Cinética Microbiana_2010
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INGENIERÍA BIOQUIMICA Cinética de Crecimiento Microbiano Introducción. Estequiometría, Rendimientos, Velocidad de Reacción Tipos de Modelos Cinéticos. Aproximaciones Crecimiento estacionario y no-estacionario Modelo de Monod. Linealizaciones. Modelos con Inhibición: Por substrato Por producto Modelos Estructurados. Ejemplos Modelos Segregados. Ejemplos
Tipos de Células Procaryota
Eucaryote
Células Eucariotas Estructura de una célula vegetal típica Citoesqueleto filamentoso
Estructura de una célula animal típica 1. Nucleolo, 2. Núcleo, 3. Ribosoma, 4. Vesícula, 5. Retículo endoplasmático rugoso, 6. Aparato de Golgi, 7. Citoesqueleto (microtúbulos), 8. Retículo endoplasmático liso, 9. Mitocondria, 10. Peroxisoma, 11. Citoplasma, 12. Lisosoma. 13. Centriolo.
Crecimiento microbiano Condiciones ambientales: pH, humedad, temperatura, salinidad
Carbono Célula
Energía
Nutrientes
Célula
Aceptor de e-
Subproductos metabólicos
Crecimiento celular Crecimiento celular consumo de substratos (energía y materia prima) para síntesis de células y de productos de metabolismo el entorno debe tener todos los elementos necesarios para la formación de células la DG de los substratos consumidos debe ser superior que la DG de las células y productos formados los elementos que constituyen los nutrientes deben ser compatibles con el mecanismo enzimático de las células obedece las leyes de conservación de materia y energía la cantidad de productos (metabolitos) formados, y el calor generado, son proporcionales a la cantidad consumida de substrato, o de alguno de los productos
X
S (comida) (sustrato)
Para:
-
X + P (células) (producto) (microorg.)
En un: • Biorreactor • Fermentador • Quimiostato
Eliminar S: depuración de agua Producir P: antibióticos Producir X: producción de SCP Primera etapa fermentación
A veces sucede que: Hidratos de carbono (mosto, cereales, patatas, frutas)
bichos
(bichos) + alcohol
Veneno (máximo 12% vol)
Crecimiento celular Conservación de materia estequiometría
Fuente de C + Fuente de N + O2 + minerales + + nutrientes específicos Masa celular + Productos + CO2 + H2O Ej. Crecimiento aerobio del Saccharomyces cerevisiae:
C6 H12O6 aO2 bNH3 cCH xOy Nz dCO2 eH2O
Composición elemental de algunos microorganismos Microorganismo
Nutriente limitante
Fórmula empírica
CH1,78N0,24O0,33
Aerobacter aerogenes Klebisella aerogenes
Glicerol
CH1,74N0,22O0,43
Candida utilis
Glucosa
CH1,84N0,20O0,56
Candida utilis
Etanol
CH1,84N0,20O0,55
Glucosa
CH1,70N0,17O0,46
Saccharomyces cerevisiae
Composición elemental de algunos microorganismos Ejemplo. Determinación de los coeficientes estequiométricos para el crecimiento aerobio del Saccharomyces cerevisiae sobre glucosa:
C6 H12O6 aO2 bNH3 cCH xOy Nz dCO2 eH2O Fórmula empírica del Saccharomyces cerevisiae sobre glucosa: Balance Balance Balance Balance
de de de de
Carbono: 6=c+d Hidrógeno: 12+3b=1,703c+2e Oxígeno: 6+2a=0,459c+2d+e Nitrógeno: b=0,171c
Solución: a=3,94 ; b=0,33 ; c=1,928; d=4,072; e=4,854
CH1, 70 N 0,17O0, 46
Dato adicional: Coeficiente respiratorio (RQ): mol CO2/mol O2 RQ=1,033=d/a
C6 H12O6 3,942 O2 0,33 NH 3 1,928 CH1, 703O0, 459 N 0,171 4,072 CO2 4,854 H 2O
Velocidad de Reacción y Rendimientos Velocidad de Crecimiento Celular. Velocidad Específica de Crecimiento
rX
rX (g/l.h)
dX dt
1 dX X dt
(h-1)
