INSTITUTO MEXICANO DEL SEGURO SOCIAL DIRECCION DE DE PRESTACIONES MÉDICAS UNIDAD SALUD PÚBLICA COORDINACIÓN DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA Y APOYO EN CONTINGENCIAS DIVISIÓN DE LABORATORIOS DE VIGILANCIA E INVESTIGACIÓN EPIDEMIOLÓGICA
GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA LA IMPLEMENTACIÓN DEL DIAGNÓSTICO DE INFECCIONES BACTERIANA BACTERIANAS S INVASIVAS y TOS FERINA EN EL LABORATORIO CENTRAL DE EPIDEMIOLOGÍA
Dr. Víctor Hugo Borja Aburto Titular de la Coordinación de Vigilancia Epidemiológica y Apoyo en Contingencias Dr. César Raúl González Bonilla Jefe de la División de Laboratorios de Vigilancia e Investigación Epidemiológica Dra. Concepción Grajales Muñiz Jefa de la División de Vigilancia Epidemiológica de Enfermedades Transmisibles Marzo 2012
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Documento elaborado por:
Dr. José Alberto Díaz Quiñonez Jefe del Área de Laboratorio Central de Epidemiología Dr. Joaquín González Ibarra Jefe de Área de Coordinación de la Red Nacional de Laboratorios Ing. Miguel Ángel Pacheco Hernández Jefe de Área de Control de Procesos Dra. Clara Esperanza Santacruz Tinoco Encargada del Programa de Enfermedades Transmisibles M. en C. Nancy Torres Cortes Responsable del Diagnóstico de IRA 's bacterianas en el LCE M. en C. Julio Elias Alvarado Yaah Auxiliar del Diagnóstico de Infecciones Bacterianas Invasivas en el LCE Dra. Carmen Guadalupe Macías Martínez Coordinador de Programas Médicos
Guía rápida para el envío de muestras al LCE para la implementación del diagnóstico de Infeccione Infeccioness Bacterianas y B. pertussis
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INDICE
OBJETIVO ................................................................................................................................... ................................................................................................................................... 3 ANTECEDENTES .............................................................. ...................................................................................................................... ........................................................ 3 .............................................................................. 3 DEFINICIÓN OPERACIONAL DE CASO ...............................................................................
ACTIVIDADES A REALIZAR REALIZAR POR EL LAB LABORATORIO ORATORIO CENTR CENTRAL AL DE EPIDEMIOLOGÍA (LCE). .......................................................................................................... .......................................................................................................... 6 TIPO DE MUESTRAS ................................................................... ............................................................................................................... ............................................ 7 CONDICIONES PARA LA TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS ............................................. 8 INSTRUCCIONES INSTRUCCIONE S PARA EL ENVÍO DE MUESTRAS ...................................................... 10 CONSIDERACIONES CONSIDERAC IONES GENERALES PARA EL ENVIO DE MUESTRAS ....................... 12 DOCUMENTOS QUE SE DEBEN ENVIAR JUNTO CON LA MUESTRA ...................... 13 DIRECTORIO ............................................................................................................................ ........................................................................................................................... 14 REFERENCIAS ........................................................................................................................ ........................................................................................................................ 15 ................................................................. ...... 16 ANEXO I. Formato único de envío de mu muestras estras ...........................................................
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OBJETIVO Precisar los lineamientos para la toma, manejo y envío de muestras biológicas y cepas bacterianas, para la implementación del diagnóstico de Infecciones Bacterianas Invasivas y Bordetella pertussis en el Laboratorio Central de Epidemiología (LCE), de acuerdo a las recomendaciones del Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica, con la finalidad de disponer de datos que permitan conocer mejor la carga de morbilidad y mortalidad de estas enfermedades. ANTECEDENTES Las Infecciones bacterianas invasivas (IBI) son un conjunto de infecciones que constituyen uno de los principales problemas de salud a nivel mundial en niños menores de 5 años por ser una de las primeras causas de mortalidad y morbilidad. Las Las IBI están integradas por un variado grupo de enfermedades causadas por diversos agentes infecciosos, e inician con algún tipo de Infección Aguda, como el resfriado común, faringitis, amigdalitis, bronquitis, otitis, laringotraqueitis y tosferina. Éstas, evolucionan a enfermedades graves como la Neumonía, la cuál es la principal complicación de las Infecciones Respiratorias Agudas. De acuerdo con estadísticas de la OMS, la neumonía causa 100,000 decesos al año en niños menores de 1 año. Aproximadamente cada año el 15% de los niños menores de 5 años en los países subdesarrollados padece Neumonía. En México, se estima una incidencia de 1,303 casos por 100,000 niños, y de estos 88 por cada 100,000 niños menores de 1 año llegan a fallecer. En el IMSS, hasta el mes de noviembre del 2011 se han reportado 9,435 casos. El promedio semanal es de 197 enfermos. Por otro lado, otra de las graves complicaciones es la evolución a meningitis, una enfermedad que puede llegar a causar serios daños neurológicos. Provoca desde pequeñas crisis convulsivas, hasta daños permanentes, como sordera, parálisis cerebral, retraso mental y psicomotor, hidrocefalia y hasta la muerte del paciente. La letalidad oscila entre 10% y 20%. Los principales agentes responsables de estas enfermedades son: Streptococcus pneumoniae (neumococo), Haemophilus influenzae tipo b (Hib), y Neisseria meningitidis (meningococo), además de Bordetella pertussis. Desde 1993 la Región de las Américas cuenta con una red de vigilancia regional de laboratorios, conocida como SIREVA II ( Sistema Regional de Vacunas), apoyada por OPS/OMS y por el Gobierno de Canadá. Cada año, se publican los datos de la vigilancia de la red de laboratorios de SIREVA II por 19 países de América Latina, facilitando el análisis de las características fenotípicas (serotipos circulantes y susceptibilidad a los antibióticos) de las cepas circulantes de Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae y Neisseria meningitidis responsables de procesos invasivos en Latinoamérica y en el Caribe.
