entregar el informe de práctica el día correspondiente (ya sea cualquier razón) se lo recibirá el mismo día bajo la misma calificación y el día posterior calificado bajo 7. Después del día siguiente no se recibirá el informe bajo ninguna justificación.

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Es obligación del alumno asistir a todas las prácticas de laboratorio programadas, por lo que no se aceptará el informe de cualquier práctica a la que no se haya asistido. Así, la inasistencia a la práctica significará un cero en informe, promediable con la nota final.

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La única circunstancia de justificación de práctica será bajo aviso al ayudante de cátedra con un mínimo de 24 horas antes de realizarse la práctica correspondiente, presentando la justificación debida, además el estudiante tendrá derecho a un trabajo extra para recuperación de su nota.

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FORMATO GENERAL DE INFORMES INTRODUCCIÓN (0.5pto) Debe llevar una redacción no más allá de dos párrafos, el cual debe ser escrito por el estudiante. NO SE ACEPTARA copia del internet ni de otro informe. OBJETIVOS (0.5pto) Se puede mantener los establecidos en la guía o cambiarlos REVISION DE LITERATURA (1pto) La revisión de literatura debe tener una extensión mínima de media página y una máxima de una página. Debe ser ESCRITO ENTERAMENTE POR EL ESTUDIANTE, para ello hay que leer para comprender el contenido teórico de la práctica y poder redactarlo. En caso de copia se penalizará (es fácil distinguir la copia de internet o con otro informe). MATERIALES (0.5ptos) Mantener de la guía de cada práctica PROCEDIMIENTO (0.5ptos) Mantener de la guía de cada práctica RESULTADOS (1,5ptos) El cuadro de resultados debe ser cumplido a cabalidad Cada cuadro debe llevar su título en la parte superior (Tabla 1: --------) Cada fotografía o gráfico debe llevar su título en la parte inferior (Fotografía 1: -----) Nota: Las fotografías no son del experimento sino de los RESULTADOS, deben ser específicas y detalladas. Ejemplo: si en los resultados se miden tamaños de raíz en varios tratamientos, se fotografiará las semillas donde se distingan los diferentes tamaños de las raíces. DISCUSIÓN (2ptos) Se calificará la capacidad de análisis de resultados con los objetivos y el material de consulta. Este debe tener una extensión de un párrafo, explicando todo aspecto interpretable de los resultados, como diferencias en tratamientos, fenómenos inesperados o aspectos variables. CONCLUSIONES (2ptos) Recuerden que deben tener coherencia con los resultados y los objetivos planteados. CUESTIONARIO (1,5ptos) Dos preguntas, responderlas lo más corto y preciso posible. NO SE ACEPTARA COPIA directa del internet. BIBLIOGRAFÍA Se debe describir mínimo 3 fuentes de consulta, por lo menos un artículo científico. En caso de consultar únicamente páginas convencionales se penalizara con 1 punto. NOTA:   La impresión del informe: de lado y lado en la misma hoja o papel reciclado.   En el caso de fotografías no necesariamente tiene que ser a color pero si es necesario que se distingan los detalles.  

La extensión no debería ir mas allá de 4 páginas, se da más valor al contenido que la extensión.

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Práctica 1: Tejidos vegetales INTRODUCCIÓN La célula está formada de un protoplasma o unidad viva en la que se distingue un sistema de membranas, el citoplasma y el núcleo. Las células vegetales presentan una gran diversidad en su tamaño, forma, estructura y función dependiendo del vegetal y del tejido del que forme parte, las cuales tendrán funciones específicas dentro de la fisiología general de una planta. OBJETIVO GENERAL Observación de células y tejidos vegetales OBJETIVO ESPECÍFICOS Observación de haces vasculares en tallos y raíz. Observación de celular foliares en una muestra vegetal Observación de estomas en una muestra vegetal Observación de tricomas en una muestra vegetal Observación de cambium, xilema y floema en una muestra vegetal MATERIAL Safranina, porta objetos, cubre objetos , muestras vegetales, bisturí. PROCEDIMIENTO Obtenga una porción pequeña y delgada por corte transversal de tallo y raíz, tiña la misma con Safranina y colóquela en un portaobjeto y observe al microscopio. Observe los siguientes tejidos de la raíz y el tallo de plantas de papaya: epidermis, corteza, endodermis, cilindro central, haces vasculares de xilema xi lema y floema. Dibuje lo observado y discuta sus resultados. RESULTADOS Presentar los gráficos de las observaciones correspondientes debidamente rotulado. CUESTIONARIO ¿Cuál es la estructura básica de una célula vegetal? ¿Qué estructuras vegetales están involucradas en el movimiento del agua en la planta?

