LAPORAN PRAKTIKUM TPBI 12B PEMIJAHAN BUATAN IKAN PATIN.pdf

LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM TEKNOLOGI PEMBENIHAN IKAN PEMIJAHAN BUATAN IKAN PATIN (Pangasius hypopthalmus) DENGAN MENGUNAKAN HCG DAN PERHITUNGAN KEBUTUHAN LARVA AKAN ARTEMIA

Disusun sebagai salah satu syarat untuk memenuhi tugas laporan akhir praktikum mata kuliah Teknologi Pembenihan Ikan semester genap

Disusun oleh: Pipit Widia N

230110140083

Imas Siti Nurhalimah

230110140084

Lina Aprilia

230110140087

Darajat Prasetya W

230110140098

Didi Arvindi

230110140101 Kelas:

Perikanan B / Kelompok 12

UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DA ILMU KELATAN PROGRAM STUDI PERIKANAN JATINANGOR 2017

KATA PENGANTAR Puji dan syukur kami panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa, karena berkat rahmat dan hidayah-Nya serta kerja keras penyusun telah menyusun Laporan Akhir Praktikum Teknologi Pembenihan Ikan mengenai “Pemijahan Buatan Ikan Patin (Pangasius hypopthalmus) dengan Menggunakan HCG dan Perhitungan Kebutuhan Larva akan Artemia” Pada kesempatan ini kami tidak lupa mengucapkan terima kasih kepada : 1. Dosen mata kuliah Teknologi Pembenihan Ikan, yang telah memberikan kesempatan kepada kami agar dapat menyelesaikan laporan ini dengan materi-materi yang sudah disampaikan. 2. Asisten labolatorium, yang telah memberikan arahan dan bantuan kepada kami 3. Seluruh anggota kelompok 12, yang telah bekerja sama sehingga laporan ini selesai 4. Pihak-pihak yang tidak bisa disebutkan satu persatu, yang telah membantu dalam menyelesaikan laporan ini. Laporan akhir ini diharapkan dapat membantu para mahasiswa untuk lebih menguasai dan mengerti hal-hal yang dibahas dalam makalah dan dapat bermanfaat. Kami telah menyelesaikan makalah ini dengan sebaik-baiknya, tetapi kami sangat menerima kritik, usul, atau saran sebagai bahan pertimbangan untuk penyempurnaan makalah di masa mendatang. Harapan penyusun semoga bermanfaat bagi semua pihak.

Jatinangor, Mei 2017

Penyusun

i

DAFTAR ISI

BAB

Halaman

KATA PENGANTAR ............................................................................................. i DAFTAR ISI ........................................................................................................... ii DAFTAR TABEL .................................................................................................. iv DAFTAR GAMBAR .............................................................................................. v DAFTAR LAMPIRAN .......................................................................................... vi I PENDAHULUAN ................................................................................................ 1 1.1

Latar Belakang ..................................................................................... 1

1.2

Identifikasi Masalah ............................................................................. 2

1.3

Tujuan................................................................................................... 2

1.4

Kegunaan .............................................................................................. 2

II KAJIANPUSTAKA ............................................................................................ 3 2.1

Ikan Patin.............................................................................................. 3

2.2

Pemijahan Buatan ................................................................................. 6

A. Persiapan Wadah................................................................................... 7 B. Seleksi Induk......................................................................................... 8 C. Penyuntikan ........................................................................................ 10 D. Pengurutan (Stripping)....................................................................... 12 E. Proses Fertilisasi (Pembuahan) ........................................................... 13 F. Penetasan Telur ................................................................................... 14 G. Pemeliharaan Larva ............................................................................ 15 2.3

Reproduksi Ikan Patin ........................................................................ 17

2.4

HCG dan Ovaprim ............................................................................. 18

2.5

Hormon yang Berperan dan Sistem Hormonnya ............................... 19

2.6

Larva Patin ......................................................................................... 21

2.7

Artemia ............................................................................................... 22

2.8

Cacing Sutra ....................................................................................... 24

2.9

Pemeliharaan Larva dan Benih Patin ................................................. 26

ii

III BAHAN DAN METODE ................................................................................ 28 3.1

Tempat dan Waktu ............................................................................. 28

3.2

Alat dan Bahan ................................................................................... 28

3.2.1 Alat Praktikum ................................................................................... 28 3.2.2 Bahan Praktikum ................................................................................ 29 3.3

Tahapan Praktikum ............................................................................ 29

3.3.1 Persiapan Praktikum ........................................................................... 29 3.3.2 Pelaksanaan Praktikum ...................................................................... 30 3.4

Metode................................................................................................ 32

3.5

Parameter yang Diamati ..................................................................... 33

3.5.1 Teknik Pemijahan Ikan Patin Secara Buatan ..................................... 33 3.5.2 Penetasan Artemia .............................................................................. 33 3.5.3 Kebutuhan Larva Patin Akan Artemia ............................................... 33 3.5.4 SR Larva ............................................................................................. 33 3.5.5 SR Benih ............................................................................................ 33 IV HASIL DAN PEMBAHASAN ....................................................................... 34 4.1

Hasil dan Pembahasan Kelas.............................................................. 34

4.2

Hasil dan Pembahasan Kelompok ...................................................... 35

4.2.1 Teknik Pemijahan Buatan Ikan Patin dengan Menggunakan HCG dan Ovaprim ....................................................................................................... 35 4.2.2 Teknik Penetasan Artemia ................................................................. 40 4.2.3 Teknih Pemeliharaan Larva dan Benih .............................................. 41 V PENUTUP ......................................................................................................... 43 5.1

Kesimpulan......................................................................................... 43

5.2

Saran ................................................................................................... 43

DAFTAR PUSTAKA ........................................................................................... 44 LAMPIRAN .......................................................................................................... 46

iii

DAFTAR TABEL

Tabel 1. Ciri-Ciri Induk Yang Baik ........................................................................ 8 Tabel 2. Ciri-Ciri Induk Matang Gonad .................................................................. 9 Tabel 3. Waktu Penetasan Telur Pada Suhu Berbeda ........................................... 16 Tabel 4. Perkembangan Stadia Larva Ikan Patin .................................................. 16 Tabel 5. Kebutuhan Larva Patin Akan Artemia .................................................... 34

iv

DAFTAR GAMBAR

1. Ikan Patin ............................................................................................................ 4 2. Bagian-bagian Ikan Patin .................................................................................... 5 3. Ciri-ciri induk matang gonad (a) Tanda kelamin jantan yang sudah matang sperma, (b) Induk betina yang sudah matang gonad. ............................................ 10 4. Penyuntikan pada Ikan Patin ............................................................................. 12 5. Proses Stripping ................................................................................................ 13 6. Artemia.............................................................................................................. 23 7. Cacing Sutra ...................................................................................................... 25 8. Bagan Alir Seleksi Induk Ikan Patin ................................................................. 36 9. Pemberokan Induk Ikan Patin ........................................................................... 37 10. Bagan Alir Teknik Penyuntikan HCG dan Ovaprim ...................................... 40 11. Bagan Alir Teknik Penetasan Artemia ............................................................ 41

v

DAFTAR LAMPIRAN

1. Alat dan Bahan .................................................................................................. 46 2. Kegiatan Praktikum ........................................................................................... 48 3. Prosedur proses penetasan Artemia .................................................................. 49 4. Prosedur Kegiatan Proses Pemijahan Buatan ................................................... 50

vi

BAB I PENDAHULUAN 1.1

Latar Belakang Ikan patin merupakan salah satu ikan air tawar yang memiliki peluang

ekonomi untuk dibudidayakan. Budidaya ikan Patin masih perlu diperluas lagi, karena pemenuhan atas permintaan ikan patin masih sangat kurang. Rasa daging ikan patin yang enak dan gurih konon memiliki rasa yang lebih dibandingkan Ikan Lele. Ikan patin memiliki kandungan minyak dan lemak yang cukup banyak di dalam dagingnya. Patin merupakan jenis ikan konsumsi air tawar asli Indonesia yang tersebar di sebagian wilayah Sumatera dan Kalimantan. Daging ikan patin memiliki kandungan kalori dan protein yang cukup tinggi, rasa dagingnya khas, enak, lezat dan gurih sehingga digemari oleh masyarakat. Ikan patin dinilai lebih aman untuk kesehatan karena kadar kolesterolnya rendah dibandingkan dengan daging hewan ternak. Selain itu ikan patin memilki beberapa kelebihan lain, yaitu ukuran per individunya besar dan di alam panjangnya bisa mencapai 120 cm (Susanto dan Amri 2002). Beberapa kelebihan tersebut menyebabkan harga jual ikan patin tinggi dan sebagai komoditi yang berprospek cerah untuk dibudidayakan. Salah satu cara untuk meningkatkan produksi ikan yang dibudidayakan yaitu dengan perbaikan metode budidaya ikan untuk menciptakan kondisi lingkungan yang memungkinkan ikan mempunyai daya tahan hidup yang tinggi dan dapat tumbuh dengan baik. Dalam budidaya ikan patin, kiranya perlu dilaksanakan usaha pemijahan. Pemijahan adalah suatu proses pengeluaran sel telur oleh induk ikan betina dan sperma oleh induk jantan yang kemudian diikuti dengan pembuahan. Pemijahan dapat dibedakan menjadi tiga yaitu : pemijahan alami, pemijahan semi alami, dan pemijahan buatan. Ikan patin hanya dapat dipijahkan secara buatan (Hayati 2004). Hernowo (2001) menyatakan bahwa, pemijahan buatan dapat dilakukan dengan cara menstriping atau mengurut perut sampai ke arah lubang kelamin

1

2

induk jantan dan induk betina. Agar telur dan sperma dari induk-induk yang telah disuntik tersebut dapat dikeluarkan. Proses penstripingan ini dapat dilakukan beberapa jam setelah penyuntikan. Pemijahan secara buatan memiliki kelebihan dibandingkan dengan cara alami atau semi alami. Salah satu kelebihan pemijahan buatan yaitu tingkat pembuahan dan penetasan akan lebih tinggi serta memiliki sintasan yang lebih optimal. 1.2

Identifikasi Masalah Berdasarkan latar belakang yang telah dipaparkan diatas maka permasalahan

yang dapat diidentifikasi adalah sebagai berikut: 1. Bagaimana cara pemijahan buatan pada ikan patin? 2. Bagaimana cara penggunaan hormon HCG dan ovaprin pada pemijahan buatan ikan patin? 3. Bagaimana cara mendapatkan dan memberikan pakan pada larva ikan patin? 4. Berapa kebutuhan larva ikan patin akan artemia? 1.3

Tujuan Tujuan dari Praktikum ini adalah sebagai berikut: 1. Mengetahui cara dan dapat melakukan pemijahan buatan pada ikan patin 2. Mengetahui cara dan dapat melakukan injeksi hormone HCG dan Ovaprim pada pemijahan buatan ikan patin. 3. Megetahui cara dan dapat mengkultur secara mandiri pakan alami untuk larva ikan patin khususnya artemia dan mengetahui berapa kebutuhan artemia untuk pemeliharaan larva ikan patin

1.4

Kegunaan Kegunaan dari praktikum ini adalah dimana setelah mahasiswa mengikuti

praktikum ini dapat menerapkan ilmu yang didapat selama praktikum, selain itu juga diharapkan mahasiswa dapat melakukan proses pemijahan buatan secara mandiri, sehingga memiliki keahlian dalam hal yang mencerminkan sebagai mahasiswa perikanan.

