Fitri Munifa Cori - I1C019075 - Laporan Akhir Dialisis

 

 

LAPORAN PRAKTIKUM BIOKIMIA

DIALISIS

DISUSUN OLEH : NAMA

: FITRI MUNIFA CORI

NIM

: I1C019075

KELAS

: FARMASI A 2019

KEMENTERIAN PENDIDIKAN DAN KEBUDAYAAN UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN FAKULTAS ILMU-ILMU KESEHATAN JURUSAN FARMASI PURWOKERTO

2020

 

DAFTAR PUSTAKA

I.  TUJUAN .......................................... ................................................................ ............................................ ............................................ ...................... 1 II.  TINJAUAN PUSTAKA PUSTAKA .......................................... ................................................................ ........................................ .................. 1 III.  METODOLODI PERCOBAAN PERCOBAAN .......................................... ................................................................. .......................... ... 3 III.1 Alat ............................................ ................................................................... ............................................. ........................................ .................. 3  III.2 Bahan ............................................ .................................................................. ............................................ ..................................... ............... 3  III.3 Prosedur Prosedur Percobaan Percobaan .......................................... ................................................................ ..................................... ............... 3 IV.  HASIL DAN PEMBAHASAN ................................... ......................................................... ..................................... ............... 4 IV.1 Data Pengamatan Pengamatan ......................................... ............................................................... ............................................ ...................... 4 IV.2 Data Perhitungan Perhitungan ........................................... .................................................................. ......................................... .................. 6 IV.3 Pembahasan ................... ......................................... ............................................ ............................................. .............................. ....... 6 V.  KESIMPULAN ............................................ ................................................................... ............................................. ............................. ....... 11 DAFTAR PUSTAKA PUSTAKA .......................................... ................................................................ ............................................ ...................... 12 LAMPIRAN .......................................... ................................................................ ............................................ ..................................... ............... 13

i

 

I. 

Tujuan

Memisahkan zat warna berdasarkan muatan pada pH tertentu menggunakan elektroforesis kertas.

II. 

Tinjauan Pustaka

Karena kebanyakan zat dapat berada dalam keadaan koloid, semua cabang ilmu kimia berkepentingan dengan kimia koloid dalam satu atau lain cara. Semua jaringan hidup bersifat koloidal. Banyak reaksi kimia yang kompleks yang perlu untuk kehidupan, harus ditafsirkan secara kimia koloid. Bagian kerak bumi yang dikatakan sebagai tanah yang bisa dicangkul terdiri dari bagian-bagian yang yang bersifat koloid, oleh karena itu ilmu tanah harus mencakup penerapan kimia kolois pada tanah. Ilmu kimia koloid di terapkan dalam Proses seperti memutihkan, menghilangkan bau, menyamak, mewarnai dan pemurnian, pembuatan tinta, gel, gel, mentega dan produk makan lainnya itu menggunakan prinsip kerja koloid sampai pada kesehatan saja seperti penucian darah itu menggunakan sistem kerja sifat koloid yaitu dialisis untuk itu ilmu kimia koloid berfungsi bagi kehidupan sehari-hari (Ari, 2009). Dialisis/ dialisa (pemurnian koloid) adalah salah satu sifat koloid yang merupakan cara untuk mengurangi ion-ion pengganggu yang terdapat dalam sistem koloid dengan menggunakan selaput semipermeabel. Atau dari kata lain proses penghilangan ion-ion pengganggu dengan cara menyaring menggunakan membran / selaput semipermeabel itu bisa disebut dialisis. Selaput semipermeabel adalah sejenis alat saring yang dibuat khusus untuk keperluan dialisis koloid yang memiliki daya saring sangat tinggi. Selaput semipermeabel ini hanya melewatkan molekul air dan ion-ion saja, sedangkan  partikel koloid tetap tinggal. Ion-ion pengganggu yang terdapat te rdapat pada sistem kolid tersebut, berasal dari larutan elektrolit yang ditambahkan ke dalam koloid untuk mempertahankan kestabilan koloid, koloid dapat dipertahankan dengan penambahan sedikit elektrolit dengan konsentrasi tepat. Apabila konsentrasi elektrolit tidak tepat akan terbentuklah ion-ion yang mengganggu kestabilan koloid. Adanya ion-ion pengganggu ini dapat dicegah atau dihilangkan dengan cara dialisis. Alat yang digunakan disebut dengan