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Práctica 2: Hidroponía INTRODUCCION Desde el punto de vista hortícola, la finalidad de cualquier medio de cultivo es conseguir una planta de calidad en el más corto período de tiempo, con costes de producción mínimos. En este sentido los cultivos sin suelo, también denominados cultivos hidropónicos, surgen como una alternativa a la Agricultura tradicional, cuyo principal objetivo es eliminar o disminuir los factores limitantes del crecimiento vegetal asociados a las características del suelo, sustituyéndolo por otros soportes de cultivo y aplicando técnicas de fertilización alternativas. OBJETIVO GENERAL Cultivar hortalizas mediante hidroponía. OBJETIVO ESPECIFICOS Reconocer la importancia de la nutrición mineral dentro de la producción agrícola. Esclarecer la función de los macro elementos en el desarrollo vegetal. Esclarecer la función de los micro elementos en el desarrollo vegetal. Identificar los principales síntomas de una deficiencia de nutrientes. MATERIAL ‐ Sustrato: arena, pomina, arena, pomina, carbonilla, grava de río, etc. ‐ 4 Cajas pequeñas Cajas pequeñas de espuma Flex (por grupo) ‐ Soluciones nutritivas  nutritivas  PROCEDIMIENTO Lave el sustrato con agua limpia varias veces hasta que el agua salga clara. Agréguele una solución de hipoclorito de sodio al 0.5% y déjela por por 1 horas o más. Lave de nuevo nuevo el sustrato hasta que desaparezca el olor a hipoclorito Llene las materas o canaletas con el sustrato; siembre las semillas previamente seleccionadas o transplante si hizo un semillero.  ___________________________________  ______________________ _______________________ ______________________ ________________ ____ Solución de elementos mayores (g/L) Solución de elementos menores (g/L Nitrato de calcio 0.70 Sulfato ferroso FeS04. 7H2O 0.00273 Superfosfato triple 0.20

Sulfato de magnesio MnSO4.2H2O 0.00564

Sulfato de magnésio 0.50

Ácido bórico H3Bo3 0.00420

Nitrato de potasio 0.65

Sulfato de cobre CuSO4 0.00030

RESULTADOS Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Qué funciones cumplen los elementos, Nitrógeno, Fosforo, Potasio, Calcio y Magnesio en la nutrición Vegetal? ¿Cuáles son los principales síntomas de deficiencia de los diferentes microelementos? BIBLIOGRAFÍA  BIBLIOGRAFÍA  Laboratorio de Fisiología Vegetal

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Práctica 3: Fotosíntesis. INTRODUCCIÓN La fotosíntesis (del griego antiguo foto "luz" y síntesis "composición") es la base de la vi da actual en la Tierra. Es un proceso mediante el cual los organismos con clorofila, como las las plantas verdes, las algas y algunas bacterias, capturan energía en forma de luz y la transforman en energía química. Es un proceso complejo, mediante el cual los seres vivos poseedores de clorofila y otros pigmentos, captan energía lumínica, ellos transforman el agua y el CO2 en compuestos orgánicos reducidos (glucosa y otros), liberando oxígeno: OBJETIVOS GENERAL Conocer el proceso biológico de la fotosíntesis y su importancia en la vida vegetal. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Identificar la importancia del CO2 en el proceso fotosintético. Cuantificar de manera apreciativa la cantidad de CO2 consumido por una planta de elodea. Identificar el papel que cumple la luz en el proceso fotosintético, con la utilización de luz de diferentes colores. REVISION DE LITERATURA  LITERATURA  MATERIALES ENSAYO No. 1: 1tubo de ensayo, 2 ramas de elodea, Vaso de precipitación, 1 embudo, Lámpara REACTIVOS: Agua, Bicarbonato sódico sódico o potásico PROCEDIMIENTO ENSAYO No. 1:          

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Llenar con agua un vaso de precipitación grande.  grande.  Añadir una cucharada de bicarbonato sódico o potásico.  potásico.  Colocar 2 ramas de elodea en el fondo del vaso de precipitación.  precipitación.  Llenar completamente de agua un tubo de ensayo.  ensayo.  Tapar el tubo con el pulgar y colocarlo sobre la parte estrecha del embudo, evitando que

vacíe una parcialmente el agua delperimento.  tubo de ensayo.  ensayo.     se Colocar lámpara sobre el experimento. ex     Medir la cantidad de burbujas liberadas durante 5 minutos, luego de 30 minutos de exposición a la luz.  luz. 