BAB II KAJIAN PUSTAKA 2.1

Ikan Patin Ikan patin (Pangasius sp.) merupakan salah satu ikan asli perairan Indonesia

yang telah berhasil didomestikasi yang mempunyai bentuk tubuh memanjang, berwarna putih perak dengan punggung berwarna kebiruan. Ikan patin tidak memiliki sisik, dan kepalanya pun relatif kecil, dengan mulut yang terletak diujung kepala agak ke bawah dan itu merupakan ciri khas ikan dari golongan catfish. Pada punggungnya terdapat sirip lemak yang berukuran kecil sekali.adapun sirip ekornya membentuk cagak dan bentuknya simetris. Ikan patin tidak memiliki sisik. Sirip duburnya panjang, terdiri dari 30-33 jari-jari lunak, sedangkan sirip perutnya memiliki enam jari-jari lunak. Sirip dada memiliki 12-13 jari-jari lunak (Susanto dan Amri 1996). Ikan patin (Pangasius sp) merupakan salah satu komoditas ikan air tawar pendatang baru yang di datangkan ke Indonesia pertama kali pada tahun 1969, dan mulai berhasil dikembang biakan pada tahun 1972. Jenis–jenis ikan patin di Indonesia sangat banyak, antara lain Pangasius pangasius atau Pangasius jambal, Pangasius humeralis, Pangasius lithostoma, Pangasius nasutus, pangasius polyuranodon, Pangasius niewenhuisii. Sedangkan Pangasius sutchi dan Pangasius hypophtalmus yang dikenal sebagai jambal siam atau lele bangkok merupakan ikan introduksi dari Thailand (Kordik 2005). Ikan patin dapat mencapai panjang tubuhnya sekitar 120 cm, di mulutnya terdapat dua pasang kumis pendek yang berfungsi sebagai peraba. Sirip punggung memiliki sebuah jari–jari keras yang berubah menjadi patil yang besar dan bergerigi di belakangnya, sedangkan jari–jari lunak pada sirip punggungnya terdapat 6 – 7 buah (Kordi 2005). Habitat ikan patin adalah di tepi sungai – sungai besar dan di muara – muara sungai serta danau. Dilihat dari bentuk mulut ikan patin yang letaknya sedikit agak ke bawah, maka ikan patin termasuk ikan yang hidup di dasar perairan. Ikan

3

4

patin sangat terkenal dan digemari oleh masyarakat karena daging ikan patin sangat gurih dan lezat untuk dikonsumsi (Susanto Heru dan Khairul Amri 1996). Ikan patin merupakan ikan yang bersifat nokturnal atau melakukan aktivitas atau yang aktif pada malam hari. Biasanya ikan ini hidup di tepi sungai – sungai besar dan di muara – muara sungai serta danau dan merupakan ikan yang hidup di dasar perairan dan bersembunyi di dalam ilalang-ilalang. Hal yang membedakan patin dengan ikan catfish pada umumnya yaitu sifat patin yang termasuk omnivora atau golongan ikan pemakan segala (Susanto Heru dan Khairul Amri 1996).

Gambar 1. Ikan Patin Menurut Santoso (1996), klasifikasi ikan patin (Pangasius hypophtalmus) adalah sebagai berikut : Ordo

: Ostariophysi

Sub-ordo

: Siluroidea

Famili

: Pangasidae

Genus

: Pangasius

Spesies

: Pangasius hypophtalmus

Ikan patin sulit memijah di kolam atau wadah pemeliharaan dan termasuk pula ikan yang kawin musiman. Pemijahan ikan patin umumnya dilakukan secara buatan karena belum ada yang berhasil memanipulasi lingkungan untuk ikan patin mau memijah secara alami (Susanto dan Amri 1996). Ikan patin memiliki tubuh yang memanjang dan berwarna putih keperakperakan dengan punggung berwarna kebiru-biruan. Tubuh ikan ini memiliki panjang hingga mencapai 120cm, bentuk kepala yang relatif kecil, mulut terletak di ujung kepala bagian bawah, pada kedua sudut mulutnya terdapat dua pasang

5

kumis yang berfungsi sebagai alat peraba yang merupakan ciri khas ikan golongan catfish, dan memiliki sirip ekor berbentuk cagak dan simetris. Ikan patin merupakan hewan nocturnal (melakukan aktivitas di malam hari) dan termasuk jenis ikan omnivora (pemakan segala). Ikan patin siam termasuk ikan dasar yang dapat dilihat dari bentuk mulut yang agak ke bawah. Ikan ini cukup responsif terhadap pemberian makanan tambahan. Pada proses budidaya dalam usia enam bulan ikan patin bisa mencapai panjang 35-40 cm (Djariah 2001). Sirip punggung mempunyai 1 jari-jari keras yang berubah menjadi patil yang besar dan bergerigi di belakangnya, sedangkan jari-jari lunak pada sirip ini sebanyak 6-7 buah. Pada permukaan punggung terdapat sirip lemak yang ukurannya sangat kecil. Sirip dubur agak panjang dan mempunyai 30-33 jari-jari lunak. Sirip perut terdapat 6 jari-jari lunak, sedangkan sirip dada terdapat 1 jarijari keras yang berubah menjadi patil dan 12-13 jari-jari lunak. Sirip ekor bercagak dan bentuknya simetris. Ketika masih kecil, warna berkilauan seperti perak ini sangat cemerlang sehingga banyak orang yang memeliharanya di aquarium sebagai ikan hias. Ketika ukurannya semakin besar, warnanya mulai memudar sehingga kurang menarik untuk dipajangkan di aquarium (Khairuman dan Sudenda 2008). Morfologi ikan patin dapat dilihat pada Gambar 2 dibawah ini.

Gambar 2. Bagian-bagian Ikan Patin Sumber : http://www.bbatjambi.co.id/ Menurut Kordik (2005), ikan patin adalah ikan sungai dan muara-muara sungai serta danau. Penyebaran ikan patin di alam cukup luas, hampir di seluruh wilayah Indonesia. Secara alami ikan ini banyak ditemukan di sungai-sungai besar dan berair tenang di Sumatera, seperti Sungai Musi, Batanghari dan Indragiri.

6

Sungai-sungai besar lainnya di Jawa, seperti Sungai Brantas dan Bengawan. Bahkan keluarga dekat lele ini juga dijumpai di sungai-sungai besar di Kalimantan, seperti Sungai Kayan, Berau, Mahakam, Barito, Kahayan dan Kapuas. Umumnya, ikan ini ditemukan di lokasi-lokasi tertentu di bagian sungai, seperti lubuk (lembah sungai) yang dalam. Menurut Djariah (2001), ikan patin mampu bertahan hidup pada perairan yang kondisinya sangat jelek dan akan tumbuh normal di perairan yang memenuhi persyaratan ideal sebagaimana habitat aslinya. Kandungan oksigen (O2) yang cukup baik untuk kehidupan ikan patin berkisar 2-5 ppm dengan kandungan karbondioksida (CO2) tidak lebih 12,0 ppm. Nilai pH atau derajat keasaman adalah 7,2-7,5, dan ammonia (NH3) yang masih dapat ditoleransi oleh ikan patin yaitu 1 ppm. Keadaan suhu air yang optimal untuk kehidupan ikan patin antara lain 28-29oC. Ikan patin lebih menyukai perairan yang memiliki fluktuasi suhu rendah. Kehidupan ikan patin mulai terganggu apabila suhu perairan menurun sampai 14-15oC ataupun meningkat di atas 35oC. Aktivitas patin terhenti pada perairan yang suhunya di bawah 6oC atau di atas 42oC.

2.2

Pemijahan Buatan Secara umum, pemijahan ikan di bedakan menjadi pemijahan alami dan

pemijahan buatan. pemijahan alami biasanya di lakukan pada jenis-jenis ikan yang mudah di pijahkan sepanjang tahun seperti ikan mas, tawes, gurami, lele, dan lain sebagainya sebaliknya, pemijahan buatan umumnya dilakukan terhadap ikan-ikan yang dipelihara dalam lingkungan yang tidak sesuai dengan faktor lingkungannya di alam, seperti ikan patin (Susanto dan Amri 1997). Pemijahan ikan secara buatan adalah pemijahan ikan yang terjadi dengan memberikan rangsangan hormon untuk mempercepat kematangan gonad serta proses ovulasinya dilakukan secara buatan dengan teknik stripping/pengurutan (Gusrina,2008). Pemijahan buatan sering kali di lakukan terhadap ikan patin (Pangasius pangasius). Namun, pemijahan buatan sering juga di lakukan pada ikan yang mudah memijah dengan tujuan tertentu, misalnya untuk

7

mempermudah pengontrolan, menekan mortalitas dan lain sebagainya. Ikan patin memiliki kebiasaan memijah sekali setahun. Pemijahan biasanya terjadi pada musim hujan (bulan November-Maret). Musim pemijahan juga dipengaruhi oleh iklim suatu daerah sehingga setiap daerah memiliki masa atau waktu pemijahan yang berbeda-beda (Susanto dan Amri 1997). Ikan patin termasuk jenis ikan yang sulit untuk memijah maupun di pijah dengan buatan. Ikan ini sulit memijah di kolam atau wadah pemeliharaan dan termasuk pula ikan yang kawin musiman. Oleh karena itu, pemijahan ikan patin umumnya dilakukan secara buatan karena selama ini belum ada yang berhasil untuk memanipulasi lingkungan untuk ikan patin memijah secara alami. meskipun demikian pemijahan alami ikan patin di alam tidak mengalami hambatan, buktinya di alam lingkungan ikan masih banyak di temukan benih-benih ikan patin begitu pula patin yang berukuran sudah layak konsumsi.. Jenis ikan yang sudah dapat dilakukan pemijahan secara buatan antara lain ikan Patin, ikan Mas, dan ikan Lele. A.

Persiapan Wadah Persiapan wadah meliputi bak berok, bak pemijahan, bak penetasan, dan

bak pemeliharaan larva. Bak berok berupa kolam tembok untuk pemeliharaan indukan, bak pemijahan yaitu berupa waring yang disiapkan di kolam pemijahan, bak penetasan dan pemeliharaan larva dapat berupa akuarium atau bak fiber yang dilengkapi dengan aerasi untuk menjaga ketersediaan oksigen terlarut. Air yang digunakan dapat berasal dari air tanah atau air sungai yang telah disaring. Air yang akan digunakan terlebih dahulu dipersiapkan dua hari sebelum larva ditebar dengan pemberian aerasi yang cukup besar. Pemberian aerasi untuk meningkatkan kandungan oksigen terlarut dalam air dan menguapkan gas-gas lain yang merugikan ikan, terutama apabila digunakan berasal dari air tanah. Hal ini disebabkan air tanah umumnya mempunyai kadar oksigen yang rendah dan mengandung CO2 atau gas-gas lain (Satyani 2006).

8

B.