1

 

dialisator contoh proses dialisis ini pada pencucian darah pada ginjal (Paryanto & Ruratno, 2006). Proses dialisis dilakukan dengan cara melewatkan pelarut pada sistem koloid melalui membran semipermeabel. Kemudian dialiri cairan murni secara terus-menerus, maka molekul kecil atau ion yang terdapat dalam koloid akan menembus selaput semipermeabel dan terbawa keluar, sehingga koloid akan tetap stabil dan murni kembali. 1. Koloid dimasukkan ke dalam sebuah kantong yang terbuat dari selaput semipermeabel.Selaput ini hanya dapat melewatkan molekul-molekul air dan ion-ion, sedangkan partikel koloid tidak dapat melewatinya. 2. Jika kantong berisi koloid tersebut dimasukkan ke dalam sebuah tempat  berisi air yang mengalir, maka ion-ion pengganggu akan menembus selaput bersama-sama dengan air, Ion-ion yang keluar melalui selaput semipermeabel tersebut kemudian larut dalam cairan murni. Dengan mengalirkan terus menerus cairan murni, ion-ion yang berada dalam kantong semipermeabel akan menembus keluar. 3. Keluarnya ion-ion dari kantong semipermeabel dapat dipercepat dengan cara elektrodialisis yaitu suatu alat untuk mempercepat proses dialisis mnggunakan elektrode-elektrode. Elektrode-elektrode ini berguna untuk menarik ion-ion di sekitar kantong. Prinsip dialisis diterapkan dalam proses cuci darah bagi penderita gagal ginjal. Proses ini dikenal dengan nama hemodialisis. Dimana darah disini adalah sebagai koloidnya, sedangkan ion-ion pengganggunya seperti urea, air, molekul sederhana (glukosa, protein). Prinsip dialisis ini digunakan dalam proses pencucian darah orang yang ginjalnya (alat dialisis darah dalam tubuh) tidak berfungsi lagi.

III. 

Metodologi Percobaan

3.1  Alat  Alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah gelas  piala,  pial a, sti stirer, rer, batang bata ng pengaduk, pengad uk, taung taun g selofan, sel ofan, benang benan g kasur, kasu r, tabung tabun g reaksi, plat, kompor, dan pipet tetes.

2

 

3.2   Bahan Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah  buffer  buff er fosfat fosfa t 0,02 N pH 6,8, larutan laruta n pati, air liur segar, sega r, larutan larut an iodium 0,01 N, pereaksi benedict, asam aseat 1%, EDTA 0,01 N, Na2CO3 1%, dan akuades. 3.3  Prosedur Percobaan a.  Persiapan Dialisis

  Disiapkan tabung selofan dan dipotong dengan panjang 20 cm



kemudian direndam ke dalam asam asetat 1% selama 1 jam.

  Diangkat dan direndam dalam akuades selama 15 menit.



  Diangkat kemudian direndam dalam 0,01 N EDTA 1% Na2CO3 



selama 30 menit.

  Dingkat lalu dimasukkan ke dalam air dan dipanaskan dengan



o

suhu 75 C dengan akuades.  b.  Percobaan

  Disiapkan 2 kantong dialisis, kantong A berisi 9 ml larutan



amilum dan 1 ml air liur, larutan B berisi 9 ml air liur dan akuades.

  Diikatkan selfon pada batang pengaduk menggunakan benang



kasur .