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RESULTADOS ENSAYO No. 1: Cantidad de burbujas liberadas Tiempo de exposición a la luz Tiempo de medición MATERIALES ENSAYO No. 2: 3tubos de ensayo, 2 ramillas elodea de igual tamaño, de tubos, Pipeta Pasteur Papel colorimétrico, Lápiz de de cera, Lámpara de 75 W, AzulGradilla de bromitol al 0,1% Laboratorio de Fisiología Vegetal

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  PROCEDIMIENTO EXPERIMENTO No. 2: elodeas.     Llenar los tres tubos de ensayo con el agua del estanque que contiene las elodeas. azul.     En los tres tubos colocar gota a gota el azul de bromotimol hasta que se tornen de color azul.   Soplar con la ayuda de una pipeta en los dos primeros tubos hasta que el líquido se torne de color amarillo.  amarillo.  tubo.    Con el papel colorimétrico medir el pH de cada tubo.  t ubos las ramitas de elodea.  elodea.    Introducir en los dos primeros tubos   Envolver el primero en papel aluminio y al segundo exponerlo a la luz de la lámpara, en el 

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tercero NO colocar la rama de elodea y exponerlo a la luz de la lámpara (este tubo sirve para control).   control).   Esperar aproximadamente 45 minutos o hasta ver un cambio de color en el tubo expuesto a la luz de la lámpara.  lámpara.  indicador.     Determinar nuevamente el pH en cada tubo con el papel indicador. obtenidos.    Anotar los valores obtenidos. 

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CÁLCULOS Y RESULTADOS EXPERIMENTO No. 2: Tratamiento

Color de la solución

pH de la solución

Antes

Antes

Después

Después Después

Expuesto a la luz Oscuridad Sin planta Expuesto a la luz NOTA: Sustentar TODOS sus resultados con fotografías o gráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Qué plantas presentan una actividad fotosintética más eficiente, las C3 o C4? Explique las razones. ¿Qué aspectos debe tomar en cuenta en un cultivo para asegurar una buena actividad fotosintética?

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Práctica 4: Influencia del pH y salinidad en la germinación de semillas. INTRODUCCIÓN El proceso de germinación es una etapa importante en el desarrollo vegetal, en el cual intervendrá de manera crucial el medio en el cual se encuentra la semilla, redundando el contenido de agua del medio, el cual iniciara todos los procesos internos del embrión, como formación de la radícula y el epicótilo. Por lo cual se experimentará el proceso de germinación bajo varias condiciones químicas del agua: pH y salinidad. OBJETIVO GENERAL Reconocer la influencia del pH y la salinidad en el proceso de germinación. OBJETIVOS ESPECIFICOS Determinar todos los aspectos visibles en la germinación de semillas de lenteja bajo condiciones condiciones de pH ácido, básico y neutro. Determinar todos los aspectos visibles en la germinación de semillas de lenteja bajo varios contenido de sal en el agua. MATERIALES 6 cajas Petri de plástico Papel toalla Semillas de lenteja HCL concentrado NaOH NaCl Agua destilada PRODEDIMIENTO Influencia del pH

       

Realizar dos soluciones, una a pH 3 y otra a pH 11  11   Empapar una mota de algodón, en la cual se colocará una semilla y ésta en la caja petri.  petri.  Repetir el proceso con el resto de semillas y colocar 10 en cada caja. caja.   Agregar el colorante fenolftaleína a una de las cajas que contenga la solución de pH básico y colorante metil naranja a una de las cajas con la solución de pH ácido.  ácido.  semana.    Identificar cada caja y tomar datos luego de una semana. 

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Influencia de la salinidad

  Realizar soluciones de 100 ml de NaCl a 0,1 g, 0,5 g y 1 g.   Colocar 10 semillas en cajas Petri, con papel tolla o higiénico empapado con las soluciones de sal y uno con agua (testigo), en total 4 tratamientos.   Identificar cada tratamiento   Tomar datos luego de una semana.