Seleksi Induk Seleksi induk adalah kegiatan memilih atau memisahkan antara induk-

induk yang sudah matang gonad atau matang telur dengan yang belum. Tujuannya untuk mendapatkan induk-induk yang siap pijah, dimana telur bisa dibuahi dan spermanya bisa membuahi. Kegiatan ini dilakukan setelah pematangan gonad dan sebelum pemijahan (Arie 2009). Seleksi induk merupakan langkah awal dalam usaha pembenihan ikan. Langkah ini sangat menentukan keberhasilan pembenihan sehingga harus dilakukan secara teliti dan akurat berdasarkan kriteria yang sudah ditentukan (Sunarma 2007). Induk merupakan faktor penentu dalam usaha budidaya pembenihan ikan patin supaya berhasil dengan baik. Calon induk yang akan dipijahkan harus memiliki kualitas genetis yang baik, yakni berasal dari induk yang terpilih. Hal tersebut karena pemijahan ikan patin sepenuhnya tergantung pada pemijahan buatan. Tingkat keberhasilan pemijahan buatan sangat ditentukan kondisi induk. Kondisi induk dapat mempengaruhi kualitas telur yang dihasilkan, oleh karena itu dalam pemilihan induk harus cermat dan berhati-hati agar induk tidak mengalami stres(Khairuman 2007). Ciri – ciri induk yang baik menurut Khairuman (2007) adalah sebagai berikut : Tabel 1. Ciri-Ciri Induk Yang Baik No

Induk Betina

Induk Jantan

1

Saat berumur 3 tahun memiliki berat Saat berumur 3 tahun memiliki minimal 2 kg berat minimal 2 kg

2

Mulai bertelur pada umur 3 tahun, Mulai mengandung sperma pada tidak bertelur muda umur 2,5 bulan

3

Bentuk tubuhnya normal, atau tidak Bentuk tubuhnya normal, atau cacat tidak cacat

4

Bertubuh gemuk, atau tidak kurus

5 6

Kepala relatif kecil Kepala relatif kecil Tidak luka, dan sehat Tidak luka, dan sehat Bila diraba, kulitnya halus, atau tidak Bila diraba, kulitnya halus, atau kasar tidak kasar

7

Bertubuh gemuk, atau tidak kurus

9

No 8

Induk Betina Respon terhadap pakan tambahan

Induk Jantan Respon terhadap pakan tambahan

Ciri – ciri dari induk patin yang sudah matang gonad menurut Erlangga (2013) adalah sebagai berikut : Tabel 2. Ciri-Ciri Induk Matang Gonad No

Induk siam betina

Induk Siam Jantan

1 2

Umur minimal 2,5 tahun Bobot minimal 2 kg/ekor

3

Perut membesar ke arah anus, terasa Perut terlihat ramping empuk, dan halus saat diraba

4 5 6

Umur minimal 1,5 tahun Bobot minimal 1,5

Kulit di bagian perut lembek dan Kulit di bagian perut lembek dan tipis tipis Alat kelamin membengkak dan Alat kelamin membengkak dan menonjol berwarna merah tua berwarna merah tua Jika di kanulasi akan keluar telur Jika di striping atau diurut keluar bebentuk bundar dan berukuran cairan putih atau sperma. seragam Ikan patin tidak memperlihatkan karakteristik eksternal yang jelas,

sehingga tidak mudah membedakan induk patin jantan dan betina, apalagi menentukan tingkat kematangan gonadnya (Khairuman 2007). Oleh karena itu, pemeriksaan kematangan gonad ikan patin betina dapat dilakukan dengan kanulasi, yaitu memasukan kateter berdiameter luar 3 mm dan diameter dalam 2,5 mm kedalam lubang genital sedalam 8 sampai 10 cm secara hati-hati,setelah itu ujung kateter ditarik sambil diputar. Kanulasi ini bertujuan untuk mengetahui tingkat kematangan gonad pada induk batina ikan patin dan mengukur keseragaman diameter telur. Untuk ikan patin siam dia meter telur yang siap dipijahkan berukuran 0,8 - 1,2 mm.

10

Gambar 3. Ciri-ciri induk matang gonad (a) Tanda kelamin jantan yang sudah matang sperma, (b) Induk betina yang sudah matang gonad. Pemeriksaan induk jantan dilakukan dengan cara striping. Induk jantan yang siap dipijahkan akan mengeluarkan cairan sperma berupa cairan putih kental jika distriping. Induk yang sudah dipilih melalui proses pemilihan induk dipisahkan dan di masukan kedalam jaring kemudian dilakukan pemberokan (pemuasaan), hal ini dilakukan untuk mengurangi kadar lemak pada saluran pengeluaran telur sehingga telur dapat keluar dengan lancar dan menghindari ikan stres saat dilakukan striping, karena hal tersebut dapat mempengaruhi kondisi induk. Induk yang telah diseleksi diberok selama 1 – 2 hari. Pemberokan bertujuan untuk membuang kotoran. Kotoran dapat menggangu saat pengurutan telur dan bisa mengotori telur. Pemberokan juga bertujuan untuk mengurangi kandungan lemak dalam gonad. Kandungan lemak yang terlalu tinggi dapat menghambat proses pemijahan atau streeping, sehingga telur susah keluar. Pemberokan juga bertujuan pula untuk memudahkan dalam membedakan induk yang gendut karena matang telur dengan gendut karena makanan. C.

Penyuntikan Penyuntikan adalah salah satu cara untuk memasukkan hormon sebagai

perangsang kematangan gonad. Penyuntikan hormon pada kegiatan budidaya sangat penting untuk dilakukan karena berfungsi untuk merangsang terjadinya peningkatan proses fisiologis reproduksi akibat adanya peningkatan jumlah hormon dalam tubuh. Hormon yang digunakan adalah ekstrak kelenjar hipofisa, Gonadotropin, Ovaprim (campuran Lutenizing Hormon Releasing Hormon-

11

analog (LHRH-a) dan domperidon). Penggunaan kelenjar hipofisa sudah jarang dilakukan dengan alasan kurang praktis. Penggunaan Ovaprim serta Human Chorionic Gonadotropin (HCG) pada saat ini umum digunakan (Satyani 2006). Dosis penyuntikan yang biasa digunakan adalah sebagai berikut: 1.

Penyuntikan dengan kelenjar hipofisa. Penyuntikan I sebanyak 1 dosis dan penyuntikan II sebanyak 3 dosis dengan selang waktu 12 jam.

2.

Penyuntikan dengan Ovaprim. Penyuntikan I sebanyak 0,3ml/kg induk dan penyuntikan II sebanyak 0,6 ml/kg induk dengan selang waktu 12 jam.

3.

Penyuntikan dengan HCG dan Ovaprim. Penyuntikan I dengan HCG sebanyak 500 IU/kg induk dan penyuntikan II dengan Ovaprim sebanyak 0,6 ml/kg induk. Menurut Satyani (2006), selang waktu dari penyuntikan II sampai ovulasi

antara 10-12 jam. Waktu laten (latensi time) yaitu jarak antara penyuntikan kedua (akhir) sampai ovulasi dan sangat dipengaruhi suhu air. Semakin tinggi suhu air, makin pendek waktu laten. Penyuntikan pada induk patin yang dilakukan pada praktikum ini adalah penuntikan dengan HCG dan ovaprim. Pertama disuntik menggunakan HCG sebanyak 500IU/kg induk. Setelah penyuntikan pertama ikan dibiarkan selama 24 jam, kemudian dilanjutkan dengan penyuntikan ke dua menggunakan Ovaprim. Penyuntikan menggunakan ovaprim sebanyak 0,6 ml/kg untuk induk betina dan 0,1-0,2 ml/kg untuk jantan. Ovaprim digunakan sebagai agen perangsang bagi ikan untuk memijah, kandungan GnRHa akan menstimulus pituatari untuk mensekresikan GtH I dan GtH II. Sedangkan anti dopamin menghambat hipotalamus

dalam

mensekresi

dopamin

yang

memerintahkan

pituatari

menghentikan sekresi GtH I dan GtH II. Ovaprim pada ikan berfungsi untuk menekan musim pemijahan, mengatur kematangan gonad selama musim pemijahan normal, merangsang produksi sperma pada jantan untuk periode waktu yang lama dan volume yang lebih banyak, merangsang pematangan gonad sebelum musim pemijahan, maksimalkan potensi reproduksi, mempertahankan materi genetik pada beberapa ikan yang terancam punah dan mempersingkat periode pemijahan, lebih efektif bila

12

dibandingkan dengan menggunakan hormon hipofisa. Penggunaan kedua hormon tersebut ditambahkan dengan larutan NaCl dengan perbandingan 1:1 atau 1:2 sebagai larutan fisiologis.

Gambar 4. Penyuntikan pada Ikan Patin Penyuntikan dilakukan secara intra mascular atau dibagian otot tebal dekat sirip punggung dengan kemiringan suntikan sekitar + 45o, dengan kemiringan tersebut hormon akan masuk dan kemungkinan keluar lagi kecil karena dengan sudut tersebut akan ada otot yang secara otomatis menutup bagian bekas suntik. Cara mencegah cairan keluar kembali yaitu dengan mengurut bagian yang disuntik kesatu arah yaitu kedepan sambil ditekan secara perlahan menggunakan ibu jari, sehingga cairan yang yang disuntikkan tidak keluar kembali. Selain itu, kedalaman penyuntikan + 5 cm. Selanjutnya ikan yang telah disuntik ovaprim didiamkan selama 10 jam dikolam penampungan induk. D.

Pengurutan (Stripping) Tahapan proses selanjutnya setelah mendapatkan induk yang matang

gonad dan penyuntikan adalah stripping. Sebelum melakukan stripping perlu dilakukan pengecekan induk pada 10 - 12 jam setelah penyuntikan kedua. Pengecekan dilakukan dengan cara memijit perut ikan menuju papila secara hatihati, apabila keluar telur pada induk betina dengan lancar dan berukuran seragam maka stripping dilanjutkan dan telur yang di keluar ditampung pada wadah yang kering, setelah stripping selesai dan telur sudah keluar semua selanjutnya wadah yang berisikan telur di timbang untuk mengetahui bobot telur yang di hasilkan.

13

Hal ini bertujuan untuk mengetahui performa reproduksi induk dan perkiraan jumlah larva yang akan dihasilkan.

Gambar 5. Proses Stripping Stripping pada induk jantan dilakukan dengan cara mengurut bagian perutnya dari atas ke bawah secara perlahan sampai sperma keluar. Kemudian sperma yang keluar dimasukkan dalam wadah yang telah berisikan larutan NaCl fisiologis dengan perbandingan sperma dan larutan fisiologis sebanyak 1:10 ml. Penambahan larutan NaCl fisiologis ini bertujuan untuk mempertahankan motilitas sperma supaya bertahan lebih lama. Sperma yang telah di encerkan dengan larutan NaCl fisiologis akan menjadi tidak aktif dan dapat bertahan sampai 12 jam. E.

Proses Fertilisasi (Pembuahan) Setelah didapatkan sperma dan sel telur dari induk patin, langkah

selanjutnya adalah melakukan pembuahan secara buatan. Proses pembuahan yang dilakukan menggunakan metode pembuahan basah yaitu dengan melarutkan campuran sperma dan sel telur menggunakan larutan yang kaya dengan oksigen dan larutan lumpur. Adapun langkah-langkah pembuahan basah adalah: 1) Sel telur dicampurkan dengan sel sperma dalam satu wadah. 2) Diaduk secara merata dengan menggunakan bulu angsa/ayam hingga merata selama kurang lebih 1 menit. 3) Diambahkan air yang kaya oksigen dalam wadah telur yang sudah tercampur dengan sperma. Pemberian air yang kaya oksigen ini bertujuan untuk mengaktifkan sperma agar dapat menembus mikrofil telur sehingga terjadilah pembuahan..

14

4) Campuran sperma dan sel telur dibilas hingga bersih kemudian tambahkan lagi air yang digunakan pada tahap sebelumnya ke dalam campuran telur. 5) Campuran sperma dan sel telur yang sudah dibilas bersih kemudian dicampurkan dengan air tanah yang digunakan untuk menghindari terjadinya penggumpalan dan pelengketan pada telur yang telah dibuahi oleh sperma. . 6) Telur dimasukkan ke dalam corong penetasan yang dilengkapi dengan sistem sirkulasi pada bagian dasar corong sehingga telur akan tetap teraduk (tidak mengendap) dan berputar secara pelan. F.

Penetasan Telur Penetasan merupakan peristiwa pada saat embrio ikan keluar dari telur

menjadi larva dan pertama kalinya berhubungan dengan lingkungan sekitarnya. Pernyataan tersebut diperkuat oleh Murtidjo (2002). Menurut Satyani (2006), penetasan telur dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu : 1.

Ditetaskan atau ditebar langsung pada wadah penetasan yang sekaligus tempat pemeliharaan larva. Cara ini mengalami kesulitan saat memisahkan antara larva dengan telur busuk dan larva abnormal serta resiko larva keracunan relatif tinggi terutama pada telur dengan fertilitas kurang dari 80%.

2.

