Identifikasi Bakteri Staphylococcus Aureus Dan Jamur Helminthosporium

 

Identifikasi Bakteri Staphylococcus aureus dan Jamur Helminthosporium sp KATA PENGANTAR Puji dan syukur kami panjatkan kehadhirat Allah SWT, atas atas berkat  berkat rahmat dan karunia-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan Laporan Koasistensi Mikrobiologi yang berjudul “Identifikasi BakteriStaphylococcus Bakteri Staphylococcus aureus  aureus  dan Jamur Helminthosporium sp”. sp”. Sholawat beriring salam senantiasa kami sanjungkan ke pangkuan nabi besar Muhammad Muhammad SAW  SAW yang telah membawa kita ke alam yang penuh ilmu pengetahuan.

Dan tidak lupa lupa  penulis

mengucapkan terima

kasih atas

segala

bimbingan dan dukungan kepada: 1. drh. Zakiah Heryawati Manaf, MS 2. drh. Fakhrurrazi, MP 3. Dr. drh. Darmawi, M.Si 4. Dr.drh. Mahdi Abrar, M.Sc 6. drh. Darniati 7. Maryulia Dewi, SKM 8. Seluruh teman-teman koasistensi mikrobiologi PPDH gelombang IV. Semoga laporan koasistensi mikrobiologi ini ini dapat  dapat menambah wawasan keilmuan penulis dan pihakpihak yang lain pada umumnya. Darussalam, 15 Februari 2011 Penulis PENDAHULUAN   PENDAHULUAN Kulit merupakan penghalang masuknya beberapa macam bakteri dalam tubuh yang dilengkapi dengan cairan yang berupa lendir dan zat-zat kimia. Apabila kulit rusak, misalnya luka atau lecet, kemungkinan bakteri akan masuk. Sel darah putih keluar dari kapiler dan melawan bakteri yang masuk. Apabila sel darah putih tidak mampu bertahan dengan rusaknya jaringan, maka dapat menimbulkan bengkak dan bernanah. Sel darah putih menghancurkan bakteri dengan cara cara   menggumpalkan bakteri sebelum masuk ke sistem sirkulasi. Jika terdapat bakteri yang masuk ke dalam sirkulasi dan ikut dalam aliran darah maka akan ditangkap oleh makrofag. Untuk mencegah infeksi, luka harus dirawat dengan baik. Luka perlu diberi obat untuk membunuh bakteri. Selain itu, perlu dibalut dengan kain pembalut yang bersih dan steril. Luka yang agak dalam perlu diberikan suntikan anti tetanus serum  secepat mungkin karena kemungkinan bakteri tetanus masuk kedalam luka.

 

Proses penyembuhan luka akan cepat terjadi apabila jumlah bakteri pada luka berkurang atau sedikit. Bakteri

pada

luka

yang

umum

di

temukan

aureus,, Enterococcus aureus Enterococcus,, Escherichia

dalam

luka

coli , Pseudomonas

terinfeksi

adalah Staphylococcus aeruginosa, Haemolytic aeruginosa,

streptococci , Klebsiella Klebsiella,, Citrobacter  dan  dan Morganella Morganella.. RIWAYAT KASUS I  I  1.

ANAMNESA

Nama Pemilik

: Muhammad Zeen

Jenis Hewan

: Sapi

Jenis Kelamin

: Jantan

 Alamat  Pasien  Alamat

: Desa limpok, Darussalam

Lama  Menderita sakit Lama

: 14 Hari

Status gizi

: Kurang baik

Gejala Klinis

: Bulu kusam, Kurang Nafsu Makan,luka

Sampel

: Luka bernanah

Pengambilan sampel

: 05 Februari 2011

1.