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Se puede realizar un mismo testigo para par a ambos experimentos.

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RESULTADOS

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Influencia del pH

Tratamiento

Porcentaje de germinación

Longitud de tallo. Longitud de raíz.

Vigor

Longitud de tallo. Longitud de raíz.

Vigor

pH 4 pH 11 pH 7 (testigo) Influencia de la salinidad

Tratamiento

Porcentaje de germinación

NaCl 0.1g NaCl 0.5g NaCl 1g Agua Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos. g ráficos. CUESTIONARIO ¿Cuáles son las condiciones ideales para la germinación? ¿Cómo influye la salinidad y el pH en el desarrollo vegetal?

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Práctica 5: Transpiración INTRODUCCIÓN Dentro de la comprensión de la fisiología vegetal cabe resaltar la importancia de la traspiración dentro de las plantas, tanto en los procesos de movimiento de agua y solutos dentro del mismo así como su supervivencia, ya que con el correcto control de este proceso garantizara su optimo metabolismo, por lo que experimentar en laboratorio con este aspecto es fundamental para la comprensión de dicho proceso. OBJETIVO GENERAL

Conocer el proceso biológico de transpiración y su relevancia en la vida de las plantas. OBJETIVOS ESPECIFICOS Conocer las principales estructuras vegetales que participan en el proceso de transpiración  transpiración  Identificar como la transpiración ayuda a la regulación térmica de la planta e intercambio gaseoso de agua con el medio.  medio.  Conocer uno de los métodos para medir la transpiración en una planta. MATERIALES Y REACTIVOS Matraces Erlenmeyer de 250 ml.  ml.  Capilar de vidrio  vidrio  Rama de álamo  álamo  Soporte universal, pinzas  pinzas  Colorante Agua destilada  destilada  PROCEDIMIENTO   Preparar una solución de 100 ml de colorante.   Prepara el equipo con soporte universal y pinzas.   Colocar una ramita de álamo o cualquier especie leñosa en el capilar de tal forma que quede sellado.   Llenar el capilar de agua, sin que se forme excesos de aire.   Sumergir el capilar en la solución colorante.   De ser necesario prenda una lámpara para acelerar el proceso de transpiración.   Hacer mediciones de la subida del colorante por el capilar cada 30 minutos. 

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RESULTADOS Tiempo de repetición

Distancia del colorante (mm)

Cantidad de agua equivalente (ml)

CUESTIONARIO Explique las variables que influyen en la transpiración.

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Práctica 6: Gutación INTRODUCCIÓN   INTRODUCCIÓN La palabra gutación proviene del latín gutta = gota, es un proceso de excreción de agua de la planta a través de hidátodos, estructuras asociadas a los nervios en los márgenes m árgenes de las hojas. Los hidátodos rara vez tienen un mecanismo de regulación de su apertura (a diferencia de los estomas). El líquido líquido excretado excretado proviene del xilema de las hojas, que está compuesto por agua, minerales (principalmente calcio) y ácidos orgánicos absorbidos por las raíces. OBJETIVO GENERAL Identificar el proceso de gutación y su importancia en la vida vegetal. OBJETIVO SESPECÍFICOS: Identificar las condiciones específicas en las cuales se produce la gutación.

identificar el producto de la gutación y relacionar este proceso con la transpiración. Concluir por qué de la utilización de plantas de la familia Poaceae en la práctica. MATERIALES: Tres macetas con plantas de de avena (Avena sativa), atomizador, atomizador, cinta adhesiva, marcador marcador campana o cámara húmeda, agua, Cloruro de sodio PROCEDIMIENTO:   En la primera maceta colocar 50% agua y 50% cloruro de sodio en el suelo y humedecer la campana.   campana.   En la segunda maceta colocar 50% agua y 50% cloruro de sodio en el suelo sin humedecer la campana.   campana. 

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En la tercera maceta colocar solo agua en el suelo y humedecer la campana con el atomizador. atomizador.   Colocar las campanas sobre las macetas, cerrándolas herméticamente. herméticamente.   Contar la cantidad de gotas producidas a las 3 horas y 24 horas.  horas.  Si es posible realice un conteo cada hora durante las primeras 3 horas. horas.  