Ditetaskan pada corong penetasan. Telur yang telah dibuahi harus dihilangkan zat perekatnya terlebih dahulu. Telur tersebut kemudian dimasukkan ke dalam corong penetasan yang dialiri air pada bagian dasar corong sehingga telur bergerak atau berputar secara perlahan. Penetasan telur Patin dapat berupa akuarium, hapa di kolam, bak semen,

bak fiber glass atau corong penetasan yang dilengkapi aerator. Telur disebarkan merata di dalam wadah dan dijaga agar jangan sampai bertumpuk karena dapat mengakibatkan telur menjadi busuk (Ghufran 2005). Telur-telur yang telah dicampur dengan sperma segera ditebarkan merata didasar wadah penetasan yang telah disiapkan sebelumnya. Telur-telur yang dibuahi berwarna kuning kecoklatan dan jernih sedangkan telur yang mati berwarna putih. Telur yang di buahi akan

15

menetas setelah 24-36 jam pada suhu 28-30oC. Daya tetas telur sangat dipengaruhi oleh kualitas telur, dan kualitas air dalam wadah penetasan. Aerasi yang cukup dengan kandungan oksigen terlarut dan suhu perlu diperhatikan agar proses penetasan telur berjalan secara optimal. Pada suhu 29 – 30 °C biasanya telur mulai menetas setelah inkubasi 18 – 24 jam. Larva hasil penetasan dapat dipindahkan ke wadah yang lain atau tetap pada wadah yang sama dengan melakukan penggantian air. Proses ini perlu dilakukan karena pada saat penetasan terdapat sisa cangkang telur yang dapat membusuk dan menyebabkan bahan beracun bagi larva. Proses pemindahan larva atau penggantian air harus dilakukan secara hati-hati karena larva masih kritis (Sunarma 2007). G.

Pemeliharaan Larva Larva ikan patin siam mempunyai sifat kanibal sehingga untuk

menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian pakan. Selama pemeliharaan larva ikan patin siam dapat diberi pakan berupa Artemia sp dan cacing rambut (tubifex) yang hidup. Menurut Sunarma (2007), pakan alami diberikan secara bertahap, yaitu dimulai dengan saat kuning telur akan habis (hari ke-3 setelah telur menetas) pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C . Nauplii Artemia sp diberikan pada larva umur 2-7 hari, sedangkan cacing rambut diberikan setelah larva berumur 7-15 hari. Frekuensi pemberian pakan dilakukan lima kali per hari secara adlibitum. Fase larva merupakan fase kritis dalam daur hidup ikan sehingga tingkat mortalitas (kematian) pada fase ini sangat tinggi. Ghufran (2005) mengatakan bahwa bagi larva ketersediaan pakan alami sangat penting untuk kelangsungan hidupnya. Jenis pakan alami yang umum digunakan dan mudah diperoleh antara lain Moina, Daphnia, Rotifera, Artemia, Chironomus, Tubifex, jentik nyamuk dan sebagainya. Proses perkembangan embrio merupakan hal yang utama dalam kegiatan pembenihan, ada beberapa tahap penting yang harus dilakukan oleh pembudidaya untuk mengenal perkembangan embrio dan bisa menilai mutu telur yang berkualitas, lama inkubasi tergatung pada suhu, dimana jangka waktu tersebut

16

berkurang jika suhu meningkat (Legendre et al., 1996 dalam Slembrouck et al. 2005). Padat penebaran benih ikan juga mempengaruhi pertumbuhan. Ikan tersebut akan lebih cepat tumbuhnya bila dipelihara pada padat penebaran yang rendah dibandingkan dengan padat penebaran yang tinggi (Fadjar 1986). Ikan apabila dipelihara pada kepadatan populasi yang tinggi maka pertumbuhannya kurang pesat. Persaingan untuk mendapatkan makanan dan oksigen akan sering terjadi. Populasi yang padat juga cenderung merusak kualitas air karena kotoran (feces) ikan itu sendiri (Suyanto 1997). Menurut (Evi Tahavari at al 2008),. mengatakan proses perkembangan embrio sangat dipergaruhi oleh suhu air, semakin tinggi suhu semakin cepat proses perkembangan embrio. Dibawah ini dapat dilihat Tabel waktu Penetasan telur pada suhu berbeda. Tabel 3. Waktu Penetasan Telur Pada Suhu Berbeda No 1 2 3 4 5 6

Suhu Air (oC)

Lama Waktu Penetasan (Jam)

Keterangan

Larva agak lemah, daya tetas relatif rendah 28 20-22 Larva normal 29 18-19 Larva normal 30 16-17 Larva normal 31 15-16 Larva normal Larva lemah, daya tetas relatif 32 14-15 rendah Selanjutnya (Arifin 1987) menambahkan dalam tabel dibawah ini ≤ 24

27

perkembangan stadia larva pada ikan patin siam ada beberapa tahap sebagai berikut: Tabel 4. Perkembangan Stadia Larva Ikan Patin Stadium Perkembangan Pembuahan 1 sel 2 sel 4 sel 8 sel 16 sel 32 sel 64 sel Morula

Jarak Waktu Sejak Pembuahan 0 menit 20 menit 35 menit 50 menit 1 jam 05 menit 1 jam 25 menit 1 jam 40 menit 2 jam 30 menit 3 jam 15 menit

17

Stadium Perkembangan Blastuta Pembentukan yolk plug Sommit Embrio berbentuk lengkap Menetas

Jarak Waktu Sejak Pembuahan 4 jam 25 menit 9 jam 30 menit 12 jam 15 menit 24 jam 20 menit 28 jam 00 menit

Waktu yang di butuhkan untuk telur menetas dan menjadi larva kurang lebih 20 – 24 jam. Setelah penetasan telur didapat derajat penetasan telur atau biasa di sebut Hatching Rate (HR). HR didapatkan dengan melakukan sampling terhadap telur yang telah menetas menjadi larva. Derajat penetasan telur (HR) dapat dihitung dengan menggunakan rumus sebagai berikut: HR =

2.3

(

)

Reproduksi Ikan Patin Reproduksi pada ikan merupakan tahap penting dalam siklus hidupnya

untuk menjamin kelangsungan hidup suatu spesies (Effendie 2002). Ikan patin merupakan salah satu ikan yang sulit memijah di kolam atau wadah pemeliharaan dan termasuk pula ikan yang kawin musiman. Pemijahan ikan patin, kuhususnya ikan patin siam biasanya terjadi pada musim hujan. Pada musim kemarau, sulit didapatkan induk betina yang matang gonad (Zairin 2000; Manosroi et al. 2004 dalam Tahapari et al. 2013). Pemijahan ikan patin umumnya dilakukan secara buatan karena belum ada yang berhasil memanipulasi lingkungan untuk ikan patin mau memijah secara alami (Susanto dan Amri 1996). Ikan patin betina mencapai dewasa pada umur tiga tahun, sedangkan jantan adalah pada umur dua tahun. Pemijahan di alam berlangsung pada musim penghujan yakni sekitar bulan Oktober sampai November (Arifin 1991 dalam Iis Nurmawanti 2005). Menurut Perangin Angin (2003) dalam Iis Nurmawanti (2005), sistem reproduksi ikan terdiri atas kelamin, gonad, kelenjar hipofisa dan syaraf yang berhubungan dengan perkembangan alat reproduksi. Secara alami sistem kerja reproduksi ikan yakni disebabkan oleh lingkungan perairan, seperti suhu, cahaya dan cuaca yang merangsang hypothalmus sehingga menghasilkan GnRH (Gonadotropin Releasing Hormone). Selanjutnya, GnRH bekerja

18

merangsang pituitari untuk melepaskan GnH (Gonadotropin Hormone) yang berfungsi dalam perkembangan dan pematangan gonad hingga terjadi pemijahan. Reproduksi pada ikan betina melibatkan dua proses utama, yaitu (1) perbesaran ovari secara bertahap dengan pembentukan kuning telur melalui proses yang disebut vitelogenesis; dan (2) maturasi, ovulasi, dan pemijahan. Kedua proses ini diatur oleh hormon gonadotropin; FSH (Follicle Stimulating Hormone) terlibat dalam vitelogenesis, sementara LH (Luteinizing Hormone) memacu maturasi dan ovulasi (Sun dan Pankhurst 2004 dalam Tahapari et al. 2013). Reproduksi ikan berada di bawah kontrol poros hipotalamus-pituitarigonad dan melibatkan tiga faktor yang meliputi sinyal lingkungan, sistem hormon, serta organ reproduksi. Pada banyak kasus, sinyal lingkungan untuk proses pematangan gonad serta ovulasi dan pemijahan tidak diketahui. Hal ini terutama menjadi masalah bagi spesies yang tidak memijah secara spontan di dalam wadah budi daya (Zairin 2003) seperti halnya ikan patin siam. Upaya untuk menciptakan kondisi lingkungan yang sesuai dengan kondisi di alam agar dapat merangsang pemijahan walaupun dalam kondisi yang kurang tepat sering kali dilakukan melalui manipulasi atau pendekatan hormonal. Induk yang digunakan adalah induk patin betina berumur minimal 2,5 tahun dengan bobot 2,5 – 3 kg/ekor, sedangkan induk patin jantan berumur minimal 2 tahun dengan bobot 2 – 2,5 tahun kg/ekor. Ikan patin akan memijah secara maksimal pada musim hujan. Pada musim penghujan setiap kilogram induk ikan patin akan menghasilkan telur sekitar 150.000 – 300.000 butir telur, sedangkan pada musim kemarau setiap kilogram induk hanya menghasilkan telur sekitar 60.000 – 100. 000 butir (Sularto et al. 2006).. 2.4

HCG dan Ovaprim HCG (Human Chorionic Gonadothropin) adalah jenis-jenis hormon

gonadotropin yang sangat penting bagi proses reproduksi. HCG merupakan jenis hormon yang umum digunakan untuk menstimulasi ovulasi pada ikan. HCG terbukti mampu menginduksi ovulasi beberapa spesies ikan antara lain channel catfish (Ictalurus punctatus), ikan mas koki (Carassius auratus), striped bass

19

(Morone saxatilis), dan redear sunfish (Lepomis microlophus) (Park 2002 dalam Tahapari 2013). Hormon HCG merupakan hormon glikoprotein (peptida) yang disekresikan oleh sel syncytiotrophoblast (sel pembentuk plasenta) pada wanita hamil. Aktivitas hormon mirip luteinising hormone (LH) dan follicle stimmulating hormone (FSH) yang secara normal di produksi oleh kelenjar pituitari (Dewntoro 2015). Ovaprim adalah campuran analog salmon Gonadotropihin Releasing Hormon (sGnRH-a) dan anti dopamine. Ovaprim adalah hormon yang berfungsi untuk merangsang dan memacu hormon gonadothropin pada tubuh ikan sehingga dapat mempercepat proses ovulasi dan pemijahan, yaitu pada proses pematangan gonad dan dapat memberikan daya rangsang yang lebih tinggi, menghasilkan telur dengan kualitas yang baik serta menghasilkan waktu laten yang relatif singkat juga dapat menekan angka mortalitas (Sukendi 1995 dalam Sinjal 2014). Secara umum dosis ovaprim yang dipakai untuk merangsang ovulasi pada ikan betina adalah 0,5 ml/kg bobot tubuh sedangkan untuk merangsang spermiasi pada ikan jantan adalah 0,10 - 0,20 ml/kg bobot tubuh (Harker 1992). Ovaprim termasuk hormon gonadotropin (GTH) semi murni yang diiekstraksikan dan dimurnikan dari hipofisa salmon atau ikan mas (Zairin Jr 2003). Ovaprim dalam tubuh ikan sebagai regulator yang bekerja secara langsung mempengaruhi organ target mensentesis hormon gonadotropin merangsang sekresi follicle stimulating hormon (FSH) dalam tubuh ikan. Rangsangan hormone dari tubuh

adalah

menipulasi

hormonal

berupa

suntikan

dan

luar

implantasi

hormon, tidak lain adalah upaya ”potong kompas” menggantikan sinyal lingkungan. Pada spesies yang tidak memijah secara sepontan di dalam wadah budidaya, manipulasi hormonal mutlak diperlukan (Zairin Jr 2003). 2.5

Hormon yang Berperan dan Sistem Hormonnya Hormon merupakan suatu senyawa yang ekskresikan oleh kelenjar

endokrin, dimana kelenjar endokrin adalah kelenjar buntu yang tidak memiliki saluran (Zairin 2002). Kelenjar endokrin pada ikan menurut Lagleret al. (1962) dalam Gusrina(2008) terdapat beberapa organ antara lain adalah pituitari, pineal,

