MANUAL DE CIRUGÌA

March 20, 2018 | Author: Pedro Sotelo | Category: Prescription Drugs, Sterilization (Microbiology), Wound, Benzodiazepine, Surgery
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“Curso de cirugía en pequeñas y grandes especies”

17/12/2012

[La Medicina es una ciencia sometida a un cambio constante. A medida que la investigación y la experiencia clínica amplían nuestros conocimientos, son necesarios cambios en los tratamientos tanto quirúrgicos como terapéuticos.]

Dr. José Manuel Gonzalo Cordero.

Autor Dr. Daniel Morales Arancibia Profesor Titular, Patología Quirúrgica Veterinaria Dpto. Sanidad Animal UNAN – León

CONTENIDO Páginas 1. PRINCIPIOS DE ASEPSIA QUIRÚRGICA 03 Esterilización y desinfección. Preparación del quirófano y material quirúrgico. Preparación del paciente quirúrgico. Preparación del cirujano. 2. SUTURAS 08 Generalidades e indicaciones. Instrumental de sutura. Materiales de sutura. Descripción de las diferentes técnicas de sutura. Complicaciones de la cicatrización debidas a las suturas. 3. DOSIFICACIÓN Y VÌAS DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOS

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4. ANESTESIOLOGÍA

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4.1. BASES DE LA ANESTESIA VETERINARIA Concepto de anestesia. Indicaciones de la Anestesia General. Fases Técnicas de la Anestesia General. Evaluación preoperatoria del paciente. Preparación del paciente. 4.2. PREANESTESIA Concepto. Objetivos. Ventajas de la preanestesia. Drogas: Tranquilizantes, Benzodiacepinas, Agonistas alfa-2 adrenérgicos, Disociativos. 4.3. TÉCNICAS DE ANESTESIA GENERAL INYECTABLE Indicaciones. Ventajas e inconvenientes. Equipamiento técnico necesario. Técnicas de anestesia inyectable. 4.4. ANESTESIA LOCAL Y REGIONAL Concepto. Indicaciones de la anestesia local. Mecanismo de acción de los anestésicos locales. Anestésicos locales más empleados. Técnicas de anestesia local y regional. 4.5. ANESTESIA GENERAL EN RUMIANTES Sedación y mantenimiento. 4.6. ANESTESIA EN EQUINOS Preparación del paciente. Preanestesia. Mantenimiento anestésico 5. CIRUGÍA DE LOS SISTEMAS REPRODUCTIVO Y GENITAL 5.1. SISTEMA REPRODUCTIVO Y GENITAL MASCULINO 5.1.1. TRASPLANTE DEL PENE EN EL TORO

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5.1.2. CASTRACIÓN Indicaciones. Método Elástor o Anillas de Goma. Método Burdizzo. Técnicas quirúrgicas. 5.2. SISTEMA REPRODUCTIVO Y GENITAL FEMENINO 5.2.1. CESÁREA (HISTEROTOMÍA) Indicaciones. Técnica de la incisión vertical. 5.2.2. TÉCNICA DE OVARIO HISTERECTOMÍA (OHE) 6. RUMENOTOMÍA Indicaciones. Técnica quirúrgica.

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7. HERNIAS 71 Concepto. Etiología. Componentes. Clasificación. Signos clínicos. Diagnóstico. Diagnóstico diferencial. Tratamiento quirúrgico. 8. DESCORNE COSMÉTICO 78 Métodos de descorne en terneros. Descorne quirúrgico en toretes, vaquillas o animales adultos. 9. OTOHEMATOMA 83 Consideraciones generales y fisiopatología clínicamente relevante. Diagnóstico. Diagnostico diferencial. Manejo medico. Tratamiento quirúrgico

1. PRINCIPIOS DE ASEPSIA QUIRÚRGICA Siempre que se disrumpa la integridad cutánea, como durante la cirugía, los microorganismos tienen acceso a los tejidos internos. Las bacterias que contaminan las heridas quirúrgicas en líneas generales se originan a partir de la flora endógena del enfermo, personal del quirófano y medio ambiente. Para evitar la contaminación de las heridas se deben seguir las reglas de una técnica aséptica. Estas reglas no son simplemente pautas generales sino leyes del quirófano y su incumplimiento incrementa el riesgo de infección o enfermedad del paciente. La técnica aséptica se define como los métodos y prácticas que previenen la contaminación cruzada en la intervención quirúrgica. Consiste en la preparación adecuada de los servicios y ambiente, campo operatorio, personal de cirugía y equipamiento quirúrgico. La introducción de microorganismos dentro de la herida quirúrgica es necesaria para el desarrollo de la infección. Los microorganismos pueden ingresar desde fuentes exógenas (aire, instrumentos quirúrgicos, personal de cirugía, paciente) o endógenas (microbios provenientes del cuerpo enfermo). Es imposible erradicar a todos los microorganismos de la herida quirúrgica y campo estéril; sin embargo, la técnica aséptica limita la exposición del paciente hasta un nivel de microorganismos que no sea dañino.

Reglas de la técnica aséptica y motivos para las mismas: Regla. Los miembros del equipo quirúrgico permanecen dentro del área estéril. Motivo. El movimiento fuera del área estéril puede fomentar la contaminación cruzada. Regla. La conversación se mantiene al mínimo. Motivo. La conversación libera gotitas de humedad cargadas de bacterias. Regla. El movimiento en el quirófano se mantiene al mínimo por todo el personal; solo el personal necesario debe ingresar en al sala de operaciones. Motivo. El movimiento en el quirófano puede motivar un flujo de aire turbulento y redundar en contaminación cruzada. Regla. El personal no lavado no debe estar en zonas estériles. Motivo. El polvo, hilachas u otros vehículos de contaminación bacteriana pueden caer sobre el campo estéril. Regla. Los miembros del equipo lavados deben mirarse entre sí y al campo estéril en todo momento.

Motivo. La espalda no se considera estéril incluso con los camisolines envueltos alrededor. Regla. El equipamiento empleado durante la intervención debe estar esterilizado. Motivo. Los instrumentos no esterilizados pueden ser fuente de contaminación cruzada. Regla. Las mesas estériles sólo son a su altura. Motivo. Los elementos que cuelgan sobre el borde de la mesa se consideran no estériles porque están fuera de la visión del cirujano. Regla. Los camisolines son estériles desde la mitad del tórax y desde la mano enguantada hasta 2 pulgadas por encima del codo. Motivo. La espalda no se considera estéril incluso si se emplean camisolines alrededor. Regla. Los paños que cubren la mesa de instrumentos o al paciente deben ser impermeables. Motivo. La humedad transporta bacterias desde una superficie no estéril hacia otro estéril (contaminación por encharcamiento). Regla. Si un objeto estéril contactó el borde de sellado de la bolsa que lo contiene durante la apertura, se lo considera contaminado. Motivo. Una vez abiertos, los bordes sellados de las bolsas no son estériles. Regla. Los elementos estériles dentro de un envoltorio dañado o húmedo se consideran contaminados. Motivo. La contaminación puede ocurrir desde los envoltorios perforados o transporte de humedad desde encharcamiento. Regla. No colocar las manos en la región axilar sino mantenerlas en frente del cuerpo por encima de la cintura. Motivo. La región axilar del camisolín no se considera estéril.

ESTERILIZACIÓN Y DESINFECCIÓN La esterilización se refiere a la destrucción de todos los microorganismos (bacterias, virus, esporas) sobre algo; por lo usual son objetos que entran en contacto con tejidos estériles o ingresan al sistema vascular (por ej., instrumentos, paños, catéteres, agujas). La desinfección es la destrucción de la mayoría de los microorganismos patógenos sobre objetos inanimados (no vivos), mientras que la antisepsia es la destrucción de la mayor parte de los microorganismos patógenos sobre animales (vivos).

Los antisépticos se emplean para matar microorganismos durante la preparación y restregado quirúrgico de la piel del paciente; sin embargo, la piel no es esterilizada. La desinfección por lo usual comprende desinfectantes líquidos. La selección del desinfectante apropiado se fundamenta en los resultados deseados. Algunos desinfectantes son eficaces en la destrucción de cantidades limitadas de microorganismos; otros son efectivos destruyendo a todos los organismos, incluyendo las esporas.

Desinfectantes comunes utilizados en la práctica veterinaria Alcohol: alcohol isopropílico (50 – 70%); alcohol etílico (70%). Se emplea para higiene de foco; preparación de sitio para inyección. Posee buenas propiedades desinfectantes y muy buenas propiedades antisépticas. Su mecanismo de acción se basa en la desnaturalización proteica, interrupción metabólica y lisis celular. Precauciones: es corrosivo para acero inoxidable; volátil. Compuestos clorados: hipoclorito. Se emplea para higiene de pisos y mesados. Posee buenas propiedades desinfectantes y favorables propiedades antisépticas. Mecanismo de acción: genera cloro y oxígeno libres. Precauciones: inactivado por detritos orgánicos; corrosivo para metales. Compuestos yodados: yodóforos (7.5%) solución de lavado. Se emplea para higiene de pisos oscuros y mesados. Posees buenas propiedades desinfectantes y antisépticas. Su mecanismo de acción se basa en la yodinación y oxidación de moléculas esenciales. Precauciones: colorea telas y tejidos. Glutaraldehido: solución alcalina al 2%. Se emplea para desinfección de instrumentos ópticos y delicados. Posee buenas propiedades desinfectantes, además esteriliza. No tiene propiedades antisépticas. Su mecanismo de acción se basa en la alquilación proteica y de ácidos nucleicos. Precauciones: reacción tisular; olor (enjuagar los instrumentos antes del empleo).

ESTERILIZACIÓN Como los tejidos internos del cuerpo son estériles, cualquier equipamiento o instrumento que entra en contacto con los mismos también debe ser estéril. Los métodos para esterilizar los instrumentos quirúrgicos u otros equipamientos incluyen vapor, sustancias químicas, plasma y radiación ionizante.

Esterilización con vapor El vapor presurizado es el método más corriente de esterilización empleado en los hospitales. El vapor destruye los microbios durante la coagulación y desnaturalización proteica celular. Para destruir a todos los microorganismos vivos es decisiva la relación correcta entre temperatura, presión y tiempo de exposición. Si el vapor está contenido en un compartimiento cerrado y se incrementa la presión, también lo hace la temperatura, siempre que el volumen del compartimiento se mantenga constante. Si los elementos son expuestos el tiempo suficiente al vapor a una temperatura y presión especificadas, se volverán estériles. La unidad utilizada para crear este vapor presurizado a elevada temperatura se denomina autoclave. La esterilización puede fracasar si los paquetes están envueltos con ajuste excesivo o se cargan de forma inadecuada en el autoclave o recipiente esterilizador. Los paquetes de instrumentos deben colocarse de manera vertical (sobre el borde) y longitudinal en el autoclave. Los paquetes pesados deben colocarse en la periferia donde el vapor ingresa en la cámara. Entre cada paquete debe existir cierta cantidad de aire para facilitar el flujo de vapor (1 – 2 pulgadas entre cada paquete y paredes circundantes). No amontonar los paquetes de lienzos porque el aumento del espesor reduce la penetración del vapor.

PREPARACIÓN DEL QUIRÓFANO  De forma estéril.  Seguir normas de entrada a quirófano: Calzas – Gorro – Mascarilla.  Preparar (a destacar): Paños para todo el animal.  Gasas grandes para cirugía abdominal.  Gasas pequeñas para cirugías menores.  Suturas y bisturí; drenajes; sistemas de lavado.  Equipo de anestesia. Anestésicos. Analépticos. Antagonistas. Antibióticos.  Instrumental de cirugía esterilizado; guantes estériles.  Bisturí eléctrico. Considerar que después de la preparación estéril del paciente; cirujano y quirófano no debe por ningún motivo romper esta situación: Por ejemplo  Abrir suturas con los guantes estériles.  Tocar al paciente con las manos.  Tocar las luces.  Tocar el equipo de anestesia inhalatoria.  Tomar botella del antiséptico.  Tomar la botella de suero.  Tomar la mesa del instrumental por el metal.

En cirugías de enterectomías y en tumores con muchas localizaciones, son necesarios 2 materiales generales para evitar, en el 1° caso diseminar infecciones y en el segundo caso, diseminar células inflamatorias.

PREPARACIÓN DEL PACIENTE QUIRÚRGICO En prequirófano, excepto en situaciones de urgencias. Después de cateterización I V.- Inducción e intubación:- Aplicar un antibiótico, Ej. Cefalosporina, enrofloxacina y un AINE: Ej. Ketoprofeno. Depilar primero área extensa y aspirar simultáneamente. Delimitar en trazos rectos (más estético). Lavar con jabón de clorhexidina, fregando la zona. Dejar de 2 a 5 minutos. Aclarar con mucha agua. (Si queda jabón, este inactiva a la solución germicida después). Evitar el agua fría y alcohol en grandes superficies, sobre todo en animales pequeños (riesgo de hipotermia). Aplicar una solución germicida al 10% de clorhexidina (sólo es activa 24 hrs.) y dar un primer pase “se considera no estéril”. En quirófano aplicar un 2° pase (al 10%), inmediatamente antes de colocar los paños, pero con el cirujano estéril y con gasa estéril desde centro a periferia. (El auxiliar toma la botella y vierte a gasa que sujeta con un mosquito el cirujano).

PREPARACIÓN DEL CIRUJANO Después de estabilizar al paciente con aparato de anestesia. El auxiliar y el cirujano siguen el mismo proceso. Se coloca el gorro (cubrir todo el pelo) y mascarilla. Después se lavan las manos:  Aplicar jabón hasta el codo y dejar actuar de 2 a 5 minutos. Mientras cepillar uñas (2 a 5 minutos).  Aclarar con agua.  Secarse con toallas estériles. Ponerse la bata. (En cirugías menores de muy baja probabilidad de infección se evitará). Abrir antes de lavarse las manos la bata y los guantes). Se considerará estéril: Zona frontal debajo de hombros hasta cintura. Todo lo que esté por encima mesa y debajo hombros es estéril.

2. SUTURAS GENERALIDADES E INDICACIONES Las suturas son operaciones que tienen por finalidad mantener aproximados y en contacto los bordes y superficies de las heridas, con objeto de favorecer la cicatrización. La unión de los tejidos se hace mediante técnicas especiales y materiales apropiados para cada tipo de tejido; se sigue el orden que va de las regiones más profundas a las más superficiales, y se debe procurar cumplir las siguientes normas: 1. Unir siempre tejidos de la misma naturaleza, de acuerdo con los diferentes planos donde se actúa. 2. No dejar espacios entre los tejidos (espacios muertos). 3. Para cada tipo de tejido se deben usar las suturas apropiadas, ya sean de resistencia, aproximación, eversión o inversión. 4. Para la elección del material a emplear se tomará en cuenta el tiempo de permanencia del material en el organismo cumpliendo su función, para lo cual se seleccionará el de absorción breve, absorción prolongada o no absorbible. 5. Antes de aplicar cualquier sutura se deberá limpiar la herida de coágulos o tejidos desprendidos y necróticos. En general las suturas pueden utilizarse:  Para la reparación de heridas recientes asépticas con bordes regulares.  En las heridas con pérdida de sustancia.  Para abreviar la duración de la cicatrización.  En las heridas antiguas, después de reavivarlas. Se utilizan, además, en la restauración de tendones o nervios cortados transversalmente y para cerrar las soluciones de continuidad en las paredes de los vasos sanguíneos. En algunos casos, la sutura facilita la hemostasia de una herida, al presionar sobre ella, y en otros nos ayuda a sujetar las curas de la herida. Nunca deberán suturarse total y definitivamente heridas infectadas o sospechosas de estarlo. No solo hay que destacar los efectos positivos, la sutura puede tener también efectos negativos si durante su aplicación lacera tejidos sanos, si origina anemia local o si su actuación como cuerpo extraño produce reacciones hísticas anormales, cualitativa o cuantitativamente.