RESULTADOS: TRATAMIENTO

NÚMERO DE GOTAS

OBSERVACIONES

NaCL 1 G + agua en la campana NaCl (SIN agua en la campana) Agua + agua en la campana Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos g ráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Cuál es la relación entre presión de raíz y la gutación? ¿Cuáles son las condiciones idóneas para que ocurra la gutación?

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Práctica 7: Enzimas Oxidativas Catalasas INTRODUCCIÓN La catalasa se encuentra en las células de tejidos animales y vegetales, su función en los tejidos es necesaria, ya que durante el metabolismo celular se forma una molécula tóxica llamada peróxido de hidrógeno. Muchos organismos pueden descomponer el peróxido de hidrógeno (H2O2) por la acción de las enzimas. Las enzimas son proteínas globulares responsables de la mayor parte de la actividad química de los organismos vivos. OBJETIVO GENERAL Conocer la importancia de las enzimas en la vida de las plantas. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Identificar la acción de la catalasa. Relacionar los conocimientos de enzimas con los demás procesos metabólicos de la planta. MATERIALES   2 tubos de ensayo   2 probetas de 50 ml.   2 vasos de precipitación de 100 ml.

  1 zanahoria   Reverbero eléctrico o estufa   Agua oxigenada

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  1 tubérculo de papa

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PROCEDIMIENTO: papa.     Cortar la zanahoria en 2 trocitos iguales y hacer lo mismo con la papa.    Introducir cada muestra en un tubo de ensayo (4 muestras). tubos.    Poner 5cc de agua en los cuatro tubos.    Poner a fuego un tubo con zanahoria y otro con papa por 6-8 minutos.  minutos.  tubos.    Retirar y añadir peróxido de hidrógeno en los 4 tubos.  

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resultados.    Observar los resultados. 

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RESULTADOS Reacción con H2O2  Papa sin hervir Papa hervida Zanahoria sin hervir Zanahoria hervida Estimar en porcentaje la cantidad de espuma formada por la reacción en base al contenido del tubo de ensayo. Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos g ráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Cuáles son las diferentes vías metabólicas?

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Práctica 8: Pigmentos Vegetales. INTRODUCCIÓN  INTRODUCCIÓN  El color particular que presenta un determinado órgano vegetal depende generalmente del predominio de uno uno o varios pigmentos. El color verde tan uniformemente presente en los vegetales es debido debido a la presencia presencia de dos pigmentos estrechamente estrechamente emparentados, emparentados, clorofila a y clorofila b. Pueden formarse en las raíces, tallos, hojas y frutos a condición de que estos órganos estén situados por encima del suelo y queden expuestos a la luz. OBJETIVO GENERAL Identificar los diferentes pigmentos vegetales. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: Realizar diferentes tipos de cromatografías para identificar los pigmentos que componen la savia de las plantas. Comparar africana. e identificar los pigmentos que le dan color a las flores de miramelindo y azucena Identificar la influencia de factores químicos en la tonalidad de los pigmentos vegetales. MATERIALES - Flores de azucena africana   Flores de miramelindo   Hojas de espinaca   Morteros con sus respectivos pistilos   Tubos de ensayo    

  gradilla   papel filtro   alfileres

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pinzas piola Soporte universal Lápiz Regla milimetrada microscopio agitador magnético Agua destilada Hidróxido de sodio 1N Ácido clorhídrico 1N Alcohol Acetona

PROCEDIMIENTO: Cromatografía de papel:

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    Macere las hojas de espinaca en el mortero hasta obtener una solución de aproximadamente 200 ml.  ml.    Corte el papel filtroa una en tiras de de 1 cm de ancho por 10 cm. largo. largo.        Marque una línea altura 2 cm. sobre el borde delde papel filtro. filtro.    Con ayuda del mondadientes o alfiler, coloque la solución de savia sobre la línea que marcó con el lápiz.  lápiz.  acetona.    Coloque en un tubo de ensayo 10 ml. de acetona.    Sumerja el extremo inferior del papel en la acetona procurando no sobrepasar el 1mm sumergido.   sumergido. sucedido.    Espere y grafique lo sucedido. 

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Pigmentos florales 1:   En el mortero macere las flores de azucena africana, hasta obtener un volumen de solución de aproximadamente 60 ml.   Coloque 20 ml. de solución por tubo de ensayo. 

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Al tubotubo de ensayo identifíquelo testigo. Enprimer el segundo de ensayo ensa yo coloque 5como ml. de NaOH NaOH 1N. En el tercer tubo coloque 5 ml. de HCl 1N. Observar y graficar lo sucedido. Repetir el mismo proceso con la flor de miramelindo.