20

thymus, jaringan ginjal, jaringan kromaffin, interregnal tissue, corpuscles of stannus, thyroid, ultibranchial, pancreatic islets, intestinal tissue, intestitial tissue of gonads danurohypophysis. Beberapa hormon sangat berperan dalam proses reproduksi ikan , selain hormon primer dan sekunder yang terdapat dalam tubuh ikan adapula hormon luar (sintesis) yang dapat mempengaruhi proses pematangan gonad ikan. Faktor yang mempengaruhi reproduksi ikan diantaranya faktor lingkungan, sistem hormon dan organ reproduksi. Vitellogenesis adalah proses induksi dan sintesis vitelogenin di hati oleh hormon estradiol-17β, serta penyerapan vitelogenin yang terbawa aliran darah ke dalam oosit. Hipotalamus merespon dengan melepaskan hormon GnRH untuk bekerja pada kelenjar hipofisa. Selanjutnya hipofisa akan melepas hormon FSH yang bekerja pada lapisan teka pada oosit sehingga terjadi sintesis testosteron pada lapisan teka. Setelah itu testosteron masuk kedalam lapisan granulosa dan terjadi proses pengubahan testosteron menjadi estradiol-17β oleh enzim aromatase. Selanjutnya estradiol-17β akan merangsang hati untuk mensintesis vitelogenin yang merupakan bakal kuning telur. Vitelogenin akan dibawa oleh aliran darah menuju gonad dan secara selektif terjadi penyerapan oleh lapisan folikel oosit. Hormon

human

Chorionic

Gonadotropin

(hCG)

adalah

hormon

gonadotropin yang disintesis oleh sel-sel sinsitio-trophobiast dari palsenta dan disekresikan dalam urin wanita hamil muda. Hormon ini merupakan hormon glikoprotein yang mengandung FSH dengan bobot molekul 32000 dan mengandung 236 asam amino sedangkan LH berbobot molekul 30000 mempunyai 2 rantai asam amino, 1 sub unit α yang dibentuk dari 96 asam amino dan 1 Sub unit β terdiri dari 199 asam amino dan mengandung karbohidrat sebesar 18 sampai 45%. Aktivitas hCG menyerupai LH dan sedikit menyerupai FSH. Rantai α sama untuk hormon FSH dan LH, sedangkan rantai β bersifat spesifik untuk setiap hewan tetapi kekuatan biologisnya akan semakin menurun bila kedua subunit digabungkan (Groodsky 1984). Hormon hCG merangsang peningkatan konsentrasi gonadotropin yang berfungsi pada proses vitellogenessis dan kematangan akhir (Aida et al. 1991). Hormon hCG sebagai gonadotropin

21

langsung bekerja pada tingkat gonad untuk menginduksi pematangan gonad akhir dan ovulasi dimana pengaruhnya lebih cepat dari pada GnRH, namun sirkulasinya dalam tubuh ikan pendek (Mylonas et al. 1996). 2.6

Larva Patin Menurut Slembrouck et al. (2005) Karena ukuran telur P. djambal lebih

besar daripada P. hypophthalmus maka larvanyapun mempunyai kuning telur yang lebih besar pula sehingga tidak menampakkan sifat kanibal. Tetapi, jika terjadi kekurangan pakan pada hari pertama kehidupannya, maka kanibalisme bisa juga terjadi tetapi sangat jarang. Larva P. djambal 3 kali lebih besar dari P. hypophthalmus. Akibatnya, pembesaran larva P. djambal lebih mudah dan tingkat pertumbuhan dan tingkat kelangsungan hidup yang tinggi dapat dicapai. Dibandingkan dengan P. hypophthalmus, larva P. djambal timbulnya awal pigmen hitam sudah terlihat pada embrio sebelum menetas. Pada minggu pertama, pigmentasi terbatas pada separuh tubuh bagian depan. Sebelas hari setelah menetas, sirip hampir keseluruhan terbentuk dan larva (juveniles) telah menunjukkan keseluruhan morfologi ikan dewasa. Larva ikan patin cenderung memangsa hewan kecil lain yang hidup di permukaan sedimen atau yang melayang-layang di air, seperti larva insekta dan larva Crustacea. Larva ikan patin siam mempunyai sifat kanibal sehingga untuk menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian pakan. Menurut Sunarma (2007), pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas 18 pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Pemberian pakan selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 4 – 5 jam sekali. Pakan diberikan secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. Pemeliharaan larva atau benih di akuarium dapat dilakukan sampai minimal umur 10 – 14 hari sebelum dipindahkan ke dalam bak pendederan. Pemeliharaan larva dalam akuarium dapat dilihat pada Lampiran 4. Pemindahan benih dilanjutkan dari bak ke kolam biasanya dilakukan setelah pemeliharaan 3 – 4 minggu.

22

2.7

Artemia Artemia merupakan zooplankton dari golongan krustacea. Artemia

digunakan sebagai pakan alami lebih dari 85% species hewan budidaya (Galebert 1991 dalam Umbas 2002). Artemia mempunyai nilai gizi tinggi, dapat menetas dengan cepat, ukurannya relatif kecil dan pergerakan lambat serta dapat hidup pada kepadatan tinggi (Tyas 2004). Benih ikan dan udang pada stadium awal mempunyai saluran pencernaan yang masih sangat sederhana sehingga memerlukan nutrisi pakan jasad renik yang mengandung nilai gizi tinggi. Nauplius artemia mempunyai kandungan protein hingga 63 % dari berat keringnya. Selain itu artemia sangat baik untuk pakan ikan hias karena banyak mengandung pigmen warna yang diperlukan untuk variasi dan kecerahan warna pada ikan hias agar lebih menarik (Tyas 2004). Artemia secara umum mempunyai dua tipe reproduksi yaitu ovipar dan ovovivipar, artemia dewasa hanya akan memproduksi kista ketika keadaan lingkungan memburuk, misalkan kadar garam lebih dari 150 ppt dan kandungan oksigen rendah dan kista akan menetas menjadi larva jika lingkungan membaik atau kembali seperti semula (Mudjiman 1989). Menurut (Linnaeus 1758), klasifikasi dari artemia (Artemia sp.) adalah sebagai berikut : Kingdom

: Animalia

Phylum

: Arthropoda

Subphylum

: Crustacea

Class

: Branchiopoda

Order

: Anostraca

Family

: Artemiidae

Genus

: Artemia

Species

: Artemia sp. (Linnaeus, 1758)

23

Gambar 6. Artemia (https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Artemia_salina_5.jpg)

Menurut Cholik dan Daulay (1985) bahwa telur Artemia atau kista berbentuk bulat berlekuk dalam keadaan kering dan bulat penuh dalam keadaan basah. Warnanya coklat yang diselubungi oleh cangkang yang tebal dan kuat. Cangkang Artemia berguna untuk melindungi embrio terhadap pengaruh kekeringan, benturan keras, sinar ultraviolet dan mempermudah pengapungan (Mudjiman 1989) Kista Artemia yang ditetaskan pada salinitas 15-35 ppt akan menetas dalam waktu 24 - 36 jam, larva Artemia yang baru menetas disebut nauplii. Nauplii dalam pertumbuhannya mengalami 15 kali perubahan bentuk, masing- masing perubahan merupakan satu tingkatan yang disebut instar (Pitoyo 2004). Pertama kali menetas larva artemia disebut Instar I.Nauplius stadia I (Instar I) ukuran 400 mikron, lebar 170 mikron dan berat 15 mikrongram, berwarna orange kecoklatan. a. Penetasan cystae Artemia Penetasan cystae artemia dapat dilakukan dengan 2 cara, yaitu penetasan langsung dan penetasan dengan cara dekapsulasi. Cara dekapsulasi dilakukan dengan mengupas bagian luar kista menggunakan larutan hipoklorit tanpa mempengaruhi kelangsungan hidup embrio.

24

Cara dekapsulasi merupakan cara yang tidak umum digunakan pada pantipanti benih, namun untuk meningkatkan daya tetas dan meneghilangkan penyakit yang dibawa oleh cytae artemia cara dekapsulasi lebih baik digunakan (Pramudjo dan Sofiati 2004). b. Pengayaan Artemia Pengayaan (enrichment) artemia dengan menggunakan beberapa jenis pengkaya misalnya scout emultion, selco atau vitamin C dan B kompleks powder dilakukan selama 2 jam. Selanjutnya diperjelas oleh Subyakto dan Cahyaningsih (2003) bahwa pengayaan pakan alami menggunakan minyak ikan, minyak cumicumi, vitamin ataupun produk komersial lainnya membutuhkan waktu 2-4 jam untuk mendapatkan hasil yang baik. c. Dekapsulasi Artemia Dekapsulasi merupakan suatu proses untuk menghilangkan lapisan terluar dari kista artemia yang keras (korion). Proses ini dilakukan untuk mempermudah bayi artemia untuk keluar dari sarangnya. Dan kalaupun tidak berhasil menetas, kista yang telah didekapsulisasi masih bisa diberikan kepada ikan/burayak dengan aman, karena korionnya sudah hilang, sehingga akan dapat dicerna dengan mudah. 2.8

Cacing Sutra Tubifex sp atau yang biasa disebut cacing sutra biasanya hidup di tempat

dengan aliran air yang lancar. Tubifex sp memiliki manfaat yang besar bagi organisme lain. Sebagai contoh, cacing ini dijadikan pakan untuk ikan. Protein dan lemak yang cukup akan membuat ikan peliharaan menjadi sehat dan bernilai jual tinggi (Pennak, 1978). Keberadaan Tubifex sp di alam tidaklah menentu dan menyebabkan hewan ini berpengaruh pada keberadaannya di pasaran. Pemasaran Tubifex sp sangat terkait dengan kegiatan pembenihan ikan konsumsi dan pembudidayaan ikan hias (Kosiorek, 1974). Cacing sutra memiliki warna tubuh yang dominan kemerah – merahan. Ukuran tubuhnya sangat ramping dan halus dengan panjang 1 – 2 cm. Cacing sutra hidup berkelompok atau bergerombolan karena masing – masing individu

25

berkumpul menjadi koloni yang sulit diurai dan saling berkaitan satu sama lain (Khairuman dkk 2008). Klasifikasi Cacing Sutra Cacing sutra (Tubifex sp), menurut Gusrina (2008) memiliki klasifikasi sebagai berikut : Filum

: Annelida

Kelas

: Oligochaeta

Ordo

: Haplotaxida

Famili

: Tubifisidae

Genus

: Tubifex

Spesies

: Tubifex sp.

Gambar 7. Cacing Sutra Cacing sutra bersifat hermaphrodite atau berkelamin ganda, yaitu kelamin jantan dan betina menyatu dalam satu tubuh. Hal ini mungkin dikarenakan jaringan reproduksinya mampu membentuk gamet jantan dan gamet betina (Khairuman dkk 2008). Habitat dan penyebaran cacing sutra umumnya berada di daerah tropis. Umumnya berada di saluran air atau kubangan dangkal berlumpur yang airnya mengalir perlahan, misalnya selokan tempat mengalirnya limbah dari pemukiman penduduk atau saluran pembuangan limbah peternakan. Dasar perairan yang banyak mengandung bahan–bahan organik terlarut merupakan habitat kesukaannya. Membenamkan kepala merupakan kebiasaan cacing ini untuk mencari makanan dan ekornya yang mengarah ke permukaan air berfungsi untuk bernafas (Khairuman dkk 2008). Pada dasarnya hampir semua jenis ikan menyukai cacing sutra sebagai pakan terutama ikan–ikan yang bersifat karnivora (pemakan daging) dan ikan omnivora (pemakan segalanya), ikan–ikan dewasa pun menyukai cacing sutra.

