Informe 1

 

 

FARMACIA Y BIOQUÍMICA

UNIVERSIDAD PRIVADA NORBERT WIENER  WIENER  Facultad de Farmacia y Bioquímica

FARMACGNOSIA INFORME N* 1 CONTROL BOTANICO DE UNA ESPECIE VEGETAL Y ELABORACION DE ESQUEMAS DESCRIPTIVOS DE DROGAS Y VEGETALES Docente

: Q.F Rivas Walter

Turno

: Noche

Sección

: FB6N1

Grupo

:E

Ciclo

: Sexto

Integrantes

:

1.  Carrión Alva, DIEGO 2.  Martínez Huapaya, LEONARDO 3.  Mendoza Quispe, YULIANA 4.  Valdez Huamani, CAROLINA 2019

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INFORME N* 1 CONTROL BOTANICO DE UNA ESPECIE VEGETAL Y ELABORACION DE ESQUEMAS DESCRIPTIVOS DE DROGAS Y VEGETALES

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Contenido INTRODUCCION ............................................................................................................................. ............................................................................................................................. 4 MARCO TEORICO.................................................................... ........................................................................................................................... ....................................................... 5 EXAMEN EN FRESCO...................................................................................................................... ...................................................................................................................... 8 TINCIONES Y RECONOCIMIENTOS HISTOQUIMICOS ..................................................................... ..................................................................... 8 LUGOL............................................................................................................................. ........................................................................................................................................ ........... 8 SAFRANINA- VERDE RÁPIDO ..................................................................................................... ..................................................................................................... 9 CORTES HISTOLOGICOS DE UNA PLANTA ................................................................................... 10 CORTE TRANSVERSAL TRANSVER SAL DEL TALLO ................................................................................................ ................................................................................................ 11 CORTE LONGITUDINAL DEL TALLO ..................................................................................... .............................................................................................. ......... 12 HISTOLOGIA DE LA L A HOJA ................................................................... ............................................................................................................. .......................................... 12 Tipos de hojas según la estructura del limbo y según tengan o no peciolo. .......................... 13 Tipos de hojas con morfología diferente. ............................................................................... 14 TEJIDOS:.............................................................................................................................. TEJIDOS:........................................................... ............................................................................ ......... 14 Epidermis:............................................................................................................ ................................................................................................................................ .................... 14 Mesófilo: ................................................................................................................................. ................................................................................................................................. 15 BIBLIOGRAFIA .............................................................................................................................. .............................................................................................................................. 1 16 6

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INTRODUCCION Históricamente los productos de origen vegetal han pasado de tener un papel hegemónico en el arsenal terapéutico occidental a un discreto segundo plano, para volver a tener, en las últimas décadas, una presencia cada vez mayor.  La atención primaria de salud de hasta un 80% de la población de los países en desarrollo se basa en la medicina tradicional, por tradición cultural o porque no existen otras opciones. En los países ricos, muchas personas recurren a diversos tipos de remedios naturales porque consideran que «natural» es sinónimo de inocuo. Sin embargo, a medida que aumenta el uso de las medicinas tradicionales o alternativas, también aumenta el número de informes sobre reacciones adversas. Por esa razón, es necesario necesario que los consumid consumidores ores de todo el mundo dispongan de información e instrumentos que les permitan acceder a tratamientos adecuados, seguros y eficaces. Para el desarrollo e investigación de las especies botánicas, se crean los laboratorios científicos orientadas a reconocimiento, identificación, reproducción tanto ex situ como in vitro y conservación de especies de flora.