METODELOGI

 A. Cara Pengambilan Sampel Sampel diambil dengan menggunakan lidi kapas steril dan di swab pada luka bernanah, dimasukkan ke media mediaNutrient Nutrient Broth, lidi dipatahkan untuk menghindari kontaminasi serta dihomogenkan. Sampel dimasukkan ke dalam termos, dibawa menuju Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Hewan. Lakukan pewarnaan sederhana untuk memastikan ada tidaknya bakteri, kemudian inkubasi pada inkubator dengan suhu 37oC selama 18 – 18 – 24  24 jam. B.Metode yang dilakukan:

a)

Pewarnaan Sederhana

Dibuat sediaan, fiksasi di atas api api.. Warnai dengan Methilen Blue selama 1 – 1  – 2  2 menit. Buang sisa zat warna menggunakan air mengalir. Objek glass glass dikeringkan  dikeringkan dengan cara diangin – diangin – anginkan.  anginkan.  Amati dibawah mikroskop mikroskop.. b)

Penanaman pada Media Nutrient Agar  

Media ini berfungsi untuk melihat warna koloni, bentuk koloni dan untuk mendapatkan koloni yang terpisah dari biakan koloni.  Ambil 1 ose steril sampel dari biakan Nutrient Broth, kerjakan dekat api bunsen.

 

Goreskan pada media Nutrient Agar dengan menggunakan metode gores. Inkubasikan pada inkubator  dengan  dengan suhu 370C selama 18 18 –  – 24  24 jam.  Amati bentuk, tepi, permukaan, warna, diameter dan aspek koloni. c)

Pewarnaan Gram

Tujuan dari Pewarnaan Gram adalah untuk membedakan dunia bakteri menjadi dua kelompok yaitu Gram positif (+) dan Gram (-). Adapun cara pewarnaan dilakukan sebagai berikut: Teteskan NaCl fisiologis pada objek glass, selanjutnya diambil koloni yang terpisah dari Nutrient Agar dengan menggunakan ose steril dan campurkan pada NaCl di atas objek glass. Aduk dan fiksasi di atas api bunsen. Kemudian pada objek glass tersebut tambahkan Kristal Violet selama 3-5 menit, bilas dengan air mengalir. Teteskan larutan lugol selama 1 menit, lalu cuci dengan air mengalir.

Lunturkan dengan alkohol 96 % selama 10 detik hingga zat warna menghilang, cuci dengan air mengalir. Teteskan larutan Fuchsin atau Safranin selama 1 menit, cuci dengan air mengalir. Keringkan dan amati di bawah mikroskop. Bakteri Gram positif akan mempertahankan zat warna biru kristal violet sehingga dibawah mikroskop terlihat warna ungu, sedangkan bakteri gram negatif zat warna kristal violet akan larut oleh penambahan alkohol 95 % dan mengikat zat warna kedua yaitu Safranin/fuchsin sehingga dibawah mikroskop akan terlihat berwarna merah. d)

Uji Katalase

Teteskan H2O2 3 % diatas objek glass. Dengan menggunakan ose steril, ambil 1 koloni terpisah (koloni yang sama) pada Nutrient Agar dan homogenkan dengan H2O2 3 %.  Amati hasil yang diperoleh. e)

Penanaman pada Nutrient Agar Miring

Dengan menggunakan ose steril, ambil 1 koloni terpisah (koloni yang sama) dari Nutrient Agar. Bekerja secara asepsis di dekat lampu spiritus.

Tanamkan pada media Nutrient Agar Miring membentuk zig zag.

 

Inkubasikan pada inkubator dengan suhu 37oC selama 24 jam. f)

Uji Gula Gula –  – gula  gula (Glukosa dan Manitol)

Larutan glukosa dan manitol dimasukkan kedalam tabung yang berisi tabung durham yang telah dibalik.  Ambil 1 ose steril biakan dari koloni terpisah (koloni yang sama) pada Nutrient Agar. Ag ar. Masukkan ose ke dalam tabung yang berisi glukosa, kocok hingga bakteri terlepas dari ose. Ose disterilkan kembali dan diambil bakteri dari koloni yang sama, dimasukkan ke dalam tabung yang berisi Manitol. Inkubasikan pada inkubator selama 18 – 18 – 24  24 jam dengan suhu 37oC. Tujuan dari uji gula-gula yaitu untuk melihat kemampuan bakteri dalam memfermentasikan glukosa dan Mannitol, hasil proses fermentasi berupa asam akan menurunkan pH media dan merubah warna indikator. g)

