Libro de Parasitos de Bayer

ffi Bayer He~lthCare Sanidad Animal

dame --·~---sitol í n a es de Co.pañía

Maggie Fisher y John

cGany

Una enciclopedia única que detalla los parásitos más importantes y peligrosos para la salud de los pequeños animales, su identificación y diagnóstico.

Edici6n en español legalmente autorizada por los editores y protegida en todos los paises. Todos los derechos reservados. Esta publicaci6n no se podrá reproducir¡ almacenar en sistemas de recuperaci6n, transmitir en forma alguna, por medio mecánico, electrónico, fotocopiador, grabador, CD Rom u otro, ni en su totalidad ni en parte, sin autorización escrita del editor. El infractor puede incurrir en responsabilidad penal y civil. Su infracci6n se halla penada por las leyes 11.723 y 25.+46.

Gopyright© 2006 by Bayer HealthCare AG,Animal Health Dlvlsion Focus on Small Animal Pill~asitology ISBN: 3-00-018617-4 ISBN: 978-3-00-018617-2 Alemania www.animalhealth.bayemealthcare.com

Tr:aducción de la edición en Inglés: Juan Mangieri, Médico Veterin~rio Diplomado, Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad de Buenos Aires, República Argentina

NOTA Se han hecho todos los esfuerzos para asegurar que la información descrita en este libro, basada en la experiencia de los autores, es precisa. Sin embargo, los autores y editores no se responsabilizan por las consecuencias de una interpretaci6n errónea ni establecen una garantía implícita.

,Fisher, Maggie Fundamentos,de parasitologia en animales de compañia / Maggie Fisher y John McGarryl' ed. - Buenos Aires: Inter-Médica, 2007. 136 p.: il.;30 x 21 cm. Traducido por:Juan Mangieri ISBN 978-950-555-322-8

1. Veterinaria. 2. Parasitologia. - 1. McGarry, John 11.Mangieri, Juan, trad. 111. Titulo CDD

636.089

Queda hecho el depósito que previene la ley 11.723 ISBN N° 978-950-555-322-8

© 2007 - by Editorial Inter-Médlca SAI.C.I. Junin 917 - Piso 10"A" - C I 113AAC Ciudad Autónoma de Buenos Aires - República Argentina Tels.: (54-1 1) 4961-7249 - 4961-9~'34 - 4962-3145 FAX: (54-1 1) 4961-5572 E-mail: info@inter-mediQ;a.com.ar E-mail: [email protected] http://www.inter-medica.com.ar www.seleccionesveterinarias.com

Impreso en Talleres G~áficos Valdez Loyola 1569/81 - C 1414AVG - Ciudad Autónoma de Buenos Aires Impreso en Argentina - Printed in Argentina

Este libro se terminó de imprimir en Abril de 2007 Tirada: 8000 ejemplares

Contenido Contenido Prefacio Colaboradores y agradecimientos Introducción para el uso de este libro Parósitos externos

5 7 8 9

11

- Introducción

Insectos Pulgas Piojos Moscas: rniasis Tábanos Mosquitos flebotomo

12 16 18

22 23 24

Acaros Garrapatas Sarnas: Sarcoptes scabiei Notaedres cati Demodex spp Otodedes cynotis OIeyletiella spp Trombicula autumnalis Enfennedades

25

34 36 38

40 42 44

de transmisión

vectorial·

Introducción

Barronella hense/ae Thelazia callipaeda Dirofilaria repens Leishmania spp Infecciones transmitidas Ehrfichia canis Anaplasma phagocytoPhilum Rickettsia rickettsii Borre/ia burgdorferi Bobes;a can;s Hepatozoon canis Cytauxzoon felis

46

47 49 51 por garrapatas·

Introducción

Diagnóstico de las infestaciones

58 60 62 65

por helmintos

• Introducción

Alaria spp Cestodos

54 55 57

Parósitos internos - Introducción Trematodos

45

67 69 70 71 72

• Introducción

75

76 79 80

Dipyfidium caninum Jayeuxiella pasqualei Taenia spp Echinococcus granu/osus Echittococcus multilocularis Mesocestoides spp Nematodos

gastrointestinales.

83

86 89 Introducción

AscaJ!"is Toxocara canis Toxocara coo Toxascaris leonina Undnarias AncyIostoma caninum Urrilaria stenocephala AocyIostoma tubaeforme 5trongyIoides spp Trichuris vulpis Nematodos

del pulmón y del corazón • Introducción

91 92

97 101

103 106 108 110 111 113

Gusanos pulmonares CcplIaria aerophila Crenosoma vulpis 0sIer0s as/eri Aelumstrongylus abstrusus

114 115 117 119

Gusanos del pulmón y del corazón AngiostrongyIus vasorum Dirolifa,ria immitis

121 123

~--------~==-------------------Protozoos·

Introducción

Isosporo spp Ctypmsporidium spp Giardia spp eosporo caninum iT¡¡zoplasma gondi;

127

128 130

131 132 134

Prefacio

¡la parasitología es un mundo fascinante y complejo! Nuestra comprensión acerca de los ciclos biológicos y las interacciones entre los parásitos y sus huéspedes continúa aumentando. A nivel clínico, los veterinarios han tenido siempre un papel central para proporcionarles a los propietarios consejos prácticos acerca del tratamiento y los programas de prevención y control para los parásitos, así como también en las zoonosis. Este ibro contiene ilustraciones a color sobre parasitología para los veterinarios dedicados a la práctica de animales oe compañía. Provee una revisión actualizada de los-parásitos de los perros y gatos vistos a diario, y debido al mayor movimiento de estos animales alrededor del mundo, también se muestran algunos parásitos exóticos que pueden no ser encontrados como rutina. la idea original de este libro fue inspirada a partir de un proyecto pensado entre Allan White Memorial Trust y 8ayer Animal Hea1th, en el Reino Unido. Hay que agradecer a Maggie Fisher,John McGarry y Bayer Animal Health por hacer realidad a este manual de valor internacional. Espero que los colegas que están en la profesión disfruten de uso de este libro y que les sea de ayuda para continuar asesorando a sus clientes respecto a esta importante área de la medicina veterinaria.

Lord Soulsby de Swaffham Prior

Abril 2006

-

Colaboradores y agradecimientos

Bayer

John McGarry

Andrew

Kocan

Katie Fisher

Arlene Jones

Lean Fourie

Byron Blagburn

Lou Gotthelf

Cathy Curtís Centros para Control

LuigiVenco de Enfermedades, EE.UU.

Maggie Fisher

Chris Bower

Marcelo de Campos Pereira

Christian

Mark Craig

Epe

Claire Ride

Pietro Niutta

Claudio Genchi

Reinhard Straubinger

Comstock

Roger Eritja

Corbis

Salvatore Giannetto

Craig Reilly

Steve Warren

David Burden

Thomas Rornig

Dennis Jacobs

Tony Northrup

Dieter

Torsten Naucke

Barutzki

Durland Fish

Vic Simpson

Gad Baneth

Volkhard Kempf

Gary Conboy Giuseppi Cringoli

Ayuda adicional

Guadalupe Miro

Arlene Jones

Hannah Fisher

Bruce Conn

Heinz Mehlhorn

Museo de Historia

Hiroyoshi

Worcester

Ninomiya

Natural de Londres, Reino Unido

Animal Rescue, Reino Unido

Introducción para el uso de este libro

Este libro está ordenado en cuatro secciones principales: parásitos externos, enfermedades

de transmisión vectorial,

helmintos y protozoos. Cada una de estas secciones está dividida según amplios aspectos taxonómicos, detallados en la tabla de contenidos. Cada parásito está considerado

bajo los aspectos clínicos de la infección y el diagnóstico de laboratorio. También se

induyen la importancia y la distribución geográfica, según sea apropiado. Se ha incorporado

un mapa para proveer un

panorama general de la distribución del parásito, pero estos mapas deben ser utilizados teniendo en cuenta que la información acerca de la prevalencia de una especie se basa en datos parciales, muchos de los cuales son históricos, sin que exista un análisis de distribución en tiempo real para estos parásitos. Un mapeo más sofisticado y técnicas predictivas están a disposición para algunas infestaciones tales como Echinococcus

muhilocularis

y Dirof1Jaria immitis y los

métodos utilizados contribuirán más a nuestra comprensión sobre la distribución del parásito en el futuro. la parte superior de la página para cada parásito tiene un encabezamiento

que muestra el tipo de organismo (ácaros,

cestodos, etc.). el nombre y la especie huésped. La especie animal que se encuentra en el sector sombreado

del picto-

grama indica que en ésta la infección ocurre con menor frecuencia. La presencia de la figura de un conejo señala que la infección también ocurre en otros pequeños animales más allá del perro y el gato. El libro plantea una revisión de los parásitos encontrados ex:óticas.lneVitablemente,

con frecuencia y presenta otros con características

más

este libro no provee una lista exhaustiva de todos los parásitos exóticos que podrían afectar

a los perros y gatos pero brinda una introducción amplia del rango de parásitos que pueden presentarse. hemos tomado la oportunidad

(la Edición Internacional) para sobresaltar

Nosotros

la importancia en aumento de la acción de

los parásitos como vectores de otros parásitos que causan enfermedades. Se incluye una sección sobre Enfermedades transmitidas por vectores, en particular las del perro, en referencia a patógenos transmitidos

por garrapatas

(por ej., Ehrlichia spp y Bordetella spp). los veterinarios dedicados a los animales de compañía tienen una gran cantidad (yen aumento) de productos para el tratamiento este

y/o 'la prevención para muchos dé los parásitos encontrados. Estos tratamientos libro. ya que estos aspectos de las enfermedades

no están cubiertos en

parasitarias son desarrollados en otros textos.

Por último, nos gustaría agradecer el generoso apoyo dado al proyecto original por los miembros de Allan White Memorial Trust y de Andrew Curwen de Bayer Animal Health del Reino Unido, ya esta edición por Norbert quien nos alentó a crear este libro como parte del concepto "Bayer Soluciones Antiparasitarias" de compañíaTambién

queremos extender nuestro agradecimiento

generosa con este libro. En "Colaboradores

y agradecimientos"

Mencke.

para los animales

a las personas que han contribuido en forma tan

se proporciona

cemos y que han brindado imágenes.

Maggie Fisher Malvern, RU. Abril 2006 John McGarry liverpool, RU. Abril de 2006

una lista de aquéllos a quienes agrade-

/

La primera secdón de este libro examina a aquellos parásitos de los gatos y perros que habitan sobre su manto piloso o la piel Estos parásitos incluyen insectos y Acaros, una subclase de los arácnidos.

INSECTOS los inseceos adultos tienen un exoesqueleto rlgido,típico de ros artrópodos. un cuerpo dividido en cabeza. tórax y abdomen en forma bien dIferenciable, y tres pares de patas. Algunos, por ejemplo las moscas, son alados, pero los principales insectos parásitos, las pulgas Y los piojos. carecen de alas. Estos dos últimos muestran otras adaptaciones anatómicas para hallar o mantenerse sobre su huésped. que incluyen las patas muy adaptadas de las pulgas y las mandíbulas de prensión de pelos de los piojos.

Pulgas Las p gas son . que pertenecen

En el Reino Unido y en Europa. las miasis cutáneas son causadas la mayoría de las veces por especies facultativas, principalmente del género Ludlia (moscas verdes). Las larvas de Phormia spp (moscas negras). Calliphora spp (moscas azules) y hasta la Musca domestica (mosca común del hogar) también pueden estar involucradas. Varias especies de moscas tienen partes de la boca adaptadas para perforar o hacer cortes en la piel e ingerir sangre. Todas son parásitos temporarios cuando se alimentan y pasan el resto de su tiempo fuera de los animales. Esta sección examinará algunas especies de moscas mordedoras (tábanos).Todas pueden causar molestias y dermatitis en el lugar donde se alimentan, pero también pueden actuar como vectores de patógenos que pueden causar enfermedades.