DEFINICIÓN OPERACIONAL DE CASO De acuerdo con la Organización Panamericana de la Salud se tienen las siguientes definiciones operacionales: 1. NEUMONÍA ADQUIRIDA EN LA COMUNIDAD Caso sospechoso de neumonía: Todo paciente hospitalizado con diagnóstico médico de neumonía adquirida en la comunidad. Se define como hospitalizado todo caso con indicación médica de un tratamiento intrahospitalario.
Caso probable de neumonía bacteriana: Todo caso sospechoso con una radiografía de tórax en que se identifique un patrón radiológico compatible con neumonía bacteriana. Guía rápida para el envío de muestras al LCE para la implementación del diagnóstico de Infeccione Infeccioness Bacterianas y B. pertussis
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Caso confirmado de neumonía bacteriana: Todo caso probable de neumonía bacteriana en el cuál se aísla Haemophilus influenzae, neumococo u otra bacteria. Caso descartado de neumonía bacteriana : Todo caso sospechoso con una radiografía de toráx donde no se identifique un patrón radiológico compatible de neumonía bacteriana. Caso inadecuadamente investigado: Todo caso sospechoso sin una radiografía de tórax. 2. MENINGITIS AGUDA AGUDA BACTERIANA BACTERIANA ADQUIRIDA ADQUIRIDA EN LA COMUNIDAD COMUNIDAD Caso sospechoso de meningitis: Todo paciente hospitalizado con diagnóstico médico de meningitis. Caso probable de meningitis bacteriana : Todo caso sospechoso en que el examen del LCR es compatible con meningitis bacteriana, es decir, presenta por lo menos una de las siguientes características: - Turbidez - Leucocitos aumentados (> de 100/mm 3) - Leucocitos entre 10-100/mm 3 y elevación de proteínas (>100 mg/dl) o disminución de la glucosa (2 segundos (Choque frío) o llenado capilar en “flash” (Choque caliente), Piel seca o caliente, mínimo retraso pulsos disminuidos (choque frio) o saltones (choque caliente), aumento de la presión diferencial, Choque “Frio” o Choque caliente”:
pulsos amplios y saltones, presión diastólica baja, extremidades calientes y moteadas (choque frio), o gasto urinario disminuido 60 mL/Kg/h en la reanimación con líquidos (de manera apropiada) e infusión de dopamina hasta 10 g/K g/Kg/ g/min min. Choque refractario: Choque persistente a pesar del uso de metas dirigidas con agentes inotrópicos, vasopresores, vasodilatadores y mantenimiento de la homeostasis metabólica (glucosa y calcio) y hormonal (tiroides, hidrocortisona e insulina). Sepsis: Síndrome de Respuesta Inflamatoria Sistémica (SRIS), en presencia o como resultado de sospecha de infección o infección documentada SRIS: Se define como la presencia de dos de cuatro de los siguientes criterios de los cuales alguno de ellos deberá ser forzosamente encontrarse alterado una Temperatura anormal Guía rápida para el envío de muestras al LCE para la implementación del diagnóstico de Infeccione Infeccioness Bacterianas y B. pertussis
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corporal central >38.5° o < 36°, taquicardia elevación persistente e inexplicable durante 0.5 a 4 hrs. de la elevación de la frecuencia cardíaca (FC) >2 desviaciones estándar (DE) de la media, para su edad en ausencia de estímulos externos, medicación o estímulo doloroso, o Bradicardia disminución de la FC inexplicable inexplicable por más de 0.5 hrs, y < al percentil 10 para su edad en ausencia de estímulo vagal, medicación beta-bloqueante o cardiopatía congénita, Taquipnea, frecuencia respiratoria > a 2 DE sobre la media para la edad, una cuenta leucocitaria elevado o disminuido para su edad (no secundaria a quimioterapia) ó >10% de neutrófilos inmaduros.