Penanaman pada Blood Agar

Dengan menggunakan ose steril, ambil bakteri dari koloni terpisah (koloni yang sama) yang terdapat pada media Nutrient Agar. Ditanam pada media Blood Agar dengan menggunakan metode gores. Inkubasikan dalam inkubator selama 18 – 18 – 24  24 jam pada suhu 37oC h)

Uji Sensitivitas terhadap Antibiotika

Sehari sebelum dilakukan uji sensitivitas, lakukan biakan dari Nutrient Agar disegarkan kembali kedalam Nutrient Broth dan diinkubasikan kedalam inkubator selama 24 jam pada suhu 37 0C. Lidi kapas steril dicelupkan kedalam biakan bakteri Nutrient Broth, kemudian diswab merata keseluruh permukaan media Muller-Hinton Agar (MHA). Diamkan beberapa saat, setelah itu letakkan pada permukaan media MHA beberapa jenis cakram antibiotik untuk melihat sensitivitas bakteri tersebut terhadap antibiotik. Inkubasikan selama 24 jam pada suhu 37oC dalam inkubator. Kemudian diamati dan diukur diameter zona yang terbentuk disekitar cakram antibiotik. 1. a)

HASIL PENGAMATAN Pewarnaan Sedarhana

Setelah diamati di bawah mikroskop terlihat adanya bakteri yang berbentuk kokus, seperti kumpulan anggur. Hal ini menunjukkan bahwa sampel yang diperiksa terdapat bakteri, seperti yang terlihat pada Gambar 1.

 

  Gambar 1. Pewarnaan Sederhana Pada pewarnaan sederhana hanya digunakan satu macam zat warna untuk meningkatkan kontras antara mikroorganisme dengan sekelilingnya dengan tujuan melihat ada atau tidaknya bakteri sebelum pemeriksaan selanjutnya dilakukan. Lazimnya pewarnaan ini menggunakan zat warna basa seperti kristal violet, biru metilen, karbol fuchsin basa, safranin atau hijau malachit. b)

Pengamatan Pada Media Nutrient Agar

Hasil pengamatan pada media Nutrient Agar, didapatkan beberapa koloni terpisah dan hasil pengamatan pertumbuhan koloni dapat dilihat pada Gambar 2.

Gambar 2. Biakan bakteri pada media Nutrient Agar Dari hasil pengamatan koloni yang terpisah dan sifat koloni diperoleh : a)

Ukuran

: 2 mm

b)

Bentuk

: Bulat

c)

Konsistensi

: Lunak

d)

Warna

: Putih kekreman

e)

Permukaan

: Halus

f)

Aspek

: mengkilat

g)

Tepi koloni

: Rata

 

h)

Elevasi

: Cembung

i)

Sifat tembus cahaya

: Opaque

c) Pewarnaan Gram Metode pewarnaan gram ini ditemukan oleh Christian Gram pada tahun 1883 yang merupakan ahli bakteriologi Denmark. Pada uji pewarnaan Gram didapatkan bakteri Gram positif, berbentuk kokus bergerombol membentuk untaian seperti buah anggur. Hasil pewarnaan Gram dapat dilihat pada Gambar 3.

Gambar 3. Pewarnaan Gram pada pembesaran 1000x  Ada tiga  Ada  tiga tujuan pewarnaan gram bakteri, yaitu untuk mengamati penampakan morfologi bakteri lebih baik karena telah memiliki warna, mengidentifikasi organel-organel sel bakteri yang bisa diamati, serta mempermudah proses identifikasi dan membedakan organisme yang memiliki ciri-ciri serupa. d) Uji Katalase Hasil dari uji katalase yaitu katalase positif, dapat dilihat pada Gambar 4.