ARACNIDOS -ACAROS succionado res de sangre temporarios. al Orden Siphonaptera. SectDS

CtenocepbaSdes feJis (la pulga del gato) es la encontrada con mayor freaJenda en los animales domésticos en muchos países. Las pulgas del gato se aLimentan sobre cualquier región del cuerpo y pueden intentar comer de cualquier animal. incluyendo el hombre. C. canis roe e ser más específica del huésped.

Los arácnidos son morfológicamente diferentes de los insectos, debido a que la cabeza. el t6rax y el abdomen no son distintivos al estar fusionados en una sola entidad. Pueden diferenciarse aún más por medio de sus piernas: los estadios larvales tienen tres pares de patas (como los insectos) pero las ninfas y los adultos tienen cuatro pares de patas.

Garrapatas Piojos los piojos perre! ecen al Orden Phthiraptera. Los insectos de este orden, a drerel1cia de las pulgas, son muy específicos de huésped y oasan toda su vida sobre éste. Los piojos son apianados dorscverrralrnente y tienen pinzas para agarrarse de los pelos o de ras ~ Tienen un ciclo de vida hemimetabolos de forma ca.. que e¡ p o¡o inmaduro es similar al adulto y no hay estado pupa1. i-by ces subdivisiones principales: el Anoplura es sucdonador de sangre uambién denominado piojo chupador) y se presema SOlO en los mamíferos. B otro grupo principal está comprendklo X>f" los piojos mordedores o masticadores. que se alimentan soore os tejidos,

Moscas: ~

y iCDanOS

La míasis, bajo r; eva nomenclatura, es definida como la invasión del tejido V"VO oor parte de larvas de moscas dipteranas. Estas lTIOSQS p.reden ser especies de miasis facultativas u obligatorias.l.a.s especes de miasís facultativa incluyen Ludlia sericato, la cual suele reorodudrse en tejido podrido o en sustancia orgánica el) !"1iii.. estaoo pero puede dejar caer sus huevos sobre animales COl' con~ precfuponentes. Las especies de míasis obligatorias C-e1le.n desarrollarse sobre tejido vivo para completar su ddo de >"ida por e], CochJiomyia hominivorax).

Las garrapatas están divididas en dos familias. según su conducta de alimentación. La familia Ixodidae contiene las "garrapatas duras", las cuales tienen una cutícula quitinosa, el escuro. Cada estadio larval, las ninfas y los adultos aumentan su tamaño lentamente con sangre con el pasar de varios días, Las garrapatas de la familía Argasidae son conocidas como "garrapatas blandas". Estas tienen una cutlcula blanda. como cuero. Cada estadio puede alimentarse varias veces en cuestión de horas. Las garrapatas de la familia Ixodidae transmiten importantes enfermedades protozoáricas, virales y rickettsiales entre animales.

Acaros de la sarna Todos estos parásitos tienen un patrón "digital" sobre la cutícula. que los distingue de aquellas especies que viven libres en cualquier parte. Basándose en sus actividades en o sobre la piel. estos ácaros son descritos algunas veces como fabricantes de cuevas o no. Aquéllos que hacen cuevas pertenecen a la familia Sarcoptidae y Demodicidae. Los que no hacen cuevas y son importantes representan a las familias Psoroptidae y Cheyletiellidae.Aquéllos pertenecientes a las familias Dermanyssidae y Trombiculidae se alimentan con sangre.

CID

Pulgas Presentación clínica Signos clínicos La infestaci6n con pulgas tiene una presentaci6n variable, determinada por varios factores que incluyen al animal como entidad individual y al número de pulgas. Sin embargo, hay dos tipos principales de presentaci6n, dependiendo de si el huésped es o no sensible a los alergenos presentes en la saliva de la pulga. Animales no hipersensibles • • •

Las pulgas se mueven con rapidez en el manto piloso. Excremento

de pulga.

. Anemia, en casos de una infestación grave.

Animales sensibles La carga parasitaria puede ser mucho más baja, ya que el animal puede sacarse de encima a las pulgas con efectividad y el umbral de hipersensibilidad puede ser sobrepasado sólo por unas pocas pulgas. Perros y gatos:

•

La lesi6n primaria es una pápula después de una sola picadura de pulga. Sin embargo, puede ser difícil encontrar las pápulas ya que la automutilaci6n hace que las lesiones secundarias sean más evidentes.

•

Prurito.

•

Automutilaci6n.

•

Pelos cortados. Costras. Alopecia: es tlpico en la zona caudal del dorso (figs. / Y 2).

Gatos: •

Dermatitis miliar tipo papel de lija: la piel se siente áspera sobre la zona caudodorsal del abdomen de los gatos.

•

Complejo granuloma eosinofílico.

Historia relevante •

Cualquier edad, aunque los animales hipersensibles tienen, por lo general, más de 6 meses.

•

Cualquier sexo, castrado o entero.

•

Predisposici6n a la hipersensibilidad: las dermatitis alérgicas por pulgas pueden desarrollarse en cualquier raza aunque algunos perros (tales como el Ovejero alemán) pueden ser más susceptibles.

•

Evaluar antecedentes control recientes.

•

¡Hay antecedentes

de infecciones por pulgas y tratamientos

de

de hipersensibilidad por pulgas!

Diagnóstico diferencial •

La hipersensibilidad a las pulgas es una causa común de estos signos clínicos. Mientras las pulgas se alimentan con la sangre, inyectan saliva la cual contiene componentes que actúan como antlgenos.

•

Dermatitis at6pica.

•

Otras hipersensibilidades.

•

Nota: algunos perros con dermatitis alérgica por pulgas también serán at6picos.

Fig.3 Extremidad (pierna) de una persona con Picadura de pulgo.

Ctenocephalides felis puede infectar a una amplia variedad de huéspedes, incluidos conejos. h~ nes y, a veces, pequeños roedores.

Importancia •

Anemia: cada pulga consume unos 14 ¡JIde sangre por día,

•

Transmisi6n de enfermedades: por ejemplo, DiPylidium caninum, Bar-

tonella hense/ae. •

Las personas también

pueden ser "picadas" y pueden sensibilizarse

(fig.3).

®

Pulgas Diagnóstico laboratorial Muestreo Peinado del manto piloso: recolección de los desechos en una bolsa de plástico o en un pote.

Examen Colocar una muestra de desechos sobre un papel húmedo: se verá un anillo rojo rodeando manchas negras a medida que se libera sangre no digerida desde las heces de las pulgas. Examinar los desechos bajo microscopio o con lupa estereomlcroscópica, y buscar las heces caracterlsticas o los huevos de las pulgas (figs.40 Y b). Examen de pulgas adultas (fig. 5): sin alas. patas adaptadas para saltar. comprimidas lateralmente (fig. 6). La pulga encontrada con mayor frecuencia sobre perros y gatos es la pulga del gato (Ctenocephalides fe1is). cuyo 000 de vida se muestra en la página siguiente. Cuando se sospecha hipersensibilidad pero se carece de evidencia de pulgas. se puede realizar una prueba en sangre o una cutánea para confirmar la hipersensibilidad. La biopsia puede mostrar

probable que

estO

un infiltrado eosinofílico pero es poco sea de ayuda diagnóstica.

Como alternativa (o como agregado) se puede supervisar la respuesta al comroJ de pulgas. &¡ algunos casos. puede ser importante confirmar la especie de pulga presente. Esto se logra por medio de un examen microscópico de la cabeza de la pulga (véase p~g. siguiente).

Fig. 6 Microfotografia electrónica: vista craneal de una pulga adulta .

ec

correspondiente a Ctenocephalides fe/is.

@

Pulgas Identificación de pulgas adultas Características de las pulgas Peine pronotal

Peine o aenidio genol

...

Ec/,¡d"ot>ho¡~ogollinoceo: pulga de lo frondoso; se encuentro en los trojl>iccl/esy subtropicoles del mundo. No peines genol y pronotol y lo cabezo muy ongulodo en el frente de la porción anterosuperior de la cabeza.

nr"'rDªl'l retener el material resultante del raspado. Colocar el material obtenido y la hoja de bisturí en un pote.

Examen Colocar el material presente en la hoja de bisturí en un portaobjetos y agregar un poco más de parafina, cubrirlo con un cubreobjetos y explorar el preparado con baja resolución en un primer momento (40X). El ácaro permanecerá vivo en la parafina líquida durante algún tiempo, por lo que el hecho de buscar movimiento puede ayudar a localizarlos. Aumentar la resolución a 100X o 400X para ver las áreas con mayor detalle, según sea necesario.

Fig. 76 Detalle del dorso de Sarcoptes, que muestra las espinas y las espigas.

Si no se ha utilizado parafina líquida para la recolección del material, los desechos pueden ser colocados sobre un portaobjetos y luego cubrirlos con una solución de hidróxido de potasio al 10%. Esto se puede dejar por cierto tiempo o se puede calentar. Ambos caminos ayudan a quitar los desechos haciendo que de esta manera. el parásito se vea con mayor facilidad. Sin embargo, el hidróxido de potasio mata al ácaro, por lo que no se verá movimiento alguno. los ácaros son redondeados, y con patas cortas (típico de los ácaros que hacen cuevas) (fig. 79). El dorso del ácaro está cubierto de espinas y espigas (fig. 76) Yel ano es terminal. En todos los estadios, los dos pares de patas anteriores tienen ventosas en el extremo de largos pedicelos no articulados.

En ocasiones, se puede observar materia fecal y huevos en el material raspado (fig. 78). Puede ser difícil encontrar ácaros en el raspaje de un animal infestado. Se cuenta con pruebas serológicas para detectar anticuerpos anti-Sarcoptes, que pueden ser utilizadas para ayudar a confirmar el diagnóstico cuando sea necesario.

Fig. 77 Corte teñido con H y E de una muestra de piel de un animal in(estado con S. scabiei. Obsérvense los cortes de los ócaros en la base del estrato córneo, donde las espinas de éstos son claramente visibles (~echa).

Ciclo de vida Todo el ciclo de vida se produce sobre el huésped, y la transferencia entre los animales ocurre, probablemente, por contacto cercano o. en algunas circunstancias, por medio de ácaros que han caído en eJ ambiente. El apareamiento ocurre sobre la superficie de la piel y luego la hembra comienza a realizar cuevas en el estrato córneo (fig. 77), donde deposita sus huevos (fig. 78). En su desarrollo, las larvas pueden permanecer en las cuevas o dejarlas para continuar creciendo en otro lugar, y luego pasarán por dos estadios ninfales antes de transformarse en adultos. El oe""rrOl'o de huevos a adultos lleva entre 14 y 21 días, y las hO ....."..comienzan a depositar huevos aproximadamente 3 haber emergido como adultas.

Fig. 78 Materia fecal (flecha gronde) y huevos (flechas pequeñas) de Sarcoptes scabiei en una cueva en el estrato córneo.

40pm

l.....J

Fig. 79 Sarcoptes scabiei.

Notoedres cati Presentación clínica Signos clínicos • •

Prurito. En los estadios iniciales de la infestación habrá áreas localizadas de alopecia, eritema y costras (f¡gs. 80-83).

•

En un primer momento, a menudo se encuentra cabeza, en particular en las orejas y el cuello.

•

Si no se la trata en los estadios iniciales, la infestaci6n puede diseminarse por todo el animal.

en las áreas de la

Fig.80 Extensa sarna notoédrica en un gato de algalia enmascarado (Pagumo larvata).

Historia relevante •

A cualquier edad.

•

Ocurre en felinos, pero rara vez en caninos.

•

Cualquier sexo, entero o castrado.