INSTRUMENTAL DE SUTURA Agujas quirúrgicas. La calidad de la aguja depende al mismo tiempo del material y de la técnica de fabricación. El endurecimiento homogéneo del material es importante para que la aguja obtenga la dureza necesaria en toda su longitud, pero sin perder su elasticidad, con el fin de evitar que se rompa al sufrir una gran tensión. Distintos tipos de aguja: Agujas con ojo o aguja suelta. Ej.:  Agujas de Ferguson.  Agujas de Mayo. La más utilizada es la francesa de ojo hendido. En las suturas actuales de montaje o atraumático, el hilo de sutura es una continuación de la aguja. Con ello se consigue que el paso de sutura a través del tejido suturado sea mucho menos traumático que si se utiliza una aguja enhebrada. La aguja de sutura se clasifica, según su sección transversal, en cilíndrica, espatulada, triangular y aguja tapercut. Cilíndrica. No tiene ningún borde cortante, terminando en el extremo anterior en punta cónica punzante. Se utiliza para tejidos que ofrecen poca resistencia. Aguja espatulada. Tiene el cuerpo algo espatulado, termina en una punta en forma de espátula que tiene dos filos cortantes en el plano horizontal. Se utiliza para todo tipo de tejido. Triangular. Es una aguja cuya sección tiene forma de triángulo. Dos bordes cortantes en plano horizontal y uno en vertical. Aguja tapercut. Punta triangular y cuerpo cilíndrico.

A: Componentes básicos de las agujas; B. Tipos de ojos; C. Formas corporales y tamaños.

Portaagujas: El porta agujas es el instrumento que se utiliza para facilitar el manejo de las agujas al rededor de las diferentes técnicas de sutura. Los hay de diferentes tipos:

Portaagujas y Pinzas

Tijeras: De izquierda a derecha: de puntos (extracción de suturas), punta aguda/roma, Metzenbaum, Mayo, para alambre.

MATERIALES DE SUTURA Cualidades del material de sutura. Tamaño de la sutura: Se debe emplear el diámetro de sutura más pequeño que mantenga de un modo adecuado al tejido lesionado restaurado, disminuya el traumatismo a medida que la sutura se pasa a través del tejido y reduzca la cantidad de material extraño dejado en la herida. Una sutura no necesita ser más fuerte que el tejido suturado. El estándar empleado con mayor frecuencia para el tamaño de sutura es el USP (United States Pharmacopeia), que denota las dimensiones desde finas hasta groseras, de acuerdo a una escala numérica; 10-0 es la más pequeña y 7 es la más grande. A menor tamaño de sutura, menor es la resistencia a la tracción. Flexibilidad: La flexibilidad de la sutura está determinada por su rigidez de torsión y su diámetro, que influye su manipulación y empleo. Las suturas flexibles están indicadas cuando se ligan vasos o se realizan patrones de suturas continuas. Las suturas menos flexibles (p. ej., alambre de acero inoxidable) no pueden utilizarse para ligar puntos sangrantes diminutos. El nailon y la tripa quirúrgica son relativamente rígidos en comparación con la seda; las suturas de poliéster trenzadas tienen rigidez intermedia. Características de superficie y revestimiento: Las características de la superficie de una sutura influyen la facilidad con la cual atraviesa los tejidos (arrastre o resistencia al avance) y el grado de traumatismo que origina al hacerlo. Las suturas rugosas ocasionan más daño que las lisas. Las superficies lisas son de importancia particular en los tejidos delicados como el ojo. Los materiales trenzados tienen mayor fricción o resistencia al avance que las suturas monofilamentos. Capilaridad: Es el proceso mediante el cual los líquidos y las bacterias son transportados hacia los intersticios de las fibras multifilamento. Como los neutrófilos y los macrófagos son demasiado voluminosos para ingresar en los intersticios de la fibra, tal proceso infeccioso puede persistir (de manera particular

con los materiales de sutura no absorbibles). Todos los materiales tranzados (p. ej., seda) son capilares; las suturas monofilamentos son menos capilares. Los materiales de sutura capilares no deben emplearse en los sitios contaminados o infectados. Resistencia a la tracción: La resistencia a la tracción del nudo se mide por la fuerza (en libras) que la hebra de sutura puede tolerar antes de romperse al ser anudada. La resistencia a la tracción de la sutura no debe ser muy superior a la del tejido. Seguridad relativa del nudo: Es la capacidad de sostén de una sutura expresada como porcentaje de su resistencia a la tracción. La capacidad de sostén del nudo de un material de sutura es la potencia requerida para desatar o romper un nudo definido cargando la parte de la sutura que forma la lazada, mientras que la resistencia a la tracción del material de sutura es la potencia para romper o desatar la fibra con una fuerza aplicada en la dirección de su largo.

Biomateriales de suturas. Materiales de sutura específicos: Los materiales de sutura se pueden clasificar de acuerdo a su comportamiento en los tejidos (absorbibles o no absorbibles), estructura (monofilamentos o multifilamentos) o su origen (sintéticos, orgánicos o metálicos). Las suturas monofilamento se componen de una sola hebra de material. Tienen menor resistencia al avance que el material multifilamento y carecen de intersticios que puedan albergar microorganismos. Se debe tener cautela con la manipulación de las suturas monofilamento porque las mellas o daños con fórceps o portaagujas las debilita predisponiéndolas a la ruptura. Las suturas multifilamento consisten en varias hebras que están retorcidas o entrelazadas juntas. En líneas generales, las suturas multifilamento son más elásticas y flexibles que las monofilamento. Pueden estar revestidas para reducir la resistencia al avance tisular y acrecentar sus características manipulatorias.

Materiales de sutura absorbibles Los materiales de sutura absorbibles (por ej., tripa quirúrgica, ácido poliglicólico, poligalactina 910, polidioxanona y poligluconato) pierden la mayor parte de su resistencia a la tracción dentro de los 60 días y finalmente desaparecen del sitio de implantación tisular porque son fagocitados o hidrolizados. Los * Catgut (tripa quirúrgica): Se confecciona con al submucosa del intestino ovino o de la serosa del intestino bovino y en un 90% aproximadamente es de colágeno. Se desintegra por fagocitosis y ejerce una reacción inflamatoria marcada, en comparación con otras suturas. La tripa quirúrgica simple pierde resistencia con rapidez después de la implantación tisular. El “curtimiento” (entrecruzamiento de

las fibras de colágeno), por exposición al cromo o aldehído, retarda la absorción. La tripa quirúrgica está disponible como simple, crómica media o crómica; el incremento del curtimiento en general implica una resistencia prolongada y disminución de la reacción tisular. Los nudos pueden aflojarse cuando se humedecen. * Materiales absorbibles sintéticos: Por ej., ácido poliglicólico (Dexon), poligalactina 910 (Vicryl), polidioxanona (PDS II) y poligluconato (Maxon) en general se desintegran mediante hidrólisis.

Materiales de sutura no absorbibles. * Orgánicos: La seda es el material de sutura no absorbible orgánico de empleo más corriente. Es una sutura multifilamento trenzada confeccionada por un tipo especial de gusano de seda y se fabrica con o sin revestimiento. * Sintéticos: Se fabrican con multifilamento trenzado (por ej., poliéster o caprolactam revestido) o hebras monofilamentos (por ej., polipropileno, poliamida, poliolefina o polibutéster). * Suturas metálicas: El acero inoxidable es la sutura metálica de uso más extendido. Está disponible como alambre retorcido monofilamento o multifilamento. La reacción del acero inoxidable en general es mínima; sin embargo, los extremos del nudo inducen reacción inflamatoria.

DESCRIPCIÓN DE LAS DIFERENTES TÉCNICAS DE SUTURA El nudo de cirujano Este es el responsable de sostener los tejidos en todo el período de cicatrización por lo que debe haber seguridad y firmeza al hacerlo. El nudo de cirujano se incia con el anudado de Goshi que es un nudo simple con dos vueltas, éste se aprieta, pero sólo hace la aposición de los bordes del tejido y el otro nudo simple de una vuelta, pero en dirección contraria al primero, éste es el que se aprieta, jalando la punta libre del hilo con el porta aguja y la otra parte con la mano izquierda.

Los nudos que aprietan los tejidos provocaran falta de circulación en los bordes de la herida y necrosis, lo que hará fallar la sutura.

Sutura con puntos simples interrumpidos Esta es la sutura más antigua que se conoce y la técnica más sencilla de aplicacación en cualquier tejido; tiene la cualidad que en determinado momento pueden ser retirados de la piel uno o dos puntos cuando el caso lo amerite, por ejemplo en la presencia de exudados, seromas o abscesos localizados en el punto y esto nos permite que se produzca un drenaje. El punto va en ángulo recto a la herida, clavando la aguja en el borde que se elija, atraviesa la piel de afura hacia adentro, luego se va al lado oborde opuesto y penetra de adentro hacia fuera; entonces es cunado ejecutamos el anudado onudo de cirujano ya descrito, el cual antes de apretarlo se jala hacia un lado y de esta manera el nudo queda fuera de la herida, lo que evitará filtración bacteriana. Los puntos simples interrumpidos van siempre a distancias entre 1 y 2 cm dependiendo del tejido. En heridas grandes se recomienda hacer el primer el primer punto en el centro de la herida, calculando que las líneas de sutura tengan igula distancia tanto del lado izquierdo como del lado derecho, luego los espacios de cada lado se ván suturando de la línea de la herida buscando una buena estética. Una vez terminada la sutura, para mayor seguridad, se jala cada de la puntas de cada nudopara comprobar que están bien hechos. Se recomienda después ya sea con una compresa o con la palma de la mano comprimir toda la línea de puntos para que todos los bordes coapten bien y no queden crestas o bordes que nos quiten estética.

Sutura recurrente o en ¨U¨ horizontal La sutura inicialmente se parece al punto simple que entra y sale en el primero y segundo borde, sólo que en lugar de anudar regresa del segundo borde dejando un espacio pinchando de afuera hacia adentro y se va al primer borde entrando de adentro hacia furera y de esta manera se hacen cuatro pinchazos juntándose los hilos de sutura el mismo lado donde se anudará con nudo de cirujano sin apretar los bordes, solo que cuando entra y sale al final dibuja una ¨ U¨. Esta sutura es muy importante en suturas donde pueden sufrir de tensión y heridas grandes y el anudado queda siempre afuera de la herida; además acelera más la cicatrización.

Sutura simple en equis ¨X¨ : Este tipo de sutura se recomienda con buenos resultados para suturas de facias de los músculos internos y externos de os músculos rectos del abdomen como en casos de cesáreas, laparotomías y rumenotomías. Tiene la ventaja que evita desgarres cuando hay tensión como en las suturas continuas, pero la sutura en incisiones grandes es más lenta.

Puntos simples interrumpidos simples En U horizontal Sutura simple en X

Sutura en U vertical

Patrones de de sutura continua Continua simple. Una sutura continua simple consiste en una serie de puntos interrumpidos simples, con un nudo en cada extremo; la sutura es continua entre los nudos (fig. A). Para comenzar una línea de sutura continua simple, se coloca y anuda un punto interrumpido simple, pero sólo se corta el cabo del hilo que no está unido a la aguja. La aguja se dirige a través de la piel, perpendicular a la incisión. La línea de sutura resultante tiene un punto perpendicular a la línea incisional por debajo del tejido; avance hacia delante por encima de la misma. Si las porciones profunda y superficial de la línea de sutura avanzan, se la denomina sutura corrediza (fig. B).

Para finalizar una sutura continua, el extremo del hilo en la aguja se ata con la última lazada de la sutura que es exterior a los tejidos.

Extracción de la sutura: Las suturas cutáneas en general se extraen una vez que la cicatrización alcanza un grado suficiente para prevenir la dehiscencia, por lo usual de 10 a 14 días. Sin embargo, la cicatrización prolongada (animales debilitados en extremo) puede requerir que las suturas sean dejadas en el lugar durante un periodo más extenso. Asimismo, si se desea la fibrosis (p. ej., otohematoma), se puede considerar una extracción de sutura retardada.

COMPLICACIONES DE LA CICATRIZACIÓN DEBIDAS A LA SUTURA. Dehiscencia Cuando las suturas no son capaces de mantener unidos los bordes de la herida hasta que éstos adquieren suficiente resistencia y se mantienen por sí solos, la herida se abre. Las causas de dehiscencia atribuibles al material de sutura son poca resistencia, disminución demasiado rápida de la resistencia y producción de desgarros tisulares. Es necesario tener cuidado en la ejecución del nudo y en la elección del calibre del hilo. Es evidente que el uso de materiales de sutura reabsorbibles conlleva riesgo de dehiscencia y que tal material sólo debe usarse cuando su reabsorción sea uniforme y previsible en el tiempo. Las causas de desgarro del tejido no son bien conocidas, pero se relacionan que son consecuencia de la reacción inflamatoria perisutural.

Infección La frecuencia de infecciones es muy diferente según la clase de intervención y el terreno operatorio. Como promedio, puede decirse que se infectan del 2 al 5% de todas heridas quirúrgicas. El porcentaje aumenta en las laparotomías y es especialmente alto en el tratamiento quirúrgico de procesos infecciosos. La contaminación bacteriana, que es una condición determinante de la infección, se favorece con la hipertrofia del tejido o el empleo de material de sutura inadecuado, que disminuyen las defensas orgánicas locales que se oponen a la infección. La infección se favorece mucho por la utilización de suturas trenzadas no absorbibles.

Una forma especial de infección de la herida operatoria es la abscesificación del tejido circundante de un punto, que se produce sobre todo cuando se utiliza seda u otros materiales trenzados en suturas de planos dérmicos superficiales.

Granulomas El granuloma por sutura es un enquistamiento sólido, doloroso y palpable que rodea, aislándolo, un punto o una ligadura. Se produce por irritación mecánica local del punto en cuestión, con pequeño o nulo componente infeccioso. En algún caso, cuando la reacción inflamatoria es grave, el granuloma puede evolucionar hasta llegar a abrirse paso a través de la cicatriz, en un intento de eliminar la espina irritativa que constituye el punto de sutura en cuestión. En estos casos se hace visible un tejido de granulación rojo-grisáceo a través del cual se elimina el punto. A esta alteración se denomina granuloma migratorio. Estas alteraciones se presentan cuando se utilizan suturas trenzadas no absorbibles, mientras que los materiales sintéticos monofilamento no los producen con tanta frecuencia. Con las suturas absorbibles, generalmente el hilo se reabsorbe antes de que tenga tiempo de formarse el granuloma, aunque el catgut crómico, por su anárquica reabsorción, puede constituir una excepción.

Adherencias Las adherencias peritoneales poslaparotomía constituyen una secuela importante de la cirugía abdominal y se producen por el deslustramiento de las serosas por los puntos de sutura, que originan una reacción inflamatoria. No obstante, no debemos creer que sólo se forman adherencias en la cavidad abdominal. En todas las heridas suturadas se produce una fusión de planos por adherencias, aunque habitualmente no se presentan alteraciones.

