INFORME 1, OMNIPRESCENCIA

August 28, 2018 | Author: Daniel Avila Quiros | Category: Microorganism, Growth Medium, Bacteria, Microbiology, Foods
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Determinación de la Omnipresencia de los Microorganismos La Microbiología es el estudio de los microorganismos microscópicos, es decir no perceptibles a simple vista a lo largo de todo su ciclo vital. Los microorganismos pueden dividirse en virus, bacterias, hongos y parásitos. En esta práctica mediante diferentes métodos, que emplean distintos muestreos como ambientales, superficies, rostro, cabellera, se pudo evidenciar la omnipresencia de los microorganismos. Obteniendo como resultado un crecimiento de bacteria en los medios de cultivo de recuento estándar y agar sangre; el crecimiento de hongos se evidenció en el medio de cultivo de papa dextrosa. Palabras clave: microorganismos, Agar, omnipresencia, microflora, ARE, APD, AS Introducción La microbiología se define como el estudio de organismos y agentes que son de demasiado pequeños para poder ser observados con el ojo humano a simple vista, es decir el estudio de microorganismos, los cuales se definen como formas de vida muy pequeñas que sólo pueden ser observados a través del microscopio. En este grupo están incluidos las bacterias, los virus, los mohos y las levaduras. Algunos microorganismos pueden causar el deterioro de los alimentos entre los cuales se encuentran los microorganismos patógenos, que a su vez pueden ocasionar enfermedades debido al consumo de alimentos contaminados. Adicionalmente, existen ciertos microorganismos patógenos que no causan un deterioro visible en el alimento. Sin embargo, por otro lado existen también algunos microorganismos que son beneficiosos y que pueden ser usados en el procesamiento de los alimentos con la finalidad de prolongar su tiempo de vida o de cambiar las propiedades de los mismos (Prescott et al, 2002) Los microorganismos los podemos encontrar en el agua, el aire, el polvo, las plantas, animales, ambientes hostiles como profundidades marinas, en el cuerpo humano se encuentran constituyendo la microflora normal, cuya presencia es beneficiosa para nuestro organismo. En general proliferan donde encuentran alimento, humedad y temperatura adecuada (Rivas, 2009). En el laboratorio para el crecimiento de los microorganismos se utilizan medios de cultivo; los cuales se definen como soluciones nutritivas especiales para estos organismos, en microbiología se emplean dos tipos generales de medios de cultivo: los químicamente definidos en los que se sabe la composición química exacta; y los complejos o no definidos, estos medios pueden ser adecuados o incluso ventajosos por varias razones, como por ejemplo son fáciles de preparar y permiten un crecimiento adecuado de los microorganismos , una limitación importante al usar este medio es precisamente que no se sabe su composición nutritiva exacta ya que emplea hidrolizados de caseína, carne, soja, levaduras u otras sustancias muy nutritivas (Madigan et al, 2004).

Según Prescott et al (2002), para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígenos adecuados, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante. Muchas especies bacterianas son tan parecidas morfológicamente que es imposible diferenciarlas sólo con el uso del microscopio; en este caso, para identificar cada tipo de bacteria, se estudian características bioquímicas sembrándolas en medios de cultivo especiales. Así, algunos medios contienen un producto que inhibe el crecimiento de la mayoría de las especies bacterianas, pero no la de un tipo que deseamos averiguar si está presente. Otras veces el medio de cultivo contiene determinados azúcares especiales que sólo pueden utilizar algunas bacterias. En algunos medios se añaden indicadores de pH que cambian de color cuando uno de los nutrientes del medio es fermentado y se generan catabolitos ácidos. Si las bacterias son capaces de producir fermentación, generan gases que pueden ser apreciados cuando el cultivo se realiza en un tubo cerrado (Madigan et al, 2004). El objetivo de esta práctica es evidenciar la omnipresencia de los microorganismos mediante diferentes muestreos; y determinar el crecimiento de los mismos en distintos medios de cultivo. Metodología Se realizaron una serie de muestreos utilizando distintos medios de cultivo (ARE, APD, AS) en el Laboratorio de Microbiología del Instituto Tecnológico de Costa Rica para evidenciar la omnipresencia de los microorganismos Para la preparación de las placas de agar, se fundó el agar en agua hirviendo al estar totalmente disuelto se colocó en baño María a 60° C, se procedió a rotular las placas de Petri según el método y agar utilizado. El agar disuelto se dejó enfriar a temperatura cachete, antes de repartir cada agar, al APD se le agregó 2 ml de ácido tartárico. Se chorreó ARE en tres placas de Petri y APD en dos placas de Petri, se dejó enfriar con la tapa cerrada hasta que el agar solidifique. En el muestreo ambiental, se tomó una placa de ARE y otra de APD, retiradas las tapas se dejaron expuestas al aire del laboratorio durante 20 min. Transcurrido el tiempo se puso a incubar en posición invertida a 35° C por 48 hrs. Se tomó una placa de ARE, dividida en partes iguales con marcador permanente, se pasó un dedo sucio sobre la superficie de una mitad de la placa y luego se pasó un dedo limpio (lavadas la manos) por la superficie de la otra mitad. Rotulada debidamente la placa se procedió a incubar en posición invertida a 35° C por 48 hrs.