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MARCO TEORICO Una planta medicinal es una especie vegetal que en uno o más de sus órganos contiene sustancias que pueden ser utilizadas con finalidad terapéutica, contienen principios activos que pueden servir de precursores para la síntesis de nuevos precursores. Estas plantas tienen importantes aplicaciones en la medicina moderna, son fuente directa de agentes terapéuticos, se emplea como materia prima para la fabricación de medicamentos semisintéticos más complejos, la estructura química de sus principios activos sirve para la elaboración de drogas sintéticas y se usan como marcadores taxonómicos en la búsqueda de nuevos medicamentos. La droga vegetal es la parte de la planta medicinal utilizada en terapéutica y principios activos son las sustancias responsables de la acción farmacológica. La Fitoterapia utiliza drogas vegetales y preparaciones de dichas drogas en la forma farmacéutica más adecuada para su administración.  Antes de usar una droga vegetal en terapéutica, es necesario verificar su identidad botánica y química, se debe contemplar el estudio de la identidad, pureza, potencia y eficacia. Los exámenes para tal fin se pueden agrupar en botánicos, fisicoquímicos y biológicos. Los ensayos botánicos: Permiten identificar la droga, certificar las especies presentes y detectar posibles falsificaciones. Comprenden características macroscópicas y microscópicas. a) Macroscópico:  observación de las características propias de cada órgano vegetal. Es de tipo organoléptico, se vale de los órganos sensoriales del observador. Es un ensayo cualitativo, preliminar y grosero. Nomenclatura : nombre científico, sinonimia, nombres vulgares y nombre

oficial si la droga fuera oficial. Presentación: indicar si la droga se presenta fresca o seca; rota o

pulverizada Conformación:  forma general de la droga raíz, corteza, tallo, rizoma,

bulbo, hoja, flor, fruto, semilla, estipe. Si es una hoja indicar ápice, forma,

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base, margen y clasificación según textura, presencia o no de pelos nervaduras. Dimensiones o tamaño: longitud y a veces diámetro Color externas: de la superficie externa. Marcas externas:  en el caso de la corteza es importante observar la

presencia o ausencia de espinas, musgos, líquenes y también fisuras. Fracturas:  de qué modo se rompe la droga cuando se somete a presión uniforme y suficiente. Se rompe completa, incompleta, fibrosa, flexible, concoidea (las superficies serán curvas), breve se rompe rápido. Color interno: el de las superficies de fracturas. Olor:  puede ser definido o indefinido, también puede ser característico

cuando no se relaciona con nada conocido. Sabor: puede ser simple o complejo.

Características especiales para cada órgano: Corteza: puede ser tronco, raíz o rizoma. Durante el proceso de secado se encogen, teniendo a adquirir ciertos grados de curvatura, puede ser: encorvada de curvatura suave, acanalada la curvatura forma un canal, canuto simple cuando se riza formando un tubo o cilindro ej. Canela, canuto doble si el rizo es doble. Raíz: puede presentarse entera, en cortes longitudinales, transversales y

oblicuos; en pequeñas piezas cubicas, como raíces peladas y partidas o en forma de haces o raicillas. La forma puede ser cónica, fusiforme, en rodajas, simple, ramificada o enrollada. En la superficie pueden presentar arrugas. Rizoma:  en marcas superficiales, deben examinarse incluso las

ocasionadas por las bases de los tallos y hojas, así como las cicatrices. Hojas:  en general se suelen encontrar rotas o arrugadas, deben ser

maceradas en agua y extendidas para poder apreciar el borde. Formas de hojas: lineal, acicular, falcada, lanceolada, teniforme, elíptica, cordiforme, oval, lanceolada orbicular. Ápices (acuminados, obtuso, emarginado,

mucronado,

agudo),

bases

(sagitada,

simétrica,

envainadora, abrazadora, asimétrica), bordes (entero, dentado, crenado,

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lobado, aserrado, partido), textura (coriáceas, aspecto de cuero, membranosas, delgadas y permeables, suculentas, gruesas y carnosas), presencia o no de pelos y nervaduras (retinervadas, paralelinervadas). pa ralelinervadas). Flores: tener en cuenta características del pedúnculo y los verticilos, se