3. DOSIFICACIÓN Y VÌAS DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOS

CONCEPTOS Principio Activo: Es la sustancia básica o esencial de un medicamento y es el responsable de las propiedades curativas. En el mercado existen medicamentos con diferente nombre y precio, pero el principio activo es el mismo. Ejemplo: En el caso de los productos Ivomex, Ivermectin, Biomec, Ispervic, etc., todos son antiparasitarios. Ivomex

Biomec

Ivermectina

Ivermectin

Ispervic

Como podemos ver estos cuatro productos tienen nombres distintos, pero el principio activo de todos es IVERMECTINA, por lo tanto, los cuatro productos tienen la misma recomendación, sirven para lo mismo y tienen la misma dosis. Amplio Espectro: Este concepto es aplicado especialmente a los antibióticos y antiparasitarios. El espectro de acción, tiene que ver con la cantidad de especies de gérmenes infecciosos o parásitos que controla. Entonces un antibiótico o un antiparasitario son de amplio espectro cuando controlan gran cantidad de gérmenes o parásitos. Ejemplo: Rank L/A (Ivermectina) y Ranide (Rafoxanide) son antiparasitarios de amplio espectro porque controlan una multitud de especies de parásitos que atacan a los animales, como las lombrices de todo tipo, garrapatas, sarna y piojos. Oxitetraciclina al 10% o Biomizona (Oxitetraciclina) son antibióticos de amplio espectro porque controlan diferente tipo de gérmenes que a su vez producen diferente tipo de enfermedades. Entre estos, controla los gérmenes que producen diarreas, neumonías, metritis, etc. Larga Acción: Este concepto tiene que ver con el tiempo que dura el efecto de un medicamento en el cuerpo del animal y se usa comúnmente para los antibióticos y algunos antiparasitarios de efecto prolongado. Por ejemplo: Reverin L/A o Emicina L/A (Oxitetraciclina al 20%) Son antibióticos de amplio espectro pues controlan múltiples tipos de infecciones y a la vez son de larga acción, es decir de efecto prolongado pudiéndose aplicar cada 3 días. Excend L/A al 3% (Ivermectina) es un antiparasitario cuyo efecto se puede prolongar hasta 45 días y es de amplio espectro.

Corto Espectro: Este concepto se aplica también a los antibióticos y antiparasitarios y significa lo contrario del amplio espectro. Es decir que hay antibióticos que controla pocos tipos de gérmenes y antiparasitarios que combaten pocos tipos de parásitos. Así podemos señalar: Fasinex (Triclabendazol) es un antiparasitario que solo combarte a la Fasciola hepática y el Pencivet (Penicilina+Diclofenaco) es un antibiótico muy específico para infecciones respiratorias. Corta acción: Quiere decir que el tiempo que dura su efecto es corto (un día como máximo). Por ejemplo. Hematopam B12, Calcio coloidal o Tonosfan y Bcob 12; son complejos vitamínicos cuyo efecto máximo es durante un día. La mayoría de antibióticos, antinflamatorios, antiparasitarios, son de corta acción.

Dosis: Es la cantidad de medicamento que se debe aplicar a un animal. La dosis de medicamento depende del peso vivo del animal (PV) y de la gravedad del problema que queremos resolver. Todo medicamento trae su dosificación indicada en la etiqueta. Presentación: Es la forma en que el medicamento viene listo para usarlo. Algunos medicamento vienen en forma de Polvo soluble en agua, Solución inyectable, Solución para vía oral, pomada, etc.

VÍAS DE ADMINISTRACIÓN DE MEDICAMENTOS Definición El lugar donde se aplica un Fármaco, Medicamento o Droga Factores a considerar para la elección del sitio de aplicación: • ESPECIE a dosificar • Factores inherentes al FÁRMACO • Tipo de ACCIÓN o EFECTO buscado ESPECIE a dosificar: • Diferencias anatómicas y fisiológicas entre especies • Carácter y comportamiento del animal • Variaciones individuales • Edad • Sexo • Raza • Estado del paciente • Patologías existentes Factores inherentes al FÁRMACO Propiedades Físico-Químicas

Solución, suspensión, emulsión: limitan vía de administración pH del medio – pK de la droga

Tipo de ACCIÓN o EFECTO buscado: Local o sistémico: implica que los efectos de la droga se limitan a un área específica. La droga debe “ingresar” al sistema vascular y linfático y distribuirse a todos los tejidos. Inmediato o retardado: indicación terapéutica.

INTERACCIONES NEGATIVAS ENTRE DIFERENTES MEDICAMENTOS Drogas que por su mecanismo de acción, sumen efectos negativos. 2 antibióticos nefrotoxicos 2 drogas hepatotoxicas: halotano + ketoconazol Alteraciones digestivas Alteraciones hemáticas Alteraciones nerviosas

CLASIFICACIÓN PARENTERAL: CUTANEA o PIEL MUCOSAS: Conjuntival Canal galactóforo Vaginal o uterina INHALABLE INYECTABLE: Intravenosa Intramuscular Subcutánea Intraperitoneal Intradérmica Intraarticular Epidural

ORAL O ENTERAL: TABLETAS JARABES ENEMAS Vía Intravenosa (IV): Esta es la vía de absorción más rápida. Se utiliza cuando se quiere aplicar gran cantidad de volumen de un medicamento (por ej.: suero fisiológico). También en los casos muy graves, cuando se requiere que el producto haga efecto de inmediato (aplicación de algunos antibióticos en animales muy enfermos). Esta vía debe ser utilizada con mucho cuidado dado que los productos pasan directamente a la sangre del animal. No todos los productos inyectables se pueden aplicar por esta vía, tales como los de consistencia aceitosa, los productos que vienen en polvo para diluir o los compuestos coloidales.

Vía intraperitoneal. (IP): Es la segunda vía más rápido de absorción y se utiliza en situaciones de emergencia cuando no es posible hallar la vena en un animal muy enfermo. En esta vía también se pueden colocar grandes volúmenes de medicamento, pero cuando se trata de suero fisiológico, dextrosa o calcio intravenoso.

Vía intramuscular (IM): Es una vía de absorción más lenta que la anterior en donde los medicamentos son colocados dentro del músculo desde donde son absorbidos poco a poco. En esta vía se pueden aplicar diversos productos líquidos incluso aquellos no recomendados para aplicar por la vía IV.

Vía subcutánea (SC): Esta vía es algo más lenta en absorber que la IM, consiste en colocar el producto medicamentoso debajo de la piel del animal y se emplea especialmente para aplicar vacunas y antiparasitarios inyectables.

Vía Oral (VO): Consiste en dar al animal por la boca algún medicamento de consistencia sólida (pastilla), semisólida (polvo) o algún producto disuelto en agua. Esta vía también es más lenta que la vía IM y casi tan rápida como la SC. En este caso debemos cuidar de que el animal no nos muerda y dar el medicamento con calma para no atragantar al animal o causarle un ahogo con el líquido.

Vía Intramamaria: Usado para colocar antibióticos en un tubo intramamario en la ubre o poner medicinas en la ubre usando un catéter de pezón.

Posología La posología es una rama de la farmacología que se encarga del estudio de la dosificación de los fármacos (dosis terapéutica). Para ello se ayuda de otras ciencias, como es la metrología, la terapéutica, la propedéutica y la fisiología entre otras. Consideraciones Para hacer una adecuada posología de los diversos fármacos que existen, se debe de tomar en cuenta diversos factores como son: Sólo un profesional médico lo puede hacer (médico general o especialista, veterinario, dentista, etc). Conocer la dosis/kg de peso del principio activo o sal activa. Agente etiológico. Causas de enfermedad. Diagnóstico preciso, de preferencia con pruebas de laboratorio que lo confirmen. Peso del paciente. Estado fisiológico: edad, sexo, especie (humanos, perros, gatos, bovinos, etc.). Conocer a la perfección el sistema de unidades que se use en la región. (Sistema Internacional de Unidades, Imperial, etc.). Saber el tipo de solución que se administrará. Recordemos que la mayoría de los medicamentos comerciales vienen en estado de solución, ya sea de tipo: Peso/peso. Por ejemplo: una tableta, cápsula o comprimidos en general. Peso/volumen. Por ejemplo, una solución inyectable de penicilina sódica, la cual es un sólido (penicilina) disuelto en su solvente líquido. Volumen/volumen. Por ejemplo, los gases anestésicos como el sevoflurano que se disuelve en oxígeno. Existen otros tipos de soluciones, las cuales debemos adaptar a nuestro sistema de medición. El sistema más estandarizado es el Sistema Internacional de Unidades. Sabemos que si al agua le incorporamos algún soluto, pesará más. Sin embargo en posología esto está ya determinado, por lo que no hay que hacer

ningún ajuste. Si a su vez tenemos en cuenta la famacognosia del medicamento podremos verificar así aún silu dosificación (posológica). Dosificación La forma de dosificar un medicamento es la siguiente: Conociendo el peso del individuo y la dosis del principio activo, obtenemos la cantidad de sal activa necesaria para el paciente. Por ejemplo: La dosis de un agente antibiótico H es de 10 mg / kg de peso. Esto indica que para 1 kg de peso se administran 10 mg de la sal activa. Para administrarlo a un paciente necesitamos saber su peso corporal. Por ejemplo, un individuo que pesa 50 kg necesitará 500 mg en total de ese principio activo. Ahora: Si es una solución inyectable debemos calcular la cantidad del medicamento comercial ya fabricado, es decir, principio activo más diluyente o vehículo. Para ello requerimos la concentración de esta solución, la cual estará referida en la fórmula del frasco comercial. Ejemplo: el medicamento comercial que contiene el antibiótico H está fabricado con una concentración de 5 % del principio activo. Esto indica que hay 5 g de principio activo por cada 100 ml del producto comercial. Para hacer el cálculo final, es decir, para saber la cantidad de producto comercial que debemos administrar que contenga 500 mg de la sal activa que requiere el paciente, tenemos que hacer una regla de tres: Si 5 gramos están en 100 ml del producto comercial, en cuantos ml estarán 500 mg. 5 g es a 100 ml 500 mg es a X Primero hay que convertir los gramos a miligramos para poder hacer el cálculo. Recordemos que las reglas de tres deben ser entre factores similares, es decir, hablar de miligramos siempre o de gramos, para este caso. 5000 mg es a 100 ml 500 mg es a X Se multiplica: 500 por 100 y el resultado de divide entre 5.000. El resultado de esto es 10 ml (se anulan las unidades iguales, es decir, los mg) Entonces del preparado comercial se le administrarán al paciente 10 ml, que se sacarán del frasco con una jeringa hipodérmica.

4. ANESTESIOLOGÍA. 4.1. BASES DE LA ANESTESIA VETERINARIA. CONCEPTO DE ANESTESIA Es la instauración de un estado reversible de inconsciencia producido por una intoxicación controlada del sistema nervioso central mediante el uso de fármacos con actividad anestésica general. INDICACIONES DE LA ANESTESIA GENERAL Las indicaciones de la anestesia general son muy variadas, comprendiendo desde la sujeción del paciente para su exploración o transporte, realización de radiografías, ecografías u endoscopias, toma de biopsias y realización de diversos procedimientos quirúrgicos.

FASES TÉCNICAS DE LA ANESTESIA GENERAL a). En la preanestesia se administran tranquilizantes / sedantes junto a analgésico (neuroleptoanalgesia) para posibilitar un manejo cómodo y libre de estrés del paciente, una inducción y recuperación suave y tranquila, una adecuada analgesia perioperatoria y una reducción general. b). La inducción anestésica consiste en la administración de un agente anestésico general con el objetivo de producir un estado de anestesia general. c). El mantenimiento anestésico implica la prolongación del estado de anestesia general durante el tiempo necesario para la realización del procedimiento que se desee realizar. d). La recuperación anestésica consiste en la vigilancia del paciente hasta que recupere los reflejos protectores normales y la conciencia, y es capaz de reaccionar normalmente con su entorno. La recuperación debe ser rápida posible y libre de fenómenos de excitación. Es muy importante mantener una correcta analgesia al menos durante las primeras 48 – 72 horas del post – operativo.

EVALUACIÓN PREOPERATORIA DEL PACIENTE Procedimiento protocolizado orientado a la optimización de la elección de la estrategia anestésica de acuerdo a las características propias de cada paciente. La evaluación preanestésica debe incluir una historia clínica detallada, exámenes físicos y laboratoriales y si la situación lo requiere otras pruebas complementarias. Todo animal incluso el aparentemente sano debe someterse a esta evaluación.

PREPARACIÓN DEL PACIENTE Ayuno La anestesia suprime el reflejo deglutor, por lo que si se produce regurgitación durante la misma el contenido gástrico pasará a la tráquea. Esto producirá una obstrucción de las vías aéreas, con la consiguiente insuficiencia respiratoria y, si el animal sobrevive, una posterior neumonía por aspiración. Por ello el ayuno antes de la anestesia es fundamental. Diversos estudios indican que el estómago se vacía en menos de 10 horas. Por ello, y en general, se habla de un ayuno de agua de hasta 2 horas. En pacientes pediátricos debe reducirse el ayuno.

Venoclisis La venoclisis es una maniobra que debe considerarse obligatoria antes de la anestesia, por las siguientes razones. . Emplear un catéter intravenoso permite utilizar de forma segura fármacos que son irritantes si se inyectan perivascularmente, como los barbitúricos. . Permite la inyección simultánea de medicamentos incompatibles que no pueden mezclarse en la misma jeringa. . Permite la administración rápida de fármacos en caso de emergencia. . Permite la fluidoterapia. Existen dos clases de vías, las periféricas como la cefálica y la safena, y las centrales como la yugular y la femoral. Fluidoterapia La fluidoterapia es necesaria durante la anestesia. La dosis de mantenimiento es de 10 ml/kg/h. Si hay una hemorragia profusa, las dosis se elevan hasta 20/ ml/kg/h en los primeros 15 minutos, hasta administrar 3 ml de cristaloide por ml de sangre perdida estimada.

4.2. PREANESTESIA

CONCEPTO Consiste en la administración de una mezcla de neuroleptoanalgesia que permita una inducción anestésica suave y la consecución de una analgesia pre-emtiva antes del inicio del trauma quirúrgico.

OBJETIVOS 1. Calmar y controlar al animal: – Efecto ansiolítico o tranquilizante para reducir la excitabilidad. 2. Controlar el dolor en el período preoperatorio: – Analgesia anticipada para prevenir la sensibilización neuronal. 3. Disminuir la dosis requerida de anestésico general. 4. Reducir efectos secundarios: excitación, vómitos, arritmias, salivación mediante el uso de algunas drogas. Para conseguir estos objetivos deben elegirse correctamente las drogas a utilizar y tener en cuenta el tiempo de latencia que suele oscilar entre 15 y 40 min., dependiendo sobre todo de la vía de administración. Preferentemente utilizar la vía IM, en segundo lugar la vía IV, algunos casos la vía S. C y en animales de laboratorio intraperitoneal.

VENTAJAS DE LA PREANESTESIA  Reducción de la ansiedad del paciente.  Control del dolor pre y post-operatoriamente.  Incremento de la relajación muscular.  Atenuación del riesgo de salivación, mucosidad, regurgitación y vómito.  Disminución de las dosis y/o concentraciones requeridas de anestésico general.

DROGAS A- TRANQUILIZANTES (neurolépticas “que calman la agitación”) Derivados fenotiacínicos. Sus principales aplicaciones son:  Sedación para exploraciones, reconocimientos, manejo etc.  Sedación junto con anestesia local, para procedimientos de cirugía menor.  En preanestesia.