Pigmentos florales 2:   En un frasco de vidrio colocar una solución con pH = 3.5 y en él ubique una flor de azucena africana.   En un frasco de vidrio colocar una solución de agua destilada con pH = 10.0 y en él ubique una flor de azucena africana   Espere 10 min. y grafique lo observado. 

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RESULTADOS

Cromatografía de papel Anexar sus muestras de cromatografías en papel filtro. Pigmentos florales 1 Describir los cambios de pigmentación. Pigmentos florales 2 Describir los cambios de pigmentación. Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos g ráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Cuáles con los principales pigmentos vegetales? ¿Qué relación guarda el pH y los pigmentos?

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Práctica 9: Tropismos INTRODUCCIÓN Dentro de los aspectos de las relación vegetal, captación de energía lumínica es fundamental en hábitats silvestres, donde plantas utilizanlaestrategias para asegurar su desarrollo y crecimiento; muchas de estas estrategias se basan en suministrar los suficientes recursos a la planta, iniciados en por estímulos externos de varios tipos, pudiendo ser hídricos, táctiles, lumínicos, químicos o gravedad, los cuales se harán visibles a lo largo del crecimiento de la planta. OBJETIVO GENERAL Comprender los procesos de tropismo en varias especies vegetales. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Comprender en vivo en proceso de fototropismo. Comprender en vivo el proceso del gravitropismo. Comprender en vivo el proceso del tigmotropismo. MATERIALES Macetas Plántulas de frejol de crecimiento indeterminado de 3 semanas de germinación. Planta de aguacate o cualquier otra leñosa de 1 mes de germinación. Caja de cartón. Tijeras Tutores PROCEDIMIENTO Fototropismo y gravitropismo 1) 1)   Pasar la planta de aguacate de posición vertical a horizontal. Colocarla en un sitio iluminado. -  Registrar su comportamiento y crecimiento cada 3 días por 2 semanas. 2) 2)   Hacer un agujero en la caja de cartón de tal modo que entre luminosidad solo por ese sitio. -  Colocar una planta de cualquier tipo dentro -  Registrar el comportamiento de la planta por dos semanas Tigmotropismo -  Colocar varios tutores alrededor de la planta de frejol de crecimiento indeterminado indeterminado   -  Registrar su comportamiento por dos semanas.  semanas. 

RESULTADOS. Realizar una breve bitácora sobre los cambios que presentaron las plantas a los largo de las dos semanas. Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos. g ráficos. CUESTIONARIO Explique el mecanismo fisiológico del fototropismo. ¿Qué son los amiloplastos y que función cumplen?

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Práctica 10: Reguladores de crecimiento crecimiento (Giberelinas) INTRODUCCION

Las giberelinas son hormonas vegetales cuya estructura básica es el grupo gibano. Una de las giberelinas másde conocidas Algunos ejemplos uso son: es el ácido giberélico Giberelinas:

. Estimulan el crecimiento (alargamiento del tallo y entrenudos). . Estimulan la división celular. . Provocan en ciertas especies y en ciertas condiciones la floración. . Provoca el rompimiento de dormancia en semillas. . Controlan la movilización de nutrientes. OBJETIVO GENERAL Demostrar la influencia de las Giberelinas en la germinación y crecimiento vegetal. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Demostrar la estimulación del crecimiento y la Inhibición del mismo con ácido Giberélico y Cicocel respectivamente en plantas de frejol en varios tratamientos. t ratamientos. Demostrar la estimulación de germinación de las Giberelinas en semillas de arveja MATERIAL 10 plántulas de fríjol de 15 a 20 días de germinadas Ácido giberélico 50 ppm Cicocel 5000 ppm Aspersores Semillas de arveja Algodón Cajas Petri PROCEDIMIENTO Crecimiento -Realizar dos soluciones de 10 ppm y 100 ppm de ácido giberélico giberélico -Realizar dos soluciones de Cicocel Cicocel a 1000 ppm y 5000 ppm -Realizar cada tratamiento con dos plántulas: Agua, Giberelinas 5 ppm, Giberelinas 10 ppm, Cicocel 1000 ppm, Cicocel 5000 ppm. -Asperje cada tercer día, tres veces, lotes de 2 plantas con ácido ggiberélico, iberélico, cicocel cicocel y agua destilada para cada tratamiento. -Al cabo de 12 días después de los tratamientos mida la longitud de los entrenudos y cuente el número de estos para cada tratamiento.