•

Las personas también pueden contraer

•

Notoedres cati ha sido documentado

la infestación.

en varios países de Europa continental y en muchas otras partes del mundo.

Importancia •

Es causa de irritación intensa.

•

Las personas también pueden infestarse, con lesiones de aspecto similar a aquéllas provocadas por S. scabiei. Los conejos pueden infestarse con Notoedres cati, aunque aparentemente ha ocurrido una adaptación al huésped ya que la infestación de una especie a la otra no sucede fácilmente. Las ratas pueden infestarse con N. muris y los hámster rara vez se Infestan con Notoedres sp.

Fig.81 Vista dorsal de /0 cabeza de un gato de algalia enmascarado que muestra aJopeda asociada con una infestación con Notoedres.

Fig. 82 Garra de un gato de algalia enmascarado que muestra lesiones eritematosas causadas por sarna notoédrica.

Fig.83 Mano de un gato de algalia enmascarado con lesiones erit~ causadas por sama notoédrica.

®

Notoedres cati Diagnóstico laboratorial

',,'._\..r>~

l'

Muestreo Arrartc:zr cualquier pelo y luego raspar la piel alrededor

Il...Q~

de una

lesión Utilizando una hoja de bisturí.

'''3 &7

Se puede agregar una pequeña cantidad de parafina Ifquida en la boja para retener el material resultante.

Anillo~téntriCos

~":0'

-_~

Colocar el material recogido y la hoja de bisturí en un pote.

Examen Colocar el material de la hoja de bisturí sobre un portaobjetos y un poco más de parafina líquida para luego cubrirlo con un cubreobjetos. Posteriormente, explorar el preparado con baja resolución (40X). Los ácaros permanecerán vivos en la parafina líquida durante algún tiempo, por lo que la búsqueda de movimiento puede ayudar, en la mayoría de las veces, a localizarlos. Aumentar la resolución cuando sea necesario (1OOX o 400X) para ver los detalles del aspecto de los ácaros. ~

Si no se ha uoTlzado parafina líquida para la recolección, los desechos obtenidos pueden ser colocados sobre el portaobjetos y cubiertos con una solución de hidróxido de potasio al 10%.Esto se puede dejar asf por un tiempo o se puede calentar. Cualquiera de estos procedimienros ayuda a quitar los desechos y de esta manera, es más fácil ver el ácaro, aunque el hidróxido de potasio matará a, este último, por lo que no se verá I""wimiento alguno. Los ácaros son ovales, con patas cor- \S (típico de los ácaros que hacen cuevas) (fig.·84). El dorso del ác ro está cubierto por anillos concéntricos. no tiene espinas ni espigas diferenciables y el ano es dorsal. En todos los estadios, los oos pares de patas anteriores tienen ventosas en el extremo de unos largos pedicelos.

Fig.85 Corte histológico a través de una lesión por Notoedres, tomada de un gato de algalia enmascarado (Paguma larvata).

Fig. 84 Notoedres cati: obsérvense los anillos concéntricos en el dorso y el ano dorsal.

Ciclo de vida •

Todo el ciclo de vida ocurr.e en el huésped. El ciclo de vida es similar al de S. scabiei y tarda aproximadamente 3 semanas en completarse.

Demodex spp Presentación clínica Signos clínicos •

Demodex spp es considerado un habitante normal de la piel. La dermatitis asociada con Demodex se relaciona con un estado genético o inmune que permite la excesiva multiplicación de Demodex spp.

•

Se presenta bajo dos formas: localizada o generalizada.

•

Localizada «(lg.86):

O O O •

•

Es relativamente leve y tiene una extensión limitada. Lesiones alopécicas y escamosas, que pueden ser eritematosas. Se presentan particularmente

en áreas de la cabeza.

Generalizada ((Ig.87):

O

Definida como lesiones múltiples o grandes lesiones que cubren extensas áreas del animal.

O

Puede ocurrir como de inicio juvenil (antes de los 18 meses de edad) o adulto.

O

Puede dar lugar a una grave enfermedad que ponga en peligro la vida del animal y, algunas veces, es resistente al tratamiento.

Puede ser no pruriginosa. Sin embargo, la lesión generalizada y la podal ((Ig. 88) pueden ser muy dolorosas.

•

Areas de alopecia con o sin costras y eritema.

•

Areas pequeñas y discretas en la demodicosis localizada, con áreas más grandes y en mayor cantidad en la enfermedad generalizada, a menudo con infecciones bacterianas secundarias.

Historia relevante •

Puede ocurrir a cualquier edad.

•

Se presenta en perros y rara vez en gatos.

•

Algunas razas pueden estar predispuestas al desarrollo de demodicosis (por ej.,Weimaraner y Bulldog inglés). Es más común e~ razas puras que en mestizos.

•

Cualquier sexo, entero o castrado.

Importancia •

La demodicosis miento.

local puede curarse con el tiempo, aun sin trata-

•

La demodicosis generalizada puede ser difícil de tratar y, en algunos casos, el tratamiento controla la infestación pero no logra eliminarla.

•

En algunos casos, el tratamiento de enfermedades subyacentes puede mejorar la respuesta al tratamiento antiparasitario.

•

La demodicosis generalizada puede ser tan grave que el animal debe ser sacrificado.

•

Se ha recomendado que los perros con antecedentes familiares de inicio juvenil de demodicosis no deben ser utilizados como reproductores ya que se ha identificado una asociación genética.

La infestación por Demodex es común en los hámster, y los hámster viejos pueden mostrar alopecia relacionada con la infestación. la cual se cree que está asociada con una inmunosupresi6n concomitante. La demodicosis ha sido documentada en pocas ocasiones en hurones y gerbos.

Fig. 88 Pododermatitis causada por una infección con Demodex carJ5. puede ser un cuadro muy doloroso.

r:.

Demodex spp Diagnóstico laboratorial Muestreo Arra:"CU pelOS ce

da ~ ez ~

gatoS ~

(Jfl

área afectada:Oemodex canis en perros y Dernoen los folículos pilosos (fig. 89).

orof.Jl1Óo raspaje de piel en un área afectada.

Examen e. ~

obtenido por arrancamiento de pelos o el rassobre un portaobjetos, se agrega un poco de parafina &qmda. se 10 a.bre con un cubreobjetos y el material es explorado, e:;> reSeOta justo por detrás de los pares de patas más cauCaJes.

•

En OGlSW()es se :xreden observar riíiterial n,soado frg. 901. Ya que '1 el

los característicos

huevos en el

3Qt"OS son habitantes normales en la piel del canino e haIlazgo de un ácaro en el raspado no es diagnóstico, miEr'tras Gue ~ ha.llazgo de múltiples ácaros, posiblemente también COQ ooeYOS, seria un hecho significativo. estOS

flO,

Fig. 90 Huevos de Demodex sp: obsérvese la forma caracterlsticamente asimétrica.

Ciclo de vida Todo el ciclo de vida ocurre sobre el huésped, y la transfe-

de la madre a sus crías ocurre durante los primeros días de lC!a, a ",edida que el cachorro se amamanta. las laJ"vas se crian a partir de los huevos, y Jos machos hembras adultos se ¿esaJTOIbn aespués de haber pasado por dos o tres estadios de desarro&l. Un deJo renO;¡

rlas

0,02 mm

L......J

0,01 mm

L......J Fig. 91 Demodex

sp, con forma de agarro.

I

Otodectes cynotis Presentación clínica Signos clínicos En algunos animales (en particular en los gatosj.Ios ácaros del oído pueden ser tolerados sin manifestar signos clínicos. •

La infestación con O. cynotis ocurre normalmente en el canal auditivo externo y está típicamente acompañada por una descarga cerosa marrón (fig. 94).

•

tos ácaros de los oídos son habitantes de la superficie y pueden ser vistos como pequeños puntos blancos móviles en contraste con el fondo marrón (fig.95).

•

En especial en los perros, la infestación está asociada con prurito: se pueden observar signos secundarios de rascado de la oreja y trauma.

•

'El pabellón auricular y el canal auditivo pueden estar eritematosos.

•

La infestación puede afectar uno o ambos oídos.

Fig.94 Vista externa de una oreja infestada por ócaros. Obsérvese lo descarJII ceroso morrón.

Historia relevante •

Puede ocurrir a cualquier edad, aunque los afectados con mayor frecuencia son cachorros y gatitos.

•

Se produce tanto en perros como en gatos, aunque es más común en estos últimos.

•

Cualquier sexo, entero o castrado.

•

Los huéspedes pueden tener antecedentes de la oreja.

de rascado o refregado

Diagnóstico diferencial •

Otras causas de prurito y la consecuente

•

Otras causas de otitis externa, aunque la descarga cerosa marrón asociada con O. cynotis es bastante característica,

automutilación.

•

Demodex spp también puede causar otitis. Otras etiologías de otitis

Fig. 95 Visto del lodo interno del canal ouditivo externo con ócaros.

se exponen en la página siguiente.

Importancia

I

•

Los ácaros del oído son causa de irritación y molestia.

•

Rara vez causan dermatitis en otras regiones del cuerpo.

I .1

I [

Los hurones pueden infectarse con Otodeaes cynotis sin mostrar signos clínicos o pueden manifestar una excesiva producción de cera. La "podredumbre" de la oreja de los conejos es causada por Psoroptes cuniculi, un ácaro que víve en la superficie y que posee ventosas en forma de trompeta en el extremo de los pedículos articulados.

I 40 pm

L.....J

Fig. 96 Otodeaes cynotis.

Otodectes cynotis Diagnóstico laboratorial

Examen del oído

uestreo 'B muestreo

puede ser innecesario, ya que el diagnóstico se puede

alca.nz.ar por medio de un otoscopio para visualizar la presencia de cera marrón

r ácaros

en el canal auditivo externo.

Cuando es necesario, se puede recoger una muestra de cera y desechos del canal auditivo por medio de un hisopo de algodón o equivalente. Ya que el canaf auditivo puede estar inflamado, el examen y el mues-

Es esencial tener una adecuada iluminación y una lente de aumento provista por un otoscopio de buena calidad para poder observar los ácaros con éxito. Los conos del otoscopio pueden ser utilizados como una vaina para pasar por su interior un hisopo para recoger una muestra desde el extremo inferior del canal vertical. Las muestras pueden ser examinadas en directo, en busca de los parásitos (véase Examen) o teñidas con Diff-Quik o un equivalente y buscar levaduras. Los hisopos también pueden ser utilizados para un cultivo bacteriano.

treo es doloroso para el animal, por lo que tiene que estar sujeto

Factores asociados con la otitis externa

correctamente.

Los factores predisponentes

Conformación, por ejemplo, excesiva cantidad de pelos, pabellones caídos.

Examen

Humedad en los oídos, por ejemplo, por nadar o por limpiadores de oído.

Rodar el hisopo de algodón sobre un portaobjetos y examinarlo directamente con el microscopio a bajo aumento (40X). Se puede agregar un poco de agua, alcoholo parafina líquida para aflojar y separar los desechos, pero no usar una mezcla. Cubñr el preparado pio con

incluyen:

con un cubreobjetos

y examinar al microsco-

4Ox..

Aumentar la resolución hasta, aproximadamente,

IOOX o 400X para ver detalles, según sea necesario. Los ácaros de la oreja son identificados por su forma y sus largas patas, típicas de los ácaros de superlide (lig.96J. los dos pares de patas anteriores en todos los estadios del' ácaro terminan en un pedicelo no articulado y corto y una ventosa (tig.97).

Enfermedades sistémicas.

Las causas primarias incluyen: •

Parásitos: Otodeaes cynotis, Demodex spp.

•

Cuerpos extraños.

•

Atopia. Hipersensibilidad alimenticia. Alteraciones

de la queratinización.

Las causas secundarias incluyen: Bacterias; por ejemplo, Staphylococcus intermedius, Proteus sp, Pseudo-

monas sp. Levaduras; por ejemplo, Malassezia pachydermatis.