Gambar 4. Terbentuk gelembung O 2 pada uji katalase Pada Gambar 4. terlihat gelembung udara ( katalase positif), karena H 2O2 bersifat toksik bagi bakteri, sehingga bakteri akan menghasilkan enzim katalase untuk menetralisirkan H 2O2 menjadi O2 dan H2O. Terbentuklah gelembung O 2 pada permukaan objek glass. e)

Pengamatan pada Nutrient Agar Miring

Penanaman bakteri pada media Nutrient Agar miring dapat dilihat pada Gambar 5.

 

  Gambar 5. Koloni yang tumbuh pada Nutrient Agar miring Pada Gambar 5. Terlihat bakteri dengan ciri-ciri pertumbuhan yang menyebar memenuhi seluruh permukaan agar dan tampak seperti bergelombang. f)

Uji Gula-gula (manitol dan glukosa)

Hasil pengamatan pada uji gula-gula (manitol dan glukosa) menunjukkan adanya perubahan pada manitol, hal ini dapat dilihat pada Gambar 6.

Gambar 6. Hasil uji Gula-gula pada Manitol (A) dan Glukosa (B) Pada Gambar 6. Terlihat manitol positif karena terjadi fermentasi glukosa ditandai dengan terjadinya perubahan warna larutan dari warna ungu menjadi kuning. Sedangkan glukosa negatif, tidak terjadi fermentasi yang ditandai dengan tidak terjadinya perubahan warna larutan. g)

Pengamatan pada Blood Agar

Hasil penanaman pada media Blood Agar yang diambil dari biakan media Nutrient Agar dapat dilihat pada Gambar 7.

 

  Gambar 7. Hasil Penanaman pada Media Blood Agar Pada Gambar 7. Terlihat media Blood Agar jernih artinya terjadi hemolisis sel-sel darah secara lengkap disebut juga hemolisis beta beta.. Media Blood Agar merupakan media untuk pertumbuhan mikroorganisme yang sulit untuk dibiakkan dan juga untuk membedakan kelompok mikroorganisme yang melisis atau tidak melisiskan sel darah merah. Beberapa bakteri menghasilkan sitolisin yang dapat melarutkan sel darah merah. h)

Uji Sensitivitas terhadap Antibiotika

Hasil uji sensitivitas antibiotik dapat dilihat pada Tabel 1.

Gambar 8. Zona hambat antibiotik Keterangan: 1. 2.

Zona hambat Gentamicin Zona hambat Tetraciclin

3. 4.

Zona hambat Vancomycin Zona hambat Penicillin

 

5.

Zona hambat Ampicilin

Pada Gambar 8. Terlihat bahwa kelima antibiotik yang digunakan menunjukkan adanya zona hambat.  Akan tetapi pada antibiotik Gentamicin, Tetraciclin dan Vancomicin memperlihatkan zona hambat yang lebih luas dibandingkan dengan Penicillin dan Ampicilin. Antibiotik Penicillin dan Ampicillin mempunyai luas zona hambat 6 mm dan 4 mm, sehingga Penicillin dan Ampicillin resisten terhadap bakteri tersebut.

1. DIAGNOSA Dari hasil pemeriksaan laboratorium yang telah dilakukan, sifat-sifat biakan dan sifat-sifat biokimia dari bakteri dapat diketahui bahwa bakteri ini termasuk dalam golongan Gram positif (+), berbentuk kokus bergerombol, mampu memfermentasikan glukosa sehingga dapat diindentifikasi bahwa bakteri tersebut adalahStaphylococcus adalahStaphylococcus aureus.  aureus.  1. DIFFERENSIAL DIAGNOSA Staphylococcus epidimiris  epidimiris   1. PEMBAHASAN KASUS Lebih dari 100 tahun sejak Ogston menemukan Staphylococcus, yang bisa ditemukan dimanamana dan bisa di isolasi dari sejumlah host termasuk manusia yang sama bagus perkembangannya seperti di udara, debu, air dan bahan makanan. Staphylococcus bentuknya lebih dominan sebagai flora normal pada kulit dan permukaan mukosa serta pada saat yang bersamaan juga dapat menyebabkan infeksi yang sepele, terlokalisasi, lesi pada permukaan kulit dan kadang-kadang bersifat lethal septikemia (Gillies, 1984; Volk dan Wheeler, 1989). Staphylococcus adalah bakteri yang berbentuk kokus dengan diameter 1µm yang tersusun tidak teratur. Staphylococcus tumbuh dengan baik pada temperatur 37 oC. Staphylococcus menghasilkan katalase, yang membedakan dengan Streptococcus. Staphylococcus memfermentasikan karbohidrat dan menghasilkan asam laktat (Adam, 1992 dan Brooks dkk., 2007). Staphylococcus bergerombol dalam susunan yang tidak teratur mungkin sisinya agak rata karena tertekan. Pada sediaan langsung yang berasal dari nanah dapat terlihat sendiri, berpasangan, menggerombol dan bahkan dapat tersususn