26

Kandungan nutrisi yang terdapat pada cacing sutra yaitu protein 57%, karbohidrat 2,04%, lemak 13,30%, air 87,19% dan kadar abu 3,60% (Khairuman dkk 2008). Cacing sutra (Tubifex) ini selain termasuk pakan yang kaya akan protein, cacing ini juga mudah dicerna dalam tubuh ikan karena tanpa kerangka (Subandiyah 1990). Cacing ini sangat disukai oleh ikan dan sangat cocok diberikan pada benih ikan, namun tidak cocok untuk induk karena memiliki kandungan lemak yang tinggi sehingga akan menghambat saluran telur. 2.9

Pemeliharaan Larva dan Benih Patin Larva ikan patin siam mempunyai sifat kanibal sehingga untuk

menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian pakan. Menurut Sunarma (2007), pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas 18 pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Pemberian pakan selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 4 – 5 jam sekali. Sunarma (2007) mejelaskan bahwa pemberian pakan larva ikan patin dapat secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. Pemeliharaan larva atau benih di akuarium dapat dilakukan sampai minimal umur 10 – 14 hari sebelum dipindahkan ke dalam bak pendederan. Pemindahan benih dilanjutkan dari bak ke kolam biasanya dilakukan setelah pemeliharaan 3 – 4 minggu. Padat penebaran benih ikan juga mempengaruhi pertumbuhan. Ikan tersebut akan lebih cepat tumbuhnya bila dipelihara pada padat penebaran yang rendah dibandingkan dengan padat penebaran yang tinggi (Fadjar 1986). Ikan apabila dipelihara pada kepadatan populasi yang tinggi maka pertumbuhannya kurang pesat. Persaingan untuk mendapatkan makanan dan oksigen akan sering terjadi. Populasi yang padat juga cenderung merusak kualitas air karena kotoran (feces) ikan itu sendiri. Padat penebaran larva minimal yaitu 15 ekor/liter dan maksimal yaitu 40 ekor/liter. Hal tersebut mengingat bahwa larva ikan patin bersifat kanibal. Biasanya pemberian pakan dilakukan setelah 36 jam dari penetasan. Hal ini

27

dikarenakan larva masih mempunyai cadangan makanan berupa kuning telur (yolk sack) di dalam tubuhnya sehingga larva belum membutuhkan makanan tambahan. Pakan tambahan yang diberikan pertama kali kepada larva adalah artemia. Artemia diberikan kepada larva selama 7 hari dengan frekuensi pemberian pakan 12 kali/hari. Setelah benih patin berumur 7 hari, pakan yang diberikan diganti dengan cacing sutera (Tubifex sp.) dengan frekuensi pemberian pakan 4 kali/hari. Cacing sutera diberikan ke pada benih sampai dengan umur 14 hari.

BAB III BAHAN DAN METODE 3.1

Tempat dan Waktu Praktikum ini dilaksanakan di Hatchery Ciparanje dan Labolatoriun

Aquakultur Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran dimulai pada tangga 22 April 2017. 3.2

Alat dan Bahan

3.2.1 Alat Praktikum 

Pemijahan Buatan

Alat waring serok bak penetasan akuarium pemeliharaan heater peralatan aerasi plastik trasbag spuit mangkuk bekerglas handuk gelas pelastik heandcounter timbangan digital 

Keterangan wadah penyimpanan induk sementara alat menhambil induk wadah penetasan telur ikan patin wadah pemeliharaan larva dan benih menaikan suhu pada media pemeiharaan instalasi suplai udara pada media pemeliharaan plastik hitam penutup wadah pemeliharaan suntikan 5 ml wadah telur setelah streaping wadah sperma setelah streaping alas membungkus induk ketika streaping wadah pengamatan larva menghitung jumlah larva dan artemia menimbang sampel ikan

Kebutuhan akan artemia

Alat Botol plastik Timbangan digital Alumunium foil Saringan/tissue Selang sifon Sendok plastik

Keterangan Wadah penetasan artemia Menghitung bobot garam Wadah kista artemia Menyaring artemia Memanen artemia Mengambil artemia

28

29

3.2.2 Bahan Praktikum 

Pemijahan Buatan

bahan induk jantan induk betina HCG/chorulo n Ovaprim garam korosok cacing sutra NaCl Aquabides PK

keterangan induk patin jantan siap pijah yang sudah mengeluakan sperma induk patin betina yang sudah matang gonad Hormon Chorionic Gonadotropin, berpedan dalam pemecahan dinding folikel hormon analog merangsang teerjadinya ovulasi meningkatkan salinitas media penetasan artemia pakan benih patin larutan fisiologis pengencer sperma pengenceran ovaprim kalium permanganat, oksidator untuk membunuh ektoparasit dan bakteri

tanahliat/air susu 

Kebutuhan Akan Artemia

bahan Kista Artemia Artemia Garam 3.3

menghilangkan sifat adhesive telur

keterangan Sebagai artemia yang ditetaskan Pakan larva ikan patin Untuk membuat wadah penetasan artemia bersalinitas

Tahapan Praktikum

3.3.1 Persiapan Praktikum a. Seleksi induk 

Disurutkan air kolam Induk menjadi 30%, untuk mempermudah dalam pengambilan induk



Dilakukan penjaringan induk menggunakan plastik bag dengan hati-hati



Diperiksa kelengkapan organ dan kesehatan induk



Dipindahkan induk yang masuk kriteria ke kolam untuk di berok

b. Pengecekan kematangan gonad induk ikan patin 

Dilakukan pengecekan secara visual dan pada oosit

30



Telur yang telah matang gonad berwarna bening atau transparan, bentuknya bundar dan ukurannya seragam, tidak mudah pecah apabila ditekan serta posisi sel telur berada ditengah



Di induk jantan yang terseleksi mempunyai ciri-ciri alat kelamin yang menonjol dan berwarna merah serta mengeluarkan sperma apabila dilakukan pengurutan pada perut menuju lubang genitalnya



Dimasukan kedalam kolam inkubasi dan diberok selama 8 – 12 jam Induk ikan patin yang telah siap diovulasi.

3.3.2 Pelaksanaan Praktikum a. Penyuntikan 

Diambil dan disuntik dengan hormon HCG (Human Clhorionic Gonadotropin). Dosis yang diberikan kepada induk betina adalah 0,5 ml/kg induk yang telah di berok.



Dilarutkan terlebih dahulu HCG dengan larutan fisiologis 1 ml yang telah tersedia dalam kemasan bersama dengan ampul yang berisis HCG.



Dilakukan penyuntikan kedua setelah 24-26 jam penyuntikan pertama.



Digunakan hormon ovaprim pada penyuntikan kedua dengan dosisi yang digunakan adalah 0,6 ml/kg untuk induk betina dan 0,3 ml/kg untuk induk jantan.



Dilakukan penyuntikan pada punggung sebelah kanan atau di bawah sirip punggung.



Dimasukan kembali induk ke kolam inkubasi selama 8-12 jam. Dilakukan pengecekan pada jam ke-6

b. Stripping 

Dilakukan pengecekan induk betina, terlebih dahulu induk jantan diambil spermanya.



Dibuang air seni induk jantan dengan cara menekan secara lembut daerah perut di depan alat kelamin induk jantan.



Dilakukan pengeringan papila ikan dengan menggunakan handuk kering agar tidak terjadi percampuran antara sperma dengan air.

31



Diambil sperma dengan cara mengurut bagian perut induk jantan menuju papila dan ditampung sperma di dalam wadah yang telah dibersihkan dan dikeringkan sebelumnya kemudian disimpan di dalam termos yang teah berisi es.



Setelah induk jamntan selesai, dilakukan pengecekan induk betina dengan mengurut bagian perut induk betina ke arah organ genitalnya, apabila sudah keluar sel telur maka sudah siap. Sedangkan induk yang alat kelaminnya belum membengkak serta belum mengeluarkan telur pada saat diurut, dimasukkan kembali ke dalam kolam inkubasi dan dilakukan pengecekan kembeli 3 jam kemudian.



Diangkat dan dikeringkan induk yang siap distriping dengan handuk untuk menghindari masuknya air ke dalam waktom.



Dilakukan striping dengan metode kering (dry stripping). Dilakukan dengan cara mengurut bagian perut induk betina ke arah papila, kemudian ditampung telur yang keluar.



Dimasukan sperma ke dalam telur dan diaduk dengan menggunakan bulu ayam atau benda halus lainnya sampai sperma dan telur tercampur merata. Pengadukan dilakukan selama ± 30 detik.



Ditambah larutan (NaCl) sambil diaduk dan kemudian ditambahkan air bersih sedikit demi sedikit sambil terus diaduk selama 1-2 menit.



Di cuci 2-3 kali dengan air bersih.

c. Penetasan Telur 

Dimasukan telur ke dalam bak yang telah terpasang waring, agar telur menempel di waring tersebut.



Disebar telur secara merata ke dalam kolam.



Setelah 18 jam dari pembuahan, terlihat adannya telur yang mulai menetas.

d. Pemeliharaan Larva 

Dimasukan 800 ekor larva ikan patin kedalam wadah akuarium pemeliharaan yang sudah terpasang aerasi dan heater sebelumnya.

32



Pemberian pakan dilakukan setelah 36 jam dari penetasan. Hal ini dikarenakan larva masih mempunyai cadangan makanan berupa kuning telur (yolk sack) di dalam tubuhnya sehingga larva belum membutuhkan makanan tambahan.



Sementara itu dipersiapkan pakan untuk larva patin yaitu artemia.



Dilakukan persiapan wadah penetasan artemia dengan salinitas 30 ppt dengan cara menambahkan 30 gram garam ke dalam wadah plastik yang berisi air 1L, di beri aerasi agar tercampur.



Dimasukan kista artemia yang telah di timbang terlebih dahulu ke dala wadah penetasan. Artemia akan menetas sekitar 24 jam setelah dimasukan ke dalam wadah.



Setelah 24 jam artemia dapat di panen dengan cara di sifon.



Setelah artemia di panen dan kira-kira yolk sack larva patin hampir habis, di ambil 3 sampel larva artemia ke dalam wadah gelas plastik sebagai sampel untuk menentukan kebutuhan artemia untuk sekali makan.



Diberikan pakan artemia selama 5 hari dengan frekuensi pemberian pakan 12 kali/hari atau 2 jam sekali pemberian pakan.



Diberi dengan cara menyaring artemia yang sudah dihitung untuk kebutuhan larvanya kemudian disari terlebih dahulu artemia menggunakan tisu agar air dari pemeliharaan artemia tidak ikut masuk ke wadah pemeliharaan larva



Setelah benih patin berumur 7 hari, pakan yang diberikan diganti dengan cacing sutera (cacing tubifex) dengan frekuensi pemberian pakan 4 kali/hari.