  Ditempatkan kantong A dan kantong B pada gelas piala yang



 berisi 75 ml larutan penyangga sehingga kantong kantong tenggelam dan dan  bebas bergerak.   Dialisis dilakukan selama 2 jam.



  Dipipet larutan cairan di luar dan di dalam kantong untuk



diperiksa adanya molekul besar dengan uji benedict dan amilum dengan uji iodium.

  Sampel diambil setiap 30 menit dimana sampel terdiri dari 2



 jenis yaitu larutan l arutan di luar kantong dengan masa inkubasi 0, 30, 60, 90, dan 120 menit dan di dalam kantong dengan masa inkubasi setelah dialisis selama 2 jam. c.  Dilakukan uji benedict 3

 

  Diambil 0,5 ml reagen benedict.



  Ditambahkan 5 tetes larutan yang akan diuji.



  Dipanaskan dalam penangas selama 5 menit.



  Dikeluarkan dan didiamkan beberapa menit.



 



Diamati perubahan yang terjadi setiap 30 menit selama sela ma 2 jam. d.  Dilakukan uji iodium

  Diteteskan sampel dari larutan luar dan dalam kantong pada



cawan porselen kering.

  Ditambahakn larutan iod 1 tetes dan dicatat warna yang terjadi.



IV. 

Hasil dan Pembahasan Pembahasan

4.1 

Data Pengamatan  No. 1.

Perlakuan

Pengamatan

1)  Disiapkan tabung selofan -  Telah disiapkan tabung dan dipotong dengan selofan dan telah dipotong  panjang 20 cm kemudian

dengan panjang 20 cm

direndam ke dalam asam

kemudian telah direndam

asetat 1% selama 1 jam.

ke dalam asam asetat 1% selama 1 jam.

2)  Diangkat

direndam -  Telah diangkat dan telah

dan

dalam akuades selama 15

direndam dalam akuades

menit.

selama 15 menit.

3)  Diangkat kemudian -  Telah diangkat kemudian direndam dalam 0,01 N telah direndam dalam 0,01 EDTA 1% Na2CO3 selama

 N

30 menit.

selama 30 menit.

EDTA

4)  Dingkat lalu dimasukkan -  Telah ke

dalam

air

dan

1%

diangkat

Na2CO3 

lalu

dimasukkan ke dalam air

dipanaskan dengan suhu

dan

dipanaskan

dengan

75oC dengan akuades.

suhu

75oC

dengan

akuades.

4

 

 No. 2.

Perlakuan 1)  Disiapkan

Pengamatan kantong -  Telah disiapkan 2 kantong

2

dialisis, kantong A berisi 9

dialisis, kantong A berisi 9

ml larutan amilum dan 1

ml larutan amilum dan 1

ml air liur, larutan B berisi

ml air liur, larutan B berisi

9 ml air liur dan akuades.

9 ml air liur dan akuades.

2)  Diikatkan

selfon

 batang

pada -  Telah

pengaduk

menggunakan

benang

kasur .

diikatkan

 pada

selfon

batang

pengaduk

menggunakan

benang

kasur .

3)  Ditempatkan kantong A -  Telah

ditempatkan

dan kantong B pada gelas

kantong A dan kantong B

 piala yang berisi 75 ml

 pada

gelas

larutan

 berisi

75

penyangga

sehingga

kantong

tenggelam

dan

bebas

 bergerak.

piala ml

 penyangga kantong

yang larutan

sehingga

tenggelam

dan

 bebas bergerak.

4)  Dialisis dilakukan selama -  Telah dialisis dilakukan 2 jam.

selama 2 jam.

5)  Dipipet larutan cairan di -  Telah

dipipet

larutan

luar dan di dalam kantong

cairan di luar dan di dalam

untuk

kantong untuk diperiksa

diperiksa

adanya

molekul besar dengan uji

adanya

 benedict

dengan uji benedict dan

dan

amilum

dengan uji iodium.

molekul

amilum dengan uji iodium.