Factores perpetuantes Respuestas patológicas; por ejemplo, estenosis de la luz, Cambios en la membrana timpánica.

Acaro chupador en el pedículo o tronco no unido

Enfermedad del oído medio.

Adaptado de Seott DW et al.Muller & Kirk's Small Animal Dermato/ogy, 6th Edition page 1206,WB Saunders Company 2001.

Ciclo de vida de Otodectes cynotis Todo el ciclo de vida transcurre en el huésped, y es probable que, la transferencia de un animal a otro ocurra a través del contacto cercano. Las larvas del ácaro del oído emergen de los huevos aproximadamente 4 días después de haber sido depositados por hembras adultas. Hay un estadio larval y dos estadios ninfales, en cada uno de los cuales los ácaros están activos de 3 a 10 días. Luego, pasan a una fase de reposo de aproximadamente un día, mientras desarrollan el estadio siguiente. Cuando emergen, los machos adultos se adhieren a las ninfas con sus ventosas con la esperanza de que la ninfa se desarrolle en una hembra adulta. La fijación de los machos a las ninfas es esencial para que ocurra el depósito de huevos. El ciclo entero transcurre en 3 semanas.

Fig. 97 Detalle del extremo de uno de los pares de patas anteriores, que muestra el pedicelo no segmentado y la ventosa terminal.

®

Cheyletiello spp Presentación clínica Signos clínicos •

Por lo general hay prurito, aunque es bien tolerado

por algunos

individuos.

•

Descamación excesiva.

•

Se pueden observar ácaros de medio milímetro como manchas blancas moviéndose entre las escamas, de ah! el término "caspa ambulante o que camina" (fig. 98).

•

Las áreas afectadas pueden mostrar trosas .(fig. 98).

•

Puede aparecer como una dermatitis miliar en los felinos.

lesiones eritematosas

y cos-

Fig. 98 Lesión rasurada de un perra infestado con Cheyletiella que eritema, costras y caspa ambulante asociada a la infestación.

muesau

Historia relevante •

Las infestaciones pueden ocurrir a cualquier edad.

•

Se produce tanto en gatos como en perros: Cheyletiella yasguri infesta perros, mientras que Cheyletiella blakei infesta gatos, pero estos ácaros pueden no ser muy específicos de especie.

•

Cualquier sexo, entero o castrado.

•

Las personas también pueden estar afectadas, en particular alrededor de la cintura, las piernas y los brazos ~fig. 10 1)..

•

La transferencia ocurre con facilidad y rapidez entre animales en contacto cercano.

Importancia •

ta

•

Las personas también pueden ser atacadas.

•

Los ácaros tienen la capacidad de sobrevivir en el ambiente durante un lapso de hasta 10 dlas en el caso de las hembras adultas, por lo que el ambiente se debe limpiar durante todo el tiempo que dure el tratamiento de los animales infestados.

infestación es una causa de irritación y molestia

Fig. 99 Conejo infestada con Cheyletiella parasitovorax. Es tipico obser«r lesiones en el dorso, el cuello o el vientre.

Los conejos pueden ser infestados con Chey/etiella parasitovorax. La infestación puede no ser aparente o puede provocar prurito y descamación (figs. 99 Y 100) con un grado variable de alopecia y eritema. Hay otros ácaros, que no están relacionados pero sí son importantes, que pueden presentarse en ratones y ratas. • musctilinus, Myobia musculi y Radfordia affinis se presenen ratones, mientras que Radfordia ensifera afecta a las- ratas. Lel)onl1!rlJlriJs ,gibbus es otro- ácare que puede presentarse en los "UIIIt"U~. Sin embar-:go,se tolera bien a menos que se presente en

Fig. 100 Acercamiento de una lesión de un conejo con una gran descornocJ8JL

.~

Fig. 101 Lesiones papulares causadas por Cheyletiella sp en el musID .... del dueño de un perra Boxer infestado. Las lesiones ocurrieron en e5R inusúal porque el dueño sujetaba al perra entre sus piernas pora.

,r s

Cheyletiella spp

Muestreo Cepillar o peinar eJ manto piloso del animal y recoger los desechos en una placa de Perri, un recipiente universal o un sobre de papel. Como alternativa. apJicar una tira de cinta adhesiva o su equivalen-re sobre el área afectada y luego aplicar la tira sobre un portaobjetos con el lado del pegamento hacia abajo. También se puede recortar el pelo bien corto pero sin llegar a la piel y realizar fuego un raspaje cutáneo superflcia] y recoger el material en un recipiente apto.

Examen ,Examinar los desechos colocados en la placa de Petri, preferiblemente contra un fondo negro, utilizando microscopio con 40X. Se, podrá 'Ver a los ácaros caminando entre los desechos.

Fig. 102 Chey/etiello sp. Obsérvese lo "cintura" y los pediPolPos con pinzas.

Fig.103 Extremo de lo pota q,_,e muestra "peines" terminales,

Para examinar un ácaro individual COA más detalle, colocar el material sobre un portaobjetos y agregar una gota de agua y luego colocar un cubreobjetos.

Oleyfetielo spp (fig. t 02) tiene patas que protruyen más allá de la periferia del cuerpo del ácaro, una "cintura", patas con "peines" en ef extremo (Iig. '03) Y pedipalpos con poderosas pinzas en et extremo anterior (lig. 104).

los huevos de Oleyletí'eJlo pueden ser observados pelos (figs.. 105 (06).

r

adheridos a

10$

Teniendo en cuenta que los perros y los gatos infestados pueden higienízarse en forma excesiva, los huevos que pasan a través del tracto intestinal se pueden detectar por frotación en la materia

fecal.

Ciclo de vida Todo el ciClo transcurre en unas 3 semanas y sucede sobre el hués-

Rg. 104 Porción anterior de Cheyletiella sp, que muestra pedipalpos armados con fuertes pinzas, utilizados para agarrarse a los pelos.

ped.aunqee fas hembras pueden sobrevivir hasta 10 días en el ambiente. las hembras depositan huevos que se adhieren a los pelos. E! pñmer estadio nlnfal sale del huevo seguido por un segundo estadio ninfa! previo al desarrollo del adulto.

Figs. 105 Y 106 Huevos de Chey/etiello sp agarrados a pelos. Obsérvese que pueden ser diferenciados de los huevos de piojos por la ausencia de opérculo. Un huevo contiene una larva en desarrollo (flecha).

33,3pm

L.......J

Trombicula autumnalis (Acaro de la cosecha) Presentación clínica Signos clínicos •

Pequeños puntos anaranjados brillantes que representan un acúmulo de ácaros visibles sobre la piel en la base de los pelos (fig.

107). •

Pueden ser signos de automutilaclón, ya que la lesión es muy pruríglnosa.

•

El prurito y el trauma pueden continuar después de que los ácaros hayan desaparecido.

Historia

relevante

•

En regiones templadas, la infestación ocurre hacia el final del verano.

•

Se observa en animales que, por lo general, han tenido acceso a áreas rurales abiertas.

•

Animales de cualquier edad.

•

Se desarrollan en gatos y perros de cualquier sexo, enteros o castrados.

•

Los dueños pueden haber notado la respuesta del animal a un intenso prurito.

Diagnóstico •

Fig. 107 Grupo de ácaros anaranjados en la base de los pelos separados de un gato.

diferencial

Otras causas de prurito y la consecuente automutilación.

Importancia •

Causa de irritación y molestia.

•

En climas templados es una infestación muy estacional, siendo parásito sólo en los estadios larvales.

•

Aproximadamente 50 especies de larvas trombiculídeas pueden infestar animales. Estos ácaros en los Estados Unidos y en otras partes son conocidos como niguas.

Diagnóstico laboratorial

Fig. 108 Vista dorsal de la larva del ácaro Trombicula autumnalis. Es un espécimen conservado, por lo que ha perdido al aspecto anaranjado briIIoJa original.Las larvas se adhieren al huésped por medio de sus que/iceros (fIecha) y se alimentan de los líquidos tisulares durante varios días mientras permanecen adheridas.

Ciclo de vida •

Muestreo •

El muestreo puede ser innecesario, ya que el intenso color de los ácaros, junto con los antecedentes, son hallazgos diagnósticos suficientes con propósitos terapéuticos.

•

Cuando sea necesario, efectuar una extracción cuidadosa de los ácaros o de costras con ácaros adheridos y colocarlos en un pote con alcohol.

•

Los ácaros son frágiles y deben ser manipulados con cuidado.

Examen •

Colocar los ácaros sobre un portaobjetos, agregar una gota de agua o alcohol y cubrirlos con un cubreobjetos.

•

Examinar bajo el microscopio utilizando baja resolución (40X), y aumentar la resolución según sea necesario para buscar detalles sobre el aspecto del ácaro.

•

Los ácaros aparecen como anaranjados brillantes, con pelos y con seis patas (fig. 108).

Además del estadio larval, todos los otros estadios tienen vida libre. Las hembras adultas depositan los huevos en el suelo. las larvas emergentes suben sobre las hojas de los vegetales en espen de un huésped apto. Una vez fijados en el huésped, se alimentan durante varios días antes de caer y mudar al primer estadio ninfaL En los climas templados, hay una sola generación por año, y las larvas aparecen a finales del verano o comienzos del otoño. En los dimB calurosos, puede haber varias generaciones por año.

Enfermedades de transmisión vectorial las garrapatas. pulgas y otros insectos presentes en los perros y los gatos son indeseables, pero al menos son visibles, mientras que las infestaciones que éstos pueden transmitir no lo son. La primera evidencia de infestación puede producirse cuando la mascota afectada manifiesta una enfermedad sistémica. El cuadro patológico causado por estas infestaciones es muy variado: algunos son patógenos principales para los animales, mientras que otros son bien tolerados pero pueden causar graves enfermedades en las personas. Las infestaciones también representan un amplio rango de microorganismos desde helmintos hasta rickettsias. De esta manera, es posible especificar la enfermedad como "enfermedades caninas o felinas transportadas por vectores".

las primeras infestaciones de esta sección son transmitidas por insectos:

BortoneUa henseJae y especies relacionadas Thelazia callipaeda Dirofilaria repens Leishmania spp y 'las siguientes son infecciones transmitidas por garrapatas: Ehrlichia canís Anoplosma phagocytophilum Rickettsio rickettsii

BorreJia burgdorferí Bobes;o canis Hepatozoon can;s Cytouxzoon fe/is

Sartonella henselae Enfermedad del arañazo del gato

•

En las personas, es usual la presentación inicial de enrojecimiento edema en el lugar del arañazo, seguido por linfoadenopatla.

Presentación clínica

•

En algunos individuos,las consecuencias de la infección pueden ser más graves, y en individuos inmunocomprometidos puede incluir endocarditis y angiomatosis bacilar.

• •

Un porcentaje de gatos tiene Bartone/la spp (fig. 110) sin manifestar ningún signo clínico, Los caninos pueden ser portadores

de Bartone/la spp sin signos

Bartonel/a spp puede causar enfermedad en perros y gatos y. en particular en los primeros, puede presentarse como coinfección concurrente con patógenos transmitidos por garrapatas.

clínicos.

•

•

Rara vez, los felinos pueden manifestar signos no patognomónicos como uveítis, enfermedades del riñón o de las vías urinarias o fiebre.

•

La infección en los perros puede estar asociada con endocarditis y signos mal definidos que incluyen pérdida de peso, languidez y anorexia.

Historia relevante •

Puede haber antecedentes de infestación con pulgas (fig. 1 1 1), ya que éstas son las responsables de la transmisión de la infección entre gatos, probablemente por vía indirecta mediante materia fecal de pulgas que contiene la bacteria.

•

En los gatos,la infección con B.henselae es más común en animales jóvenes, gatos infestados con pulgas y gatos en refugios o extraviados.