Calman y reducen la actividad motora. Se caracterizan por sus suaves efectos sedantes que se acompañan de un grado escaso de relajación muscular y por su falta, a excepción de la metotrimeprazina, de poder analgésico. Son:     

Antieméticos. Antihistamínicos. Espasmalíticos. Antiarrítmicos. Atimuscarínicos.

Disminuyen el tono de la musculatura lisa y el peristaltismo gastrointestinal. No es recomendable su administración en animales con historiales de epilepsia, ni como premedicación anestesia previa a la realización de mielografías. Provocan hipotensión (mucosas enrojecidas), vasodiltación, periférica, hipotermia, bradicardia, por tanto no administrar en pacientes hipovolémicos. No usar las fenotiacinas junto a adrenalina, ya que se incrementa la vasodilatación periférica y el riesgo de shock. Estos efectos no se presentan si se utiliza noradrenalina. No aplicarlos a pacientes tratados con organofosforados (inhiben la colinesteraza). Razas como el bóxer son muy sensibles a estos agentes y pueden presentar colapso, incluso a dosis muy bajas.

Maleato de acepromacina: Se administra por vía IM, S.C, Oral, IV. Eficaz en todas las especies, excelente en perros y équidos. No recomendada en animales epilépticos, hipovolémicos, ni en razas como el bóxer. Es menos efectivo en gatos. Suele administrarse en mezclas de NLA con muy buenos resultados. Dosis: 0.03 mg/kg – 0.1 mg/kg. Los efectos se inician tras los 20 – 30 minutos de su administración.

B- BENZODIACEPINAS Las benzodiacepinas ejercen su acción sedante mediante la depresión del sistema límbico y su efecto de relajación muscular a través de la inhibición neuronal. Básicamente realizan una estimulación de los receptores benzodiacepinas específicos, los cuales potencian la liberación del GABA, neurotransmisor inhibitorio.

Son ansiolíticos y poseen efectos relajantes musculares. Se indican en cuadros convulsivos y epileptiformes No presentan efectos depresores importantes sobre la función cardiorrespiratoria. Recomendadas para inducir en animales de alto riesgo No se recomienda la utilización de estas sustancias como tranquilizantes por sí solas ya que pueden dar lugar, en perros y gatos normales a cuadros de gran excitación.

a). Diacepam. Solución oleosa: Poco potente si se administra solo. Cuadros excitatorios. Mejor asociarlo a otros grupos (Disociativos: Ketamina). Muy recomendado en mielografías y en anestesia de alto riesgo (animales cardiópatas, con insuficiencia respiratoria). Recomendada en animales jóvenes (cachorros, potros) Eficaz como sedante postoperatorio, aunque de muy limitado poder analgésico. Por vía I V estimula el apetito y se utiliza en el tratamiento de gatos anoréxicos. En ocasiones produce trombo flebitis ya que es irritable, no debe emplearse en pacientes con glaucoma. No es soluble en agua, por tanto no debe ser mezclado en la misma jeringa con opiáceos, barbitúricos, atropina ya que produce precipitados. Dosis 0.1mg/kg – 0.6 mg/kg perro, gato 0.05 – 0.4 mg/kg. Vía IV, oral, rectal. Vía rectal muy efectiva en cachorros y gatitos. Se puede aplicar con una sondita unida a una jeringa o en forma de supositorio. Vía IM y S C muy doloroso. Efectos de corta duración.

b). Midazolam (dormicum): Más potente y de mejor absorción (hidrosoluble) No produce tromboflebitis Se puede aplicar por las vías IV, IM No produce precipitado cuando es mezclado con otros agentes Muy eficaz con Ketamina para sedación IM. de gatos Junto a analgésicos opiáceos para inducir la anestesia general en pacientes de alto riesgo. Dosis: Perros y gatos 0.07 – 0.25 mg/kg I.V Existe un antagonista de las benzodiacepinas: El Flumazenil (anexate) usándose ampliamente en humana a dosis de 0.02 mg/kg IV.

C- AGONISTAS ALFA – 2 ADRENÉRGICOS Este grupo se caracteriza por sus excelentes propiedades sedantes, además aportan buena relajación muscular y un buen grado de analgesia. Los efectos sedantes y analgésicos de estos productos derivan de su acción agonista alfa –2 adrenérgicos (receptor inhibitorio de parte de las respuestas del sistema simpático) lo que ocasiona depresión del SNC, disminución de la actividad motora y ataxia. Reducen la frecuencia cardíaca, apareciendo bloqueos auriculo-ventriculares (AV). Producen hipotensión y bradicardia muy marcada. Pueden administrarse por vía IM, SC IV epidural. Son eméticos (más la xilacina). Contraindicados en animales ASA III en casos de insuficientes aunque estén compensadas, gestación obstrucción vías urinarias.

Xilacina Empleada en todas las especies, muy potente a bajas dosis Se asocia con Ketamina Gran poder bradicardizante y de bloqueo AV en Equidos Emético produce defecación. Provoca aumento de la producción de orina. Bronco constricción. En hembras gestantes provoca contracciones uterinas. Dosis: 0.5 – 2 mg/kg IM o IV.

Antagonistas alfa-2 adrenérgicos: a). Atipamezole (Antisedan) a dosis de 400 mcrg/kg IM. Efectos 12 min. después. b). Yohimbina a dosis de 0.1 – 0.4 mg/kg IV en perros y gatos, efectos en 2 min.

D- DISOCIATIVOS Los agentes disociativos deprimen la corteza cerebral (sistema talamocortical) y estimulan los sistemas límbico y reticular antes de causar una depresión medular, por lo que disocian al paciente produciendo un estado de profundamente analgesia somática acompañada de catalepsia (no existe inconsciencia) y amnesia con persistencia de todos los reflejos (corneal, palpebral, podal, deglutor). Además provocan fuerte contracción muscular, temblores y en ocasiones en la especie canina, convulsiones.

Estabilidad cardiovascular. Ligera hipertensión y taquicardia. Se emplean asociados a: agonistas alfa-2, (Xilacina, Medetomidina) benzodiacepinas o neurolépticos. (Fenotiacina, Acepromacina). Muy efectivos para la especie felina y en aves especies salvajes y de laboratorio (cerdo).

a). Ketamina (de 50 y 100 mg/ml) La analgesia a mejor a nivel somático (quemaduras, cirugía traumatológica o cutánea) que visceral. Provoca midriasis, psialorrea y lagrimeo. Contraindicado en epilepsias, cuadros convulsivos traumatismo craneales (incrementa la presión L C R), cirugía intraocular (incrementa la presión intraocular) Muy eficaz asociado a agonistas alfa-2 y benzodiacepinas De uso clínico en gatos, aves, especies de laboratorio y zoológico. Apropiada en cachorros. Muy eficaz para la inducción de équidos. Ketamina - Diacepam ó Ketamina – Midazolam para perros y gatos cardiópatas y en estado de shock y para cesáreas. Dosis: perro y gato 10 – 20 mg/kg IM y 3 – 10 mg/kg IV. En gatos para realizar castraciones, ovariohisterectomía se puede emplear Ketamina 10 mg/kg más Xilacina 1 mg/kg IM. En el caballo se utiliza Ketamina 2.2 mg/kg asociado a Diacepan (0.04 mg/kg) para reducir la anestesia antes de un mantenimiento inhalatorio. b). Tiletamina. Tiletamina + Zolacepam ( zoletil) Su asociación al Zolacepam disminuye el riesgo de convulsiones y mejora la relajación muscular, pero no mejora la analgesia preoperatoria, por lo que se recomienda su asociación adicional con agonistas alfa-2 ó analgésicos opiáceos. Es similar a la Ketamina pero su acción es mucho más larga lo cual puede resultar una desventaja) y aporta mayor analgesia. Atraviesa la barrera placentaria. Dosis perros y gatos 3 – 12 mg/kg.

4.3. TÉCNICAS DE ANESTESIA GENERAL INYECTABLE

INDICACIONES Como consecución de una inducción anestésica rápida y segura, previa a un posterior mantenimiento con gases. Como protocolo de anestesia totalmente endovenosa (TIVA), mediante la administración de dosis repetidas de agente inyectable cuando sea necesario o mediante su infusión continua. Para el mantenimiento prolongado de estados de anestesia superficial en pacientes hospitalizados en unidades de cuidados intensivos.

VENTAJAS E INCONVENIENTES Ventajas Fáciles de administrar. Producen anestesia de forma rápida y suave. Requieren de poco equipamiento, si el presupuesto lo permite, pueden emplearse equipos de infusión automáticos que encarecen el procedimiento. No irritan las vías respiratorias ni explotan. No polucionan el medio ambiente ni el área anestésico – quirúrgica.

Inconvenientes Una vez administrados resulta imposible impedir que actúen ya que en su mayoría carecen de antídotos. La profundidad y la duración anestésica escapa a nuestro control por depender enteramente de la distribución corporal, metabolismo y excreción del anestésico. Si el animal no está intubado y no recibe oxígeno se incrementa notablemente el riesgo anestésico. La mayoría de los agentes inyectables tienen propiedades acumulativas.

EQUIPAMIENTO TÉCNICO NECESARIO El tipo de equipamiento requerido para la realización de anestesias inyectables va a estar en función del tipo de técnica empleada. Las técnicas más sencillas requieren únicamente la utilización de jeringas y catéteres intravasculares.

TÉCNICAS DE ANESTESIA INYECTABLE Existen tres técnicas básicas de administración de agentes inyectables: a). Administración de una dosis única de anestésico (eficaz para efectuar la inducción de la anestesia y para procedimientos de corta duración). b). Redosificación mediante bolos adicionados administrados a dosis efecto (orientativamente las dosis a administrar oscilan entre un 25 – 50% respecto a la dosis inicial). c). Infusión continua ajustando las dosis de mantenimiento en términos de mg o mcrg/kg/min.

4.4. ANESTESIA LOCAL Y REGIONAL

CONCEPTO Entendemos por anestesia local la supresión reversible de las sensaciones entre ellas dolorosas, en una zona concreta de la anatomía animal, sin que el paciente pierda su conciencia. Los anestésicos locales son sustancias que aplicadas de forma local o regional (nunca sistémicamente) actúan directamente sobre estructuras nerviosas sensoriales y motoras evitando la génesis y/o conducción de los estímulos nerviosos al interferir con la permeabilidad del sodio a nivel neuronal lo que impide la despolarización.

INDICACIONES DE LA ANESTESIA LOCAL En grandes animales, especialmente de renta, su bajo coste económico la hace apta para procedimientos de cirugía de campo, permitiendo hacer cirugías con el animal en estación (reduce riesgo de neuropatías por golpes o compresiones durante el derribo). En caballos es muy útil en el diagnóstico secuencial de cojeras.

MECANISMO DE ACCIÓN DE LOS ANESTÉSICOS LOCALES La forma en que el alcaloide anestésico impide la conducción del estímulo nervioso, radica en su interferencia con la membrana celular nerviosa, disminuyendo así su permeabilidad e impidiendo la normal difusión de los iones de sodio y potasio con lo que no se produce la despolarización, quedando de este modo bloqueados los cambios que originan el impulso nervioso. La mayoría de los anestésicos locales son inyectados alrededor del nervio o nervios elegidos y se deja que difundan dentro de las membranas de las fibras nerviosas. Este proceso de difusión es el que determina el estado de latencia de los anestésicos locales. En la mayoría de los compuestos se necesitan 4 – 5 minutos para que aparezca la analgesia y la relajación muscular, si la hay. La duración del contacto de la droga con el nervio depende de la vascularización del tejido. Cuanto mayor es el flujo sanguíneo a través del tejido, más rápido es absorbido el anestésico en la circulación mayor.

ANESTÉSICOS LOCALES MÁS EMPLEADOS Dentro de los anestésicos locales los más empleados son: Lidocaína, mepivacaína, bupivacaína. Características Metabolización hepática; muy estables; efectos más rápidos; algunas son muy liposolubles; alta unión a proteínas plasmáticas. Este grupo de drogas es utilizado ampliamente en clínica veterinaria, en la mayoría de especies y ofrece una excelente posibilidad para el control de dolor intra y postoperatorio. La adición de adrenalina a las soluciones de uso clínico disminuye el pH de la misma disminuyendo la cantidad de droga ionizada disponible, para que se difunda a través de la membrana axonal, retrasando la aparición del efecto. La finalidad vasoconstricción de la adrenalina puede prolongar el efecto.

Lidocaína Se difunde muy bien (no precisa de hialuronidasa). Es estable, poco tóxica. Es antiarrítmica. Tiempo de latencia 10 – 15 min. Potencia intermedia y duración de 1 ½ horas y 2 horas con adrenalina. Ideal para cualquier técnica local o regional. Está muy indicada en diagnóstico de cojeras.

Se usa al 2 – 4% en spray, gel o solución para uso tópico y al 2% para infiltraciones y técnicas espinales. Puede resultar tóxica a dosis superiores a 10 mg/kg.

Bloqueo de nervios podales con lidocaína al 2% para el diagnóstico de cojeras en equinos

TÉCNICAS DE ANESTESIA LOCAL Y REGIONAL 1. Anestesia local Anestesia por infiltración: Con este método se afectan las terminaciones nerviosas en la zona concreta de la operación. El anestésico se puede inyectar intradérmica o subcutáneamente (infiltración superficial) o intramuscular (infiltración profunda). Pueden administrarse hasta 5 mg/kg de lidocaína con o sin adrenalina. Esta técnica posibilita cirugías menores y, junto a sedación, cirugías más invasivas. El AL se deposita en la línea de incisión, o mejor aún si se distribuye en formas geométricas diversas que bloquean y delimitan el campo quirúrgico: En L invertida ( l ) o rombo ( ) para laparotomías por el ijar depositando el anestésico en planos superficiales y musculares. Se puede utilizar una aguja trocar de 10 cm. 5 ml.

5 ml.

5 ml.

5 ml .

En ovino 5 ml y 10 ml en bovino por punto.

En circulo o anillo en pezones, cola o extremidades. En pirámide para tumores infiltrativos (infiltración profunda) Contraindicado si hay infección cutánea o la zona está infectada (heridas sucias). No recomendada en los labios de la herida, sino alrededor ya que el anestésico local dificulta la cicatrización. También empleada intratesticular, interdigital.

2. Anestesia regional a). Anestesia paravertebral: Es un tipo especial de anestesia por conducción en la que se bloquean las ramas dorsales y ventrales de los nervios raquídeos que emergen en los agujeros intervertebrales situados entre T13-L1, L1-L2 y L2-L3. Proporciona una anestesia completa y uniforme de toda la pared abdominal, incluido peritoneo, con una buena miorrelajación y disminución de la presión intraabdominal. Es útil en vacuno y pequeños rumiantes sobre todo, para realizar laparotomías, ruminotomías, desplazamiento de cuajar, cesáreas, intervenciones en la parte craneal de las mamas, etc. Suele utilizarse junto a sedación y posterior infiltración en L invertida o rombo para bloqueo de campo quirúrgico. La técnica de Farguharson bloquea dorsoventralmente los nervios iliohipogástrico, ilioinguinal y genitofemoral. Empleando una aguja trocar de 12 cm de longitud se introduce a 7cm aproximadamente de la línea media de la espina dorsal, perpendicularmente hasta tocar el borde craneal de la apófis transversa. Se retira ligeramente y se empuja para atravesar el ligamento intervertebral (1cm más). Se inyectan 25 ml de lidocaína en cada punto en las vacas y 5 ml en pequeños rumiantes distribuidos en 75% ventral y un 25% dorsal al ligamento intertransverso (vertebral) lo que garantiza un bloqueo efectivo de las ramas dorsales y ventrales.