6)  Sampel diambil setiap 30 -  Sampel menit

dimana

besar

telah

diambil

sampel

setiap 30 menit dimana

terdiri dari 2 jenis yaitu

sampel terdiri dari 2 jenis

larutan di luar kantong

yaitu

dengan masa inkubasi 0,

kantong

30, 60, 90, dan 120 menit

inkubasi 0, 30, 60, 90, dan

5

larutan

di

dengan

luar masa

 

dan

di

dengan

dalam

kantong

120 menit dan di dalam

masa

inkubasi

kantong

masa

setelah dialisis selama 2

inkubasi setelah dialisis

 jam.

selama 2 jam.

 No.

Perlakuan

Pengamatan

1)  Diambil 0,5 ml reagen -  Telah

3.

dengan

 benedict.

diambil

0,5

ml

reagen benedict.

2)  Ditambahkan

5

tetes -  Telah ditambahkan 5 tetes

larutan yang akan diuji. 3)  Dipanaskan

larutan yang akan diuji.

dalam -  Telah dipanaskan dalam

 penangas selama 5 menit. 4)  Dikeluarkan

 penangas selama 5 menit.

dan -  Telah

didiamkan beberapa menit.

dikeluarkan

dan

didiamkan beberapa menit.

5)  Diamati perubahan yang -  Diamati perubahan yang terjadi setiap 30 menit

terjadi setiap 30 menit

selama 2 jam.

selama 2 jam.

 No. 4.

Perlakuan 1)  Diteteskan

sampel

Pengamatan dari -  Telah diteteskan sampel

larutan luar dan dalam

dari larutan luar dan dalam

kantong

kantong

pada

cawan

pada

cawan

 porselen kering.  porselen kering. 2)  Ditambahakn larutan iod 1 -  Telah ditambahakn larutan tetes dan dicatat warna

iod 1 tetes dan dicatat

yang terjadi.

warna yang terjadi.

4.2  Data Perhitungan Tidak dilakukan perhitungan. 4.3  Pembahasan Dialisis adalah suatu teknik pemurnian koloid yang didasarkan  pada perbedaan ukuran partikel-partikel koloid yang dilakuan

6

 

dengan cara menempatkan dispersi koloid dalam kantong yang terbuat dari membran semipermeabel seperti kertas, selofan, dan  perkamen. Selanjutnya merendam kantong tersebut ke dalam air mengalir. Oleh karena ion-ion atau molekul memiliki ukuran lebih kecil dari partikel koloid maka ion-ion tersebut dapat pindah melalui membran dan keluar dari sistem koloid. Adapun partikel koloid akan tetap berada di dalam kantong membran. Hal tersebut merupakan  prinsip dialisis (Yayan & Agus, 2007). 2007). Amilum adalah jenis polisakarida yang banyak terdapat dalam alam yaitu sebagian besar tumbuhan terdapat pada umbi, daun,  batang, dan biji-bijian (Poedjiadi, 2009). Amilum merupaka senyawa organik yang tersebar pada kandungan tanaman. Amilum dihasilkan dari dalam daun-daun hijau sebagai wujud penyimpanan sementara dari produk fotosintesis (Gunawan, 2004). Amilum terdiri dari dua macam polisakarida yang keduanya adalah polimer dari glukosa yaitu amilosa (kira-kira 20-28%) dan sisanya amilopektin. Amilosa terdiri dari 250-300 unit D-glukosa yang berikatan dengan ikatan α-1,4 glikosidik (Sumardjo, 2009).

Struktur amilosa Amilopektin terdiri dari molekul D-glukosa yang sebagian  besar mempunyai ikatan 1,4 glikosidik dan sebagian besar 1,6 glikosidik. Adanya ikatan 1,6 glikosidik menyebabkan terjadinya cabang sehingga molekul amilopektin berbentuk rantai terbuka  bercabang. Molekul amilopektin lebih besar daripada molekul amilosa karena terdiri atas lebih 1000 glukosa (Poedjiadi, 2009).