•

La infección en los perros con Bartone/la spp (fig. 112) puede estar asociada con infección transmitida por garrapatas.

•

En los Estados Unidos, los coyotes han mostrado naturales de B. vinsonii (subespede berkhoffii).

ser reservorios

Importancia •

Aunque Bartone/la spp parece normalmente no patogénico en los animales de compañia, es causal de enfermedades en las personas, principalmente en los niños.

•

La infección en las personas es conocida como la enfermedad del arañazo de gato, ya que suele ser contraída después de un arañazo. Se piensa que las garras del gato pueden haberse contaminado con materia fecal de pulgas que contiene las bacterias.

y

El diagnóstico en los animales puede ser un desafio ya que. en parte. los signos clínicos pueden ser poco especfficos, puede haber una coinfección. la única evidencia de la enfermedad puede ser serológica, y muchos animales seropositivos pueden no mostrar signos cllniccs. Puede ser necesario utilizar la respuesta al tratamiento anti bacteriano como una ayuda para la confirmación del diagnóstico.

Muestreo •

Se toma una muestra de sangre para serología (en tubos simples). para PCR (en tubos con EDTA) o para cultivo (tubos para lisis de sangre). Como alternativa, se puede hacer una biopsia de las lesiones sospechosas o de los nódulos linfáticos.

Examen •

Hay varias pruebas serológicas, como IFAT,la cual demostrará la exposición a la infección pero no necesariamente una infeccion concurrente. Bartone/la spp puede ser cultivada en agar sangre. pero el tiempo de cultivo es prolongado y puede llevar 14 días o más. El aislamiento se puede lograr mejor con el precongelamiento a --80°C y la incubación en una atmósfera con 5% de dióxido de carbono. Las colonias son pequeñas (aproximadamente 0,5-2 nvn y han sido descritas con un aspecto blanco-plateado, mucoideo y superficie lisa o rugosa. Las colonias con aspecto rugoso tienden a formar un hoyo en el agar por debajo de la colonia. Como alternativa, se puede examinar una muestra por PCR.

Thelazia callipaeda la infestación con una especie, TheJazia callipaeda, es endémica en Italia, Asia y la Federación Rusa, mientras que una segunda especie, Thelazia cojfomiensis, se encuentra en el oeste de los Estados Unidos.

Presentación clínica Signos clínicos

Diagnóstico diferencial

la infestación puede ser subclínica o puede estar asociada a signos clínicos:

Otras causas de estos signos clínicos en los ojos de perros y gatos.

Epifora..

O O O O O

Importancia

Descarga mucopurulenta. lagrimeo.

La infestación puede afectar a las personas. pero no es probable que los perros o gatos infestados constituyan un riesgo directo.

Conjuntivitis.

La thelaziosis está, en la actualidad. bajo investigación activa, por ejemplo, para comprender el ciclo de vida y los vectores involucrados en la transmisión.

Opacidad comeal. Ulceración corneal.

•

Historia relevante

La infestación producida en Europa Occidental parece limitarse a Italia.

Cualquier edad y sexo. Caninos y felinos que hayan visitado o hayan vivido en Italia u otras áreas endémicas.

En un estudio se documentó que el 23% de los perros del norte de Italia y el 42% de los perros del sur de Italia son portadores de la infestación. Los zorros también pueden estar infestados.

la infestación aparece como no estacional, por lo que puede presentarse en cualquier momento del año.

Thelozia calli-paeda en Europa

j'

¡

Thelazia callipaeda Diagnóstico laboratorial Muestreo Los parásitos se pueden observar sobre la superficie de la córnea (figs. 114 Y 115) aunque pueden estar en la zona del canto medial ocultos por el tercer párpado. Pueden ser extraídos estirando con suavidad el tercer párpado y removiéndolos con un hisopo estéril.

Examen •

Es casi innecesario examinar el parásito, ya que es poco probable que otro gusano pueda ser recuperado desde la superficie del ojo en perros y gatos. Los parásitos son delgados, de color blanco o amarillento, y las hembras pueden medir hasta 17 mm. La cola del macho es muy enrulada.

Fig. 114 Thelazia callipaeda sobre la superfide de la córnea de un canino.

Fig. 116 Cido de vida putativo: se cree que una o más especies de moscas. incluyendo la Musca domestica (aquí mostrada), están involucradas en ir transmisión. Las larvas L/ son recogidas por la mosca desde el ojo y bep se desarrollan hasta el estadio L3 dentro de la mosca. Luego, las mclISCB depositan las larvas L3 en los ojos. Estas permanecen en la superficie .. ojo y se desarrollan en parásitos adultos en unos 13 a 25 días despues • la in(estadón.

Dirofilorio repens ~rio repens es una de las cuatro filarías conocidas que infectan a los :»errOS en Europa. No es tan conocida como los parásitos cardíacos nm' ría imnvtis, probablemente debido a que es menos patogénica que O, mmros. Sin embargo, es una zoonosis que se produce desde la zona central de Francia hacia el sur de Europa. También se encuentra -en Asia y frica.

Presentación clínica Signos clínicos Se observa un nódulo subcutáneo pequeño y no doloroso. causado !a. presencia de un parásito adulto (fig. f f 7).

por •

la loaJizadón de la "hinchazón" puede variar con el tiempo, a medida que eJ parásito se mueve a través del tejido subcutáneo.

•

los parásitos pueden encontrarse músculos durante una cirugía.

en el tejido conectivo de los

la nfestac:i6n puede causar dermatitis los perros.

pruriginosa localizada en

Fig. 11 7 Nódulo causado por una Dirofifaria repens adulta localizada en el subcutáneo.

Importancia Historia relevante

Los nódulos pueden preocupar al dueño.

Antecedentes de un viaje o residencia en la zona central o sur de Francia, o en otros países del Mediterráneo.

Diagnóstico diferencial Otras causas de hinchazón subcutánea.

las microfilarias en la sangre deben diferenciarse de aquélla más patogénica D. lJllITlitis Y de la menos importante Dipetalonema spp (sin.AconthocheiJMema spp).

Dirofilaria repens es zoonótica, aunque la infestaci6n no puede ser transferida directamente del perro al hombre. La infestación en las personas suele provocar n6dulos subcutáneos y los parásitos pueden alcanzar, en ocasiones, localizaciones más profundas, incluyendo los pulmones. En todo el mundo se han registrado más de 350 casos en humanos (véase el mapa que está debajo para el registro de casos en Europa).

La microfilaria debe ser diferenciada de las otras filarías.

Dirofilaria repens en Europa B mapa utilizó los registros de casos en humanos para ilustrar la distribución a lo largo de Europa.

•

Sobre f 00 casos

D 5f-fOOcasos D f 1-50 casos

Dirofilaria repens Diagnóstico laboratorial Muestreo •

Durante exploraciones quirúrgicas, el parásito adulto puede ser removido en su totalidad u obtener secciones de éste. Las muestras pueden ser preservadas en una solución de formaldehído al 5% o alcohol.

•

Microfilarias: se puede recoger una muestra de sangre en EDTA o heparina.

Examen •

El parásito adulto es largo y blanquecino sin ninguna característica muy evidente para su identificación. Los machos miden unos 5-7 cm, mientras que las hembras alcanzan una longitud de 10-17 cm. Bajo aumento con una lupa estereoscópica (1OX-40X), se puede observar que los machos poseen una serie de papilas ordenadas en forma de V y dos espfculas desiguales en su extremo caudal.

•

Microfilarias: para mejorar las posibilidades del hallazgo de microde sangre deben procesarse para remover otros componentes celulares de la sangre. Esto puede ser llevado a cabo por medio de la técnica de Knott.

1I

I I

filarias, las muestras

•

Técnica de Knott

O

El proceso requiere I mi de sangre y cualquier exceso de sangre debe ser conservado por si es necesario enviar una muestra a un experto para la identificación de la microfilaria.

O Agregar I mi de sangre (heparinizada o en EDTA) a 9 mi de una solución de formaldehfdo al 2% en un tubo para centrífuga. Efectuar un mezclado completo.

O El tubo para centrífuga se lleva a 1500 rpm durante 5 minutos. Se descarta el sobrenadante.

O

Se coloca el sedimento sobre un portaobjetos, gota de azul de metileno y se lo mezcla bien.

O Se coloca un cubreobjetos

se agrega una

y se examina la muestra en forma

Fig. 120 Microfi/aria de D. repens: la diferenciación con otros espeoes de microfi/arias se puede llevar a cabo por medio de tinciones poro examnr .. localización de lo aaividad de la fosfatasa ácida en /0 larva.

sistemática.

O Las microfilarias tienen un largo de 207-360 micras por 5-8 micras de ancho (fig. 120). Hay superposición de tamaños con otras microfilarias de forma tal que la confirmación de la identidad es una habilidad de un especialista. Cuando sea necesario, las muestras se pueden enviar al segundo autor para la diferenciación o se pueden consultar textos especialistas.

O

Se han descrito pruebas inmunológicas que se pueden utilizar para diferenciar entre infecciones por D. immitis y por D. repens con una muestra de sangre.

Ciclo de vida El ciclo de vida es muy similar al de Dirofi/aria immitis. Los mosquitos (por lo general, Aedes spp aunque también pueden ser Cu/ex spp) se infestan cuando ingieren microfilarias al alimentarse de un perro infestado. Las microfilarias se desarrollan dentro del mosquito a L3,Ia cual infecta a un nuevo huésped cuando el mosquito se alimenta.

I '.1

Fig. 12 1 Los mosquitos aaúan como vectores de D. repenso

Leishmonio

spp

Presentación clínica Signos clínicos la infestación por Leishmania spp puede ser difícil de diagnosticar, ya que se presenta de muchas formas diferentes, dependiendo de la progresión de la enfermedad y de la combinación de los órganos afectados. Los signos clínicos más precoces pueden ser pequeñas áreas de alopecia ulceradas o costrosas, que pueden aparecer en sitios de trauma menor que no cicatrizan normalmente. Como alternativa, durante el inicio de la infestación, el perro puede mostrar fiebre, anorexia y agrandamiento de los linfonódulos. Hacia el final, en los perros infestados los signos clásicos son: Pérdida de masa muscular. Letargo. -

Áreas de alopecia no pruriginosa y costras, generalmente con un anillo de alopecia alrededor de cada ojo, a los que se denomina "anteojos" (fig. 123).

Fig. 122 La incubación puede ser prolongada de forma tal que un perro puede parecer normal a pesar de estar infestado.

Fig. 123 Región de los ojos de un perro infestado con Leishmania spp, que muestro la típica alopecia en antifaz alrededor de los ojos.

Fig. 124 Nariz de un perro que .muestra úlceras asociadas a una infestación por Leishmania.

Fig.125 La infestación por Leishmania puede causar una variedad de signos oculares, en partiOllar endoftolmitis.

E.Iperro puede tener úlceras o lesiones cutáneas que no cicatrizan (figs. 124 Y 126). Los perros pueden mostrar signos oculares (tig. 125) y, en ocasiones, neurol6gicos. Crecimiento

exagerado de las uñas (fig. 127).

Linfonódulos superficiales que aumentan de tamaño. Puede haber signos de Insuficiencia hepática o renal. Pueden estar presentes tales como diarrea.

poliartritis y signos gastrointestinales

Epistaxis. Cuando los gatos tienen leishmaniasis pueden manifestar signos cutáneos, viscerales o una combinación de éstos.

Historia relevante En casi todos los casos, el perro tendrá antecedentes de haber residido en países del sur de Europa o en un área endémica, I mes o más antes de la presentación.