Anestesia paravertebral en bovinos

b). Anestesia epidural La técnica de anestesia espinal más practicada en la actualidad es la sacrocoxígea. Suele utilizarse lidocaína al 2% o bupivacaína al 0.75% sin adrenalina. El anestésico local se deposita sobre la duramadre, sin penetrar las meninges por lo que es una técnica relativamente segura si el animal se seda. Es

muy útil para cirugías de la región infraumbilical, vejiga, uretra recto, periné, escroto, vagina, cola, tercio posterior. Para manipulaciones obstétricas y para aliviar tenesmos (junto al bloqueo del pudendo interno). En vacuno, caballos y pequeños rumiantes existen dos puntos de inyección: Caudal alto entre S y C1. (S= Sacro; C1= Coccígea 1) Caudal bajo entre C1 y C2. El punto de inyección se localiza moviendo la cola, introduciéndose la aguja en ángulo de 30° en equinos y de 45° en vacuno. Se necesita un trocar especial, aguja con perfil (punta) lápiz para evitar perforar la duramadre. El espacio epidural es un espacio vacío, luego se comprueba que estamos en posición correcta si no hay resistencia a la inyección o incluso si se succionan de forma espontánea gotas del AL depositadas en el cono de la aguja.

Anestesia epidural: Técnica sacrococígea.

4.5. ANESTESIA GENERAL EN RUMIANTES Los rumiantes no son considerados buenos candidatos para la anestesia general debido alto coste de estas técnicas y a su carácter de animales de renta. Por otro lado, el decúbito prolongado derivado de la anestesia general provoca timpanismo y atonía de la panza, así como una compresión del diafragma por parte de las vísceras abdominales que pueden desencadenar situaciones de hipoventilación e hipoxia. Además la ausencia de deglución de saliva durante la anestesia predispone a acidosis de panza. Finalmente, la anestesia general presenta riesgo de regurgitaciones y por tanto la aspiración pulmonar de estos contenidos. No obstante, el riesgo de regurgitación se reduce con ayunos de 24 horas (6 horas para agua) y colocando al animal en decúbito con la cabeza inclinada hacia abajo en relación a la panza. Estos problemas junto a las condiciones de trabajo que implica la práctica con rumiantes hace muy infrecuente la ejecución de técnicas de anestesia inhalatoria en esta especie. Los protocolos normales de anestesia incluyen procedimiento de sedación junto a técnicas de anestesia local y/o regional.

SEDACIÓN Y MANTENIMIENTO La sedación en rumiantes suele realizarse con agonistas alfa -2 adrenérgicos como la xilacina y la medetomidina. Estos sedantes inmovilizan de forma correcta al paciente sin producir necesariamente caída del animal y decúbito. En ocasiones se combinan con Ketamina para mejorar el grado de inmovilidad del animal, para finalmente realizar técnicas de anestesia local y/o regional.

Xilacina En rumiantes produce una profunda sedación acompañada de un grado variable de analgesia. Provoca hipomotilidad ruminal, hipermotilidad uterina. Contraindicada en el último tercio de la gestación. Dosis: Bovino: 0.05 – 0.4 mg/kg IM; 0.01 mg/kg IV. Ovino: 0.2 mg/kg IM; 0.01 – 0.15 mg/kg IV. Caprino: 0.05 mg/kg IM; 0.01 mg/kg IV. En bovinos se recomienda más la vía IM, mientras que en ovinos y caprinos IV lento. El efecto comienza a los 10 – 20 min., de la inyección IV, con una duración de hasta 7 horas.

Los efectos de los agonistas alfa-2 adrenérgicos pueden ser revertidos con el uso de antagonistas como: Yohimbina – 0.12 mg/kg. Atipamezole (antisedan). Ketamina. En el ganado vacuno se utiliza generalmente, asociada a la Xilacina que puede administrarse previamente 0.2 mg/kg IM ó 0.1 mg/kg IV., seguida de la inyección de Ketamina 2 – 10 mg/kg IV. También se pueden mezclar ambos productos en la misma jeringa 0.2 mg/kg de Xilacina + 10 mg/kg de Ketamina. La inducción es rápida y tranquila. La anestesia dura 30 - 90 min. Ovino: Ketamina 4 mg/kg + 0.05 mg/kg de Xilacina IV; Caprino: Ketamina 11mg/kg + Xilacina 0.2 mg/kg IM

4.6. ANESTESIA EN EQUINOS El caballo es probablemente la especie animal que presenta un mayor número de problemas al realizar técnicas de anestesia general producto de su gran tamaño, rapidez de movimientos y temperamento excitable. Problemas de manejo del paciente y seguridad del personal durante las fases de inducción y recuperación anestésica, ya que el caballo es proclive a sufrir cuadros de stress, a veces en forma de ataques de pánico, con el consiguiente riesgo de accidentes. Las técnicas de anestesia general provocan en el caballo graves disfunciones en los sistemas cardiopulmonar y muscoloesquelético.

PREPARACIÓN DEL PACIENTE En animales que presentan dolor intenso se administran drogas con actividad analgésica para reducir el estrés y facilitar un manejo más seguro. Ayuno de 6 – 12 horas con anterioridad a la anestesia. Las yeguas que estén amamantando potros no deben separarse de los mismos hasta que se haya realizado la inducción anestésica. De la misma forma la presencia de la madre puede facilitar una inducción anestésica más suave en potros. Las herraduras deben retirarse antes de la anestesia, o al menos ser cubiertos con adhesivos plásticos para evitar resbalones y caídas durante la fase de recuperación. PREANESTESIA Dentro de los tranquilizantes / sedantes destacan por su uso en preanestesia equina los derivados fenotiacínicos, los agonistas alfa-2 adrenérgicos y las Benzodiacepinas.

A. Derivados Fenotiacínicos El derivado fenotiacínico más utilizado es la Acepromacina que reduce las dosis anestésicas de inducción y mantenimiento y previene la excitación durante la fase de recuperación. Se administra por vía intramuscular a dosis de 0,01 – 0,1 mg/kg y por vía IV. Este producto afecta poco la ventilación, aunque produce hipotensión, vasodilatación y taquicardia. Algunos caballos quedan profundamente afectados con una dosis a otros aparentemente no les afecta o se excitan con facilidad. Su efecto se aprecia por la protusión flácida del pene en el caballo comienza a los 5 – 10 minutos de su aplicación IV y a los 20 – 40 min. de la IM.

B. Agonistas alfa-2 adrenérgicos Tranquilización analgésica. Los agonistas alfa -2 adrenérgicos más utilizados en la clínica equina son la Xilacina, detomidina y romifidina. Para la preanestesia equina se utilizan intravenosamente en la habitación de derribo 5 – 10 min antes de la inducción anestésica. Xilacina Se emplea a dosis de 0.5 – 1 mg/kg IV. La sedación es máxima a los cinco minutos con descenso de la cabeza, belfo del labio inferior péndulo, párpados y pene se relajan. El caballo aumenta la base de sustentación. Los efectos de esta sedación duran de 30 – 60 min. La xilacina tiene marcadas propiedades analgésicas, particularmente en casos de cólico, reduciendo el peristaltismo intestinal. Puede ser utilizada en potros. En yeguas preñadas puede inducir un aborto si se administra en las fases finales de la gestación, al estimular contracciones uterinas. Sus efectos pueden ser antagonizados por la Yohimbina a dosis de 0.04 – 0.08 mg/kg IV.

C. Benzodiacepinas Las benzodiacepinas no deben utilizarse por si solas en la preanestesia ya que sus propiedades relajantes musculares producen ataxia en esta especie. No obstante el Diacepam se utiliza a dosis de 0.05 – 0.2 mg/kg generalmente en asociación con ketamina con vistas a inducir la anestesia general.

Anestésicos intravenosos a). Tiopental Na: El tiopental al 5 – 10% sigue siendo uno de los agentes más populares para la inducción anestésica. Tras la premedicación con agonistas alfa-2 se usa en bolo a dosis de 5 mg/kg produciendo pérdida de conciencia y caída del animal en 30 segundos. Su efecto más indeseable es la fuerte depresión respiratoria caracterizada por hipoventilación e incluso apnea de hasta tres minutos de duración. Este efecto puede minimizarse administrando lentamente soluciones de tiopental al 5%. La metabolización hepática del tiopental contraindica su uso en potros menores de 6 semanas y en hepatopatías.

b). Ketamina: Este producto presenta más efectos excitarios que depresores sobre el S.N.C por lo que su uso aislado se acompaña de nula relajación muscular, temblores e incluso convulsiones. Sin embargo su uso junto a benzodiacepinas tras premedicar con agonistas alfa -2 adrenérgicos produce una excelente inducción anestésica, seguida de una recuperación rápida y tranquila. Tras la premedicación se debe esperar la aparición de signos de sedación (Ej: descenso pronunciado de la cabeza, ataxia ligera y protrusión moderada del pene). Si tras cinco minutos el paciente no exhibe estos signos se repetirá la administración de los mismos a la mitad de la dosis inicial. Una vez se confirme un estado de sedación profunda se administrará la ketamina intravenosamente a dosis de 2.2 mg/kg normalmente asociada con Diacepam 0.04 mg/kg. La inducción anestésica y el derribo se producirán en unos 2 minutos de forma suave y gradual, y con una duración de 15 – 20 minutos. Se produce escasa depresión cardiorrespiratoria.

MANTENIMIENTO ANESTÉSICO Independientemente de la técnica utilizada para el mantenimiento de la anestesia, hay que tomar medidas que eviten las complicaciones de un decúbito prolongado, ya que el peso del paciente va a comprimir vasos musculares y nervios como el braquial, provocando lesiones isquémicas y neuroapraxias postanestésicas. Por tanto, es importante colocar al animal sobre mesas quirúrgicas o colchonetas blandas (a veces de agua), así como acolchar las extremidades con bloques de goma espuma. La cabeza debe mantenerse en posición elevada sobre el cuello para que el drenaje venoso sea correcto y no se congestione la mucosa nasal con riesgo de obstrucción de la vía aérea. Tiopental. Se usa a dosis de 0.5 1 mg/kg exclusivamente para profundizar la anestesia general mantenida con otros productos endovenosos o incluso inhalatorios, al abolir de forma rápida movimientos bruscos e inesperados de paciente durante la cirugía.

Ketamina. Este producto se usa junto a agonistas alfa -2 adrenérgicos. y EGG (éter-glicerilguayacol) para inducir y mantener anestesias en algunas ocasiones.

* Un protocolo útil para mantener anestesias de hasta 90 minutos de duración utilizando soluciones de EGG al 5% (15 – 25 mg/kg), a las que se añaden 250 mg de Xilacina y 500 mg de Ketamina administrándose a dosis de 1.1 ml/kg para la inducción y de 0.05 ml/kg/min para el mantenimiento anestésico. Para un equino adulto: Se puede: Sedar con xilacina. Inducir con ketamina + Diacepam (0.05 mg/Kg). Mantenimiento: Preparar al 5 % EGG: - 25 gr de EGG en 500 ml de dextrosa 5 % o SSF, o 50 gr de EGG en 1000 ml

5. CIRUGÍA DE LOS SISTEMAS REPRODUCTIVO Y GENITAL 5.1. Sistema reproductivo y genital masculino. 5.1.1. Trasplante del pene en el toro (Desviación de pene). En esta técnica se desvía el órgano copulador en un ángulo de 30°- 35° de su posición original, deja conservadas todas las características sexuales del macho e imposibilita solo la introducción del pene y la cópula. En el ganado vacuno lechero con el prepucio pegado ala pared abdominal, se realiza la trasplantación del modo siguiente: los toretes de peso entre 200 Kg. – 300 Kg. se dejan 1 día antes de la operación en ayuno para evacuar el contenido de la panza. Antes de la operación, se tranquilizan mediante aplicación de xilacina intramuscular. La inducción y mantenimiento anestésico se realiza con una mezcla de xilacina y ketamina intravenoso a dosis efecto canalizando la vena auricular. Se prepara el campo operatorio; se afeita la piel en forma triangular, se infiltra longitudinalmente el subcutáneo del saco prepucial de ambos lados con lidocaína al 2%, luego, se infiltra el subcutáneo en la dirección del trasplante en un ángulo de 35º-40º de la línea sagital del prepucio. En la cavidad prepucial, lavada con solución povidona yodada 5%, se introduce un tubo estéril de plástico o de goma resistente, con un promedio de 2.5 cm – 3 cm de diámetro y se extiende el saco prepucial cranealmente.

El proceso de la trasplantación estriba, en el aislamiento de la mucosa de la piel prepucial y se conserva completa sólo la parte craneal del prepucio en un largo de 5 cm – 6 cm, para la extirpación de la mucosa y su aislamiento de la piel prepucial se realiza una incisión circular 2 ó 3 dedos por detrás del orificio prepucial, de esta incisión se corta la piel en el rafe prepucial en dirección caudal de un largo de 15 cm – 25 cm en relación con el tamaño del animal, se separa con cuidado la mucosa de la piel prepucial y se realiza la hemostasis en el transcurso de toda la operación, junto con la mucosa aislada se queda el anillo de la piel alrededor de la desembocadura prepucial.

Una vez aislada la mucosa prepucial, que contiene también la parte craneal del pene, se realiza una excéresis circular (aproximadamente de 6 cm – 7 cm de diámetro) de piel en el lugar de la futura desembocadura del prepucio artificial, ésta excisión se comunica en forma de un túnel subcutáneo con la parte caudal de la incisión del rafe prepucial, se dilata lo suficiente con ayuda de pinza y con la misma pinza se hace pasar la mucosa prepucial aislada hacia el orificio prepucial artificial a través del túnel subcutáneo.

El resto de la piel en la parte craneal de la mucosa prepucial se sutura con los bordes de la excéresis cutánea circular con puntos simples de material absorbible y se cierra al final de la herida cutánea en el lugar del prepucio original.

a)

b)

a). El aislamiento de la piel prepucial se realiza una incisión circular 2 ó 3 dedos por detrás del orificio prepucial b). De esta incisión se corta la piel en el rafe prepucial en dirección caudal de un largo de 15 cm – 25 cm en relación con el tamaño del animal.

Se separa con cuidado la mucosa de la piel prepucial y se realiza la hemostasis en el transcurso de toda la operación

Junto con la mucosa aislada se queda el anillo de la piel alrededor de la desembocadura prepucial.

Una vez aislada la mucosa prepucial, que contiene también la parte craneal del pene, se realiza una excéresis circular (aproximadamente de 6 cm – 7 cm de diámetro) de piel en el lugar de la futura desembocadura del prepucio artificial, ésta excisión se comunica en forma de un túnel subcutáneo con la parte caudal de la incisión del rafe prepucial, se dilata lo suficiente con ayuda de pinza y con la misma pinza se hace pasar la mucosa prepucial aislada hacia el orificio prepucial artificial a través del túnel subcutáneo.

El resto de la piel en la parte craneal de la mucosa prepucial se sutura con los bordes de la excéresis cutánea circular con puntos simples de material absorbible y se cierra al final de la herida cutánea en el lugar del prepucio original.

Una vez realizada la cirugía, el toro no debe presentar retención de orina en el prepucio. Curar la herida con povidoda yodada y admiiinstrar antibióticos.