Rendimientos:
X (g/l)
YX S
rX DX rS DS
r DP P rS DS
S (g/l)
YP S
P (g/l)
YC S
; ;
YX O YP X
rX DX rO DO
r DP P rX DX
rP (g/l.h)
Relación entre las velocidades
rX 1 Y PS
rO (g/l.h)
rS (g/l.h)
rC DC rS DS
1 rS Y XS
rC (g/l.h)
rP 1 Y CS
rC
Definiciones de Rendimiento Símbolo
Definición
YX/S
g de biomasa seca/g de substrato consumido; Tasa de crecimiento molar: g de biomasa seca/mol de substrato consumido
YX/O
g de biomasa seca/g ó mol de oxígeno consumido
YP/S
g ó mol de producto/g ó mol de substrato consumido
YC/S
mol de CO2/mol de substrato consumido
Rendimientos Bacterianos sobre diversas fuentes de carbono Símbolo
YX/S
YX/O
YD
(g células/g substrato)
(g células/g O2)
(g células/kcal)
Malato
0,34
1,02
0,300
Acetato
0,36
0,70
0,210
Glucosa (melazas, almidón)
0,51
1,47
0,420
Metanol
0,40
0,44
0,120
Etanol
0,68
0,61
0,180
Isopropanol
0,43
0,23
0,074
Parafinas
1,03
0,50
0,160
Metano
0,62
0,20
0,061
Rendimiento Entálpico Rendimiento entálpico: YD: (g de biomasa/ kcal generada)
YD
YX S (DH S YX S DH C )
YX S 1 YD DH C YD DH S
DHS : Entalpía de combustión del sustrato DHC : Entalpía de combustión del material celular Balance de calor para un crecimiento aerobio: DHS (Calor generado por g de sustrato oxidado)
=
-
YX/S.DHC (Calor de combustión de las células producidas a partir del sustrato)
DHG (Calor generado por g de sustrato consumido en la fermentación que produce células, CO2 y H2O)
=
Factores que afectan la interacción célula-medioambiente Condiciones medioambientales
Población celular
• Multicomponente • Reacciones en solución • Equilibrio ácido-base • pH y temperatura variable
• Cambio de las propiedades reológicas
• Multicomponente nutrientes sustratos
• Heterogenidad de cada
productos
• Reacciones múltiples • Mecanismos internos
calor
• Multifásico (gas, líquido)
Interacciones
• Distribución espacial no
mecánicas
uniforme
célula individual
de control • Adaptabilidad • Aleatorio
• Variabilidad genética
Crecimiento celular, consumo de substratos y obtención de productos
Crecimiento celular, consumo de substratos y obtención de productos
Crecimiento celular, consumo de substratos y obtención de productos La aproximación
Estructurado (varios componentes)
No segregado (célula promedio)
CASO IDEAL La población celular se trata como un único componente en solución
Crecimiento Balanceado
Considera los multicomponentes de una célula promedio
Considera los componentes simples de las diferentes células
Crecimiento Balanceado
CASO REAL Considera los multicomponentes de las diferentes células
Promedio celular
Promedio celular
No estructurado (un componente)
Segregado (células diferentes)
Aproximaciones a la Cinética Microbiana
Fases del crecimiento celular discontinuo muerte
X
estacionaria
crecimiento exponencial Al agotarse los nutrientes disminuye la velocidad de crecimiento y luego mueren las células
latencia
tiempo
Periodo de latencia Es el tiempo que necesitan los microorganismos para adaptarse al nuevo medio (generar nuevas enzimas,…) Depende de la edad de los microorganismos (puede haber una edad óptima, normalmente los más jóvenes se adaptan más rápidamente). Se reduce realizando el crecimiento previo en un ambiente análogo. Se recomienda usar como siembra aproximadamente el 5% del fermentador. Puede haber varios periodos de inducción, si se van utilizando sucesivamente diferentes sustratos (crecimiento diaúxico).