La presentación puede ocurrir después de 5 años o más una vez que el animal haya dejado el área donde la leishmaniasis sea endémica, ya que los signos clínicos pueden desarrollarse un considerable tiempo después de haberse producido la infestación. Se han registrado varias infestaciones en áreas donde el flebotomo no se presenta, por lo que no siempre hay antecedentes de residencia en un país donde la leishmaniasis sea endémica. El dueño puede indicar una variedad de síntomas, dependiendo los órganos principalmente afectados.

de

Fig. 126 Ulceras alrededor del ojo de un perro asociadas con una infestación por Leishmania spp.

Diagnóstico diferencial Hay un amplio rango de posibles diagnósticos diferenciales. de acuerdo con los órganos afectados por los organismos Leishmania o por los inmunocomplejos circulantes. Puede haber signos de compromiso

multisistémico.

Fig. 127 Garra de un perro con lesiones ulcerativas-proliferotivas.

®

Leishmania spp Importancia (f¡g. /28).

•

La leishmaniasis es una zoonosis importante

•

En las personas, la infestación con Leishmania infantum (la especie encontrada en Europa), ocurre con mayor frecuencia en inmunocomprometidos, tales como VIH positivos, y en bebés y niños.

•

Eltratamiento de los perros infestados es prolongado y rara vez da lugar a una cura parasitológica total, pero puede producir una cura sintomática.

•

Los dueños que piensen en llevar a su perro de un área no endémica hacia el área del Mediterráneo u otras zonas endémicas, deben conocer esta enfermedad para poder tomar decisiones informadas.

•

Las personas de un área no endémica que estén considerando adoptar un perro de un país del Mediterráneo o de otras áreas endémicas, deben conocer el riesgo de que el perro pueda estar infestado. Algunos animales de áreas endémicas pueden estar infestados aunque parezcan sanos. Luego, el balance entre la infestación y el huésped puede cambiar de forma tal que se manifiestan los signos clínicos de la infestación.

•

•

Fig. /28 Mano que muestra una lesión causada por Leishmania spp.

En áreas endémicas, los perros presentan un mayor riesgo si viven en ambientes externos durante la estaci6n del flebotomo. Los repelentes o insecticidas pueden ayudar a disminuir el número de picaduras en las áreas endémicas.

•

Se recomienda que cuando sea necesario dormir en el exterior se haga en lugares abiertos, altos y ventilados, y secos. De esta manera, se mantiene alejado de los lugares donde es probable que se presente el flebotomo.

•

La infestaci6n puede ser transmitida por transfusión de sangre o por trasplante de 6rganos. Los perros infestados también pueden ser susceptibles a otras festaciones tales como demodicosis generalizada.

10-

En los casos clínicos es necesario evaluar la salud general, inclll)'endo la funci6n renal, para proporcionar un pron6stico apropiado. Se puede administrar un tratamiento de soporte junto con la terapa parasiticida cuando los dueños opten por realizar un tratamientO.

Areas de leishmaniasis en Europa

Leishmania spp Ciclo de vida

Diagnóstico laboratorial Muestreo No hay una sola prueba que diagnostique los casos.

leishmaniasis en todos

Se puede tomar una muestra de sangre en EDTA para PCR (reacción en cadena de la polimerasa) y de suero para IFAT (prueba de detección de anticuerpos por inmunofluorescencia indirecta). las siguientes técnicas de muestreo son apropiadas cuando las pruebas en sangre han dado negativas o con resultados no concluyentes, pero los signos clínicos son compatibles con leishmaniasis: Aspiración de un linfonódulo: inyectar una pequeña cantidad de solución salina estéril en el linfonódulo poplíteo. Masajear el linfonódulo y luego retirar el líquido. La muestra puede ser preservada en EDTA para PCR o ser examinada en busca de amastigotas. Punción de médula ósea esterna!. Esta puede ser remitida en EDTA para PCR. Biopsia de una lesión cutánea: preservarla en una solución de fonnaldehído amortiguado neutral al 10% para examen histológico.

Fig. 130 En Europa, Phlebotomus spp (mosca de la arena) es el responsable de la transmisión de la leishmaniasis de un animal a otro o al humano. La mosca hembra se infesta cuando se alimenta de un animal infestado. Dentro del intestino de la mosca, la Leishmania cambia a una forma flagelada o promastigote.

Examen

Fig. 131 Los perros se infestan cuando una mosca infestada se alimenta de éstas. Dentro del perro, la Leishmania se introduce en un macrófago, donde sobrevive y se multiplica. Algunos perros, aparentemente dependiendo de la (Unción de sus células T, evitaron que se establezca la infestación, mientras que en otros individuos la infestación se diseminará por todo el cuerpo, estableciéndose en linfonádulos y otros órganos.

las muestras de sangre pueden ser remitidas para detectar anticuerpos anti-Leishmania y/o para pruebas de PCR para la detección deADN de leishmania sp. Una u otra prueba pueden dar negativas, aun en animales infestados, por lo que se recomienda realizar ambas pruebas en forma simultánea o consecutiva. Aspiración de Iinfonódulos: se coloca el material obtenido sobre un portaobjetos y se hace un extendido, permitiendo su secado al aire para luego fijarlo con etanol y teñirlo con Giemsa (f¡g. 132). Las pequeñas amastigotas contienen dos áreas de coloración oscura: el núcleo y el cinetoplasto, desde donde se desarrolla el flagelo. Con cierta experiencia, se puede realizar una identificación apropiada. las muestras de la biopsia se pueden preparar para la evaluación histológica por medio de tinciones y la correspondiente búsqueda posterior de las amastigotas. Para mayor información acerca del diagnóstico y el tratamiento consultar (wwwJeishmaniasis.info).

Fig. 132 En los perros, la Leishmania adopta una forma na flagelada, ronocida como amastigota. Esta ilustración muestra amastigotas dentro del citoplasma en un frotis teñido con Giemsa.

®

Infecciones transmitidas por garrapatas Las garrapatas son responsables de la transmisión de numerosas enfermedades que varfan según la región geográfica y la especie de garrapata. En general, la infección pasa por medio de la saliva a medida que la garrapata se alimenta. Hepatozoon canis es la excepción, ya que se transmite cuando un perro ingiere una garrapata infectada. Los estadios infectivos están presentes en la sangre y las garrapatas adquieren la infección cuando se alimentan. La comprensión de las infecciones transmitidas por garrapatas está mejorando con rapidez, ya que ésta es un área de investigación muy activa. Igualmente, las enfermedades están cambiando su distribución e importancia. Algunas de las infecciones presentadas en esta sección son causadas por protozoarios, por lo que merecen ser incluidas como parásitos en el sentido clásico. Sin embargo, las infecciones rickettsiales y por Borre/ia spp, que son parásitos sólo en una amplia definición de la palabra. se incluyen aquf para proveer una visión más completa de las infecciones transmitidas por garrapatas. Las infecciones virales. como las que causan encefalitis transmitida por garrapatas, no serán consideradas.

Rickettsiastransmitidas por garrapatas, incluidaEhrlichia Las rickettsias son un grupo de pequeñas bacterias intracelulares gramnegativas.A pesar de que las enfermedades que ocasionan son distintas a simple vista, en general causan fiebre en el estadio agudo de la enfermedad. Existen nuevas técnicas de investigación, tales como peRo que facilitan la investigación de los microorganismos y esto permite la identificación de nuevos agentes y la reclasificación de algunos viejos. En la tabla I se muestran las rickettsias transmitidas por garrapatas encontradas con frecuencia en perros y gatos..

Control de la garrapata Prevención de mordeduras y de las enfermedades transmitidas por garrapatas Evitarlas áreas de alto riesgo como bosques,montes, prados o matorrales (incluidoslos parques), en especialdurante la época que va desde la primavera hasta el otoño en áreas templadas,cuando la actividadde la garrapata es más alta.Sinembargo,lasgarrapatas se agarran y alimentanen cualquier época del año, en especialen las áreas tropicales y subtropicales.RhiPicephalus sanguineus e l. canisuga se encuentran en áreas que los perros frecuentan,como las perreras.

Infecciones transmitidas por garrapatas: Ehr/ichia canis Anaplasma phagocytophi/um Rickettsia rickettsii Borrelia burgdorferi

Babesia canis Hepatozoon canis Cytauxzoon fe/is

Usar un acaricidalrepelente de garrapatas eficaz. Aplicar los productos antes de cualquier exposición y volverlos a aplicar en forma regular siguiendo las instrucciones del prospecto. Revisar el animala diario y extraer las garrapatas encontradas.

Tabla 1:Resumen de algunas enfermedades rickettsiales Especie de Rickettsia

Transmitida

por

en

perros y gatos Células parasitadas en el huésped

Huésped

Ehrlichia canis

Rhipicephalus sanguineus

Perro (gato)

Ehr/ichia ewingii

Amblyomma americanum

Perro

Ehrlichia chaffeensis

Anaplasma phagocytophi/um (Ehrlichia phagocytophila, Eequi y agentes de la ehrli-

Amblyomma americanum

Fiebre,depresión , Pancitopenia tropical letargo,pérdida de peso. canina,ehrlichiosis meMonocitos y linfocitos tendencia a hemorragias nocitica canina en algunosanimales Neutrófilos y eosin6filos

Humano (perro)

Monocitos y macrófagos

1,":

.,

Ric/ 39°q. Anorexia.

Examen

Depresión.

•

Letargo. Esplenomegalia. Puede haber claudicación. Diarrea.

A. phagocytophilum puede observarse en los neutrófilos o los eosinófilos en un frotis sanguíneo teñido con Wright o Giemsa. El examen de las células tomadas de la capa flogístíca puede proveer mayor sensibilidad. Las muestras de sangre pueden como IFA o ELlSA. El Centro de los Estados Unidos considera que muestras pares con IFA, tomadas más, es diagnóstico.

Signos neurol6gicos en algunos animales.

Historia relevante

ser utilizadas para evaluaciones Control de las Enfermedades de un aumento de ...veces o más en con un intervalo de ... semanas o

La ehrlichiosis granulocitica ha sido identificada en Europa, en particular en Suecia, y en los Estados Unidos.

Ocurren

Animales de cualquier edad y sexo.

plasma o especies relacionadas, por lo que puede ser necesario

En áreas endémicas, la enfermedad puede observarse en los ani-

realizar otras pruebas cuando sea importante tivo de la especie.

males jóvenes, a medida que son expuestos mordedura de las garrapatas.

por primera vez a la

B animal habrá residido o habrá visitado áreas en las que la ehrllmiosis es endémica durante la época del año en las que las garrapatas están activas (por lo general, desde la primavera hasta el otoño en climas templados).

reacciones

cruzadas hasta cierto punto con otros Anael diagnóstico defini-

•

PCR es una prueba diagnóstica sensible y puede detectar ción cuando la microscopia da resultados negativos.

•

En el examen hematológico junto con leucopenia.

puede observarse

trombocitopenia

Una garrapata puede haber estado sobre el animal unos lOa 15 días antes de la presentación de los signos clínicos. Puede haber evidencia de un control inadecuado de las garrapatas en el momento en que el perro o el gato haya estado en un área endémica. Puede haber evidencia de que el perro o el gato haya pasado un tiempo en h."gares como áreas boscosas, que es el hábitat ideal para la garrapata.

Diagnóstico diferencial Los signos clínicos pueden no ser específicos, por lo que se sugiere realizar el diagnóstico basándose en una combinación de signos clínicos, PCR o positividad hematológica de A. PhagocytoPhi/um y niveles de anticuerpos. Pueden ocurrir coinfecciones.

Importancia En general, es una infección más leve que la causada por E canis, pero produce una variedad de signos clínicos durante la fase aguda. Es menos probable que alcance la cronicidad, en comparación con E. canis. Sin embargo, la reaparición de la infección puede ocurrir si el animal es posteriormente inmunosuprimido en los meses siguientes a la presentación de la infección.