5.1.2. CASTRACIÓN (ORQUIECTOMIA): En nuestros días se da la tendencia a la castración de machos al desmadre para favorecer el engorde y dar una mejor distribución de grasa en las áreas más musculosas. También se castra el macho adulto con el fín de usarlo para trabajo por ejemplo en el arado de la tierra y tirar de carreta que es el llamado buey. En sementales se da la condición de la castración unilateral, en casos como hematoma peritesticular, tumores e inflamación crónioca del testículo por trauma. En machos jovenes al desmadre, la castración se facilita por ell tamaño del animal, pues de fácil sujección lo que nos favorece para extirpar o enuclear los testículos. La castración puede realizarse mediante métodos físicos (cirugía, aplicación de anillas de goma o bandas de goma, o emasculación mediante el método de Burdizzo) y métodos químicos (inyección de sustancias tóxicas e inmunocastración), prohibidos por la Unión Europea.

INDICACIONES  Tumores testiculares.  Traumatismos severos.  Anomalías congénitas.  Torsión del cordón espermático.  Degeneración testicular.  Razones de manejo, disminución de la agresividad y cambio del comportamiento.  Hidrocele, sarcocele y varicocele.  Esterilización. Cirugía La cirugía consiste en la extracción completa de los testículos y conductos espermáticos aplicando anestesia y analgesia de larga duración. Puede realizarse a cualquier edad, tiene un 100% de efectividad, reduce los comportamientos sexual y agresivo, y aumenta la calidad de canal y carne. Sin embargo, puede, puede complicarse con hemorragias, edemas, que provocan dolor crónico en animal, o infecciones posteriores.

MÉTODO ELASTOR O ANILLAS DE GOMA Las anillas o bandas de goma, colocadas en la parte proximal del escroto, producen una compresión extraluminal de las arterias y venas, lo que resulta en una isquemia crónica que induce una necrosis coagulativa y una lesión celular irreversible. Aunque la metodología es muy simple, barata, efectiva, y el dolor agudo que provoca puede aliviarse con el uso de anestesia en los testículos y escroto y analgesia intramuscular previa colocación de la anilla, genera más dolor crónico que otros métodos. No se aconseja utilizar el método en animales mayores de 6 meses.

Elastor para castrar mediante anillas de goma

MÉTODO DE BURDIZZO La castración por emasculación mediante la pinza de Burdizzo consiste en obstruir completamente la parte proximal del escroto, el conducto espermático, los nervios y los vasos para provocar una isquemia y una atrofia testicular en menos de 30 días. Previamente es indispensable la aplicación de anestesia local en los cordones espermáticos y analgesia intramuscular para reducir el dolor. Si bien puede realizarse a cualquier edad, la eficiencia disminuye conforme esta aumenta, debido al gran desarrollo testicular y la dificultad de obstruir por completo los tejidos. Aunque no hay riesgos de hemorragia, trauma o infección, de la aplicación aparece edema y reacción inflamatoria tisular, dolor agudo en el momento de la aplicación y dolor crónico durante las dos semanas poscastración.

TECNICAS QUIRÚRGICAS DE CASTRACION Técnica de castración cerrada En la técnica cerrada no se incide la vaginal parietal, por lo que se exterioriza el testículo rodeado por sus envolturas, tras seccionar la fascia espermática y el ligamento escrotal, luego se aplica doble ligadura de transfixión en masa sobre las túnicas y el cordón y se secciona distalmente ellas extrayendo el testículo. Esta técnica reduce el riesgo de eventraciones por hernias inguinales postquirúrgicas. En machos de gran tamaño (toros) se utiliza un hemasculador para seccionar el cordón espermático para realizar un corte acompañado de machacamiento vascular lo que mejora la hemostasia.

Infiltración de lidocaína al 2% en línea media. lidocaína

Infiltración intratesticular de

Para la castración cerrada, se incide piel por línea media y se exterioriza el testículo con sus envolturas y proceder a realizar una ligadura.

Técnica de castración abierta: En esta técnica se incide el escroto y túnicas testiculares, incluida la vaginal parietal, y se exterioriza el testículo y el cordón espermático tras retraer las túnicas testiculares, las estructuras del cordón se ligan doblemente y por separado, la vaginal y el cremaster se ligan en masa, luego se extrae el testículo seccionando distalmente a las ligaduras.

En este caso se realisza una incisón sobre cada testículo que comprende piel, túnica dartos, capa subdartoica y túnica vaginal, hasta que aparezca el testículo.

Aplicar de doble ligadura transficiante sobre el ligamento escrotal. Colocar un clamp en la unión ligamento-testículo. Secciónar el ligamento entyre el clamp y la ligadura. Colocación del emasculador en di

Colocar el emasculador en distal del clamp para realizar la sección del testículo. NOTA: Las incisiones en escroto por castración tanto en la técnica cerrada como la vierta no se cierran con sutura, se dejan abiertas para que drenen, excepto las preescrotales en perros. Curarlas introduciendo dentro del saco escrotal povidona yodada y antibióticos vía parenteral.

ORQUIECTOMIA EN PEQUEÑOS ANIMALES: Orquiectomía (tipo I). Técnica Se debe rasurar adecuadamente la región escrotal para la intervención. Es precisa la anestesia general del paciente y se coloca sobre la mesa de operación en decúbito dorsal, con las extremidades posteriores en abducción para exponer el campo quirúrgico. Este campo quirúrgico se delimita mediante la colocación de un paño de campo fenestrado. En este tipo de orquiectomía se realiza una incisión independiente para extirpar cada uno de los testículos, paralelas al rafe medio escrotal. El punto de incisión varía ligeramente de la especie que se trate, en el perro debe realizarse más ventralmente, pues dada la costumbre de sentarse que tienen estos animales, la sutura podría afectarse en el postoperatorio al rozar con el suelo, si se hace muy dorsal. Tras la incisión cutánea, se continúa abriendo el resto de envolturas testiculares hasta abrir la túnica vaginal, momento en que el cirujano, con una leve presión sobre el testículo, consigue exteriorizarlo, junto con el cordón espermático. Se debe traccionar del testículo para poder colocar cómodamente el instrumento de sutura mecánica adecuado, lo cual se facilita seccionando el ligamento de la cabeza del epidídimo, que fija éste en la túnica vaginal. Con ello, se consigue exteriorizar más el cordón testicular. Una vez exteriorizado, se realiza una ligadura lo más alejada del testículo como sea posible, para una vez concluida la resección, la sutura se introduzca hacia el canal inguinal, con lo que el riesgo de infección es mucho menor. Tras la ligadura se reseca el testículo, cortando con un bisturí. El mismo proceso se sigue con el otro testículo, a través de una nueva incisión cutánea paralela a la anterior, con lo que se completa la orquiectomía. Sólo resta el cierre de ambas incisiones, el cual también se puede llevar a cabo con instrumentos de sutura.

Orquiectomía (tipo II). Técnica Este tipo de orquiectomía es muy parecido a la descrita anteriormente, tan sólo difiere en el abordaje escrotal. La preparación del paciente, la anestesia, colocación y preparación del campo quirúrgico so las mismas que en el caso anterior. Ahora, la incisión cutánea es única para ambos testículos. Se realiza en la parte craneoventral del escroto, en su rafe medio, muy cerca de la base del

pene. Una vez hecha esta incisión, se fija con la mano uno de los testículos, acercándolo hacia la abertura realizada. Con el bisturí se van abriendo las distintas envolturas de este testículo hasta llegar a la túnica vaginal. Al incidir ésta, ayudando con presión sobre él, el testículo sale al exterior y ya se puede traccionar para visualizar el cordón testicular, lo que se consigue en mayor medida si se incide el ligamento de la cabeza del epidídimo.

Foto 1. Incisión cutánea. Foto 2. Exteriorización del testículo. Apertura de túnica vaginal parietal.

Foto 3. Apertura de túnica vaginal visceral. Se muestra cavidad vaginal. Foto 4. Se muestra testículo y cordón espermático.

Foto 5. Se muestra el conducto deferente (cordón blanquecino). Foto 6. Se aisla el conducto deferente.

A partir de aquí, el proceso es idéntico al descrito en la técnica anterior. Se realiza la ligadura lo más cerca posible del escroto y se reseca el testículo con el bisturí. En el caso de los gatos se puede hacer la ligadura con el cordón espermático y el conducto deferente, como se muestra en la siguiente foto (7).

Las mismas maniobras se repiten en el otro testículo a través de la misma incisión cutánea. Ambos cordones testiculares se retraen hacia el canal inguinal respectivo, con lo cual el riesgo de infección es mínimo.

Foto 8. Cordones testiculares retraídos hacia canal inguinal. Una vez concluida la orquiectomía, se debe suturar esta última incisión. Para ello, bastan unos pocos puntos en la piel.

5.2. SISTEMA REPRODUCTIVO Y GENITAL FEMENINO.

5.2.1. CESÁREA (HISTEROTOMÍA) Se designa con este nombre a la extracción del feto para evitar el camino normal del parto. Para atender un paciente en actitud de parir, es necesario saber el tiempo que inició el trabajo de parto, hacer un buen examen clínico del estado general de la vaca y una buena palpación rectal, primero para saber si el feto está vivo así como actitud, posición y presentación que trae y que las condiciones internas sean favorables y que no se ha recurrido antes a ninguna asistencia tocológica por personal no facultativo. Objetivo: Extraer todos los fetos del útero grávido con la mayor celeridad posible.

INDICACIONES  Insuficiente dilatación del canal del parto.  Rotura, torsión parcial del útero.  Retardo en el parto.  Paralización de las contracciones.  Prolapso vaginal.  Inflamación vaginal y/o útero, con / sin edema.  Diámetro maternal diferente al diámetro fetal.  Exostosis voluminosas debido a fracturas pélvicas.  Partos gemelares.  Gestación extrauterina.  Distocias.  Fetos enfisematosos. Si el feto está muerto puede intentarse la extracción manual siempre que ésta no sea forzada pues se puede provocar daños irreparables y la fetotomía puede ser practicada en último intento. Si vamos a recurrir a la cesárea con el feto muerto se condiciona que no haya pasado mucho tiempo pues la invasión bacteriana hará peligrar la vida de la vaca y el tratamiento de antibióticos debe ser masivo.

TÉCNICA DE LA INCISIÓN VERTICAL Esta es la cesárea más conservadora que presupone un feto vivo por tanto ausencia de gérmenes dentro del útero, se practica con el animal en pie; la incisión es vertical en el centro de la fosa paralumbar izquierda con la ventaja en otras técnicas hay suficiente espacio, cuando por motivos del tamaño del feto, tenemos que hacer más largo el corte y se mantiene la asepsia.

Procedimiento quirúrgico Rasurado o depilación del área quirúrgica. Asepsia de rutina. Anestesia paravertebral a partir de T13 – L3 con lidocaína. Anestesia local por infiltración en rombo o L invertida con lidocaína al 2%. Con el animal en pie o tumbado. Anestesia epidural sacrococcígea.

Preparación del campo operatorio

Anestesia paravertebral. Bloqueo de nervios raquídeos.

Anestesia local en rombo de pared abdominal. Primero: incisión de piel y subcutáneo, iniciando en dirección vertical a 3 pulgadas por debajo del borde superior de la fosa paralumbar y una longitud de 40 a 45 cm. Segundo: es el corte de músculo abdominal externo, cuyas fibras van de dorsal hacia ventral y caudal, se recomienda usar la tijera mayo recta punta roma encontrando por debajo, aponeurosis al terminar el corte, muchos vasos sanguíneos como en los demás cortes son inevitables cortarlos por cual se aplican las pinzas hemostáticas. Tercero: será el corte del músculo abdominal interno cuyas fibras musculares están unidas a su aponeurosis ventralmente; el corte se realiza igual que el anterior

Incisión en el flanco izquierdo Cuarto: se hace el corte del músculo transverso de abdomen y su aponeurosis; este debe ser cuidadoso pues, luego se procede a incidir el peritoneo preferiblemente con tijera punta abotonada. Quinto: se introduce el brazo y por palpación se ubica el cuerno grávido y al feto, buscando la curvatura mayor que será extraída hacia fuera con el ayudante del cirujano; luego colocamos las pinzas de útero, una en la parte dorsal y la otra en la ventral para sostenerlo fuera.

Sexto: se inicia el corte del útero con bisturí para extraer el feto, tratando de evitar el corte de grandes vasos sanguíneos.

Abordaje del útero. Extracción del feto

Doble clampaje del cordón umbilical para su sección entre ambos clamps y posterior ligadura en caudal a cada uno.

Limpieza (secado) del feto. Una vez extraído el feto, se procede a la sutura del útero, iniciándolo con puntos de inversión tales como: Schmieden que son puntos continuos que abarcan las tres capas del útero, cuya aguja de sutura va siempre de adentro hacia fuera con

la ventaja que se hace muy rápido cerrando pronto la herida; luego se refuerza la herida con un Cushing continuo que provoca una reinversión, pero que solo atraviesa la aguja las capas muscular y serosa.

Cierre del útero en dos planos: primero las tres capas con sutura continua y luego muscular y serosa con sutura de Lembert. Terminadas las suturas, se procede a colocar el útero en la cavidad abdominal acomodándolo “in situ”. Cierre de la herida por planos Se sutura el peritoneo con el músculo transverso del abdomen con puntos simples. Los músculos oblícuo abdominal externo e interno se pueden suturar con puntos continuos simples, pero se recomienda mejor los puntos en “X” (Greca), que son más seguros y no rasgan la fibra muscular de los tejidos. El subcutáneo se cierra con puntos simples. El cierre de piel se realiza con puntos en “U” recurrentes, iniciando el primer punto en el centro de la herida previo a un estiramiento de los vértices de la herida con pinzas, luego otro punto central en los espacios superior e inferior del punto central, posteriormente se siguen llenando los espacios con los puntos que se requieran. Este método de sutura evita corrugamientos de la piel, una buena coaptación de los bordes de la herida y estética.

Pos operatorio. Limpieza diaria de la herida con povidona yodada y administración de antibióticos de amplio espectro vía parenteral. Antes de cerrar el útero es aconsejable dejar bolos uterinos de antibóticos dentro de él. Si las secundinas se desprenden con facilidad pueden extraerse, si no se dejan dentro del útero. Es importante que la vaca quede recluida en un tramo o recinto mientras se logra la cicatrización durante el tiempo que sea conveniente. Respecto a la comida se le va dando a discreción para evitar una sobrecarga alimenticia. Complicaciones de las cesáreas: Hernias por dehiscencias de suturas. Hemorragia por desgarros vasculares. Desgarros uterinos. Peritonitis. Colapso o shock. Infección de heridas.

TÉCNICA DE OVARIO HISTERECTOMÍA (OHE) Es una de las intervenciones quirúrgicas de rutina más frecuentes de realizar con el fin de prevenir el estro, las camadas no deseadas, la prevención de tumores mamarios o anomalías congénitas, prevención y tratamiento de la piómetra, metritis, neoplasia (ovárica, uterina o vaginal), quistes, traumatismos, torsión uterina, prolapso uterino, subinvolución de sitios placentarios, prolapso vaginal, hiperplasia vaginal y el control de algunas anormalidades endocrinológicas (diabetes, epilepsia) y dermatosis (por ej. demodicosis generalizadas). En las perras se debe realizar la incisión inmediatamente caudal al ombligo para permitir la ligadura del pedículo ovárico. Rasurar y hacer la preparación quirúrgica del abdomen ventral desde el xifoides hasta el pubis. Identificar el ombligo y dividir visualmente el abdomen caudal en tercios. En las perras, efectuar la incisión casi en caudal del ombligo en el tercio craneal del abdomen caudal. Las incisiones más en caudal dificultan la exteriorización de los ovarios caninos. En las perras de tórax profundo o en aquellas con útero agrandado extender la incisión hacia craneal o caudal para permitir la exteriorización visceral sin tracción excesiva. En las gatas, el cuerpo del útero está más en caudal y es de exteriorización difícil; en consecuencia hacer la incisión en el tercio medio del abdomen caudal. Hacer una incisión de 4 - 6cm a través del tegumento y tejidos subcutáneos para exponer la línea alba. Tomar la línea alba o vaina del recto ventral, levantarla y hacer una incisopunción dentro de la cavidad abdominal. Extender la línea de incisión hacia craneal y caudal con tijera Mayo (punta roma). Elevar la pared abdominal izquierda asgando la línea o vaina del recto externo con pinza de disección. Deslizar el gancho de ovariohisterectomía contra la pared abdominal, 2 - 3cm en caudal del riñón (fig. A).