Sepsis grave: Sepsis más uno de los siguientes: disfunción cardiovascular que responde a la adecuada administración de líquidos ó síndrome de distrés respiratorio agudo (PaO2/FiO2 < infiltrado bilateral agudo no evidencia de fallo cardíaco izquierdo) ó dos o más disfunciones orgánicas (neurológica, metabólica, hematológica, etc.) Sepsis meningoccócica probable: a) fiebre, malestar, taquicardia y vómitos, b) deterioro brusco del estado circulatorio e hipotensión c) rash petequial diseminado que no desaparece a la presión 4) Diplococos gramm negativos en cualquier fluido estéril sangre, LCR, lesiones purpúricas). Sepsis meningoccócica confirmada: Cuadro anterior y aislamiento de Neisseria meningitidis o detención por PCR en cualquier sitio estéril 4. OTITIS MEDIA EXUDATIVA Se considera otitis externa aguda a la inflamación difusa del canal auditivo externo que puede involucrar el pabellón auricular o la membrana timpática, ocasionada por una infección secundaria a la ruptura de la barrera mecánica que proporciona el cerumen en presencia de aumento de la temperatura. 5. LARINGOTRAQUEITIS Laringotraqueitis aguda leve: Tos traqueal ocasional, en general no hay estridor en reposo, aunque se puede presentar al toser o llorar, no hay tiros supraesternales o son leves. Laringotraqueitis aguda moderada: Tos traqueal frecuente, estridor laríngeo fácilmente audible en reposo y dificultad respiratoria leve que se manifiesta por tiraje intercostal y esternal. Laringotraqueitis aguda Grave: Tos traqueal frecuente y puede ser más intensa, estridor laríngeo intenso a la inspiración e incluso puede ser audible a la espiración con mayor tiraje intercostal y esternal con dificultad respiratoria y agitación importantes.
Laringotraqueitis aguda que amenaza la vida: Inminencia de paro cardiorrespiratorio. Se encuentran presentes: letargo, somnolencia y cianosis. Con datos de dificultad respiratoria grave hasta el grado de esfuerzo respiratorio disminuido. 6. TOSFERINA Caso probable de tosferina: Cuadro agudo de tos de dos o más semanas de duración, acompañada de paroxismos; en niños pequeños tos prolongada aguda con periodos de apnea y cianosis, estridor inspiratorio o tos emetizante sin otra causa aparente. Caso confirmado de tosferina: Es un caso confirmado a quien, se le realizó aislamiento de Bordetella pertussis y es positivo ó tuvo prueba de inmunofluorescencia positiva (la inmunofluorescencia negativa no descarta el caso) ó se le demostró asociación epidemiológica con un caso confirmado. Guía rápida para el envío de muestras al LCE para la implementación del diagnóstico de Infeccione Infeccioness Bacterianas y B. pertussis
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Caso compatible con tosferina: Caso probable que no se confirmó por laboratorio ni por asociación epidemiológica. En el estudio de un brote no es necesario confirmar todos los casos por laboratorio, basta con uno que cumpla con la definición de caso confirmado por aislamiento, para considerar a los restantes como confirmados por asociación epidemiológica. ACTIVIDADES A REALIZAR POR EL LABORATORIO CENTRAL DE EPIDEMIOLOGÍA (LCE). A partir de 2012 el LCE llevará a cabo Invasivas la implementación validación del algoritmo para el diagnóstico de Infecciones Bacterianas causadasy por Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis y Haemophilus influenzae y tos ferina por Bordetella pertussis siguiendo las recomendaciones del Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos (InDRE) para que los resultados emitidos tengan validez oficial ante el Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica (SINAVE). En este momento el LCE implementará el diagnóstico confirmatorio de las Infecciones Bacterianas Invasivas mediante el primoaislamiento del agente infeccioso en medios enriquecidos y por medio de distintas pruebas pruebas bioquímicas básicas y tinción de Gram. Posteriormente se realizará la sensibilidad a los distintos antimicrobianos, dependiendo de la especie, así como su serotipificación. Los ensayos que se validarán a corto plazo en el LCE son los siguientes: a) Identificación del agente por medio del primoaislamiento y pruebas bioquímicas básicas de Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis , Haemophilus influenzae y Bordetella pertussis.
b) Patrón de sensibilidad antimicrobiana de Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis y Haemophilus influenzae.
c) Serotipificación de Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis y Haemophilus influenzae.
Aislamiento de Bordetella pertussis. d) Aislamiento Las muestras y especímenes bacterianos se procesarán en base al algoritmo para el diagnóstico confirmatorio de Infecciones Respiratorias Agudas Bacterianas emitido por el InDRE.
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Algoritmo para el diagnóstico de Infecciones bacterianas Invasivas
Fuente: SSA, InDRE, Departamento Departamento de Bacteriología (Laboratorio de IRAs bacterianas).
TIPO DE MUESTRAS La obtención de las muestras se hará exclusivamente a los casos probables en el laboratorio de la unidad hospitalaria. Las muestras deben ser tomadas durante el episodio agudo de la enfermedad, preferentemente antes de recibir tratamiento antimicrobiano, a fin de tener la mayor posibilidad de aislamiento del agente etiológico. Las muestras que se recibirán son las enlistadas en la siguiente tabla junto con las medidas que se deben de aplicar.