Prevención La ehrlichiosis granulocítica normalmente se transmite por la mordedura de garrapata, de forma tal que la prevención se basa en la detención del agarre y la alimentación de las garrapatas. •

En las áreas endémicas, los dueños deben tener presente realizar el control de las garrapatas durante todo el periodo de actividad de éstas. Aquellos que planifiquen un viaje a un área endémica deben saber la importancia de un control adecuado de las garrapatas. Véase la sección sobre control de las garrapatas en la página 54.

Otras especies A platys se ha observado en Europa. América del Norte y del Sur, Asia y Australia. Los perros pueden infectarse y los signos clínicos induyen fiebre y anormalidades hemorragíparas.

®

la infec-

Anaplasma phagocytophilum en Europa

Ridc.ettsia rickettsi; (Fiebre manchada de las Montañas Rocosas)

Presentación clínica

La infección con la fiebre manchada de las Montañas Rocosas puede causar la muerte en los perros.

Signos clínicos •

Es una importante zoonosis, aunque no hay una transmisión directa de los perros a las personas. Sin embargo, si las garrapaas infectadas se extraen sin cuidado del perro, éstas pueden infesar a la persona. Por lo tanto, es importante extraer y desechar las garrapatas con cuidado.

Fiebre (> 39"C). Anorexia. Depresión. Letargo. Poca predisposición

para realizar movimientos y envaramiento.

En las personas, los slntomas incluyen fiebre, malestar, dolor de cabeza, vómitos, signos neurológicos y la erupción cutánea característica (www.cdc.gov).

Edema. Linfadenopatfa. •

Signos neurológicos.

Historia relevante •

fiebre manchada de las Montañas Rocosas ocurre en los Estados Unidos y, ocasionalmente, en Canadá y Sudamérica.

•

Animales de cualquier edad o sexo.

•

Se pudo haber visto una garrapata sobre el animal antes de que se manifestaran los signos clinicos.

•

Puede haber evidencia de un control inadecuado de las garrapatas.

•

Puede haber evidencia de que el perro haya pasado cierto tiempo en un lugar bosocso, que podria ser ideal como hábitat de las garrapatas.

Las personas pueden morir por la infecci6n, y es mortal en alrededor del 20% de los casos no tratados.

•

Hay varias personas infectadas cada año. En 2003, se registraron 1091 infecciones en personas, y el pico de la incidencia se dio en los meses de Agosto a Diciembre, aunque esto puede no ser IIR patr6n constante ya que la incidencia depende de la actividad estacional de la garrapata.

La

Diagnóstico diferencial •

•

Los signos clinicos pueden no ser especificos en un primer momento, pero se van volviendo más evidentes en las personas una. vez que aparece la tlpica erupci6n cutánea. Esto último no ocurre en los animales, pero los signos clínicos junto con las pruebas serol6gicas, la localizaci6n geográfica y el momento del año ayudarán en el diagnóstico. Pueden producirse coinfecciones.

Prevención •

La fiebre manchada de las Montañas Rocosas se transmite nOlTlllll.- mente por la mordedura de garrapatas, por lo que la prevención depende de la detención de la fijacl6n y la alimentaci6n de las prrapatas.

•

En áreas endémicas. en particular en las zonas rurales y las áreas suburbanas, los dueños deben ser conscientes de que tienen que llevar a cabo un control de las garrapatas durante todo el período de actividad de éstas. Los dueños que planifican viajar a zonas endémicas deben conocer la Importancia de un control adecuado de las garrapatas.

•

Véase la secci6n sobre control de garrapatas en la página 54.

Fig. 140 Infección humana con la, fiebre manchada de las Montañas Ro-

Fig. /41 La infección se transmite por garrapatas,

cosas.

principalmente Dermacentor andersoni.~n los Estados Unidos.

Rickettsio rickettsii Diagnóstico laboratorial uestreo Si; recoge

na muestra de sangre para serología o con EDT A para

?G Se ~ es:¡ ::lUSO

bIOpSiade la piel para evaluar las células endoteliales oe evi nar. El citoplasma de cada célula está /leno de esquizontes (flecha).

Areas de Cytauxzoon

Cytauxzoon felis se presenta esporádicamente en el sur y en el sureste de los Estados Unidos. Por lo general. se asocio con picos estacionales de Jo actividad de las garrapatos. También se han documentado casos en España y Africa.

i;,

-...'.

felis

Parásitos internos 8 resto del libro contiene información acerca de parásitos que habitan en localizaciones internas dentro del huésped. los parásitos contemplados

son:

Los trematodos Los cestodos (o gusanos Planos) Luego, se describen los nematodos o gusanos redondos. Hay un importante número de nematodos que habitan el tracto gastrointestinal y la primera sección sobre los nematodos está dirigida a aquellos que presentan esta localización, seguidos de los que viven en el tracto respiratorio o el corazón. Cada uno de estos grupos de parásitos es presentado al comienzo de la sección relevante. La metodología diagnóstica para muchos de los helmintos es muy similar, por lo que para evitar repeticiones, el lector encontrará una sección que describe el Diagnóstico de las infestaciones por helmintos en la página 70.

La sección final se dedica a aquellos parásitos protozoarios que no fueron tenidos en cuenta en la sección de transmisión por vectores.

Diagnóstico de las infestaciones por helmintos Principios de flotación y sedimentación de los huevos Cuando los huevos de los parásitos están suspendidos en un líquido con una densidad especffica mayor que la de los huevos, éstos flotan hacia la superficie. Los huevos de los nematodos y los cestodos flotan en solución salina con densidad específica que está entre 1,IO Y 1,10. Los huevos de los trematodos, que son mucho más pesados, sólo flotan en una solución cuando la densidad específica es de 1,3-1,35. La solución de flotación utilizada para los huevos de nematodos y cesto dos suele ser una sal de cloruro de sodio saturada o una solución suerosa, con una densidad especffica de 1,2. Para los huevos de Fasciola, las soluciones saturadas de sulfato de cinc o de cloruro de cinc pueden ser utilizadas, pero el examen debe ser llevado a cabo con rapidez, ya que los huevos se distorsionan en las soluciones muy concentradas. Para los huevos de trematodos, los métodos de sedimentación son más sensibles que las técnicas de flotación.

Técnicas de flotación Rápida exploración en busca de huevos y ooquistes de los parásitos. Se coloca una pequeña cantidad de materia fecal dentro de un recipiente plástico utilizando una varilla de madera. El recipiente se llena en 3/4 partes con la solución saturada de cloruro de sodio y se emulsifica con la varilla de madera. Esta mezcla se vuelca gota a gota en un tubo hasta que se forme un menisco en su boca y se coloca un cubreobjetos a modo de tapa. Después de 3 minutos, se retira el cubreobjetos y se coloca sobre un portaobjetos para así examinarlo en busca de huevos con un aumento de 10X. Esta es una búsqueda rápida de huevos de Toxocara, Toxascaris,Taenia, ancilostomas y ooquistes de Isospora. En ocasiones, un frotis directo húmedo es útil para la búsqueda de quistes de Giardia y larvas de parásitos pulmonares en gatos y perros (también véase la técnica de Baermann). Los frotis directos se realizan mediante la mezcla de una pequeña cantidad de materia fecal con una gota de solución salina fisiológica sobre un portaobjetos y se cubre con un cubreobjetos.

Cuantificación de los huevos de parásitos: técnica de McMaster modificada Para controlar la intensidad de la infestación (por ej., después de un tratamiento con medicamentos) puede ser útil cuantificar la parásitosis estimando el número de huevos por gramo de materia fecal. Esto se puede lograr por medio de la flotación con sales y el recuento de huevos en las cámaras de un portaobjetos McMaster (fig. 163). Se pesan 3 g de materia fecal y se baten con 42 mI de solución saturada de sales, utilizando bolitas de vidrio (si es necesario) para romper la materia fecal. El Hquido se filtra a través de un filtro para té y se coloca en un recipiente. La solución salina filtrada debe estar bien mezclada. Ambos lados de la cámara de McMaster se llenan con rapidez con dos muestras separadas tomadas del recipiente utilizando una pipeta de Pasteur. Utilizando el objetivo de IOX se hace foco sobre la grilla o sobre una burbuja de aire (cualquier huevo presente estará en el mismo plano focal). Se hace el recuento de huevos dentro de la grilla a ambos lados de la cámara y se multiplica por SO para obtener el número de huevos por gramo de materia fecal.

Técnica de sedimentación y centrifugación

Balancear la centrífuga y luego llevarla a 3000 rpm durante 2-3 minutos (si no se dispone de una centrifuga, dejar el tubo parado a la luz del sol durante un mínimo de 30 minutos). El tubo deberla contener un depósito (en la parte inferior), un gran volumen de liquido sucio en el centro y un estrato lipldico superior con desechos. Aflojar esta capa superior de todo el borde interior del tubo mediante el uso de una varilla y de un movimiento volcarlo a un cesto de basura. El depósito debe permanecer en la parte inferior del tubo. Batir el depósito y pipetear una gota sobre un portaobjetos, aplicar un cubreobjetos y examinar el preparado resultante. Si el depósito en el tubo es demasiado espeso. se agrega una gota de solución salina y se mezcla antes de tomar la muestra para examinar.

Sedimentación para huevos de trematodos Colocar 1 g de materia fecal en un receptor Universal, agregar 20 mI de agua. Emulsificar por completo utilizando una espátula de madera. Volcar con suavidad todo el líquido sobre la superficie de un tamiz de 75 mm. Descartar el filtrado. Los huevos de los trematodos quedarán retenidos en la malla del tamiz ya que miden, aproximadamente, 150 x 90 mm. Lavar el contenido de la superficie del tamiz con un delgado chorro de agua de una manguera con espita. De esta forma, se lavan las particubs pequeñas a través de la malla del tamiz. Descartar el filtrado. Invertir el tamiz y lavar el material retenido (el cual contiene los huevos de los erematodos) con un delgado chorro de agua y volcarlo en un gran recipiente (de un volumen total de 300 mi). Para extraer las grandes particubs actualmente presentes, verter con cuidado el contenido del recipiente sobre la superficie de un tamiz de 212 mm, y recoger el filtrado en OtrO recipiente (debido a su tamaño, los huevos pasan a través de esta ~ malla). Lavar la superficie del tamiz con un fino chorro de agua volcando el resultante hacia el mismo recipiente (hasta un volumen aproximado de 300 mi). No invertir el tamiz y lavar el material retenido volcándolo hacia el recipiente, ya que contiene las grandes particulas. Dejar que el contenido del recipiente repose durante 15 minutos y volcarlo con cuidado al sol ·enadante. Luego, volcar el sedimento en una placa de Petri que ten: . marcados cuadrados en la parte inferior. para ayudar a contar los lu evos, Agregar una gota de yodo, que les da un color amarillo oscuro a los huevos y examinar bajo alta resolución con una lupa estereoscópica. Nota: Una vez concluido el examen, es muy importante hacer un completo lavado de cada tamiz utilizado antes de evaluar una nueva muestra. Esto es porque los huevos pueden quedar alojados temporariamente en la superficie del tamiz y conducir así a falsos positivos.

Técnica de Baermann para el aislamiento de larvas de parásitos pulmonares en felinos y caninos La materia fecal se coloca en un filtro de té en un embudo cubierto con una gasa o lln filtro de leche. Se acopla al embudo una tubuladura de goma con una pinza de cierre, el cual se sostiene en una pinza para que quede parado. Se vuelca agua en el embudo de forma que sólo cubra la materia fecal. El aparato asl montado se deja toda la noche para que las larvas migren desde la materia fecal a través de la gasa y caigan a" base del embudo. Las primeras gotas de agua se examinan en una • estereosc6pica con alta resolución.

