Download Errores en La PCR - Ejercicios - 2021 - 2...
Description
Errores en la PCR: CASO I MP
Sin banda
Banda tenue
Sin banda ó banda tenue
Tiempos de los ciclos y temperaturas TIEMPO
Componentes de la PCR MASTER-MIX
-> [dNTPs] muy alta (Mg2+) o baja (200 μM, c/u) -> Pocos ciclos (20-35) -> Extensión muy corta (1min/kb) -> Anillamiento muy corto (>30s) -> Denaturación muy larga o muy corta (Inicial 3 min, durante el ciclo 30 s) TEMPERATURA -> Anillaje muy alta (Tm más baja – 5°C, < 72°C) *Gradiente de temperatura -> Denaturación muy baja
¡¡¡NO SE AGREGO ALGÚN COMPONENTE DE LA REACCIÓN!!!
-> [Primers] muy alta (dímeros) o baja (anillamiento ineficiente) (0.2 - 1 μM) -> [Taq polimerasa] baja (replicación incompleta)
-> [ Mg2+] insuficiente (1.5 mM) -> Contaminantes
CARACTERÍSTICAS DEL PRODUCTO(P) O DEL TEMPLETE (T) -> P: alto contenido CG (>65%) (↑Temperatura de anillaje) -> P: demasiado largo ->T: dañado, degradado o contiene inhibidores (Diluir/ ADN fresco ↑#Ciclos)
-> T: insuficiente
Errores en la PCR: CASO II
Banda no específica Banda específica
Banda no específica
Bandas no específicas ó dímeros de primers
Tiempos de los ciclos y temperaturas TIEMPO -> Demasiados ciclos (↑Amplificación inespecífica)
-> Extensión muy larga (↑Amplificación inespecífica) -> Anillamiento muy largo ( spurious priming) -> La velocidad de rampa del termociclador es muy baja ( spurious annealing) TEMPERATURA -> Anillaje muy baja *Gradiente de temperatura -> Cálculo incorrecto de la Tm del primer
Componentes de la PCR MASTER-MIX -> [Primers] muy alta (dímeros) o baja (anillamiento ineficiente) -> Diseño incorrecto de los primers (BLAST) -> [ Mg2+] muy alta (unión inespecífica) -> Contaminantes dNTPs
Errores en la PCR: CASO III
“Barrido” de bajo peso molecular
“Barrido” de alto peso molecular Banda no específica
-> Extensión muy larga (↑Amplificación inespecífica) -> Anillamiento muy largo ( spurious priming) -> La velocidad de rampa del termociclador es muy baja ( spurious annealing)
->T: Demasiado (inhibidores/denaturación ineficiente) ->T: Degradado o con presencia de exonucleasas (ADN fresco)
TEMPERATURA -> Anillaje muy baja *Gradiente de temperatura -> Cálculo incorrecto de la Tm del primer
Revisen el siguiente video de Gold Biotecnology.Inc: https://www.youtube.com/watch?v=GHQDEm7WLcU
MP MP
MP
[]stock del reactivo
Reactivos
Volumen a agregar
[] Master Mix
[ ]i
[ ]F
Volumen a agregar(μl)
Buffer PCR
10X
1X
?
dNTPs
20 mM
?
0.5 μl
?
2.5 mM
5 μl
Primers forward y reverse
10μM
0.1μM
?
10 U/μl
?
Volumen a agregar
Vamos a suponer que en este ejercicio, que el volumen final de la reacción es de 50 μl
𝐶𝑖 ∙ 𝑉𝑖 = 𝐶𝑓 ∙ 𝑉𝑓
MgCl2
Taq polimerasa
La cantidad de soluto se mantiene constante
?
5 0 μl
[] Master Mix []stock
Utilizamos una regla de 3. Por cada 25 μl de reacción necesito 2.5 U de Taq polimerasa
Despejando las variables de la ecuación Volumen a agregar
stock ([ ]i)
𝐶𝑓 ∙ 𝑉𝑓 𝐶𝑖 = 𝑉𝑖
𝐶𝑓 ∙ 𝑉𝑓 𝑉𝑖 = 𝐶𝑖
TIPs Asegúrate que ambos volúmenes (𝑉𝑖 , 𝑉𝑓 ) y ambas concentraciones (𝐶𝑖 , 𝐶𝑓 ) estén en las mismas unidades.
Para la Taq polimerasa Master Mix ([ ] f)
𝐶𝑖 ∙ 𝑉𝑖 𝐶𝑓 = 𝑉𝑓
Cómo son 50 μl de reacción requerimos 5 U de Taq (𝟐. 𝟓 × 𝟐).
10 U
1 μl
5U
X
10𝑈 ∙ 𝑋 = 1μ𝑙 ∙ 5𝑈 1μ𝑙 ∙ 5𝑈 𝑋= = 0.5 μ𝑙 10𝑈
Reemplaza los valores según corresponda en cada caso ¡Recuerda!, para este ejercicio 𝑉𝑓 = 50 μl
[]stock del reactivo
Volumen a agregar
[] Master Mix
Volumen a agregar(μl)
Reactivos
[ ]i
[ ]F
Buffer PCR
10X
1X
dNTPs
20 mM
0.2 mM
0.5 μl
MgCl2
25 mM
2.5 mM
5 μl
Primers forward y reverse
10μM
0.1 μM
0.5 μl
Taq polimerasa
10 U/μl
5U
0.5 μl
5 μl
Recuerda que este volumen lo debes multiplicar por el número de reacciones que se van a realizar. Controles (+), (-), y muestras que se van a amplificar.
Thank you for interesting in our services. We are a non-profit group that run this website to share documents. We need your help to maintenance this website.