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DIAGNÓSTICO DIAGNÓSTICO TIPO DE MUESTRAS
MENINGITIS, SEPSIS, NEUMONIA, OTITIS MEDIA EXUDATIVA, LARINGOTRAQUEITIS, TOSFERINA. Cuando se sospeche de: S treptoc occ us pneumoni ae
En casos de neumonía, otitis, laringotraqueitis y sepsis. Tipo de muestra Exudado faríngeo, exudado nasofaríngeo, exudado ótico, expectoración, líquido cefalorraquídeo y sangre. Haemophilus influenza in fluenzae e
En casos de otitis media, faríngeo, epiglotitis, laringotraqueobronquitis, infecciones sistémicas, meningitis y sepsis. Tipo de muestra: Exudado exudado nasofaríngeo, líquido cefalorraquídeo y hemocultivo. Neis s eria menin meningg itidis
En casos de meningitis bacteriana. bacteriana. Tipo de muestra: líquido cefalorraquídeo y hemocultivo. B ordete ordetell lla a pertuss pertuss is y otras otras especies
CONDICIONES PARA LA TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS
En casos de Tosferina o síndrome coqueluchoide. Tipo de muestra: exudado nasofaríngeo. Nota: En este caso se debe utilizar un hisopo que no sea de algodón se recomienda que sea de alginato de calcio (si es para PCR no se recomienda este tipo de hisopo), rayón o dacrón con mango flexible (alambre de aluminio o plástico) para no lastimar al paciente. Depositar el hisopo con la muestra en 1 ml de medio de transporte (solución salina con cefalexina a u na concentración de 40 μg/ml) y trasladarlo lo más pronto posible al laboratorio en red fría (sin congelar). La viabilidad de este microorganismo en la muestra en red fría es de 48 a 72 hrs. Exudado Faríngeo a) Toma de muestra: Se pide al paciente que se siente y coloque su cabeza hacia atrás. Se ilumina bien la cavidad orofaríngea y con un abatelenguas se empuja la lengua hacia abajo para facilitar el acceso a la parte posterior de la faringe. Con un hisopo de algodón se hace un raspado de las áreas hiperémicas, purulentas o necróticas, asímuestra: como deEllashisopo membranas manchassedeintroduce Koplic, sien esun quetubo las presenta. b) Envío de con la omuestra de tapón de rosca con medio de AMIES modificado con carbón activado o medio de Stuart. Se rompe la varilla a la l a altura del tapón y se tapa herméticamente. Exudado nasofaríngeo a) Toma de muestra: Se pide al paciente que se siente y coloque su cabeza hacia atrás. Se introduce un hisopo de alginato de calcio, dacrón o nylon (nunca de algodón en caso de sospechar Bordetella) por las fosas nasales hasta la nasofaringe, sin tocar los cornetes y tratando de producir un acceso de tos. El hisopo se mantiene in situ de 10-15 segundos durante el acceso de tos, después de lo cual se retira rápidamente. b) Envío de muestra: Si la muestra no se va a procesar de inmediato, el hisopo se mantiene en un medio de AMIES modificado con carbón activado y se mantiene a temperatura ambiente el menor tiempo posible. Si se sospecha de Bordetella pertussis se mantiene a 4°C. Liquido cefalorraquídeo a) a) Toma Toma de Muestra: La obtención de la muestra es responsabilidad exclusiva del médico quien la tomará bajo rigurosas condiciones de asepsia. Se deben recuperar unos 5 mL los cuales se conservan en tubos de vidrio estériles con tapón de rosca. b) b) Envío de muestra: La muestra no debe inoculada refrigerarse, acompañarse de hielo. el envío tarda más de Envío 24 horas, la muestra debe enviarse ennimedios específicos. De Cuando preferencia en frascos de hemocultivo. Hemocultivo a) Toma de muestra: Se limpia el sitio de la punción con una torunda de algodón impregnada con etanol al 70% o solución de yodo al 2%. Si se trata de un adulto, se toman de 5 a 8 mL de sangre total, sin anticoagulante, o de 2 a 3 mL si se trata de un niño. De inmediato la sangre se inyecta a través del tapón (previamente desinfectado con alcohol) de un frasco para p ara hemocultivo. b) Envío de muestra: El frasco del hemocultivo se empaqueta bien en un recipiente con doble cubierta para evitar su ruptura. No hay que refrigerarlo. refrigerarlo. Líquido Pleural. a) Toma de muestra: Se recomienda que la toma de este tipo de muestra la realice exclusivamente el cirujano. Para la obtención del liquido de derramé pleural se requiere la colocación de pleurotomía cerrada e instalación de sello de agua por los riesgos que existen durante el procedimiento (hemorragia pulmonar, neumotórax o descompensación hemodinámica). Nota: Es esencial que estos todasmicroorganismos las muestras sean enviadas de inmediata al laboratorio su procesamiento, ya que son exigentes y nomanera sobreviven por mucho tiempo. Elpara tiempo máximo es de 2 horas después de la toma. toma. Si hay que mantener por más tiempo se recomienda poner en en
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una incubadora a temperatura de 35 a 36 °C. No es recomendable la refrigeración a refrigeración a menos que se indique (En el caso de sospecha de Bordetella pertussis).