Para el muestreo de la cabellera se tomó una placa de ARE, se destapó y se sacudió el cabello sobre la superficie del agar, se tapó y se puso a incubar en posición invertida a 35° C por 48 hrs. El muestreo de superficie, se realizó tomando un hisopo estéril el cual se sumergió en CN, con el hisopo húmedo se tomó una muestra de alguna superficie, preferiblemente horizontal, y luego se paso el hisopo suavemente sobre la superficie de una placa de APD. Rotulada correctamente se puso a incubar a 35° C por 48 hrs. Por ultimo el muestreo de rostro, se tomó un hisopo estéril el cual se sumergió en CN, con el hisopo húmedo se tomó una muestra de la cara, bigote o borde del pelo y para luego pasarlo suavemente sobre la superficie de una placa de AS, rotulada la placa se colocó en posición invertida en la incubadora a 35° C por 48 hrs. Resultados Cuadro 1. Resultados observados en los diferentes muestreos y medios de cultivo. Laboratorio de Biología ITCR. Medio de Cultivo Muestreo Observaciones AS Rostro Placa 1: mayoría halo transparente, algunas con halo verde amarillo. Placas 2 y 3: mayoría halo transparente, también sin halo. ARE Medio Ambiente 20 colonias entre blancas y amarillas. Hubo hongos. ADP Medio Ambiente Solamente 3 hongos. ARE Cabello Colonias blancas y amarillas, aisladas y en grupos. ADP Superficie 23 hongos de diferentes tamaños. ARE Dedo Limpio y Dedo Dedo Limpio: Sucio aproximadamente 100 colonias blancas pequeñas muy agrupadas. Dedo sucio: 3 colonias blancas aisladas. Discusión El medio agar sangre (AS) es una combinación de un agar base con el agregado de 5 % de sangre ovina, en esta práctica se usó para ver la capacidad hemolítica de los microorganismos. El término hemólisis se refiere a la desintegración de los eritrocitos y este tipo de lisis se puede clasificar

observando los halos hemolíticos alrededor de las colonias. A sabiendas de lo anterior, en la placa de AS número uno hay bacterias hemolíticas alfa y beta, mientras que en las otras dos placas hubo bacterias hemolíticas beta y gamma (Chávez et al, 2006). Otro medio usado fue el agar Papa Dextrosa (APD), fue utilizado para el cultivo de hongos, ya que es un medio selectivo, o sea favorece el crecimiento de microorganismos particulares. Se adicionó ácido tartárico para bajar el pH del medio a 3.5 ± 0.1 y así inhibir el crecimiento bacteriano (Prescott et al, 2002). Contrario a esto, el agar de Recuento Estándar es un medio utilizado para el recuento de bacterias en general (Rivas, 2009), por lo que se utilizó meramente para evidenciar la omnipresencia de los microorganismos, gracias a los muestreos de medio ambiente y superficies. En la prueba de los dedos se observó un mayor crecimiento en el dedo limpio ya que según M. Rojas (entrevista personal, Febrero 27, 2009) al lavarse las manos se elimina la grasa que los cubre, dejando expuestas las bacterias endógenas. Además todas las placas de Petri fueron incubadas a 37°C, durante 48 horas, estas condiciones para propiciar un mejor desarrollo de los microorganismos cultivados.

Conclusiones El medio de cultivo agar papa dextrosa al ser selectivo permitió evidenciar el crecimiento de hongos. Al realizar diferentes muestreos y utilizar distintos medios de cultivo para el crecimiento de microorganismos se evidencio su omnipresencia. El agar recuento estándar posibilita el crecimiento de cualquier tipo de microorganismo, especialmente se utiliza para el recuento de bacterias aeróbicas, o en lácteos y alimentos. La hemólisis de las bacterias presentes en el rostro se Los medios de cultivos selectivos permiten el crecimiento microbiano específico, como el APD y AS. Bibliografía Chávez, M; G, Livia; E, Muñoz; M, Otiniano; M, Luján & J, Castro. 2006. Evaluación comparativa de Agar sangre de carnero y Agar sangre humana en el aislamiento de Streptococcus beta hemolíticos de pacientes con faringitis del Hospital Almanzor Aguinaga Asenjo de Chiclayo. Chiclayo, Perú. Revista medica Vallejiana. Vol 4. No. 2. 148-154p. Madigan, M.; Martinko, J. & Parker, J. 2004. Biología De Los Microorganismos. 10a edición. Editorial Pearson Educación S.A. Madrid, España. 1096p.

Prescott, L.; Harley, J. & Klein, D. 2002. Microbiología. 4 ta edición. Editorial Mc Graw- Hill Interamericano. Aravaca, España. 1004p. Rivas, O. 2009. Folleto del Curso de Laboratorio de Microbiología Aplicada. Editorial Tecnológica, ITCR. Cartago, Costa Rica. 69p. Rivas, O. 2009. Material didáctico complementario para el Curso de Laboratorio de Microbiología Aplicada IB-2106. Editorial Tecnológica, ITCR. Cartago, Costa Rica. 48p.

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