seperti rantai pendek. Staphylococcus Staphylococcus ini tidak

bergerak, tidak berspora dan termasuk Gram positif. Tumbuh subur pada media umum, bersifat fakultatif anaerobik. Staphylococcus menghasilkan pigmen emas dan putih (Anonimus, 1994 dan Gibson, 1996). Patogenesis Patogenesitasnya

merupakan

efek

gabungan

dari

berbagai

macam

metabolit

yang

dihasilkannya.Staphylococcus dihasilkannya. Staphylococcus aureus  aureus  bersifat invansif, penyebab hemolisis, membentuk koagulasi, mencairkan gelatin, membentuk pigmen kuning emas dan meragi manitol. Selain itu Staphylococcus dapat menyebabkan terjadinya sistitis dan pielitis, bahkan dapat pula terjadinya septikemia, endokarditis, meningitis, abses serebri, sepsis puerpuralis, trombosis, osteomielitis dan pneumonia (Anonimus, 1994). Gambaran Klinis Gambaran klinis ditemukan tanda-tanda peradangan setempat yang menyembuh setelah pus dikeluarkan. Dinding fibrin disekitar abses dapat mencegah penyebaran kuman. Jika dinding ini rusak, kuman dapat menyebar sehingga terjadi bakteremia. Lokalisasi sekunder dalam suatu organ

 

dapat menimbulkan tanda-tanda disfungsi dari organ yang bersangkutan dan tanda-tanda peradangan. Pada penekanan flora normal dari kolon karena pemakaian antibiotik, dapat menyebabkan terjadinya enterokolitis oleh Staphylococcus yang biasanya bersifat fatal (Djuanda, dkk. 2005). Pengobatan Sebagian besar orang memiliki Staphylococcus pada kulit, lubang hidung dan tenggorokan. Bahkan  jika kulit dapat dibersihkan dari Staphylococcus (seperti pada eksema), akan segera terjadi infeksi oleh droplet. Infeksi kulit multipel yang serius paling sering terjadi pada remaja. Pada akne, lipase Staphylococcus dan korinebakterium melepaskan asam lemak dari lemak dan menimbulkan iritasi  jaringan. Tetrasiklin digunakan untuk terapi jangka panjang.  Abses dan lesi supuratif tertutup lainnya diobati dengan drainase, tindakan yang penting dan pemberian terapi antimikroba. Namun, sulit untuk membasmi Staphylococcus patogen dari pasien yang terinfeksi, karena organisme ini sangat cepat menjadi resisten terhadap berbagai obat antimikroba. Staphylococcus aureus dengan sensitivitas intermediet terhadap vancomicin sudah relatif jarang dan isolat strain yang resisten terhadap vankomisin telah jarang ditemukan (Brooks dkk., 2007) Pencegahan Pencegahan langsung dengan kontak fisik dapat dicegah dengan kebersihan kulit, mencegah pencemaran kuman pada luka-luka dan lecet. Cara penyebaran bahan-bahan yang infeksius dari nasofaring perlu lebih banyak diperhatikan. Perlu diambil tindakan yang tepat terhadap para tenaga kesehatan dan bidang lain yang banyak berhubungan dengan masyarakat, yang di dalam hidung dan tenggorokannya mengandung Staphylococcus yang resisten terhadap penicillin (Gaman dan Sherrington, 1992). RIWAYAT KASUS 1.