CONSIDERACIONES GENERALES a) En el caso de muestras de LCR si no se puede enviar la muestra en forma inmediata, se puede inocular en un frasco para hemocultivo chico o en 1 mL de caldo infusión cerebro corazón enriquecido y transportarla al laboratorio a temperatura ambiente. Enviar resultados de examen citoquímico. b) Evitar la extracción en catéteres intrarteriales o intravenosos permanentes c) Para prevenir la coagulación de los líquidos pleurales adicione una pequeña cantidad de polianetol sulfonato de sodio (SPS) o de heparina estéril en el tubo donde se va a recoger la muestra.
CEPAS CONDICIONES PARA EL ENVÍO DE CEPAS
Para enviar cepas de S. pneumoniae, H. influenzae y N. meningitidis al laboratorio de referencia se debe emplear el medio de transporte de AMIES modificado con carbón activado. Procedimiento: 1. Realizar una siembra masiva de la cepa en el medio de cultivo de acuerdo al tipo de cepa: a) Si es Streptococcus pneumoniae en agar sangre de carnero al 5%. b) Si es Haemophilus influenzae en agar chocolate c) Si es Neisseria meningitidis en agar chocolate ó agar sangre de carnero al 5% ó Agar Thayer-Martin. 2. Incubar de 18 a 24 horas a 35-37°C en tensión parcial de CO 2. 3. Cosechar el desarrollo con asa estéril o con hisopo de dacrón o rayón e introducir el hisopo en un tubo que contiene el medio de transporte de AMIES, cerrar el tubo, sellar con parafilm y rotular el tubo: Nombre del paciente, microorganismo, fecha de siembra, tipo de muestra que proviene y anexar la información solicitada (formato único de envío de muestras). 4. Enviar inmediatamente al Laboratorio. NOTA: Se recomienda que el volumen del medio de transporte no sea mayor de 3 mL para evitar la dilución de los microorganismos presentes en la muestra. El tiempo de viabilidad de los microorganismos presentes en la muestra se incrementa si se utiliza medio de transporte de AMIES entre 48 a 96 hrs. Si se utiliza medio de transporte de Stuart, la viabilidad disminuye entre 24 y 48 hrs. Para enviar cepas de Bordetella pertussis u otras especies de Bordetella se debe emplear el medio de transporte de AMIES modificado con carbón activado. Procedimiento: 1. Realizar una siembra masiva de la cepa en el medio de cultivo Bordet-Gengou, 2. Incubar hasta 72 hrs en aerobiosis y en bolsas de plástico. 3. Cosechar el desarrollo con asa estéril o con hisopo de dacrón o rayón e introducir el hisopo en un tubo que contiene el medio de transporte de AMIES, cerrar el tubo, sellar con parafilm y rotular el tubo con la clave de microorganismo, anexar la información solicitada (formato único de envío de muestras al InDRE). 4. Enviar inmediatamente por un medio confiable de mensajería 5. Avisar por vía telefónica al laboratorio de referencia del envío de las cepas. 6. En caso de que no sea posible el envío inmediato, se puede mantener la cepa en este medio en condiciones de refrigeración y puede ser funcional durante tres días como máximo. Todas las cepas debe de venir venir perfectamente bien etiquetada, señ señalando alando el número de resiembras, diagnóstico solicitado, el formato único de envío de muestras correctamente llenado, resumen decon la historia clínica y oficio de solicitud de estudio. La
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falta de alguno de estos documentos o las condiciones inadecuadas de la cepa son causa de rechazo temporal. Se notificará al usuario las condiciones de arribo de muestra/cepa en cada caso.
INSTRUCCIONES PARA EL ENVÍO DE MUESTRAS M UESTRAS Las Delegaciones de Nuevo León, Tamaulipas, Baja California, Veracruz Norte, Veracruz Sur, Yucatán, Michoacán, Guerrero, Sinaloa, Chiapas y Quintana Roo, contarán con un sistema de embalaje y transporte, para hacer llegar las muestras para el diagnóstico de enfermedades bacterianas invasivas y B. pertussis al LCE que no generará costo para la Delegación. Las Unidades Médicas de estas Delegaciones deberán enviar las muestras a las unidades concentradoras. En esta etapa habrá una unidad concentradora por Delegación ( Tabla I). El resto de las Delegaciones si así lo desean pueden enviar muestras al LCE, pero deben tener en cuenta que el costo del embalaje y envío debe ser cubierto con recursos propios.