Dilakukan penyacahan terlebih dahulu sebelum diberikan kepada larva artemia

3.4

Metode Metode yang digunakan pada kegiatan praktikum pemijahan buatan ikan

patin dengan menggunakan hormon ovaprim dan perhitungan FCR, SR, GR dan

33

SGR dilakukan secara deskriptif. Metode deskriptif ini dilakukan dengan membandingkan antara data kelas dengan data kelompok untuk mengetahui apakah adanya perbedaan dari hasil berdasarkan parameter yang diamati pada saat praktikum. 3.5

Parameter yang Diamati

3.5.1 Teknik Pemijahan Ikan Patin Secara Buatan 3.5.2 Penetasan Artemia Parameter yang diamati dalam penetasan artemia adalah sebagai berikut 

HR HR atau derajat penetasan pada artemia dapat dihitung sebagai berikut :

3.5.3 Kebutuhan Larva Patin Akan Artemia 3.5.4 SR Larva SR merupakan nilai derajat kelangsungan hidup. Nilai SR dapat dihitung dengan rumus berikut: SR = Nt/No x 100% Keterangan : SR Nt No

: Tingkat kelangsungan hidup : Jumlah ikan di akhir pemeliharaan : Jumlah ikan di awal pemeliharaan

3.5.5 SR Benih Nilai SR dapat dihitung dengan rumus berikut: SR = Nt/No x 100% Keterangan : SR Nt No

: Tingkat kelangsungan hidup : Jumlah ikan di akhir pemeliharaan : Jumlah ikan di awal pemeliharaan

BAB IV

4.1

HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil dan Pembahasan Kelas Berdasarkan praktikum yang telah dilaksanakan, didapatkan hasil kebutuhan

larva patin akan artemia adalah sebagai berikut Tabel 5. Kebutuhan Larva Patin Akan Artemia Kelom 1 pok 2 4 6 8 0 1 5 5 5 6 6 2 3 3 3 5 5 3 2 4 6 8 4 4 3 3 3 3 3 5 3 3 3 3 4 6 3 3 3 3 3 7 4 4 4 4 4 8 3 3 3 3 3 9 4 3 5 5 5 10 3 3 3 3 3 11 4 3 3 3 2 12 2 2 2 2 2 Rataan 3 3 4 4 4

1 2 6 5 4 3 4 3 5 3 5 3 2 4 4

1 4 5 5 7 5 3 3 5 4 6 2 3 4 4

1 6 5 4 1 5 3 3 5 4 6 2 4 4 4

1 8 5 4 3 5 4 3 5 4 6 2 2 4 4

2 0 5 2 6 4 4 4 5 4 4 2 4 4 4

2 2 5 2 5 4 4 4 5 4 4 3 2 3 4

2 4 4 2 9 3 3 4 5 4 4 3 4 3 4

Jam Ke2 2 3 3 6 8 0 2 5 5 5 5 3 3 3 2 6 9 9 9 3 2 2 2 3 3 3 3 4 5 5 5 5 5 4 4 4 4 4 4 5 5 5 4 4 4 4 6 4 2 2 2 5 5 5 5 4 4 4 4

3 4 6 2 9 4 3 5 4 4 4 6 2 3 4

3 6 6 2 9 4 3 5 4 4 4 6 3 3 4

4 0 6 4 8 4 2 5 4 4 3 6 2 4 4

4 4 6 4 7 4 2 5 4 4 3 6 3 4 4

4 8 6 4 8 3 2 5 4 4 3 6 1 4 4

5 2 6 3 9 3 2 5 4 4 4 9 3 4 5

5 6 6 3 7 3 3 5 4 4 4 9 2 4 5

6 0 6 3 8 3 3 5 4 4 4 9 3 4 5

6 4 6 2 8 3

6 8 6 2 9 3

7 2 6 2 9 3

3 5 5 4 3

3 5 5 4 3

3 5 5 4 3

9 1 4 4

9 3 4 5

9 1 4 5

Rataan (ekor)

Tabel kebutuhan larva ikan patin akan artemia menunjukan hasil yang bervariasi dan sebagian rata-rata kebutuhan akan artemia akan meningkat terutama pada jam ke 4 pertama. Pentingnya manajemen pemberian pakan pada pemeliharaan larva ikan patin akan mempengaruhi survival rate atau kelangsungan hidup dari larva ikan patin mengingat larva ikan patin memiliki sifat kanibalisme. Sesuai dengan literatur yang menyebutkan larva ikan patin siam mempunyai sifat kanibal sehingga untuk menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian pakan. Menurut Sunarma (2007), pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas 18 pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia.

34

5 3 7 3 3 4 4 4 4 5 3 4 4

35

Keberhasilan pembesaran larva bisa terganggu apabila tingkat pemberian pakan yang optimal tidak dipatuhi. Karena larva membutuhkan jumlah tertentu dari Artemia per pemberian pakan (Slembrouck et al. 2005). 4.2

Hasil dan Pembahasan Kelompok

4.2.1 Teknik Pemijahan Buatan Ikan Patin dengan Menggunakan HCG dan Ovaprim  Seleksi Induk Sebelum melakukan pemijahan perlu dilakukannya seleksi induk pada ikan patin jantan maupun betina hal ini bertujuan supaya benih ikan patin yang dihasilkan berkualitas baik. Induk betina yang telah matang gonad memiliki ciriciri yang mudah dibedakan dengan induk ikan jantan atau induk ikan betina yang belum dewasa. Postur tubuh induk ikan betina cenderung melebar dan pendek, perut lembek, halus dan membesar ke arah anus. Alat kelamin (urogenital) membengkak dan membuka serta berwarna merah tua, sedangkan postur tubuh induk jantan relatif lebih langsing dan panjang. Urogenital membengkak dan berwarna merah tua, apabila bagian perut dekat lubang kelamin diurut akan mengeluarkan cairan putih kental (sperma) (Sunarma, 2007). Ciri-ciri induk ikan patin yang siap dipijahkan yaitu sebagai berikut : Tabel 2. Ciri-ciri induk yang siap dipijahkan jantan abu-abu kehitam-hitaman pada bagian punggung mulai dari daerah kepala sampai bagian ekor dan putih keperakan pada bagian perut organ tubuh lengkap, tubuh tidak cacat dan tidak ada kelainan bentuk,alat kelamin tidak cacat (rusak), tubuh bebas dari jasad patogen aktif/lincah, mudah terkejut, sangat respon terhadap pemberian pakan. genital membengkak dan berwarna merah

Betina abu-abu kehitam-hitaman pada bagian punggung mulai dari daerah kepala sampai bagian ekor dan putih keperakan pada bagian perut organ tubuh lengkap, tubuh tidak cacat dan tidak ada kelainan bentuk,alat kelamin tidak cacat (rusak), tubuh bebas dari jasad pathogen aktif/lincah, mudah terkejut, sangat respon terhadap pemberian pakan. genital membengkak dan berwarna merah

keluar sperma jika perut diurut kearah anus

perut membesar kearah anus

bagian perut lebih ramping

bagian perut terasa empuk dan halus ketika diraba

36

Induk yang telah diseleksi diberok selama 1 – 2 hari. Tujuan pemberokan adalah untuk mengurangi kadar lemak pada saluran pengeluaran telur sehingga pada saat pengeluaran telur dapat lancar karena saluran pengeluaran telur bebas dari lemak. Induk ikan tidak diberi makan selama masa pemberokan (Perangin angin, 2003). Selain itu pemberokan bertujuan agar saluran pengeluaran telur bebas dari lemak sehingga ketika proses pengeluaran telur tidak terhambat dan telur tidak terkontaminasi dengan lemak dan apabila kandungan lemak terlalu tinggi, dapat menghambat proses pemijahan atau striping, sehingga telur susah keluar. Selain mengurangi lemak, pemberokan juga berguna untuk membuang kotoran yang dapat menggangu saat pengurutan telur dan bisa mengotori telur. Jumlah indukan yang digunakan yaitu 1 berbanding 1 dan indukan tersebut dimasukan kedalam kolam pemberokan sebelum dilakukannya pemijahan buatan. Berikut merupakan bagan alir dari proses pemijahan buatan ikan patin : Diseleksi induk patin dengan perbandingan 1 jantan dan 1 betina

Dipindahkan induk yang masuk kriteria ke dalam bak pemberokan

Diberok induk yang telah diseleksi selama 1 malam

Gambar 8. Bagan Alir Seleksi Induk Ikan Patin

37

Gambar 9. Pemberokan Induk Ikan Patin  Pemijahan Buatan Setelah induk yang diseleksi selesai di berok, bisa dimulai kegiatan pemijahan buatan pada ikan patin. Sebelum melakukan kegiatan pemijahan buatan, terlebih dahulu dipersiapkan bak penetasan untuk menyipan telur yang yang sudah diperrtilisasi nanti. Bak ini disetting dengan water heater bersuhu 30oC serta dipasang instalasi aerasi yang menyala, kemudian bak tersebut diberi waring atau jaring di dalamnya, agar telur yang sudah di fertilisasi menempel pada waring tersebut dan tidak jatuh dan menempel di dasar, karen telur ikan patin bersifat menempel (adhesif). Setelah itu bak ditutup menggunakan plastik

38

Gambar . Bak Penetasan Telur Ikan Patin Setelah persiapan bak penetasan telur sudah selesai, dilakukan penimbangan pada induk ikan patin. Penimbangan ini bertujuan untuk mengetahui dosis hormon yang dibutuhkan untuk pemijahan. Setelah dilakukan penimbangan, dilakukan lah penyuntikan hormon sebanyak dua kali. Penyuntikan yang pertama Penyuntikan ke-1

bertujuan

untuk

mempersiapkan

atau

mematangkan

gonad

serta

meningkatkan kepekaan oosit dan penyuntikan kedua pada induk betina bertujuan untuk memicu ovulasi dan pada induk jantan bertujuan untuk meningkatkan kuantitas sperma. Pemijahan dilakukan secara buatan melalui pemberian rangsangan hormon untuk proses ovulasi. Hormon yang digunakan adalah Ovaprim dan HCG. Standar dosis yang diberikan untuk induk betina adalah 0,5 ml/kg sedangkan untuk jantan adalah 0,2 ml/kg (bila diperlukan). Penyuntikan pertama menggunakan HCG sebanyak 1/3 bagian dari dosis total dan sisanya 2/3 bagian lagi diberikan pada penyuntikan kedua dengan menggunakan ovapri atau penyuntikan pertama yaitu menggunakan hormon HCG (Human Clhorionic Gonadotropin) dimana dosis HCG yang diberikan yaitu 500 IU/Kg bobot tubuh ikan. Dimana bobot yang didapatkan pada praktikum ini yaitu untuk bobot ikan jantan sebesar 2 Kg dan ikan betina sebesar 5 Kg. Jadi dosis hormon HCG yang diberikan untuk ikan jantan adalah 500 x 2 = 1000 IU, sedangkan untuk ikan betina yaitu 500 x 5 =

39

2500 IU HCG. Pengecekan ovulasi dilakukan setelah 6 – 8 jam dari penyuntikan kedua. Pengecekan ini akan menentukan saat pengeluaran telur untuk proses pembuahan. Pengurutan induk betina dilakukan dengan perlahan di bagian perut ikan. Proses awal mulai dari lubang urogenital diurut ke arah lubang tersebut. Bila terasa ringan dan telur keluar dengan mudah dapat dilanjutkan dengan bagian yang lebih ke atas dengan arah yang sama sampai telur habis. Bila pengurutan terasa berat harus ditunggu lagi dalam beberapa jam sampai terasa ringan. Telur yang siap diovulasikan akan mudah keluarnya dari lubang urogenital bila diurut. Telur dikumpulkan dalam wadah dan diusahakan jangan sampai terkena air atau tetap kering sebelum dibuahi. Proses pembuahan didahului dengan penyiapan sperma yang dikeluarkan dari induk jantan. Sperma ditampung dalam wadah dan diencerkan dengan larutan NaCl 0,9% atau larutan Ringer dengan perbandingan sekitar 1 : 100. Sperma yang tercampur urine (air kencing ikan) sebaiknya tidak digunakan. Pencampuran telur dan sperma dalam wadah dapat dilakukan dengan mengaduk keduanya menggunakan bulu ayam atau kuas halus. Pengadukan harus merata dengan dilakukan pemberian air sedikit demi sedikit. Telur yang sudah terbuahi dapat dicuci dengan air bersih beberapa kali untuk menghilangkan epitel yang terikut saat pemijahan dan cairan sperma. Tempat telur yang disiapkan berupa mangkok atau piring dari keramik atau petridisk dari kaca. Tempat telur harus dalam keadaan licin pada bagian permukaan agar tidak rusak karena gesekan. Larva patin yang telah menetas kemudian dimasukan kedalam akuarium yang telah ditutupi dengan plastik gelap atau berwarna hitam serta ditambah dengan penggunaan heater yang bertujuan untuk menjaga suhu media pemeliharaan, padat tebar pada media pemeliharaan yaitu sebanyak 800 ekor larva ikan patin. Pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Pemberian pakan selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 4 – 5 jam sekali.