Girar el gancho hacia medial para atrapar el cuerno uterino, ligamento redondo o ligamento ancho y elevarlo con suavidad desde el abdomen. Confirmar anatómicamente la identificación del cuerno uterino siguiendo ya sea la bifurcación uterina o el ovario.

Si el cuerno uterino no puede ser localizado con el gancho, retroflexionar la vejiga urinaria a través de la incisión y localizar el cuerpo y cuernos uterinos entre el colón y aquella. Con tracción caudal y medial sobre el cuerno uterino, identificar el ligamento suspensorio mediante palpación como una banda fibrosa tensa en el borde proximal del pedículo ovárico (fig. B).

Estirar o romper el ligamento suspensorio cerca del riñón, sin desgarrar los vasos ováricos, para facilitar la exteriorización del ovario. Emplear el dedo índice para aplicar tracción caudolateral sobre el ligamento suspensorio mientras se mantiene la tracción caudomedial sobre el cuerno uterino (fig. C).

Efectuar un orificio en el ligamento ancho en caudal del pedículo ovárico. Colocar una o dos pinzas de Kelly a través del pedículo ovárico en proximal del ovario y una a través del ligamento propio del ovario (fig. D).

El clamp (profundo) sirve como guía para la ligadura, el medio mantiene al pedículo para ligadura y el distal impide el retroflujo de la sangre después de la transacción. Cundo se emplean dos clamps, el colocado sobre el pedículo ovárico sirve como sostén y guía para la ligadura. Colocar una ligadura “en ocho” en proximal (por debajo) del clamp del pedículo ovárico (fig. E). Seleccionar un material de sutura absorbible para las ligaduras (Vicryl 0 y 2-0).

Comenzar dirigiendo el extremo romo de la aguja a través de la mitad del pedículo, curvar la sutura alrededor de un lado del pedículo, luego dirigir la aguja a través del orificio original desde la misma dirección y curvar la ligadura alrededor de la otra mitad del pedículo. Asegurar con firmeza la ligadura. Extraer un clamp o aflojarlo mientras se ajusta la ligadura para facilitar la compresión del pedículo. Colocar una segunda ligadura circunferencial por debajo de la primera para controlar la hemorragia, que puede ocurrir por la punción de un vaso cuando la aguja se pasa a través del pedículo, luego colocar un hemostático mosquito sobre el ligamento suspensorio cerca del ovario (fig. F).

Transectar el pedículo ovárico entre la pinza Kelly y el ovario. Abrir la bolsa ovárica y examinar el ovario para asegurar que se lo ha extraído por completo. Extraer la pinza Kelly desde el pedículo ovárico y observar por hemorragia. Seguir el cuerno uterino hasta el cuerpo del útero. Asgar el otro cuerno uterino y seguir hasta el ovario opuesto. Colocar los clamps y ligaduras como se describiera con anterioridad. Efectuar una ventana en el ligamento ancho adyacente al cuerpo del útero y arteria y venas uterinas. Colocar una pinza Cochers a través del ligamento ancho a cada lado y transectar (fig. G).

Aplicar una ligadura alrededor del ligamento ancho si la paciente está en estro, gestante o el ligamento ancho está densamente infiltrado con vasos o grasa. Aplicar tracción craneal sobre el útero y ligar el cuerpo uterino en craneal del cuello. Colocar una sutura en ocho a través del cuerpo empleando el punto de la aguja y rodeando los vasos uterinos a cada lado. Colocar una ligadura circunferencial alrededor del cuello uterino (fig. H). Colocar una pinza Cochers a través del cuerpo uterino en craneal de las ligaduras.

Asgar la pared uterina con fórceps o hemostática mosquito en craneal de las ligaduras. Transectar el cuerpo uterino y observar por hemorragia. Religar si hay hemorragia, unir parte del meso al muñón para evitar adherencias. Recolocar el muñón uterino dentro del abdomen antes de liberar las hemostáticas o fórceps. Cerrar la pared abdominal en tres capas (fascia/línea alba, tejido subcutáneo y tegumento). Welch Fossum Theresa, 1999.

6. RUMENOTOMÍA Generalmente, la rumenotomía surge como una emergencia en la mayoría de los casos, y cuando el propietario o encargado han agotado sus propios recursos. El paciente debe ser evaluado clínicamente, para no intervenir pacientes en estado toxémico que nos da menos oportunidad de éxito en la operación. Los animales que más requieren este tipo de intervención, es en ganado lechero estabulado y los alimentados a base de concentrado, así como la ingestión accidental de sorgos u otros alimentos altamente fermentables. El equipo quirúrgico es importante, como las pinzas especiales para sostener el rumen a los bordes de piel.

INDICACIONES Entre las causas más frecuentes que nos indican la rumenotomía, está en la retículo pericarditis traumática y la impactación aguda del rumen. Lo ideal es intervenir con el animal en pie.

TÉCNICA QUIRÚRGICA Si el paciente padece timpanismo, será necesario la eliminación de gases a través de una trocarización antes de operar. Una vez tranquilizado el animal con xilacina al 2% vía intramuscular, se procede a la preparación del campo operatorio y realizar una anestesia paravertebral seguida de la anestesia local (lidocaína al 2%) por infiltración en forma de L invertida.

A

A- Zona de infiltración del anestésico local en L invertida.

Aplicación de la anestesia paravertebral.

Para llegar directamente al rumen, la rumenotomía se practica al lado izquierdo de la fosa paralumbar y se inicia con la incisión de la piel hasta llegar a peritoneo como en la cesárea, la incisión vertical entre 15-20 cm es suficiente para tener acceso al rumen.

Al separar la piel aparece el músculo oblicuo abdominal externo.

Se secciona verticalmente para exponer el músculo oblicuo abdominal interno.

Se toma con una pinza en su parte dorsal y se incide el músculo oblicuo abdominal interno, que permitirá exponer el músculo transverso del abdomen.

Una vez visualizado el rumen, se toma por los lados con las pinzas de rumen en seis puntos equidistantes y se fijan a los bordes de la piel con el garfio que tiene atrás.

Cuando se carece de las pinzas para sostener el rumen se puede recurrirá una sutura con puntos continuos, tomando el borde de la piel de la herida con serosa del rumen en todo su contorno; es más tardado pero factible.

Se sutura la pared del rumen a la piel: sutura continua evaginante.

Incidir el rumen.

Se incide el rumen, para actuar según el caso; esta incisión es de menor longitud que la hecha en piel. En las impactaciones tenemos que evacuar todo el contenido ruminal. Si el caso es de retículo pericarditis traumática, debemos evacuar para llegar manualmente al retículo. Luego de la exploración se recorre el retículo con un detector de metales, con el objetivo de retirar cualquier objeto metálico. Antes de cerrar el rumen es importante dejar dentro de él, alimento fibroso seco y de buena calidad, bolos ruminales o trasplante de líquido ruminal para restaurar la flora bacteriana.

Se explora la parte interna del rumen.

En el caso de la imagen, la incisión ruminal se cierra con doble sutura continua invaginante (Lembert invertida) no perforante.

Otra opción es cerrar el rumen en dos planos: primero se aplica una sutura continua que involucre serosa, muscular y mucosa; posteriormente se realiza una sutura continua de Lembert invertida. La pared abdominal se cierra de forma continua uniendo los bordes de los músculos. Luego se cierra el subcutáneo con puntos simples y por último piel. Postoperatorio Se administran antibióticos de amplio espectro y limpieza de la herida con povidona yodada hasta retirada de puntos. Es importante que la alimentación sea con discreción, evitando alimentos fermentables hasta que normalice la rumia

7. HERNIAS CONCEPTO Una hernia es la protrusión de un órgano a través de un defecto en la pared de la cavidad anatómica que lo contiene. Es decir, existe un órgano que cambia de localización pasando, a través de un defecto de la cavidad anatómica que lo aloja habitualmente a otra patológica.

ETIOLOGÍA Las hernias adquiridas son muy comunes en el ganado bovino, siendo causadas por traumas con la presencia de cuernos, la disputas de una hembra en épocas de monta, manejo del ganado en instalaciones inapropiadas y cuando hacen esfuerzo extremo en trabajos de sujeción. Dentro de las hernias adquiridas, están las ventrales y abdominales, provocadas especialmente por cornadas. Las escrotales y perineales en esfuerzos continuos como en la cópula y el tenesmo respectivamente. Sin embargo hay factores que dan lugar a provocar este tipo de hernias tales como: pérdida de la resistencia de una cicatriz quirúrgica, estado de preñez que aumenta la tensión de la pared abdominal, la obesidad, el estreñimiento (hernia perineal en terneros). La hernia congénita aparece en crianzas sin control genético con exceso de consanguinidad. Entre las más comunes se encuentran en el siguiente orden: hernia umbilical, diafragmática y la hernia inguinal.

COMPONENTES

a). Contenido: El contenido de una hernia influye de forma decisiva en el cuadro clínico que va a desarrollar. De ahí la importancia de conocerlo y de saber denominar a las hernias en función de su contenido. Añadir al nombre del órgano protusionado (en latín o griego) el sufijo ¨cele¨ que significa cavidad. Ej; epiplocele, enterocele, cistocele, histerocele.

b). Anillo: Existen dos tipos de anillos herniarios, los no naturales y los naturales. Los no naturales son defectos simplemente por existir en una localización en la que anatómicamente no hay nigún orificio. Los naturales , son normales en cuanto a su localización, pero no en cuanto a su morfología; es decir su excesivo tamaño o su exagerada laxitud los hacen defectuosos. c). Saco: Existe siempre u saco externo constituido por piel y tejido subcutáneo. Además, si el anillo no incluye al peritoneo, éste constituye el saco interno de la hernia.

Componentes de una hernia: A, vísceras herniadas; B, omento mayor; C, saco herniario; D, tejido laxo; E, saco herniario interno (peritoneo); F, cicatriz umbilical; G, peritoneo; H, piel; I, anillo herniario interno.

CLASIFICACIÓN En función de su localización las hernias abdominales siguientes tipos:  Craneales: (Diafragmáticas) Umbilicales  Caudales: Inguinales, Escrotales, Perineales  Ventrales o parietales.

se clasifican en los

Las hernias escrotales y perineales pueden ser tanto congénitas como adquiridas. Sin embargo dentro de las hernias se encuentran las que son reducibles, cuando es posible integrar su contenido a su lugar de origen y el anillo herniario puede ser obturado; y las irreducibles se menciona la hernia incarcerada en la cual el excesivo volumen de su contenido hace imposible su reingreso a través del anillo herniario y la hernia estrangulada es donde hay compresión del contenido herniario por la estenosis del cuello del saco herniario interno, dificultando la circulación sanguínea y las adherencias entre la serosa del intestino u otro órgano con las paredes internas del saco herniario interno.

Los síntomas de una hernia irreducible a la palpación, es la presencia de vísceras en el saco herniario, dolor, induración con fibrosis, anorexia completa, parálisis ruminal, apatía y edema alrededor de la hernia. Es importante conocer las partes de una hernia y tomar en cuenta que las hernias congénitas tienen saco herniario interno (prolongación del peritoneo) mientras que las hernias adquiridas no.

SIGNOS CLÍNICOS Signos inespecíficos Dependen de si la hernia se ha complicado o no. Una hernia se complica cuando su anillo se cierra sobre el contenido interfiriendo su vascularización. Este tipo de hernias se denominan estranguladas. Una hernia pasa de ser reducible a estar estrangulada cuando el anillo se estrecha sin comprimir los vasos, impidiendo solo el regreso del contenido a su cavidad de origen mediante maniobra externa y manual.

Se afecta la vascularización del contenido en tres fases: 1. Fase congestiva: (abultamiento y signos de Celso) 2. Fase de isquemia: (abultamiento, palidez de la zona, frío y dolor) 3. Fase de necrosis: (tumor, dolor y frío, pero el color toma tintes pardos, verdosos o negruzcos). Además de fiebre, anorexia, decaimiento, taquicardia y taquipnea. Puede llegar al shock endotóxico y la muerte. Signos específicos Dependen del tamaño, contenido o localización de la hernia. Tamaño: hernias muy grandes pueden interferir en la marcha. Contenido: dependiendo de cual se dará una u otra sintomatología ( estreñimiento, diarrea u obstrucciones intestinales en enteroceles, infecciones urinarias o partos distócicos en histeroceles, disuria en cistocele). Localización: las hernias perineales se ulceran con facilidad. El animal presenta una posición de cola levantada.

DIAGNÓSTICO Por palpación del anillo determinar si la hernia es: reducible. Si se encuentra estrangulada o está incarcerada.

Radiología: a través del uso de medios de contrastes observando el contenido. Del diagnóstico de penden el pronóstico y el tratamiento.

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL DE: Abscesos. Hematomas. Neoplasias. G. infartado

MEDIANTE: Palpación. Punción. Radiología. Localización.

Hernia umbilical: Es la más frecuente en bovinos y que aparece en los primeros días del nacimiento, haciéndose más prominente conforme transcurre el tiempo; sin embargo puede aparecer muy raras veces en animales adultos. El diagnóstico se hace a través de una buena inspección y palpación. En la inspección las hernias umbilicales cambian de forma, posición y tamaño, cuando el animal se desplaza y el la rumia. En la palpación, se hace presión hacia arriba de la hernia para determinar si hay retorno de vísceras, lo que la hace reducible y también determinamos el tamaño del anillo herniario. Para realizar la cirugía, es necesario colocar al animal en decúbito dorsal con los miembros torácico y pélvico hacia craneal y caudal respectivamente, además de una sedación adecuada e infiltración de anestesia local alrededor de la base del saco herniario.

TRATAMIENTO QUIRÚRGICO La intervención quirúrgica destinada a solventar una hernia se denomina ¨herniorrafia¨ y consta siempre de las siguientes fases:     

Abordaje quirúrgico del saco herniario. Reintegro del contenido al abdomen (exéresis del no viable). Cierre del anillo herniario: (los anillos naturales no se cierran por completo) Obliteración del saco. Cierre de la herida por planos.