Tabla I. Unidades concentradoras de muestras. Estas unidades recibirán muestras de la Delegación. No LUGAR DE UNIDAD MEDICA . PROCEDENCIA 1
NUEVO LEÓN
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TAMAULIPAS
3
BAJA CALIFORNIA
4
VERACRUZ NORTE
5
VERACRUZ SUR
6
YUCATÁN
PERSONA TELEFONO RESPONSABLE Calle 2 de Abril Dr. Mario VPN: CENTRO DE 821561801 No. 501, Col Abelardo INVESTIGACIÓN Independencia, Bermúdez de BIOMÉDICA DEL 01 (81) 819 C.P. 64720. León NORESTE 04 035 y 36 Monterrey, Blvd. AdolfoN.L. VPN: López Mateos y 823151327 Av. Zapotal Col. Q.F.B. Miguel HOSPITAL GENERAL Las Conchitas Ángel Elias 01 (833) REGIONAL No. 6 C.P. 89480, Rocha 2152220 Ext. Ciudad Madero, 41326 Tamaulipas Tamaulipas Calle Cañada VPN: HOSPITAL 16801, Tercera 810191327 Dr. Jorge GENERAL Etapa del rio, Rodarte Corro REGIONAL No. 1 C.P. 22226. 01 (66) 418 Tijuana, B.C. 881 62 VPN: 824223214 Prolongación Salvador Díaz Mirón s/n 01 HOSPITAL esquina calle (229) Química Beatriz GENERAL DE cedros, 9221940 o fraccionamiento Pulido Ruiz ZONA No. 71 (229) floresta. CP 9221948 o 91940. (229) Veracruz, Ver. Ver. 9221920 Ext. 3214 VPN: Oriente 6 esq. 836171327 HOSPITAL Sur 41 S/N Col. Química Flora GENERAL Centro. C.P. María Cosmes 01 (52) 272 4 REGIONAL No. 1 94300. Orizaba, Jiménez 15 00, Ext. Ver. 61342 Colonia VPN: Industrial (Ex83700 1333 y UNIDAD DE terrenos del 1354 INVESTIGACIÓN Dr. Roberto Fénix, Hospital MÉDICA DE Cedillo Rivera T1). C.P. 01 (999) 922 YUCATAN 97150. Mérida, 5656 Ext. Yucatán 61615 DIRECCIÓN
CORREO ELECTRÓNICO
[email protected] [email protected] [email protected] [email protected]
[email protected] [email protected]
[email protected] [email protected] [email protected] [email protected]
[email protected] [email protected]
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MICHOACÁN
Av. Héroes de Nocupetaro y HOSPITAL Nicolás de Químico Octavio GENERAL Regules Col. Mendoza Ortiz REGIONAL No. 1 Centro. C.P. 58000. Morelia, Mich. HOSPITAL GENERAL
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GUERRERO
SINALOA
Av. Ruiz Cortines S/N,
Q.B.P. Antonia
Hernández Alta REGIONAL Albinez Progreso, "VICENTE NO.1 Col. Acapulco, Gro. GUERRERO"
HOSPITAL GENERAL DE ZONA CON MEDICINA FAMILIAR No. 3
CHIAPAS
HOSPITAL GENERAL DE ZONA No. 2
QUINTANA ROO
HOSPITAL GENERAL REGIONAL No. 17
Ejército Mexicano y Calle Amistad Q.F.B. Ixtlacihua S/N. Col. Adolfo Refugio Aguilar López Mateos. Solano C.P. 82149. Mazatlán, Sin. Calzada Emilio Rabasa s/n. Col. Centro. C.P. 29000. Tuxtla Gutiérrez , Chiapas Avenida Politécnico Manzana No 1 Lote 1 Región 509. Cancún, Q. Roo.
Q.F.B. Maria Otilia Urbina Castañeda
Q.F.B. Ma. Cecilia del Socorro Sosa Matu
01 (44) 33121738
[email protected] [email protected] [email protected] [email protected]
VPN:
[email protected] 832061327
[email protected] 01 (744) 44553-53 Ext.
[email protected] [email protected] 51330 y 51334, 51809 VPN: 814131324 o 1300, 1311
[email protected] 01(669)
[email protected] 98322799 01(669) 9847865, 66, 67 Ext. 31369 VPN: 831041325 01 (961) 6123155 Ext. 61324 01 (998) 267 8704, 05, 00. Ext. 1027
[email protected] [email protected]
[email protected] [email protected]
Nota: Para cualquier duda sobre este procedimiento podrán pedir informes o consultas vía correo electrónico a la dirección siguiente: siguiente:
[email protected] [email protected] o al teléfono 01 800 0032786 de 7 am a 12 pm. Las muestras deben estar contenidas en un recipiente primario, perfectamente rotulado.
Recipiente primario (1º): Este debe ser un frasco o tubo de cierre hermético y de material resistente para evitar derrames. La muestra debe de ir acompañada de los siguientes documentos: 1.1 Oficio de solicitud de prueba. 1.2 Formato Único de envío de muestra biológica (Anexo I). 1.3 Resumen de historial clínico. 1.4 Carta responsiva para envío de las muestras (esta es para hacer responsable de la muestra a la compañía transportadora una vez que es entregada por la Unidad Médica). La unidad concentradora deberá colocar los sellos correspondientes los cuales deberán ser adheridos a la parte interna del recipiente terciario (ver más abajo). La compañía transportadora se compromete a proporcionar previamente los recipientes secundarios y terciarios a la unidad concentradora necesarios para el envío de las muestras. Una vez que las muestras estén debidamente embaladas el responsable de concentrar las muestras deberá llamar al 01 800 00 32786 para que la compañía transportadora pase por Guía rápida para el envío de muestras al LCE para la implementación del diagnóstico de Infeccione Infeccioness Bacterianas y B. pertussis
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ellas para ser entregadas en el LCE del CMN “La Raza” dentro de un tiempo máximo de 48 hrs.