7

 

Struktur amilopektin

Uji benedict dilakukan untuk mengetahui adanya gula  pereduksi superglukosa acak maltosa. Prinsip uji benedict yaitu untuk mengetahui kandungan gula pereduksi dan maltosa pada sampel dan reduksi Cu2+ menjadi Cu+ yang berwarna merah bata. Uji  benedict dilakukan pada larutan bagian luar dan menghasilkan larutan warna merah bata karena gula reduksi sudah mengalami difusi dari kantong selofan (Lehninger, ( Lehninger, 1982). Uji iodium adalah uji yang dilakukan untuk mengetahui jenis karbohidrat yang ada apakah termasuk amilosa atau amilopektin. Prinsip uji iodium adalah memberikan biru dan merupakan uji identifikasi terhadap adanya karbohidrat khususnya golongan  polisakarida (Lehninger, 1982). Alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah gelas  piala, stirer, st irer, batang bat ang pengaduk, taung selofan, benang kasur, tabung reaksi, plat, kompor, dan pipet tetes. Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah buffer fosfat 0,02 N pH 6,8, larutan pati, air liur segar, larutan iodium 0,01 N, pereaksi benedict, asam aseat 1%, EDTA 0,01 N, Na2CO3 1%, dan akuades. Pada praktikum kali ini terdapat 4 percobaan yang dilakukan. Yang pertama yaitu persiapan dialisis. Langkah pertama yang

dilakukan

adalah

menyiapkan

tabung

selofan

dan

memotongnya dengan panjang 20 cm kemudian merendamnya ke dalam asam asetat 1% selama 1 jam. Setelah tabung selofan direndam dalam asam asetat 1 %untuk melenturkannya, kemudian

8

 

tabung selofan diangkat dan direndam dalam akuades selama 15 menit untuk mengikat asam asetat pada p ada dinding kantong selofan lalu diangkat. Kemudian direndam dalam 0,01 N EDTA 1% Na 2CO3  selama 30 menit untuk mengikat logam pada dinding kantong selofan yang dapat mengganggu proses dialisis dimana dapat menjadi inhibitor enzim yang yang berakibat pada pemurnian oleh utas enzim tersebut (Arief, 1975) lalu dimasukkan ke dalam air dan dipanaskan dengan suhu 75oC dengan akuades untuk membuka pori pori kantong selofan (Bayen, (Bayen, 2000).

Percobaan kedua yaitu prosedur dialisis. Langkah pertama yang dilakukan adalah menyiapkan 2 kantong dialisis, kantong A berisi 9 ml larutan amilum dan 1 ml air liur, larutan B berisi 9 ml air liur dan akuades. Selanjutnya diikatkan selfon pada batang pengaduk menggunakan benang kasur. Lalu ditempatkan kantong A dan kantong B pada gelas piala yang berisi 75 ml larutan penyangga sehingga kantong tenggelam dan bebas bergerak. Lalu dilakukan dialisis selama 2 jam. Setelah didialisis larutan cairan di luar dan di dalam kantong dipipet untuk diperiksa adanya molekul besar dengan uji benedict dan amilum dengan uji iodium. Sampel diambil setiap 30 menit dimana sampel terdiri dari 2 jenis yaitu larutan di luar kantong dengan masa inkubasi 0, 30, 60, 90, dan 120 menit dan di dalam kantong dengan masa inkubasi setelah dialisis selama 2 jam.

