Chave Culicidae.pdf

Clave fotográfica para hembras de zancudo (Diptera: Culicidae) presentes en Centroamérica y Panamá Autor: Luís Guillermo Chaverri En el género Aedes el subgénero Ochlerotatus ha sido elevado a la categoría de género por Reinert (2000) basado en características de la genitalia del macho y de la hembra. A excepción de la genitalia, no es posible separar taxonómicamente los adultos entre Aedes y Ochlerotatus. Además, tal y como lo reconoce el autor, algunas especies de Ochlerotatus, tanto adultos como larvas, no cumplen con las características diagnósticas de dicho taxón. Por lo anterior en esta clave se esta considerando el taxón Ochlerotatus dentro del género Aedes para facilitar la identificación por parte del usuario. En el género Wyeomyia algunas especies han sido separadas en el nuevo género Onirion por Harbach y Peyton (2000). Tal y como lo señalan dichos autores no es posible diferenciar entre las hembras de Wyeomyia y Onirion por lo que en esta clave ambos géneros se consideran como Wyeomyia, lo cual cumplirá con las necesidades de la mayoría de los usuarios de esta clave. Mayor información de Onirion como características diagnósticas de machos y de larvas se puede consultar en el artículo de los autores antes señalados. En el género Runchomyia existen tres subgéneros (Ctenogoeldia, Runchomyia e Isostomyia), cuales algunos taxónomos los reconocen como géneros separados. Por no existir una revisión taxonómica que acredite tal separación, en esta clave se consideran los anteriores subgéneros como parte de un solo género pero se ofrecen las características diagnósticas para su identificación. Esta clave se complementa con la clave para las formas larvales disponible en la dirección: http://www.inbio.ac.cr/papers/culicidae_larvas/index.html. Mayor información del número de especies, distribución y hábitats de los géneros señalados en esta clave se puede encontrar en: Sinopsis de los géneros de zancudos (Diptera: Culicidae) presentes en Centroamérica y Panama: http://www.inbio.ac.cr/papers/sinopsis/index.html Los términos taxonómicos empleados en la clave se encuentran descritos e ilustrados en Harbach y Knight, (1980). Esta clave se ha modificado tomando como referencia las claves presentadas en Clark-Gill y Darsie, (1983) y Vargas, (1998).

Clave fotográfica para adultos hembras de la familia Culicidae (Diptera) 1.

Palpos maxilares tan largos como la probóscide (Fig. 1).................................................................................... Palpos maxilares más cortos que la probóscide (Fig.2)......................................................................................

Fig. 1. Cabeza de Anopheles sp. mostrando los palpos maxilares tan largos como la probóscide.

2(1)

Fig. 2. Cabeza de Aedes sp mostrando los palpos maxilares más cortos que la probóscide.

Escutelo trilobulado con setas en cada lóbulo (Fig. 3); setas y escamas postpronotales presentes (Fig. 4)................................................................................................................................................. Escutelo redondeado con setas uniformemente distribuidas (Fig. 5); setas y escamas postpronotales ausentes (Fig.6)..................................................................................................................................................................

Fig. 3. Vista dorsal del tórax de Chagasia sp mostrando el escutelo trilobulado y con grupos de setas en cada lóbulo distribuidas.

2 3

Chagasia Anopheles

Fig. 4. Vista lateral del tórax de Chagasia sp mostrando presencia de setas y escamas postpronotales.

Fig. 5. Vista dorsal del tórax de Anopheles sp mostrando el escutelo redondeado y con setas uniformemente distribuidas.

Fig. 6. Vista lateral del tórax de Anopheles sp mostrando ausencia de setas y escamas postpronotales.

3(1)

Probóscide fuertemente curvada ventralmente (Fig. 7)........................................................................................ Probóscide recta o ligeramente curvada dorsalmente (Fig. 8)..............................................................................

Fig. 7. Cabeza de Toxorhynchites sp mostrando la probóscide curvada ventralmente.

4(3)

Fig. 8. Cabeza de Aedes sp mostrando la probóscide curvada ligeramente en forma dorsal.

Borde superior del meron en línea o ligeramente arriba del borde superior de la coxa de las patas traseras (Fig. 9).......................................................................................................................................... Borde superior del meron distintivamente arriba del borde superior de la coxa de las patas traseras (Fig. 10) ..............................................................................................................................................................

Fig. 9. Vista lateral de un Wyeomyia sp mostrando el borde superior del meron ligeramente arriba del borde superior de la coxa (pata trasera).

Toxorhynchites 4

5 13

Fig. 10. Vista lateral de un Aedes sp mostrando el borde superior del meron muy arriba del borde superior de la coxa (pata trasera).

5(4)

Postpronoto sin un grupo central de setas (Fig. 11).............................................................................................

Haemagogus

Postpronoto con un grupo central de setas (Fig. 12)............................................................................................