Fase de Crecimiento Celular Exponencial Ley de Maltus:
dX X dt X (t tlag ) ln X0
td
ln 2
X X 0 t tlag
;
X X 0 exp (t tlag )
;
t tlag
td : tiempo necesario para duplicar la concentración celular
Fase de Crecimiento Celular Exponencial Ley de Maltus:
log (X)
Tiempo
latencia
Fases de crecimiento exponencial y estacionaria Cambio condiciones ambientales
A) Se acaba la comida alta S0 media S0
X
baja S0
La concentración final de células depende de la concentración inicial de sustrato
tiempo
Fases de crecimiento exponencial y estacionaria Velocidad de consumo de nutrientes:
dS kS X dt X X 0 exp( t )
dS k S X 0 exp( t ) dt S S0
kS X 0
S0 S
kS
S0
kS
X 1 X0
exp( t ) 1 k S X 0
X X 0
X F X 0
XF X0
kS
S0
Dependencia de la población máxima (XF) respecto de la concentración inicial de nutriente limitante
Fases de crecimiento exponencial y estacionaria Cambio condiciones ambientales B) Se acumulan materiales tóxicos (o se acaba el espacio)
XS
alta S0 media S0
X
baja S0
La concentración de células final es independiente de la concentración inicial de sustrato
tiempo
Fase estacionaria Población máxima (final)
XF El factor limitante de crecimiento dependerá de la concentración inicial de sustrato
Factor limitante: productos tóxicos Controla el veneno
Concentración inicial de nutrientes
S0
Crecimiento Diauxico Crecimiento diaúxico de E. Coli
El crecimiento diauxico se produce cuando se observan diferentes periodos de latencia debido a que en el medio hay diferentes sustratos que son consumidos a diferente velocidad por los microorganismos. Cuando uno de los sustratos es consumido totalmente, tras un periodo de latencia, los microorganismos consumen el segundo sustrato.
Fases de crecimiento exponencial y estacionaria Ley de Verlhurst (1844); Pearl & Reed (1920):
dX k ' X ct max ct dt ct ( X X 0 ) ctmax ( X F X 0 )
dX k X (XF X ) dt
XF X 1 exp( kt)
dct dX dt dt
C Ctt :: concentración concentración de de toxina toxina
dX k ' X ( X F X ) dt XF X0 X0
k’.=k
Fase de Crecimiento Celular Exponencial
X/XS
X/XS
k
Tiempo
Fase de Crecimiento Celular Exponencial
X/XS
X/XS
Tiempo
Fase de Crecimiento Celular Exponencial XF
X/XS
X
Tiempo
Fase de Muerte Celular dX d kd X v dt dX v m X kd X v dt dX d kd X v dt dX T d ( X v X d ) m X v dt dt X v X v0 exp( m kd ) t
X X v X v0 exp(( m k d ) t )
tiempo
Cinética de Crecimiento Celular Substrato (S ) Células ( X ) más Células ( X ) Pr oducto ( P) Ecuación de Monod (1942):
SX dX rX m dt KS S
S rX 1 dX m X X dt KS S
Cinética de Crecimiento Celular m S K S
;
m
Ecuación de Monod
S rX m X KS S
m/2
S 0 m S K S
KS
S
Ecuación de Monod 2.4
m=2,24
m
2.0
1.6
1.2
0.8
KS= m= m= m= m= m= m= m= m= m= m=
m=0,95
0.4
0.3 0.950 1.045 1.150 1.264 1.391 1.530 1.683 1.851 2.036 2.240
0.0 0
1
2
3
S
4
5
6
Ecuación de Monod
1.2
KS=0,20 1.0
0.8
0.6
KS=2,979
0.4
m= KS= KS= KS= KS= KS= KS= KS= KS= KS= KS=
KS
0.2
1.100 0.200 0.270 0.365 0.492 0.664 0.897 1.211 1.634 2.206 2.979
0.0 0
1
2
3
S
4
5
6
Cinética de Crecimiento Celular Ecuación de Monod
Crecimiento en glucosa
KS=0,22 mol/l m=1,3 gener./h
Crecimiento en triptofano
KS=1,1 ng/ml m=0,8 gener./h
Velocidad de crecimiento específico de E. Coli
Cinética de Crecimiento Celular Linelizaciones de la ecuación de Monod:
1 0.9 0.8 0.7
m
0.6 0.5
S rX m X KS S
0.4 0.3 0.2 0.1 0 0
200
400
600
800 S S
1000
1200
1400
1600
Cinética de Crecimiento Celular Linelizaciones de la ecuación de Monod: 250
KS 1 m m S
1/
1
200
1
1/m
150
pte. 100
o.o.
KS
m
1
m
50
Lineweaver Burke 0 0
0.2
0.4
0.6
1/S 1/S
0.8
1
1.2
Cinética de Crecimiento Celular Linelizaciones de la ecuación de Monod: 1800
S/ 1600
1 S m m S
1400
S/m
1200
KS
pte.
1000
1
m
800 600 400
o.o.