9

 

Percobaan ketiga yaitu uji benedict. Langkah pertama yang dilakukan

yaitu

mengambil

0,5

ml

reagen

benedict

dan

menambahkannya dengan 5 tetes larutan yang akan diuji. Kemudian dipanaskan dalam penangas selama 5 menit lalu dikeluarkan dan didiamkan beberapa menit untuk selanjutnya diamati perubahan yang terjadi setiap 30 menit selama 2 jam. Percobaan terakhr yaitu uji iodium. Langkah-langkah yang dilakukan adalah meneteskan sampel dari larutan luar dan dalam kantong pada cawan porselen kering yang kemudian menambahkan larutan iod 1 tetes dan dicatat warna yang terjadi. Uji benedict dilakukan untuk mengetahui adanya gula  pereduksi superglukosa acak maltosa. Prinsip uji benedict yaitu untuk mengetahui kandungan gula pereduksi dan maltosa pada sampel dan reduksi Cu2+ menjadi Cu+ yang berwarna merah bata. Uji  benedict dilakukan pada larutan bagian luar dan menghasilkan larutan warna merah bata karena gula reduksi sudah mengalami difusi dari kantong selofan (Lehninger, 1982). Pada hasil praktikum sampel positif pada uji benedict karena membentuk endapan merah  bata.

10

 

Uji iodium adalah uji yang dilakukan untuk mengetahui jenis karbohidrat yang ada apakah termasuk amilosa atau amilopektin. Prinsip uji iodium adalah memberikan biru dan merupakan uji identifikasi terhadap adanya karbohidrat khususnya golongan  polisakarida (Lehninger, 1982). 1982). Warna biru keunguan menunjukkan menunjukkan hasil yang positif untuk hasil amilum karena iodin masuk ke dalam rongga molekul amilosa membentuk rantai heliks karena adanya ikatan dengan konfigurasi pada tiap unit glukosa (Jati, 2006).

V. 

Kesimpulan

Dialisis merupakan pemisahan molekul berdasarkan berat molekul. Amilum terdiri atas maltosa, amilosa, dan amilopektin. Amilase dapat merubah pati menjadi maltosa yang dapat menembus membran dialisis karena memiliki berat molekul kecil.

11

 

DAFTAR PUSTAKA

Ari, Sulistiorini. 2009. Buku 2009. Buku Penuntun Biologi SMA kelas X . Jakarta: PT. Balai Pustaka. Bayen, R. 2000. Matern 2000. Matern Experimental of Biochemistry. Biochemistry . San Fransisco: Addisum Wepky Lengmany. Jati, R. W. 2006. Pengaruh  Pengaruh Waktu Hidrolisis dan Konsentrasi HCl terhadap Nilai  Dextrose Equivalent (DE) dan Karakterisasi Mutu Pati Termodifikasi pati Tapioka dengan Metode Hidrolisis Analisis. Analisis . Skripsi. IPB. Lehninger, A. L. 1982. Dasar-Dasar 1982.  Dasar-Dasar Biokimia. Biokimia. Jakarta: Erlangga. Paryanto dan Ruratno. 2006. Kimia 2006. Kimia SMK kelas XI . Poedjiadi, A. 1994. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta: Erlangga. Sumardjo, O. 2009. Pengantar 2009. Pengantar Kimia. Kimia. Jakarta: EGC. Yayan, & Agus, S. 2007. Mudah 2007. Mudah dan Aktif Belajar Kimia. Kimia. Bandung: PT. Setia Puna Inves.

12

 

LAMPIRAN

1.  Amilum terdiri dari dua molekul berukuran besar, yaitu amilosa dengan BM 5,0 x 105  6

(50.000) dan amilopektin dengan BM 1,0 x 10 (1.000.000), apakah kedua molekul ini akan melalui membran dialisis? Jawab: Tidak karena membran dialisis akan menahan molekul yang besar yaitu amilopektin dan membran yang lebih kecil yaitu amilosa akan keluar dari membran dialisis. dialisis .

2.  Amilase, enzim yang ditemukan pada air liur akan merubah pati menjadi molekulmolekul maltosa yang ber BM 360, apakah melalui selaput atau membran dialisis? Jawab:  Iya, karena BMnya kecil.

13