cuestionarios nemav3, 4, 5

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE NUEVO LEÓN FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS Luz Estela Gómez Durán Grupo: 262

Salón: 305

NEMATOLOGÍA Y HELMINTOLOGÍA PRACTICAS: 3,4 y 5

Monterrey, Nuevo León a 16 de Febrero de 2010

PRACTICA No. 3 DISECCIÓN DE PECES 1.- Consulte las modificaciones que deben hacerse a la técnica de disección de peces para adaptarla a: Anfibios y Reptiles: En el caso de estos no se matan por deserebración ni electrocutándolo, se duermen con cloroformo, hasta que mueren y por tener una forma diferente a los peces, se colocan boca arriba. Pinchamos los dos miembros anteriores por la base de la mano, de forma que tengan un ángulo de 90º con respecto al plano de simetría. 1º se pincha un miembro y después el otro, tras haberlo estirado. Pinchamos, después de haberlos estirado, los dos miembros posteriores por la base del pie de forma que haya un ángulo de 45º con respecto al plano de simetría. Para evitar que los alfileres hieran en el curso de la disección, hay que plantarlos con un ángulo de 45º hacia el exterior. 2º) Abertura: Pinchamos la piel en mitad del vientre, por el plano sagital del mismo, y hacemos una pequeña incisión transversal con las tijeras finas. Por la abertura se introduce una sonda acanalada. Al ser introducida nos vamos a encontrar con una resistencia debido a que existe unos tabiques uniendo la piel y la musculatura subcutánea. Ayudándonos de la sonda acanalada y forzando los tabiques, separamos los sacos linfáticos y cortamos la pared: Hacia delante hasta el extremo de la mandíbula inferior (B). Hacia abajo hasta el extremo del tronco (A). Lateralmente hasta el codo (CD y CD') y hasta la rodilla (AE y AE'). Extendemos la piel y la pinchamos en la cubeta. En la región pectoral nos vamos a encontrar un gran vaso, la gran vena cutánea, que sale del cuerpo por detrás del brazo y distribuye por la piel la sangre. Procedemos a extraer los órganos. En lo que respecta a lo demás se hace lo mismo que en peces, se separan los órganos en cajas petri, se maceran y se realizan diluciones con solución salina. Aves: Hacer una incisión longitudinal desde el cuello a la cloaca con cuidado de no dañar órganos internos superficiales en la región superior del cuerpo (buche), remover el esternón y la musculatura de vuelo. El buche es una zona de almacenaje temporal y humidificación de alimento que se encuentra a continuación del esófago en la parte superior de la cavidad torácica, hacer una incisión para observar su contenido. Reconocer los órganos viscerales expuestos: corazón, hígado bilobulado , molleja, intestino. Remover el corazón, identificar las entradas y salidas de vasos sanguíneos a cada una de las cuatro cavidades; por debajo se puede observar el estómago de las aves que tiene dos porciones el proventrículo y la molleja (glandular y muscular respectivamente), seguir el sistema digestivo hasta encontrar el duodeno, el páncreas conectado al mismo, intestino delgado e intestino grueso, y en la unión de los dos intestinos un par de ciegos

Mamíferos: Se coloca el ratón dentro de una caja y se le agrega un algodón con cloroformo. Se deja el ratón unos minutos hasta que el cloroformo haya actuado sobre él y este totalmente muerto. Se limpia el ratón con un poco de agua. Se realiza un corte sagital de la parte posterior hacia la anterior con las tijeras, ayudándose con la canaleta. Se va cortando capa por capa de la piel del ratón. Se observan los órganos internos. Más que nada las diferencias radican en las diferentes anatomías de casa uno de los animales, que se procederá a disecar. LITERATURA CONSULTADA Lara Galindo, S., Manual de técnicas de disección, 1987, Editorial Harla, Pag. 248-351 PRACTICA No. 4. TECNICAS PARA FIJACIÓN DE HELMINTOS 1.- Consulte que otros fijadores se usan así como sus ventajas y desventajas: El mejor fijador de helmintos es el formol, se usa al 5% o al 10% en solución fisiológica. Otros usados son: Alcohol-formol-ácido acético (AFA): Líquido de Railliet-Henry

Fijador de Travassos (nematodos): Solución de Ringer, ácido acético glñacial y formalina Fijador de Bouin (trematodos y cestodos) Solución saturada de ac. Pícrico, formalina(40%) y ácido acético glacial. LITERATURA CONSULTADA Castro Castillo, A., Técnicas de diagnóstico parasitológico, 2ª. Edición, Pag 108119

PRACTICA No. 5. TECNICAS DE COLORACION DE HELMINTOS 1.- Mencione 3 diferencias que se presentan entre las técnicas de coloración: Hematoxilina de Van Cleave Los ejemplares se lavan con agua destilada Se colorean después del lavado Se contrasta en agua acidulada

Carmin acético de Semichon Los ejemplares se pasan directo al etanol 70% Se les da un tratamiento con etanol acidificado y carbonatado (70%), antes de colorearse. Se contrasta en etanol 70% acidificado

LITERATURA CONSULTADA Manual de prácticas de Nematología y helmintología.