Se inicia extirpando primero el saco herniario externo colocando una pinza Allys en el centro del saco herniario externo (cicatriz umbilical) dirigida hacia arriba. Se inicia el corte del saco herniario externo en forma elíptica en todo el contorno de su base rebasando sólo piel. Seguimos con una disección roma con tijera mayo recta, cortando tejido laxo hasta descubrir el saco herniario interno para extirpar el externo. Tomamos el vértice del saco herniario interno con una pinza Allys y a partir de aquí se inicia con un corte con tijera hacia abajo hasta llegar a los bordes del anillo herniario interno. Se corta con tijera mayo curva todo el saco herniario interno a nivel de los bordes del anillo herniario interno hasta dejarlo descubierto para iniciar su cierre con el tipo de sutura que más convenga. Para el cierre del anillo se usan puntos de traslape o recurrente vertical. El primer punto se inicia en uno de los bardes del anillo herniario que llamaremos borde proximal; penetra la aguja (traumática) a 2 cm de la orilla del borde de afuera hacia dentro de la cavidad abdominal; sale hacia fuera y se dirige al borde opuesto o distal pasando la aguja de afuera hacia dentro de la cavidad abdominal y en el mismo borde distal sale de adentro hacia fuera a la par de donde penetró, para

dirigirse al borde proximal, penetrando de adentro hacia fuera donde se hará el anudado. La cantidad de puntos va de acuerdo al tamaño del anillo herniario, iniciándose con un punto central y luego en los espacios laterales, se ponen los necesarios. Los puntos de sutura no se anudan, si no hasta que se han colocados todos los puntos para no limitar el campo operatorio. El material que se recomienda es no absorbible como seda. El tejido subcutáneo se sutura con puntos continuos simples. La piel con puntos simples en U horizontal.

A). Abordaje quirúrgico de una hernia umbilical.

B). Puntos para el cierre del anillo herniario.

Preparación del campo: Depilación y aplicación de antiséptico.

Abordaje quirúrgico del saco herniario.

Ampliación de la incisión

Reintegro del contenido al abdomen (exéresis del no viable): Sección de la adherencia intestinal.

Segmento Intestinal seccionado por la adherencia. Cierre en dos capas: primera (serosa, muscular y mucosa) con sutura continua y segunda (serosa y muscular) con sutura de Lembert .

Para el cierre del anillo con tejido local es importante:  No someter a los tejidos a excesiva tensión.  Reavivar los bordes.  Si es posible superponer los bordes.

Reavivar el anillo herniario

Obliteración del saco herniario

Cierre del anillo con sutura continua y puntos de refuerzo.

Cierre de subcutáneo con con puntos simples. Cierre de piel con Nylon con puntos en “U”.

8. DESCORNE COSMÉTICO Las técnicas de descorne en bovinos son necesarias para evitar que con las cornamentas se lesionen entre los animales, las pérdidas económicas causadas por traumatismos pueden ser considerables ó pueden lesionar a los humanos hasta provocarles la muerte. La cornamenta en bovinos es su única forma de defensa, jerarquía, juegos y comportamientos naturales ó etológicos, tienden a golpear con estos voluntaria ó involuntariamente. Por todas estas causas lo ideal para el manejo de los bovinos es que no tengan cornamenta y esto se puede lograr con varias técnicas para evitar que se desarrollen hasta retirarlos quirúrgicamente. Entre más joven se realice el descorne es la forma más fácil, rápida, menos costosa y menos traumática para el animal y por lo tanto con menos merma, se debe realizar al mes de edad y esto impide la salida de los cuernos, utilizando métodos cruentos como quemar con fuego, con descornadoras manuales y pomadas cáusticas.

MÉTODOS DE DESCORNE EN TERNEROS a).Cauterización física La cauterización por medio de calor es la técnica más sencilla, se realiza al mes de edad, se rasura alrededor del cuerno, se lava y se realiza la asepsia, se corta con una navaja desinfectada o con un bisturí el corion del botón de crecimiento del cuerno y se aplica calor con un cautín o un descornador eléctrico directamente sobre la gema de crecimiento para destruirla y cauterizarla y así evitar su crecimiento. b). Cauterización química Usando pastas descornadoras a base de cáusticos como el hidróxido de sodio y de calcio se debe de aplicar tópicamente sobre el cuerno, debemos de tener cuidado de que la pasta por accidente llegue a la piel, mucosas y ojos ya que sería perjudicial para el animal ó para la persona que lo esta aplicando y más perjudicial sería si llegaran a ingerirla ya sea lamiéndose entre ellos ó al estar individualmente en becerreras que el becerro embarre la pasta en la becerrera y luego la lama provocándole quemaduras en boca o si la ingiere causarle alteraciones mayores.

DESCORNE ADULTOS

QUIRÚRGICO

EN

TORETES,

VAQUILLAS

Ó

ANIMALES

El descorne cosméticose se practica en animales adultos, especialmente en ganado lechero para mantener hatos uniformes, para evitar las cornadas que provocan heridas irreparables, hernias abdominales, fracturas del cuerno por golpe hasta la base por mal manejo, cuando han sido mal descornado siendo pequeños y en especial en hembras de exposición para manifestar belleza. En los toros, se practica para evitar lesiones graves cuando pelean entre sí cuando están en monta natural. En fractura completa en animal adulto, se hace necesario el descorne cosmético, pues en la apófisis cornual del cuerno, quedando un divertículo cornual en su interior que comunica los senos frontales, provocando una sinusitis piógena con fatales consecuencias. Antes de practicar el descorne necesitamos una buena sedación y analgesia, además de un buen rasurado de toda el área operatoria; se recomienda operar con el animal en pie.

Técnica quirúrgica Previa sedación del animal con xilacina al 2% via intramuscular. Primero: Bloqueo del nervio cornual (rama del nervio maxilar) que emerge de la órbita del ojo (agujero orbitoredondo) y asciende por la apófisis cigomática del frontal hacia la base del cuerno por debajo de éste. El bloqueo del nervio cornual se logra introduciendo una aguja (N° 18 de 1 1/2 pulgadas) en el tercio superior dorsalmente al arco cigomático, buscando el nervio por debajo y no muy profundo depositando 15 cc de anestésico; se puede hacer una segunda infiltración por detrás de la primera con 10 cc asegurando así el bloqueo.

Proceddimiento quirúrgico Se practican dos tipos de incisiones para exponer el cuerno y ser extirpado, primero se hace una incisión de una pulgada y media sobre la eminencia de la nuca (heso frontal), hasta el hueso parietal (base del cuerno), luego se rodea la base cornual sobre el rodete queratógeno que limita la piel y el tejido del cuerno.

La segunda, va sobre la apófisis cigomática del hueso frontal de una pulgada desde la base del cuerno. El segundo tipo de incisión es de dos pulgadas y va sobre la eminencia de la nuca, pero antes de llegar a la base del cuerno, forma un ángulo divergente para rodear al cuerno; el otro corte va sobre la apófisis del arco cigomático haciendo también el ángulo que rodea la base para encontrarse con la primera incisión con bisturí. Todas las incisiones en piel deben ser profundas hasta llegar al tejido óseo y la pile se va desprendiendo con el uso del bisturí para le corte. El corte del cuerno hasta su base sse hace utilizando una cierra y mejor si usamos el alambre obstétrico que nos facilita hacer el corte más profundo sin lesionar tejidos subyacentes; hasta dejar sola la apófisis cornual y el conducto del cuerno.

Una vez cortado el cuerno y controlado los vasos sanguíneos (arteria cornual, rama de la arteria temporal superficial) por hemostasis, se procede a la sutura de los bordes la piel. Se recomienda el uso de puntos simples en U horizontales, iniciándose con un punto central para hacer tracción y observar hasta donde se oponen los bordes de la herida. El resto de los espacios se irán suturando con los puntos necesarios.

En animales con bases cornuales muy anchas, se dificulta la coaptación de los bordes para su sutura por lo que se sugiere que un ayudante jale la oreja hacia arriba donde la piel está libre, lo que facilitará el objetivo previa debridación por debajo de la misla. La ventaja del segundo corte es que hay una mejor estética y no es necesario recortar bordes de la piel. La coaptación es mejor. Se recmien el uso de seda N° 3 y antibióticos dentro de la cvidad ósea antes de cerrar la herida. Los puntos se retiran a los 15 días.

9. OTOHEMATOMA Un otohematoma es la colecta de sangre dentro de la lámina cartilaginosa de la oreja. SINÓNIMOS: Hematoma aural o auricular.

CONSIDERACIONES RELEVANTE

GENERALES

Y FISIOPATOLOGÍA CLÍNICAMENTE

Los hematomas aurales pueden presentarse en perros o gatos y por lo general se caracterizan como tumefacciones fluctuantes llenas de líquido, sobre la superficie cóncava del pabellón auricular. Se afecta una porción o toda la superficie cóncava del pabellón auricular. La etiología de los hematomas aurales no se comprende bien; sin embargo, las sacudidas de la cabeza o el rascado de la oreja motivados por dolor o irritación asociados con otitis externa (por lo general otitis bacteriana en los perros y Otodectes cynotis en los gatos) son los factores responsables en muchos casos. Las sacudidas de la cabeza pueden provocar movimientos sinusoidales de la oreja con la resultante fractura del cartílago. El hematoma parece originarse a partir de las ramas de la arteria auricular mayor dentro del cartílago auricular fracturado, más que entre la piel y el cartílago. Algunos animales que experimentan hematomas aurales no tienen evidencia de enfermedad ótica concurrente; la formación de hematomas en algunos pacientes puede estar asociada con crecimiento de la fragilidad capilar (enfermedad de Cushing).

DIAGNOSTICO Presentación clínica Reseña. Los perros y gatos con otitis externa tienen mayor riesgo de padecer hematomas aurales. Anamnesis. Puede haber antecedentes de sacudidas cefálicas violentas y/u otitis externa aguda o crónica; en algunos pacientes faltan los antecedentes de enfermedad ótica previa. Hallazgos del examen físico Los hematomas inicialmente son blandos, fluctuantes, con contenido líquido, pero con el tiempo se vuelven firmes y espesan como resultado de la fibrosis. Entonces el pabellón auricular puede adquirir la apariencia de una “coliflor”.

DIAGNOSTICO DIFERENCIAL El hematoma aural se diagnostica en el examen físico; sin embargo, la enfermedad ótica subyacente debe ser diagnosticada y tratada para reducir la probabilidad de recurrencia.

MANEJO MEDICO La enfermedad ótica subyacente debe ser tratada en forma adecuada (el tratamiento de la otitis externa comprende la identificación de las causas subyacentes o perpetuantes, higiene y secado del oído y empleo de las medicaciones tópicas y/o sistémicas adecuadas. Se ha intentado la aspiración con aguja de los hematomas aurales (con o sin la administración concurrente de corticosteroides); sin embargo, la recurrencia es más frecuente.

TRATAMIENTO QUIRÚRGICO Numerosas técnicas fueron descriptas para el tratamiento quirúrgico de los hematomas aurales. Los objetivos de la cirugía son eliminar el hematoma, prevenir la recurrencia y conservar la apariencia natural del pabellón auricular (reducción del engrosamiento y tejido cicatrizal). El procedimiento utilizado con mayor frecuencia comprende la incisión de los tejidos superpuestos al hematoma, evacuación de los coágulos sanguíneos y fibrina y mantenimiento del cartílago en aposición con suturas hasta que pueda formarse el tejido cicatrizal. Como alternativa, se han empleado drenajes o cánulas para crear un avenamiento durante varias semanas a lo largo del proceso de cicatrización. Para prevenir el agrandamiento o fibrosis, el hematoma debería ser tratado tan pronto como se produce.

Manejo preoperatorio La otitis externa concurrente debe ser tratada en forma simultánea. Se remiten las muestras para cultivo y el canal auditivo se higieniza e irriga. Posición del paciente Los animales en general son colocados en decúbito lateral para la reparación de hematomas.

TÉCNICA QUIRÚRGICA Hacer una incisión en forma de S sobre la superficie cóncava del pabellón auricular y exponer el hematoma y sus contenidos de extremo a extremo.

Remover el coágulo de fibrina e irrigar la cavidad. Colocar suturas con ¾ a 1 cm de largo a través de la piel sobre la superficie cóncava del pabellón y cartílago subyacente. Colocar los puntos en paralelo a los vasos mayores (vertical más que horizontal). Pueden ser colocados a través del cartílago si incorporar el tegumento sobre la superficie convexa del pabellón o pueden ser puntos de espesor completo.

Colocar un número abundante de puntos de manera que no que no exista bolsas en las cuales se puedan acumular líquidos. No ligar las ramas de arteria auricular mayor visible sobre la superficie convexa de la oreja. No suturar la incisión porque ella posibilita la continuidad del avenamiento, por el contrario se recortan los bordes de la herida para ampliar la zona de drenaje y evitar que se cierre antes de

tiempo. Colocar un apósito protector liviano sobre la oreja y apoyarla contra la cabeza con vendaje de tal forma que permita la ventilación del canal auditivo. Extraer el vendaje y los puntos en 10 a 14 días. Otra forma de colocar los puntos en “U” de todo el espesor de la oreja, es utilizar trocitos de guía de suero en ambos lados para evitar lesiones en piel causadas por la tensión de la sutura; o utilizar una esponja resistente a la sutura, en la cara interna de la oreja. Es importante para el postoperatorio colocar un collar isabelino para evitar que el animal se lastime.

La incisión debe cicatrizar por segunda intención para permitir el drenaje de la sangre y exudados. Se retiran los puntos en U a los 8 días. Si el contenido de fibrina es mínimo se puede colocar una cánula mamaria o drenaje en lugar del procedimiento antes detallado. Aspirar los contenidos del hematoma utilizando una aguja grande (14 o 16) insertada en el mismo en su

margen más distal. Insertar la cánula a través del orificio de la aguja y suturarla al pabellón. (La cánula es colocada en la zona más distal del hematoma – incluso en los animales de orejas erectas- para prevenir que el drenaje penetre en la concha aural.) No vendar ni sujetar la oreja sobre la parte superior de la cabeza.

; Colocación de la cánula mamaria.

Colocación del drenaje de látex.

Un drenaje de látex fenestrado de ¼ de pulgada puede ser utilizado en lugar de la cánula mamaria. Hacer ojales en los límites proximal y distal del hematoma. Evacuar el líquido y fibrina y emplear una pinza mosquito o cocodrilo para transportar el drenaje dentro de la cavidad del hematoma. Suturar los extremos del drenaje a la piel donde protruyen desde la cavidad. Colocar un vendaje liviano sobre la oreja.

Aplicación del vendaje:

A, Para vendar la oreja colocar tiras de cinta sobre el margen rostral y caudal de la superficie convexa del pabellón auricular. B, Emplear las tiras más largas sobre la superficie cóncava del pabellón de modo que contacten la cinta sobre la superficie convexa. C, Colocar la oreja sobre la parte superior de la cabeza cubriendo la incisión con apósito no adherente. D. Se puede reforzar con una venda de gasa procurando la ventilación del canal auditivo.

BIBLIOGRAFÍA. Alexander Alfonso. Técnica Quirúrgica en animales y temas de Terapéutica Quirúrgica. Nueva editorial Interamericana S.A. México. Bojrab M. Joseph. Medicina y Cirugías en especies pequeñas. Editorial Continental. México. Camba Capaz Arnoldo. Cirugía Veterinaria. Editorial Pueblo y Educación. Cuba. Garnero, Oscar J; Perusia, Oscar R. Manual de Anestesias y Cirugías en Bovinos. Segunda Edición, 2002. Editado por Imprenta San Cayetano, Sta. Fe-Argentina. Gonzalo Cordero J. M; et al. Cirugía Veterinaria. Editorial Interamericana. McGraw-Hill, 1994. Monroy Mario A. Cirugía Práctica Bovina. Primera Edición. Editorial Universitaria, Universidad de San Carlos de Guatemala, 2003. Welch Fossum, Theresa; et al. Cirugía en Pequeños Animales. Editorial InterMédica. Buenos Aires-Argentina, 1999. Internet.

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