40

Rangakain pemijahan buatan ikan patin dengan teknik penyuntikan HCG dan ovaprim dapat dilihat dalam bagan alir berikut :

\

Persiapkan bak penetasan telur hasil fertilisasi dengan settingan water heater bersuhu 30oC dengan kondisi aerasi menyala

Penimbangan induk dan penyuntikan induk dengan HCG

Penyuntikan dilakukan sebanyak 2 kali, penyuntikan kedua dengan menggunakan ovaprim dilakukan setelah 8 jam proses penyuntikan pertama Dilakukan proses striping dan fertilisasi setelah 8 jam dari proses penyuntikan kedua

Setelah sehari telur akan menetas dan larva ikan patin dapat diambil Gambar 10. Bagan Alir Teknik Penyuntikan HCG dan Ovaprim 4.2.2 Teknik Penetasan Artemia Kultur pakan alami yang dibutuhkan sebagai pakan larva ikan patin yaitu teknik penetasan artemia yang dimana artemia dipilih sebagai pakan larva ikan patin dikarenakan ukuran artemia yang sesuai dengan bukaan mulut larva ikan patin dan kandungan gizi yang terdapat pada artemia yang sangat dibutuhkan oleh larva ikan patin yaitu kadar protein yang tinggi. Teknik penetasan artemia diawali dnegan persiapan wadah sebagai media penetasan, wadah yang digunakan yaitu botol air mineral berisikan volume air sebanyak 1 liter air, Campurkan air dalam botol dengan garam sebanyak 30 gram dikarenakan salinitas yang dibutuhkan untuk media penetasan yaitu sebesar 30 ppt. Timbang artemia sebanyak 3x untuk penggunaan selama 3 hari dengan berat masing-masing 0.5 gram, 1.0 gram dan 1.5 gram dan simpan dalam plastik ziplock lalu dipersiapkan wadah penyimpanan kultur berisikan air hingga ¼ botol kultur dengan settingan water heater 30oC

41

lakukan kultur bertahap selama 3 hari mulai dari berat 0.5 gram sampai dengan 1.5 gram dengan settingan aerasi yang kuat dan suhu berskisar 30°C. Artemia yang berhasil menetas akan terlihat berwarna orannge cerah dan berada pada bagian tengah atau mendekati permukaan air pada media. Rangkaian teknik penetasan artemia dapat dilihat pada bagan alir berikut : Siapkan botol air mineral berisikan volume air sebanyak 1 liter air

Campurkan air dalam botol dengan garam sebanyak 20 gram

Timbang artemia sebanyak 3x untuk penggunaan selama 3 hari dengan berat masing-masing 0.5 gram, 1.0 gram dan 1.5 gram dan simpan dalam plastik ziplock

Persiapkan wadah penyimpanan kultur berisikan air hingga ¼ botol kultur dengan settingan water heater 30oC

Lakukan kultur bertahap selama 3 hari mulai dari berat 0.5 gram sampai dengan 1.5 gram dengan settingan aerasi yang kuat dan suhu berskisar 30°C Gambar 11. Bagan Alir Teknik Penetasan Artemia 4.2.3 Teknih Pemeliharaan Larva dan Benih Pemeliharaan larva dimulai dari penebaran larva ikan patin pada media pemeliharaan dengan padat penebaran larva minimal yaitu 800 ekor pastikan suhu media pemeiharaan berada pada suhu 30°C dan media pemeliharaan selalu tertutup dengan plastik berwarna hitam . Hal tersebut mengingat bahwa larva ikan patin bersifat kanibal. Pemberian pakan dilakukan setelah 36 jam dari penetasan. Hal ini dikarenakan larva masih mempunyai cadangan makanan berupa kuning telur (yolk sack) di dalam tubuhnya sehingga larva belum membutuhkan makanan tambahan.

42

Pakan tambahan yang diberikan pertama kali kepada larva adalah artemia. Artemia diberikan kepada larva selama 7 hari dengan frekuensi pemberian pakan 12 kali/hari atau 2 jam sekali pemberian pakan. Cara pemberian pakan alami berupa artemia yaitu memberikan artemia yang telah menetas dan dicuci bersih tersebut secara merata kedalam media pemeliharaan dengan menggunakan gayung kecil. Setelah benih patin berumur 7 hari, pakan yang diberikan diganti dengan cacing sutera (cacing tubifex) dengan frekuensi pemberian pakan 4 kali/hari. Cacing sutera diberikan ke pada benih sampai dengan umur 14 hari. Setelah umur benih berumur >14 hari, pemberian pakan dilanjutkan dengan menggunakan pakan buatan atau pellet. Pemberian pellet dilakukan sampai benih berumur 30 hari atau sampai benih siap dipanen dengan dosis pemberian pakan tersebut adalah 20 – 30% dari biomas/hari. Setelah larva menjadi ukuran benih maka dilakukan pemanenan dan penghitungan SR dari larva dan SR dari kelompok 12 didapatkan sebagai berikut : SR SR

= Nt/No x 100% = 18/800 x 100% = 2,25%

Hasil dari perhitungan SR larva ikan patin ini terbilang rendah dikarenakan berada dibawah 10% hal ini dikarenakan tingkat kesulitan dalam pemeliharaan larva ikan patin tergolong sulit terutama mengingat sifat larva ikan patin ini yang kanibal sehingga selain menejemen pemberian pakan yang harus tepat dan sesuai juga media pemeliharaan harus lebih diperhatikan kebersihannya dikarenakan pada fase larva cenderung lebih sensitif terhadap perubahan lingkungan yang terjadi sekecil apapun itu.

BAB V PENUTUP 5.1

Kesimpulan Berdasarkan pengamatan, dapat disimpulkan bahwa :

1.

Dalam memijahkan ikan patin biasanya dilakukan secara buatan karena belum ada yang berhasil memanipulasi lingkungan untuk membujuk ikan patin mau memijah secara alami.

2.

Penyuntikan dilakukan dua kali, dimana penyuntikan pertama bertujuan untuk merangsang oosit dan penyuntikan kedua bertujuan untuk ovulasi.

3.

Penetasan artemia dilakukan dengan cara menyaring bagian larva artemia yang memiliki cangkang dan yang tidak ada cangkang dan dilakukan penyiraman pada larva.

4. 5.2

SR Akhir yang diperoleh pada kelompok kami sebesar 2,25% Saran

Berdasarkan praktikum yang dilakukan, diharapakan praktikan mampu melakukan praktikum dengan

prosedur yang baik dan benar serta diharapkan dapat

memahami materi agar diperoleh data yang akurat

43

DAFTAR PUSTAKA Aida, K., A. Shimizu, K. Asahina, and I. Hanyu. 1991. Photoperiodism in reproduction in bitterlings. p. 139-141. Proceedings of The Fourth International Symposium on The Reproductive Physiology of Fish. Univ. of East Anglia, Norwich, U.K. Cholik, F.; Daulay, T., 1985. Artemia salina (kegunaan, Biologi dan Kulturnya). INFIS Manual Seri No.12. Direktorat Jendral Perikanan dan International Development Research Centre. Djariah, A.S. 2001. Budi Daya Ikan Patin. Kanisius. Yogyakarta. 87 hal. Effendie. M.I. 2002. Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nusantara. Yogyakarta. Fadjar. M., 1986. Pengaruh Pemberian Pakan Buatan dengan Kadar Protein Berbeda terhadap Konsumsi Maksimum Benih ikan lele (Clarias batracus.L). Karya Ilmiah Fakultas Perikanan IPB. Bogor. Gusrina, 2008. Budidaya Ikan Jilid I. Direktorat Pembinaan Sekolah Menengah Kejuruan. PT. Macaan Jaya Cemerlang. Klaten. Hayati, U. 2004. Keadaan Pembenihan Ikan Patin pada Hatchery Suhaimi di Desa Koto Masjid Kecamatan 13 Koto Kampar Kabupaten Kampar Provinsi Riau. Usulan Praktek Umum. UIR. Pekanbaru. 28 Hernowo, 2001. Pembenihan Patin Skala Kecil dan Besar, Solusi Permasalahan. Penerbar Swadaya, Jakarta. 66 hal. Hernowo. Pembenihan Patin. 2005. Penebar Swadaya. Khairuman. 2007. Budidaya Patin Super. Agromedia Pustaka. Jakarta 134 hal. Khairuman dan Amri. 2002. Membuat Pakan Ikan Konsumsi. PT Agromedia Pustaka. Depok. Khairuman., K. Amri, dan T. Sihombing. 2008. Budidaya Lele Dumbo di Kolam Terpal. PT. Agromedia Pustaka. Depok. Kordik, M.Gufran.H. 2005. Budidaya Ikan Patin, Biologi, Pembenihan dan Pembesaran. Yayasan Pustaka Nusantara. Yogyakarta.. Mudjiman, A. 1989. Udang Renik Air Asin Artemia salina. Jakarta: Penerbit Bhatara. Pitcher TJ., Cavarlho GR. Molecular Genetic in Fisheries. Chapman & Hall, Inc. London

44

45

Sinjal, Hengki. 2014. Efektifitas Ovaprim terhadap Lama Waktu Pemijahan, Daya Tetas Telur dan Sintasan Larva Ikan Lele Dumbo, Clarias gariepinus. Budidaya Perairan. Vol. 2 No. 1 : 14-21 Subandiyah, S. , Subagia, J. , dan Tarupay E. 1990. Pengaruh Suhu dan Pemberian Pakan Alami (Tubifex sp. dan Daphnia sp.) terhadap Pertumbuhan dan Daya Kelangsungan Hidup Ikan Botia (Botia macracantha Bleeker). Bul l. Penel. Perikanan darat. Vol. 9. No. l. 68. Subyakto, S. dan S. Cahyaningsih. 2003. Pembenihan Kerapu Skala Rumah Tangga. PT Agromedia Pustaka, Depok Sunarma, A. 2007. Budidaya Ikan Patin (Pangasius pangasius). Diakses dari http: www.dkp.go.id. Susanto, Heru dan Khairul Amri. 2002. Budidaya Ikan Patin. Jakarta: Penebar swadaya. Tyas, I. K. 2004. Pengkayaan Pakan Nauplius Artemia dengan Korteks Otak Sapi untuk Meningkatkan Kelangsungan Hidup, Pertumbuhan, dan Daya Tahan Tubuh Udang Windu (Penaeus monodon. Fab) Stadium PL 5PL 8. Skripsi.Jurusan Biologi FMIPA UNS. Surakarta. Umbas, A.P. 2002. Pengaruh Dosis Pengkayaan 0, 6, 7, 8, 9, 10 ml/ 400ml dan Waktu Dedah Terhadap Kinerja Pertumbuhan Artemia. Skripsi. Program Studi Budidaya Perairan. Institut Pertanian Bogor. 54 hlm. Yaron Z. 1995. Endocrine Kontrol of Gametogenesis and Spawning Induction In The Carp. Aquculture,129:49-73. Zairin JrM. 2003. Endokrinologi dan perannya bagi masa depan perikanan Indonesia. Orasi ilmiah. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor. 40 hal.

46

LAMPIRAN

Lampiran 1. Alat dan Bahan

Alat Suntik

Hormon

Gelas ukur Aquades

Timbangan

Wadah Plastik + air

47

Akuarium yang di Bungkus Plastik

Selang Aerasi

Gelap

Sendok

Hitter

Bak Fiber/Bak Penetasan Telur

Garam + Tisu

48

Lampiran 2. Kegiatan Praktikum

Pemberokan Induk

Pemasangan Waring pda Bak Penetasan

Penyuntikan Ke-1

Penyuntikan Ke-2

Kultur Artemia Sampling untuk Pemberian Pakan Larva

49

Lampiran 3. Prosedur proses penetasan Artemia Persiapan Alat dan Bahan Tambahkan air 1L kedalam Botol air mineral 1,5 L Masukan garam 20 g ke dalam botol air mineral Timbang kista Artemia sebanyak 0,5 g, 1 g dan 1,5 g masukan kista Artemia ke dalam wadah penetasan Lama waktu penetasan sekitar 24 jam, kemudian dipanen

50

Lampiran 4. Prosedur Kegiatan Proses Pemijahan Buatan Pemilihan Induk Patin yang siap memijah

Persiapan bak berok

Pemberokan Induk Patin selama sehari Persiapan peralatan untuk penyuntikan Dilakukan proses penyuntikan hormon dengan menggunakan ovaprim Dilakukan proses stripping dan fertilisasi Telur yang sudah di fertilisasi disimpan dalam bak penetasan Setelah 28 jam telur menetas dan siap untuk dipanen