ANAMNESA

Nama Pemilik

: Herman, skh

Jenis Hewan

: Ayam

 Alamat Pasien

: Desa Limpok

Sampel

: Bulu ayam DOC

Tanggal Pengambilan Sampel 1.

: 5 Febuari 2011

METODELOGI 1. Cara pengambilan sampel Sampel bulu ayam DOC diambil dari kandang ayam yang berada di Desa Limpok, dengan

cara mengambil bulu rontok yang jatuh di lantai kandang, kemudian dimasukkan ke dalam plastik

 

steril yang telah disiapkan. Sampel tersebut dibawa ke Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Hewan Unsyiah. Sampel dimasukkan ke dalam Buffer Pepton Water (BPW) dan diinkubasikan dalam inkubator selama 24 jam. 1. 

 



 



 



 

Metode yang dilakukan 1. Penanaman pada Sabouraud’s Dextrose Agar   Sampel yang yang ada di dalam pepton water, dihomogenkan dihomogenkan dan didiamkan selama 1 hari pada suhu kamar. Kemudian diambil dengan lidi kapas steril, diswab ke dalam media Sabouraud’s  Sabouraud’s   Dextrose Agar (SDA). Media diinkubasikan pada suhu kamar dan diamati pada hari ke-3,5, dan 7 sampai terlihat adanya pertumbuhan jamur. Untuk menjaga agar media jauh media  jauh dari gangguan lalat maka dimasukkan ke dalam kantung plastik,

kemudian diikat. 1. Slide Culture   Bila pertumbuhan telah nampak pada pada media, segera dibuat sediaan mikroskopik untuk mengidentifikasi bentuk jamur yang ditemukan. Sediaan mikroskopik dibuat dalam bentuk slide agar.   Media SDA yang lain yang telah beku, dipotong sebesar 1 cm 2 dan diletakkan di atas objek glass.   Koloni jamur yang yang telah tumbuh pada media SDA, diambil dengan ose steril kemudian ditempel pada keempat sisi slide agar dan pada bagian atasnya ditutup dengan cover glass.



 

Objek glass glass diletakkan dalam cawan cawan petri dengan menggunakan potongan pipet sebagai alas kedua ujung kaca objek agar biakan berada dalam posisi menggantung.   Pada bagian pinggir pinggir kiri dan kanan objek glass glass diletakkan kapas yang sudah dibasahi dibasahi dengan aquadest.   Cawan petri ditutup rapat dan biakan ditempatkan suhu kamar sampai sampai terlihat adanya pertumbuhan jamur pada kaca penutup.   Jamur yang tumbuh diamati di bawah mikroskop. 1. HASIL PENGAMATAN 1. Pengamatan pada Sabouraud’s Dextrose Dextros e Agar



 







Pada media biakan SDA, jamur tumbuh dengan terbentuk koloni berwarna krem keputih-putihan dan permukaannya mengkilap seperti ragi. Adapun bentuk koloni jamur yang tumbuh pada media SDA setelah enam hari dapat dilihat pada Gambar 9.

Gambar 9. Koloni jamur pada media SDA pada hari keenam. 1.

Slide Culture

Hasil penanaman pada slide culture dapat dilihat pada Gambar 10. Gambar 10. Koloni jamur yang tumbuh pada slide culture pada hari keenam. Pada Gambar 10. Terlihat jamur yang tumbuh pada slide culture berwarna hitam keabuabuan. Setelah diamati dibawah mikroskop dan terlihat seperti pada Gambar 11. Gambar11. Morfologi jamur pada hari keenam dengan pembesaran. 100x Berdasarkan Gambar 11. Terlihat bahwa hipa bersepta, bercabang dan berwarna gelap. Sehingga dapat

disimpulkan

bahwa

jamur

tersebut

merupakan

jamur Helminthosporium

sp (Larone, sp (Larone,

1939). Helminthosporium sp adalah sp adalah sejenis jamur yang terdapat pada tanaman pangan, seperti padi