-Al asperjar procure cubrir con la solución el follaje y que el rocío de un tratamiento no alcance a las plantas de otro. Germinación -  Realizar tres soluciones de 20 ml de ácido giberélico a 1 ppm 5 ppm y 10 ppm -  Colocar en 4 cajas Petri 10 semillas de arveja envueltos en algodón

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Preparar los cuatro tratamientos: Agua, Giberelinas a 1, 5 y 10 ppm. Regar periódicamente las soluciones en las semillas hasta su germinación. A los 10 días mida la longitud de epicótilo y radícula de cada semilla por tratamiento y saque un promedio general de los mismos.

RESULTADOS. Crecimiento Tratamiento Agua Giberelinas 5 ppm Giberelinas 10 ppm Cicocel 1000 ppm Cicocel 5000 ppm

Longitud de entrenudos

Número de nudos

Longitud de Epicótilo

Longitud de radícula

Germinación Tratamiento Agua Giberelinas 1 ppm Giberelinas 5 ppm Giberelinas 10 ppm

Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO Utilidades de las Giberelinas en la producción agrícola.

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Práctica 11: Reguladores de crecimiento crecimiento (Etileno) INTRODUCCIÓN Históricamente son tres los caminos que han conducido al establecimiento del etileno como una hormona vegetal: a) las antiguas observaciones de que los frutos maduran más rápidamente si se les encierra en un cuarto con humo, b) el hecho de que en el cultivo de piña y mango se inicien incendios aledaños a los cultivos a fin de que el humo Inicie y sincronice la floración y c) la Inducción de la caída de las hojas de los árboles a partir del gas desprendido en las lámparas utilizadas para la iluminación pública a mediados de 1864. En la actualidad se conocen muchas respuestas de las plantas controladas directamente por etileno aparte de aquellos casos en los que posiblemente otros reguladores del crecimiento ejercen sus efectos teniendo al etileno como intermediario   intermediario OBJETIVO GENERAL Identificar la influencia del etileno en el desarrollo vegetal OBJETIVOS ESPECÍFICOS Medir el aumento de la vida en el florero de plantas de clavel tratadas con tiosulfato de plata. Medir la disminución de la vida en el florero causada por un aumento da la concentración de etileno. MATERIALES 12 Claveles cortados (No comerciales) 12 rosas cortadas (No comerciales) 5 Frascos de vidrio Etiquetas Sol. de etefón a 50 ppm Sol. de tiosulfato de plata 50 ppm PROCEDIMIENTO  Aumento de la vida en florero -  Hacer una solución de 50 ppm de tiosulfato de plata -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en la solución por 20 minutos. -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en la solución por 40 minutos. -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en agua (testigo). -  Tomar datos cada 3 días sobre el comportamiento de las flores hasta la marchitez Disminución de la vida en florero -  Hacer una solución de 50 ppm de Etefón. -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en la solución por 20 minutos. -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en la solución por 40 minutos. -  Sumergir 3 flores de clavel y 3 flores de rosa en agua (testigo). -  Tomar datos cada 3 días sobre el comportamiento de las flores hasta la marchitez

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  RESULTADOS Fecha Vigor

Pétalos

Hojas

Cuello de ganso (Roja)

Marchitez (Clavel)

TOTAL de días de vida en florero: Los datos se empezarán a tomar a partir del tercer día y cada tres días tomando observaciones de los parámetros dados. Para determinar el total de días en florero para la rosa se observará el “cuello de  de ganso” y para el clavel el “marchitamiento general.  general.  Realizar 4 cuadros: dos para Aumento de los días en florero (rosa y clavel) y dos para la Disminución de los días en florero (rosa y clavel). Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos g ráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO ¿Por qué se utilizan inhibidores de etileno etil eno en la producción agrícola? ¿Qué relación tiene el CO2 con la producción de etileno?