Para cualquier duda sobre este procedimiento podrán pedir informes o consultas vía correo electrónico a la dirección siguiente:
[email protected].
Embalaje: la compañía transportadora deberá proporcionar el recipiente secundario y terciario y sus respectivas etiquetas. La muestra debe enviarse en un sistema de triple embalaje basado en las normas oficiales mexicanas (NOM-051-SCT2/1995, guía de la OMS, Ginebra (1997), NOM-003-SCT/2000).
Recipiente secundario (2º): El recipiente primario debe ser colocado por la compañía transportadora en un segundo recipiente también hermético, a prueba de filtraciones, que protege el o los recipientes primarios. En el recipiente 2º se deberá de colocar material amortiguador que garanticen que la muestra contenida en el recipiente primario no se derrame y las muestras y las cepas deben enviarse a temperatura ambiente. Estos recipientes se componen de: hielera grande medidas 43X34X29 y refrigerantes en gel de 750 g de peso (este material también será proporcionado por la compañía que transportara la muestra). Recipiente terciario (3º): Paquete externo que protege los recipientes 1º y 2º de los elementos externos del ambiente, a fin de evitar posibles daños físicos y filtración de agua, mientras se encuentra en tránsito. Estos recipientes se componen de: caja y bolsa de cierre hermético que también serán proporcionadas por la compañía que transportara la muestra. Etiquetados Recipiente secundario: Se deben especificar las indicaciones necesarias en relación al riesgo biológico que representan las muestras y, en su caso, cualquier otro tipo de riesgos secundarios. Recipiente terciario: Debe incluirse los datos tanto del remitente como del destinatario. Deberán colocarse los siguientes tipos de etiquetas en la parte externa del paquete: a. Etiqueta de Riesgo Biológico para Sustancias Infecciosas b. Etiqueta de Riesgo Secundario, en el caso de que las muestras sean conservadas a baja temperatura con hielo seco o nitrógeno líquido. líquido. CONSIDERACIONES GENERALES PARA EL ENVIO DE MUESTRAS 1. Hay que verificar que todas las muestras estén identificadas correctamente con los datos del paciente. 2. Los frascos, viales, tubos, etc., deben estar tapados lo más herméticamente posible, colocando bien las tapas y tapones los cuales se asegurarán con tela adhesiva. 3. Cuando se manden varios tubos se aseguran con ligas y se colocan en bolsas cerradas. 4. Los frascos se colocan en bolsas de plástico resistentes y herméticamente cerradas. 5. Para el envío, las muestras se colocan en cajas térmicas resistentes empaquetándolas con relleno de papel, plástico o madera (viruta), para amortiguar los golpes. 6. Si se envían por avión, asegurarse que el paquete viaje en el área presurizada para evitar la pérdida (evaporación) de los especímenes. 7. Las muestras deben estar acompañadas de un oficio que especifique claramente la prueba solicitada y un resumen clínico enfatizando la fecha de inicio del padecimiento y la fecha de la toma de la muestra, edad y sexo, estos documentos, se colocan dentro del paquete en una bolsa de plástico sellada para evitar su pérdida. Remitente:
Responsable del envío Domicilio laboral Teléfono
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Red IMSS
Destinatario: Laboratorio Central de Epidemiología Hospital de Infectología del Centro Médico Nacional “La Raza”. IMSS Avenida Jacarandas Esquina Vallejo s/n. Colonia La Raza. C.P. 02200 México D.F. TEL. 57245900. Ext. 24321. Red IMSS 6219 1638 a) Debe verificarse que el nombre de la muestra sea el mismo en oficio y el formato único de envío de muestra. b) Escribir con letra de molde, de preferencia a máquina y enviar en original. c) Que la cantidad de muestra enviada sea de acuerdo a los estudios solicitados. 9. Las muestras se remiten lo más pronto posible después de obtenidas para organizar su adecuada preservación. 10. Cualquier duda respecto al envío de muestras al LCE debe ser consultada con el encargado del Área de Coordinación de la Red Nacional de Laboratorios del IMSS.
DOCUMENTOS QUE SE DEBEN ENVIAR JUNTO CON LA MUESTRA Cualquier omisión de los lineamientos anteriores es motivo de rechazo de la muestra. Los documentos básicos con los que debe llegar la muestra biológica a la recepción del LCE y que esta pueda ser procesada son los siguientes:
1. Oficio solicitando el diagnóstico, este debe contener al menos los siguientes datos: a) Remitir el oficio al Jefe del LCE (Dr. José Alberto Díaz Quiñonez). b) Nombre del médico que solicita el estudio y algún correo o teléfono en cual se pueda contactar en caso de algún imprevisto. c) Definir de forma clara el ensayo de laboratorio solicitado. d) Mencionar el número de muestras que se envían para cada diagnóstico. e) Especificar el nombre de cada uno de los pacientes, esto puede indicarse en el oficio o ir en un documento anexo. f) La solicitud debe ser enviada en papelería oficial 2. Debe enviarse correctamente llenado el formato único de envío de muestras biológicas, el cual se incluye en el anexo I. a) Debe llenarse un formato por cada paciente con letra legible. 3. Resumen de historial Clínico del paciente 4. Llenar carta responsiva de envío de muestras.