Técnica de la concentración con formol-etilacetato En un recipiente que contenga bolitas de vidrio se agregan 10-12 mI de una solución salina con formol y una muestra de materia fecal del tamal\o de un guisante con una varilla de madera. El recipiente se debe cerrar en forma hermética y se debe batir vigorosamente para emulsificar la muestra. Aproximadamente 7 mI de la mezcla se tamizan a través de un filtro de .té plástico .~acia un rubo para centrifuga de 15 mi (los tubos plásticos se disuelven en el éter o el etil-acetato). Luego se agregan 3 mi de etil-acetato. Se cubre la boca del tubo con un dedo enguantado y se bate vigorosamente durante 30 segundos, invirtiéndolo periódicamente. NOTA: con el método original con éter se producía mucho gas volátil, el cual tenía que ser deliberada y cuidadosamente liberado. El etil-acetato no es tan volátil pero puede producir cierta presión. Tener cuidado al sacar el dedo del extremo del tubo.

CDIJ_

Fig. 163 Portabajetos McMaster que muestra las dos cómaras en la parte superior de cada cámara (flechas). Los huews ~ --~" otros nematodos pueden ser cuantif¡cados utilizando este mérDck

®

Trematodos tos trematodos son parásitos p lanos. Hay un gran número de trematodos con ciclos de vida variables. algunos de los cuales son muy complejos. que pueden afectar principalmente a los perros pero también a los gatos. Varios tipos son parásitos intestinales del perro o del gato. mientras que otros se presentan en los pulmones, el hígado o la circulación. Algunas especies pueden causar enfermedades en el huésped, mientras que, otras no son patogénicas pero se puede encontrar evidencia de in. festación en el examen de materia fecal. por ejemplo. Algunos pueden infestar a las personas, pero un perro infestado no causa riesgo directo al contacto con las personas. la tabla 2 muestra algunos de los trernatodos encontrados en Europa y 'los Estados Unidos que pueden parasitar perros y gatos.Alaria spp son trematodos intestinales que han sido elegidos como ejemplo para examinar en más detalle,

1',8 mm

L......J Fig./64 Paragonimus sp son tremotodos encontrados en el pulmón.

Fig. 165 Corte histológico del tejido pulmonar de un gato infestado con Paragonimus. Tabla 2: Resumen de algunos trematodos encontrados en. Estados Unidos y Europa que parasitan perros y gatQs .. Parasíto

D·on d e se encuentra I . r .• a íntestación

L ll .. I hué d oca rzacron en e uespe f I rna

Aspecto de los huevos d I teri encontra os en a ma erra r I leca

,

AJarla spp

Intestino delgado

Nanophyetus salmincola

lntestinc delgado

Paragonimus kellicotti

Pulmones

Heterobi/harzia americano

Circulación

Opisthorchis spp

Normalmente, en los conductos biliares del hígado

®

Huevos operculados con contenido granular; miden unos 100 pm

Alaria spp Presentación clínica Signos clínicos •

Alaria spp ((tg. 1660) son trematodos ducen signos clínicos.

intestinales que rara vez pro-

Historia relevante •

El perro vive en un área endémica de Alaria o la ha visitado.

Importancia •

No es probable que sea patógeno para el perro. a menos que se presente en un número muy alto.

•

La infestación puede pasar a los cachorros por la leche de la madre ((tg. /66).

•

Los huevos con huevos un opérculo ros se vean

grandes con un interior granular se podrían confundir de ácaros. Sin embargo. los huevos de Alaria spp tienen y. por lo general. es posible que en los huevos de ácalos brotes de los miembros.

0.33 mm

I

I

Fig. 1660 Alaria spp adulto.

Alaria spp Diagnóstico laboratorial Muestreo Muestra de materia fecal.

Examen Examinar la muestra de materia fecal utilízando un frotis directo o una técnica de sedimentación. Buscar los huevos característicamente

grandes (flg. I66b).

Fig. 166b Huevo de Alaria spp.

Alaria spp en el mundo Fig. 167 Alaria spp. en particular A. olato ' sido registrada en muchas partes del mundo. Los ejemplos se muestran aquí.

20()1, Alaria alata se encontró en zorros en el órea de Dublin. En 1976, se registró una infestación con Alaria alata en el 13% de los zorros en el sudoeste de Gales.

En Canadó y Estados Unidos, Alaria spp se ha presentado ampliamente en

animal~s salvajes, como zorros y lobos. Las personas pueden estar infestadas ,con estadios inmaduros del parásito por comer ranas y víboras mal cocinadas. Se ha documentado una infestación con A. arisaemoides en un caso de anorexia y vómitos en un perro joven.

---

Alorio spp Ciclo de vida de Alaria spp El complejo ciclo de vida de Alaria spp se ilustra a continuación. Otros trematodos tienen huéspedes intermediarios, pero pocos son tan complejos como Alaria spp.

El cie/o de vida multihuésped de Alaria spp comienza como trematado adulto que habita en el intestino delgado de un perro o gato. Los huevos de Alaria pasan con la materia (ecal. El desarrollo de los huevos ocurre en el agua y se desarrolla un mirocidio después de, aproximadamente, 2 semanas. El mil'OCidioinvade luego un carocol paro continuar su desarrollo. Las cercarias, desarrolladas a partir del miroddio, dejan el huésped paro in(estar un renacuajo. Luego

se desarrollan

mesacercarias en el renacuajo.

Las mesocercarios pueden in(estar un amplio rmwo de huéspedes pal'Clténicos,como ranas, VlOoras, lT1CJI'YII(eiOs y OYes. Las mesocelCOrias se liberan cuando el huést>fl final (perros) COIJ1e /o presa in(estada. EstaS dejan el intestino y viajan hada los pulmones, donde permanecen y se desarrollan en mélacercarla. Cuando están completamente desarrollados, ,.an al Intestino a través de la t~~ .y el esófago, para madurar hasta trematocWs adultos.

Cestodos Los cestodos son gusanos planos, y el parásito adulto consiste en una cadena de segmentos o proglótidos que se adhieren al intestino del animal por medio de una cabeza o escólex. Una vez adherido, una pequeña cadena de segmentos comienza a desarrollarse desde la cabeza. Cuando contienen huevos completamente desarrollados, los segmentos más distales maduran gradualmente y se desprenden. Normalmente, estos parásitos tienen un ciclo de vida indirecto con un huésped intermediario, aunque en ocasiones puede haber más. El cestodo inmaduro, o metacestodo, presente en el huésped intermediario, adopta una forma símil-quiste dentro de los tejidos del huésped. La mayoría de los cestodos pueden, por lo tanto, ser controlados al evitar el acceso a los huéspedes intermediarios. Los parásitos planos del intestino que serán tenidos en cuenta en esta sección son:

DiPylidium caninum joyeuxielfa pasqualei Taenia spp Echinococcus granu/osus Echinococcus mu/tilocu/aris Mesocestoides spp

Los pequeños mamíferos actúan como huéspedes intermediarios para algunos parásitos pIanos: los ratones llevan Strobilocercus fascio/aris, el estadio intermedio de Taenia taeniaeformis y el conejo lleva Cysticercus pisiformis y Coenurus seria/is, los estadios intermedios de Taenia pislformis y Taenia serialis, respectivamente. Los ratones, los gerbos y los hamsters pueden infestarse con la forma adulta del cestodo HymenolePis nana. Este es un cestodo interesante ya que puede tener tanto su estadio adulto como el inmaduro en el mismo huésped, permitiendo infestaciones aun en ausencia de un huésped intermediario. También es importante como zoonosis, y las personas pueden infestarse al ingerir los huevos. El cestodo equivalente en las ratas, Hymenolepis diminuta, no representa un gran riesgo para las personas, ya que necesita un huésped intermediario insecto para completar su ciclo de vida y, de esa forma, las personas sólo se pueden infestar al ingerir insectos infestados. Las infestaciones ligeras en los roedores se toleran bien, pero las infestaciones graves pueden conducir a la pérdida del estado general y la obstrucción intestinal. Las muestras de materia fecal se pueden examinar en busca de huevos. Los conejos pueden estar infestados con Cittotaenia ctenoides posterior a la ingestión del ácaro oribátido que llevan al estadio intermedio.

Dipy'idium caninum

Signos clínicos Dipylidium caninum no suele estar asociado a signos cllnicos en el, animal, aunque los segmentos maduros que pasan a través del ano pueden provocar irritación anal y hacer que el perro se refriegue la zona perianal contra el piso. Rara vez. con una infestación muy grave, puede haber signos de alteraciones intestinales. Los dueños pueden notar segmentos móviles que se trasladan sobre el' manto piloso del animal, después de salir a través-del ano (tig.

169).

Historia relevante Puede ocurrir en perros y gatos de cualquier edad. No parece que se produzca una significativa inmunidad ni con la edad ni la exposición.

Fig.169 Segmento de Dip'l/idiumcaninum trasladándose sobre el monto piloso de un perro in(estado.

Ocurre en cualquier sexo, castrado o entero. Se pueden presentar signos de Infestación con pulgas o piojos, ya que éstos son los huéspedes del cisticercoides (el, estadio de metacestodos ). •

No hay antecedentes de un control efectivo contra los gusanos planos en las 3 semanas anteriores.

Diagnóstico diferencial •

Puede ser difícil difer.enciar entre los segmentos de D. caninum 'y los de Taenia spp (véase sección sobre Examen).

Importancia •

Las personas pueden infestarse con Ó~aninum si ingieren accidentalmente una pulga o un piojo infestado,

•

A los dueños de las mascotas los segmentos les pueden resultar repugnantes.

•

La presencia de D. caninum es un indicador de una infestación con pulgas o piojos.

Fig.170 Cada D. caninum puede medir hasta 30 cm. Ellos se adhieren a la pared del' intestino delgado por medio de un escólex (o cabezo).

El control depende de la eliminación de cualquier infestación actual de D. caninum con un cestocida apropiado y luego romper el ciclo de vida por medio del tratamiento para la infestadón de pulgas o piojos.

Hg. 17/ .D. caninum in situ en el intestino delgado.

DiPylidium caninum Diagnóstico laboratorial Muestreo En el examen posmortem (fig./7/) puede observarse todo el parásito (fig. 170) Y puede ser colocado en alcoholo en formaldehido al 5% para la preservación y el posterior examen. Los parásitos son delicados y deben sacarse de la pared intestinal con mucho cuidado o el escólex quedará in situ. Recoger progl6tidos

o una muestra de matería fecal con el animal

vivo.

Examen DipyIidium caninum se puede diferenciar de Taenia spp por medio de la evaluadón de los segmentos. La cabeza tiene ventosas y un rostelo armado que protruye ("nariz" que posee un gancho) (fig. /74). Cada segmento tiene dos poros genitales, uno a cada lado (figs. /72 y /73). 'Estos se pueden ver con facilidad si un segmento se presiona con suavidad entre dos portaobjetos. Si se ejerce una mayor presión sobre los portaobjetos, se exprimirá parte del contenido y se podrán examinar los huevos que se encontraban dentro del segmento (fig. /75).

Rg. /72 Segmentos de D. caninum. Si se sospecha que los segmentos están secos, pueden ser ca/acodos en agua durante algunas horas para que vuelvan o obtener /0 formo y e/ cspecro norma/es que tenían antes del examen.

Los "paquetes de huevos" (fig. /75) pueden ser detectados en muestras de materia fecal utilizando técnicas de flotación o la técnica de McMaster modificada. Sin embargo, el examen de la materia fecal es una prueba no sensible para la detección de infestación por cesto dos.

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Fig. 173 Segmento de D. coninum teñido para mostrar los dos poras genitales.

Fig. /74 Escó/ex de D. caninum, que muestra las ventosas.

Fig. /75 Huevos dentro de un "paquete de huevos". Cada segmento puede contener hasta 20 paquetes de huevos.

®

Oipylidium caninum Ciclo de vida de Dipylidium coninum Al igual