Laboratorio de Fisiología Vegetal

 

 

Semestre Septiembre 2013-Febrero 2014

Práctica 12: Reguladores de crecimiento (Auxinas) INTRODUCCIÓN Una hormona vegetal es una sustancia orgánica que es sintetizada en el interior de la planta y que, a bajas concentraciones, puede activar, Inhibir o modificar cualitativamente el crecimiento ejerciendo normalmente ésta acción en un lugar distinto al de origen. Dentro de los grupos importantes de las hormonas vegetales están las auxinas. Un aspecto práctico de estas hormonas vegetales en la estimulación de la Iniciación de las raíces. La capacidad de muchas plantas para formar raíces en estaca colocados en condiciones favorables de crecimiento tiene un gran valor en la propagación de las plantas. OBJETIVO GENERAL Reconocer la influencia de las auxinas en el desarrollo vegetal OBJETIVOS ESPECÍFICOS Determinar la influencia de las auxinas en la formación de raíces adventicias. Determinar cuál de las concentraciones de ANA E iba acelera la formación de raíces en esquejes de Geranio. MATERIALES -  Esquejes de geranio  geranio  -  Soluciones de ANA: 10, 100 y 500 ppm   ppm -  Soluciones de IBA: 10, 100 y 500 ppm  ppm  

-  -  - 

Vasos de precipitación  precipitación  Macetas   Macetas Sustrato (tierra negra + pomina)  pomina) 

PROCEDIMIENTO -  Se proporcionarán las plantas de geranio para hacer estacas de 10 cm de longitud. -  Se usarán 3 estacas por concentración de ANA e IBA y un testigo. -  Inmediatamente después se ponen en contacto con las diferentes concentraciones en 100 ml de solución. -  Se espera una hora. -  Se prepara las macetas con sustrato para plantar las estacas. -  Revisar los esquejes a los 8 y 15 días. RESULTADOS Tratamiento Número de raíces Longitud promedio de Raíces Agua IBA 10 ppm IBA 100 ppm IBA 500 ppm ANA 10 ppm ANA 100 ppm ANA 500 ppm Sustentar sus resultados con fotografías o gráficos debidamente rotulados CUESTIONARIO Describa el proceso fisiológico de la producción de una raíz adventicia. ¿En qué procesos fisiológicos intervienen las auxinas?  auxinas? 

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Práctica 13: Absorción de agua atmosférica en semillas almacenadas OBJETIVO GENERAL

Comprobar que las semillas absorben agua del medio en que están almacenadas. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Proponer las condiciones adecuadas para almacenar semillas. Determinar la influencia de la humedad relativa en el almacenaje de semillas. MATERIAL ‐ Semillas de trigo..  trigo..  ‐ Ácido sulfúrico concentrado  concentrado  ‐ Cinco tubos de ensayo ‐ Tapones de caucho .  .  ‐ Malla de alambre fina  fina 

‐ Gradilla  Gradilla  ‐ Probeta graduada de 100 cc.  cc.  ‐ Balanza  Balanza  ‐ Bandas de caucho  caucho 

PROCEDIMIENTO Prepare 20cc de cada una de las soluciones de ácido sulfúrico siguientes colocándolas en los respectivos tubos de ensayo marcados. Use agua de la llave como solvente. Tubo l. H2S04 al 80% Tubo 2. H2S04 al 60% Tubo 3. H2S04 al 40% Tubo 4. H2S04 al 20% Tubo 5 coloque agua ag ua únicamente. Pese 5 grupos cada uno de 3 gramos de semillas de trigo y colóquelas dentro de cada tubo con ayuda de pedazos de malla de alambre de tal manera que no queden las semillas en contacto con la solución. Tape bien los tubos y deje el experimento una semana bajo condiciones del laboratorio. En cada tubo se producirá una humedad relativa de acuerdo a la cantidad de H2S04 que contenga. RESULTADOS Tratamiento H2S04 al 80% H2S04 al 60% H2S04 al 40% H2S04 al 20%

Humedad relativa 10.0 17.0 76.0 90.0

 Agua

100.0

Peso inicial

Peso Final

Perdida o ganancia de agua

CUESTIONARIO ¿Qué influencia tiene la humedad humedad atmosférica con los vegetales?

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Práctica 14: Maduración de frutos OBJETIVOS GENERAL Identificar los principales reguladores de crecimiento en las plantas. OBJETIVOS ESPECÍFICOS OBJETIVOS ESPECÍFICOS Identificar las condiciones adecuados para la producción. Identificar en que tejidos se produce mayor cantidad de Etileno. Identificar condiciones condiciones en las cuales se evita o reduce al mínimo la producción de etileno.