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DIRECTORIO NOMBRE Dr. Víctor Hugo Borja Aburto Dr. César González Bonilla
Dr. Alberto Díaz Quiñonez
Dr. Joaquín González Ibarra Ing. Miguel Ángel Pacheco Hernández
PUESTO
DOMICILIO
Mier y Pesado 120, Colonia Coordinador Del Valle, México DF 03100 Jefe de División de Mier y Pesado 120, Colonia Laboratorios de Del Valle, Vigilancia e México DF Investigación 03100 Epidemiológica Hospital de Infectología, CMN La Raza, Área de IMSS, Laboratorio Central Jacarandas de Epidemiologia esq. Vallejo, s/n. México DF 02200 Mier y Pesado Área de 120, Colonia Coordinación Red Nacional de de la Del Valle, México DF Laboratorios 03100 Mier y Pesado 120, Colonia Área de Control de Del Valle, Procesos México DF 03100
TELÉFONO
RED IMSS
5536 1539
6005 1800
5687 7255
6005 1803
[email protected]
57245900 – 6219 1638 Ext. 24321
CORREO ELECTRÓNICO
[email protected] [email protected]
[email protected] [email protected]
FUNCIÓN
Coordinación del proceso
Operación del proceso
Procesamiento de las muestras
5687 7255
6005 1803 joaquin.gonzale
[email protected] [email protected] Coordinación con la Red de laboratorios
5687 7255
6005 1803
Control de la
[email protected] [email protected] información sobre muestras y resultados
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REFERENCIAS 1. Programa de Vigilancia de los Serotipos y Resistencia antimicrobiana de Streptococcus pneumoniae y Haemophilus influenzae. Manual de procedimientos. Organización Panamericana de la Salud-OMS. 4ª versión. Junio, 2004. P.p. 33-75. 2. Manual de Laboratorio para la Identificación y prueba de susceptibilidad a los l os antimicrobianos de patógenos bacterianos de importancia para la Salud Pública en el Mundo en Desarrollo. Organización Mundial de la Salud-CDC. Salud-CDC. Atlanta Georgia. 2004. P.p. 49-67. 3. Vigilancia de las neumonías y meningitis bacterianas en menores de 5 años. Guía prácti práctica. ca. Organización Panamericana de la salud. Washington, D.C. 2007. P.p. 7-30. 4. Informe Regional de SIREVA II, 2010. Datos por país y por grupos de edad sobre las características de los aislamientos de Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae y Neisseria meningitidis, en procesos invasores Organización Panamericana de la Salud-OMS. Washington 2011. 5. IMSS. Boletín Epidemiológico 2011, Semana 1. IMSS. 2011. http://www.imss.gob.mx/publicaciones/epidemiologia/index.htm. http://www.imss.gob.mx/publicaciones/epidemiologia/index.htm.
Disponible en:
6. Miller MJ, et MJ, et al. Guidelines for safe work practices in human and animal medical diagnostic laboratories. MMWR laboratories. MMWR Surveill Summ. 6;61:1-102; 2012 7. World Health Organization. Guidance on regulations for the Transport of Infectious Substances 2011-2012; Geneva: WHO Press; 2010 8. Chosewood C & Wilson DE. Biosafety in Microbiological and Biomedical Biomedical Laboratories – 5th ed. CDC-NIH; 2009
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ANEXO I. Formato único de envío de muestras
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O S D I M E
N U
S
O
D
A
T
S
E
X I
C A
N O S
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ANEXO II. Carta Responsiva
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______________ a __________ de ___________ de d e 2011. Lugar día Mes
_____________________________ (a quien se dirige) CIUDAD DE _________________. P R E S E N T E.
Por medio de la presente declaramos que la mercancía transportada por la compañía OCASA, SOLUCIONES LOGISTICAS, amparada con el número de guía _____________________, consiste en
(escribir número de muestras) muestras biológicas infectocontagiosas
procedentes de seres humanos, las cuales si no son manejadas con las normas básicas de bioseguridad pueden representar un riesgo biológico para la persona que tenga contacto directo con el envió, dichas muestras serán utilizadas para la confirmación de diferentes diagnósticos en el laboratorio. Estas muestras pueden ser transportadas vía terrestre o aérea y deben ser entregadas en un plazo máximo de 48 hrs a partir de la entrega. Sin más por el momento y agradeciendo el apoyo me reitero a sus apreciables órdenes para cualquier aclaración.
A T E N T A M E N T E
________________________ Nombre del Responsable Datos Complementarios.
Importante: Favor de anotar fecha y hora en la que se recogió la muestra.