 

dan jagung. Helminthosporium spyang spyang terdapat pada bulu DOC diduga terkontaminasi, karena kandang ayam terletak didekat area persawahan. 1. PEMBAHASAN KASUS Terdapat lebih dari 50.000 spesies fungi, tetapi sebagian besar fungi bermanfaat bagi manusia. Fungi terdapat di alam dan diperlukan dalam pemecahan serta daur ulang bahan organik. Infeksi fungi disebut mikosis. Sebagian besar fungi patogen bersifat eksogen dan habitat alaminya adalah air, tanah dan debris organik (Brooks, dkk., 2007). Helminthosporium sp  sp adalah jamur j amur yang terdapat pada tanaman pangan. konidiosporaHelminthosporium konidiosporaHelminthosporium sp berukuran 150 x 5 µ m ; konidia 55-65 x 11-14 µm. Sklerotia berukuran 175-580 µm. Miselia  –  –   hifa berwarna putih, mempunyai septa, garis tengah hifa 2-5 µm. Apabila ditumbuhkan pada media awalnya miselia berwarna putih, akhirnya menjadi putih kehitaman pada permukaan media. Pada tanaman inang miselia berwarna putih di dalam batang (Faiq, 2010). Klasifikasi Klasifikasi dari jamur Helminthosporium sp adalah sebagai berikut: Divisio

: Amastigomyceta

Sub Divisio

: Deuteromycotina

Kelas

: Deuteromycetes

Sub Kelas

: Hyphomycetidae

Ordo

: Hyphales

Family

: Dematiaceae

Genus

: Helminthosporium

Spesies

: Helminthosporium turcicum, Helminthosporium sigmoideum dan sigmoideum dan Helminthosporium

oryzae.. oryzae Morfologi Mikroskopis Hipa bersepta, septa bersifat konidiospora kadang bercabang, kadang bewarna gelap dengan karakter berbukit kecil biasanya biasanya berpasangan pada konidia yang mengeras (agak keras) konidia bewarna coklat, berbentuk oval berisi 4 atau lebih sel. Berdasarkan pengamatan morfologi jamur di bawah mikroskop, terlihat jamur yang mempunyai blastospora berbentuk bulat, oval dan silindris. Pseudohifa belum tampak, karena waktu pengamatan tersebut adalah enam hari setelah penanaman pada slide culture. Sedangkan waktu yang diperlukan untuk pertumbuhan dan pengamatn pseudohifa adalah tujuh hari ke atas setelah penanaman pada slide culture. Patogenesitas

Helminthosporium sp  sp  dikenal sebagai jamur kontaminan, sehingga dapt juga terinfeksi pada area disekitar persawahan. Rata –  –rata rata pertumbuhannya cepat, matang dalam waktu 5

 

hari. Helminthosporium

sp dapat sp 

menimbulkan

penyakit

yang umum um um

muncul

diakhir

masa

pertumbuhan tanaman padi dan jagung. Dimulai dengan bercak kecil yang tidak beraturan, berwarna coklat kehitaman dibagian pelepah yang berdekatan dengan batas air. Kadang-kadang sklerotia ditemukan pada batang yang terinfeksi (Sufian, 2009). Pengendalian   Pengendalian Fungisida

berbahan

aktif

difenoconazol

dianjurkan

untuk

mengendalikan penyakit

busuk

batang. Pengendalian dengan teknik pengelolaan lingkungan yang yang dilaporkan dapat menekan penyakit busuk batang diantaranya adalah: jerami dan tunggul dari tanaman yang terinfeksi diangkut keluar petakan sawah dan dibakar, pengeringan sawah secara berkala, pemupukan komplit dan nitrogen diberikan sesuai kebutuh tanaman, jarak tanam tidak terlalu rapat, dan memilih varietas padi yang tidak mudah rebah (Anonimus, 2011).