estudia el receptáculo se buscan células pétreas; en los estambres se observan los granos de polen, los que son característicos en diversas familias, géneros y hasta especies; para el pistilo, ver el número de cámaras del ovario, la presencia o no de pelos epidérmicos tejidos secretores, el tamaño y carácter de las de las papilas y la forma del estigma. b) Microscópico: estos ensayos pueden realizarse mediante. Polvos: se observan vasos, pelos, fibras, glándulas, súber, estomas Cortes histológicos:  se obtienen a mano alzada o con micrótomos

manuales. En general se realizan cortes transversales en donde se examinan los tejidos y el contenido celular. En las hojas se deben observar las células epidérmicas, estomas, tejido parenquimático, también presencia y característica de los pelos tectores y secretores. En raíces y tallos epidermis, súber, presencia y naturaleza de elementos esclerificados en el parénquima cortical, la región procíclica y liber, características del leño. En corteza características del súber, tipos de elementos esclerosos, elementos secretores. En frutos y semillas estructuras del pericarpio y tegumentos. Tejidos disociados:  se o obtienen btienen m mediante ediante la aplicación de soluc soluciones iones

disgregantes que provocan la destrucción de la laminilla media permitiendo obtener células sueltas. La disociación leve se utiliza para el análisis de hojas, tallos herbáceos y cortezas; en este caso se conservan los cristales, pero no los almidones. La disociación fuerte se aplica a leños, tegumentos de semillas, carozos, endocarpios esclerosados y en este caso no se conservan cristales ni almidones.

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EXAMEN EN FRESCO Este método tiene la ventaja de una gran simplicidad y por otra parte no produce alteración alguna en las muestras; en histología animal se presentan grandes inconvenientes para su uso, puesto que sólo puede utilizarse, bien para organismos vivos de pequeño tamaño o bien para piezas sumergi-das durante un tiempo limitado en líquidos fisiológicos (solución de Ringer, solución de Locke, solución de Tyrode, etc.). Los vegetales presentan ventajas sobre los animales, ya que se pueden fácilmente cultivar en el laboratorio o bien llevarlos desde el campo al mismo sin que los procesos de lisis se presenten con la rapidez que ocurren en los tejidos animales. Aun teniendo estas ventajas sobre los tejidos animales, con mucha frecuencia debe recurrirse en his-tología vegetal al uso de fijadores, bien porque las muestras se recojan lejos del laboratorio durante campañas botánicas más o menos amplias o porque los trabajos se prolonguen excesivamente debido a largos tratamientos, por lo que es necesario recurrir a la fijación de las l as muestras a estudiar. También queremos llamar la atención sobre las técnicas de fijación que se van a emplear y describir, ya que se refieren únicamente a técnicas para microscopía óptica, obviando las de microscopía elec-trónica, tanto de barrido como de transmisión.

TINCIONES Y RECONOCIMIENTOS HISTOQUIMICOS  A continuación, comentaremos algunas características de los colorantes más usados en histología vegetal: LUGOL Se utiliza de forma extemporánea para el reconocimiento del almidón, que toma

una coloración azul-morada intensa. También se puede utilizar para teñir los tejidos lignificados de forma perma-nente; éstos se colorean de amarillo intenso. Modo de empleo: Para observar granos de almidón es suficiente con recubrir de Lugol el corte, poner un cubreobjetos sobre el mismo m ismo y observar al microscopio. Los granos de almidón se almacenan en distintos tejidos en la planta (colénquima, distintos parénquimas, periciclo, células oclusivas, etc.), siendo de gran interés para el reconocimiento de distintas especies, puesto que dentro de