200
KS
Eadie-Hofstee
m
0 0
200
400
600
800
S S
1000
1200
1400
1600
Efectos ambientales en la Cinética de Crecimiento Celular Efectos de: Temperatura de operación pH Salinidad Oxígeno Presión Extremófilos: Organismos que pueden tolerar, o quizás requerir, condiciones extremas para vivir y desarrollarse. Fuera de las condiciones óptimas, la adaptación (compensación celular) puede reducir la velocidad de crecimiento, y por tanto el rendimiento.
Efecto de la Temperatura de Operación
Efecto de la Temperatura de Operación td
ln 2
Ln(rX)
Efecto de la temperatura en el crecimiento de E. Coli
Efecto de la Temperatura de Operación Clasificación de los microorganismos según su temperatura optima 40 a 70 ºC 10 a 45 ºC
15 a 18 ºC
70 a 100 ºC
90 a 115 ºC
Efecto de la Temperatura de Operación Temperatura (ºC) Grupo Termófilos Mesófilos
Mínima
Óptima
40 a 45
55 a 75
Máxima 60 a 80
10 a 15
30 a 45
35 a 47
Obligados
-5 a 5
15 a 18
19 a 22
Facultativos
-5 a 5
25 a 30
30 a 35
Psicrófilos
Clasificación de los microorganismos en función de la temperatura óptima de operación
Efecto del pH
Clasificación de los microorganismos según su tolerancia al pH
Efecto del pH m
m ( pH )
m [ H ] K a2 1 K a1 [ H ]
Efecto del pH en el crecimiento celular (Sinclair & Kristiansen, 1987)
Efecto del pH m
Efecto del pH en el crecimiento del methylococcus capsulatus
Efecto del pH X
Efecto del pH en el crecimiento de S. Cerevisae
Efecto del pH td td
ln 2
Efecto del pH en el crecimiento de E. Coli
Efecto de la Salinidad
Clasificación de los microorganismos según su tolerancia a la salinidad
Efecto del Oxígeno
Clasificación de los microorganismos según su respuesta al oxígeno a. Areróbicos b. Anaeróbicos c. Facultativos d. Microaeróbicos e. Aerotolerantes
Efecto de la Presión
Clasificación de los microorganismos según su tolerancia a la presión
Estratificación en Sistemas Naturales
Efecto de vertidos de aguas residuales en sistemas acuáticos Increase in heterotrophic bacterial numbers Decrease in O2 levels occur immediately upon a spike of organic matter. Rise in NH4+ followed shortly by the rise in NO3-, as the two-stage process of nitrification proceeds. The rise in numbers of algae and cyanobacteria is primarily a response to inorganic nutrients, especially PO43 Oxygen levels return to their pre-input levels once most of the oxidizable organic and inorganic compounds are depleted.
Otros modelos cinéticos Ecuación de Monod
rX X
S m KS S
Ecuación de Tessier:
S m 1 exp KS
Ecuación de Moser:
Sn m n KS S
Ecuación de Contois:
m
S B X S
Cinéticas que tienen en cuenta la inhibición por substrato Ecuación de Andrews y Noack:
m
S S2 KS S K is
Ecuación de Webb:
S S 1 K is m S2 KS S K is
Ecuación de Aiba y cols:
S S m exp KS S K is
Ecuación de Tessier:
m exp
Ecuación de Tseng Y Wymann:
m
S K is
S exp KS
S K is ( S SC ) KS S
Cinéticas que tienen en cuenta la inhibición por producto
S (1 k P) KS S
Ecuación de Dagley y Hinshelwood:
m
Ecuación de Holzber y cols.:
m k1 ( P k2 )
Ecuación de Ghose y Tyagy:
m 1
Ecuación de Aiba y Shoda:
m
Ecuación de Jerusalimsky y Neronova:
S K ip m K S S K ip P
Ecuación de Levenspiel:
P m 1 * P
P Pmax
S exp(k P) K S S
n
S KS S
Modelo de Han y Levenspiel (Ec. de Monod generalizada)
S kobs KS S obs
k obs
K S obs
Ci m 1 * Ci Ci K S 1 * Ci
n=0
kobs n1
m
P P*
K Sobs
C K S 1 *i Ci
m
Modelo de Han y Levenspiel Representaciones de Lineweaver-Burk
n>0 y m=0 Inhibición competitiva
Inhibición generalizada (anticompetitiva)
m>n>0
1 K S obs kobs kobs 1
1 S
n=0 y m0
k obs
C m 1 *i Ci
n>m>0
Inhibición generalizada (anticompetitiva)
Caso general
n>0 y m
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