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un mismo género, cada una de las especies puede almacenar el almidón de forma distinta. Como método de tinción: t inción: 1. Teñir varios minutos ccon on Lugol. Lugol. 2. Lavar con agua. 3. Deshidratar con alcohol absoluto. 4. Aclarar. 5. Montar con bálsamo de Canadá o similar. Los tejidos lignificados y suberificados se tiñen de un amarillo intenso, mientras que los tejidos celu-lósicos aparecen coloreados de amarillo pálido. SAFRANINA- VERDE RÁPIDO Esta doble coloración es muy sencilla de realizar y de muy claro contraste, pues

la safranina, que tiene afinidad muy marcada por la lignina y algo menor por la suberina, tiñe de rojo intenso los tejidos que presentan lignina, como es el xilema y las distintas células que forman los tejidos esqueléticos de la planta, mientras que el verde rápido colorea el resto de los tejidos de un verde a un verde-azulado o bien azul, dependiendo del tratamiento que se le haya dado al corte anteriormente. Modo de empleo: 1. Tinción con safranina 1-2 minutos. minutos. 2. Lavar con agua abundante. 3. Si existe un exceso exceso de coloración, diferenciar diferenciar con alcohol ácido y lavar después de nuevo con agua. 4. Deshidratar el corte con unas g gotas otas de alc alcohol ohol de 96º 96º antes de la segunda tinción. 5. Tinción con con verde verde rápido 1 minuto. minuto. 6. Deshidratar con alcohol etílico ab absoluto. soluto. 7. Aclarar. 8. Montar con bálsamo de Canadá o similar. Esta doble tinción presenta el inconveniente de que se decolora a lo largo del tiempo, sobre todo el color del verde rápido; su duración como máximo es de 3

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a 4 años. Esta decoloración puede evitarse en parte si las preparaciones se mantienen al abrigo de la luz y a temperatura adecuada.

CORTES HISTOLOGICOS DE UNA PLANTA CORTE TRANSVERSAL DE LA RAIZ

Corte transversal de una raíz: eje de planta que crece en dirección inversa del tallo; están fixado y absorban lo que es necesario por nutrir la planta. Capa pilífera: conjunto de células que está situado en la capa externa y que constituida por pelos. Corteza: parte de la raíz que preserva médula. Vasos de leño: partes de la raíz en leño. Vasos de líber: vasos que permiten la circulación de la savia. Médula: parte central de la raíz. Felógeno: parte de la raíz que hecho corcho.

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CORTE TRANSVERSAL DEL TALLO

Corte transversal de un tallo: eje de la planta. Epidermis: tejido externo del tallo. Tubos liberianos (Floema): tejidos conductores que permiten el transporte de la savia. Cámbium: zona generatriz de células en el tallo. Corteza: parte del tallo que preserva. Médula: parte central del tallo. Tubo de leño: parte del tallo hecha en leño.

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CORTE LONGITUDINAL DEL TALLO Es un corte paralelo al eje longitudinal y perpendicular a un radio vascular sin pasar por el centro. En esta sección los tejidos vasculares se cortan longitudinalmente; los radios vasculares se cortan transversalmente y sus células se observan como poros agrupados en forma de lente.

HISTOLOGIA DE LA HOJA tamaño   de las hojas es variable y en general una hoja pequeña se El tamaño asocia a lugares con una mayor altitud, poca lluvia, pocos nutrientes en el suelo, y a lugares calientes y secos. La exposición a la luz l uz solar es otro factor importante que afecta al tamaño y grosor de las hojas, incluso en una misma planta. Las hojas con más exposición solar son más pequeñas y más gruesas, sobre todo por el desarrollo del parénquima, pero también tienen un sistema vascular y una epidermis más desarrollados que las hojas denominadas de sombra. En función de la complejidad del limbo se puede dividir a las hojas en simples y compuestas. Las simples tienen un limbo continuo y sin dividir, mientras que las compuestas poseen varias subunidades, denominadas foliolos, cada una de ellas asemejándose a una hoja distinta. Distinguir una hoja de un foliolo es posible por la presencia o no de yemas axilares, sólo las hojas las tienen.

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Tipos de hojas según la estructura del limbo y según tengan o no peciolo.

La variabilidad morfológica del limbo también es enorme y viene genéticamente condicionada por la especie, lo cual es el resultado de una adaptación evolutiva a su medio ambiente, incluyendo a los herbívoros. Hay una gran diversidad de tipos de hojas que reciben distintos nombres según su morfología  morfología 

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Tipos de hojas con morfología diferente.

Los haces vasculares de la hoja se denominan también nervios, y su manera de organizarse se denominada nerviación de la hoja. Su organización anatómica sirve para dividir a dos grandes grupos de especies de plantas. Las que tienen hojas con una nerviación sencilla se denominan microfilas (por ejemplo, los helechos), mientras que las que tienen una nerviación compleja se denominan megáfilos (por ejemplo las plantas con flores). Estos dos tipos de organización parece que han aparecido de manera independiente durante la evolución, es decir, no son homólogas. Dentro de las plantas con flores, en las dicotiledóneas suele haber un nervio principal que se va ramificando y en cada ramificación disminuye el diámetro del nervio. A este patrón de ramificación se le denomina reticular. El nervio principal recorre el eje central de la hoja, desde el peciolo hasta la punta de la hoja. A este nervio más el tejido que le rodea se les denomina costilla. En las monocotiledóneas los nervios corren paralelos al eje principal de la hoja y son del mismo diámetro.  A este tipo de nerviación se le llama paralela. Sin embargo, existen vasos conductores de pequeño calibre que conectan a los grandes y paralelos.

TEJIDOS: Epidermis:

En la superficie del haz, o adaxial, hay una epidermis cutinizada con capas muy gruesas de cutina y ceras, y, por lo general sin estomas, mientras que, en la superficie del envés, o abaxial, hay una epidermis más delgada y con gran densidad de estomas (Figura 4). Sin embargo, hay hojas denominadas

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epistomáticas, donde las estomas sólo aparecen en la cada adaxial, como en las hojas flotantes acuáticas, hipostomáticas, donde sólo aparecen en la cara abaxial, y cuando aparecen en las dos caras se denominan anfistomáticas. Mesófilo:

Entre las dos capas epidérmicas nos encontramos con el mesófilo, que es tejido parenquimático. Suelen distinguirse dos tipos presentes en la misma hoja: parénquima en empalizada (o clorofílico) y el parénquima lagunar (o esponjoso). El parénquima en empalizada, próximo a la superficie del haz, es un tejido fotosintético con células que contienen una gran cantidad de cloroplastos. Sus células son alargadas y se disponen empaquetadas y perpendiculares a la superficie epidérmica, y por ello se habla de parénquima en empalizada. Mientras, en la zona del envés las células son más redondeadas, también contienen cloroplastos, pero hay grandes espacios intercelulares, por lo que se habla de parénquima lagunar. Los espacios intercelulares están conectados con las estomas y son importantes para el trasiego de gases necesarios para la fotosíntesis. Aunque en algunos casos es difícil distinguir entre estas dos partes del mesófilo.

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BIBLIOGRAFIA 1. María Ch. M ; Laura W. O. ; Sergio M P ; Francisco H T ;  practicas curativas y plantas medicinales; Cuadernos Geográficos 2017, 56 (2). 2. Manuel M, Pilar M, Manuel A. P. técnicas histológicas cortes; Departamento de Biología Funcional y Ciencias de la Salud. Facultad de Biología. Universidad de Vigo. Versión: Julio 2018. 3. ARMIÑANA J. GARCIA F. TECNICAS DE HISTOLOGIA VEGETAL. VALENCIA. ESPAÑA: DEPARTAMENTO DE ECOSISTEMA  AGROFORESTALES. UNIVERSIDAD POLITECNICA DE VALENCIA. 2010; RECUPERADO EN : https://www.academia.edu/7444795/2._T%C3%A9c 44795/2._T%C3%A9cnicas_de_histolog nicas_de_histolog% % https://www.academia.edu/74 C3%ADa_vegetal   C3%ADa_vegetal 4. animal Adhvy. Adhvy. Atlas de histología vvegetal egetal y animal. [Online].; 2019 2019 [cited 2019 Marzo 31. Available from: https://mmegias.webs.uvigo.es/2organos-v/guiada_o_v_hoja.php. 

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