6 (tribuSabethini)

Fig. 11. Vista dorsal del postpronoto de Haemagogus sp mostrando ausencia de un grupo central de setas.

6(5)

Fig. 12. Vista dorsal del postpronoto de Limatus sp mostrando la presencia de un grupo central de setas.

Occipucio con una línea de escamas negras erectas (Fig. 13)..............................................................................

7

Occipucio sin una línea de escamas negras erectas (Fig. 14)...............................................................................

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Fig. 13. Vista dorsal de la cabeza de un Trichoprosopon sp mostrando las setas erectas en el occipucio.

Fig. 14. Vista dorsal de la cabeza de un Limatus sp mostrando el occipucio sin escamas erectas.

7(6)

Setas mesatepisternales inferiores llegando al nivel o más arriba del borde inferior del mesanepimeron (Fig. 15)................................................................................................................................ Setas mesatepisternales inferiores no llegan al nivel o más arriba del borde inferior del mesanepimeron (Fig. 16)................................................................................................................................

Fig. 15. Vista lateral del toráx de un Trichoprosopon sp mostrando las setas del mesanepisterno llegando más arriba del borde inferior del mesanepimeron.

8 9

Fig. 16. Vista lateral del toráx de un Johnbelkinia sp mostrando las setas del mesanepisterno llegando muy por debajo del borde inferior del mesanepimeron.

8(7)

Tibias de las patas traseras con una banda clara postmedial (Fig. 17); laterotergito y membrana postprocoxal con escamas blancas (Fig. 18)........................................................................................................ Tibias de las patas trasera sin una banda clara postmedial (Fig. 19); laterotergito y membrana postprocoxal sin escamas blancas.........................................................................................................................

Fig. 17. Pata trasera de Shanoniana sp mostrando la mancha postmedial en la tibia.

Fig. 19. Pata trasera de Trichoprosopon sp mostrando ausencia de la mancha postmedial en la tibia (solo mancha basal).

Shannoniana Trichoprosopon

Fig. 18. Adulto de Shanoniana sp mostrando la presencia de escamas en el laterotergito.

9(7)

Tarsómeros 4 y 5 de las patas medias y traseras con un anillo de escamas blancas (Fig. 20); escamas del escudo moderadamente anchas y planas.............................................................................................................. Tarsómeros 4 y 5 de la patas medias y traseras con escamas oscuras (Fig. 21); o con escamas blancas pero solo por la parte ventral........................................................................................................................................

Fig. 20. Pata trasera y media de Johnbelkinia sp mostrando los tarsómeros 4 y 5 con escamas blancas.

Johnbelkinia 10

Fig. 21. Pata trasera y media de Runchomyia sp mostrando los tarsómeros 4 y 5 con escamas oscuras.

10(9) Escamas del escudo (tórax en su parte dorsal) anchas (Fig. 22); escamas del vértex con reflejos verdes

o azules pero no plateados (Fig. 22); setas postpronotales ausentes (Fig. 23)...................................................

Isostomyia

Escamas del escudo angostas y curvas (Fig. 24); escamas del vértex con reflejos plateados y azulados (Fig. 27); con una o más setas postpronotales (Fig. 25)...............................................................................................

Runchomyia

Fig. 22. Adulto de Isostomyia espini (Martini ) mostrando las escamas del vértex con reflejos azulados y vista dorsal del tórax mostrando las escamas anchas.

Fig. 23. Vista lateral del tórax de un adulto de Isostomyia espini (Martini ) mostrando la ausencia de setas postpronotales.

Fig. 24. Vista dorsal del tórax de un adulto de Runchomyia magna (Theobald) mostrando las escamas angostas.

Fig. 25. Vista lateral del tórax de un adulto de Runchomyia magna (Theobald) mostrando las setas postpronotales.

11(6) Setas pre-espiraculares ausentes (Fig. 26); patas traseras con la uña tarsal simple............................................ Setas pre-espiraculares presentes (Fig. 27); patas traseras con la uña tarsal doble.............................................

Fig. 26. Vista lateral del tórax de un adulto de Limatus sp mostrando la ausencia de setas pre-espiraculares.

Limatus 12

Fig. 27. Vista lateral del tórax de un adulto de Wyeomyia sp mostrando la presencia de setas pre-espiraculares.

12(11) Seta prealar presente (Fig. 28); escudo sin escamas de color metálico................................................................

Wyeomyia

Seta prealar ausente (Fig. 29); escudo con escamas de color metálico................................................................. Sabethes

Fig. 28. Vista lateral del tórax de un adulto de Wyeomyia sp mostrando la presencia de setas pre-alares.

Fig. 29. Vista lateral del tórax de un adulto de Sabethes sp mostrando la ausencia de setas pre-alares.

13 (4) Celda r2 más corta o igual que la longitud de la vena R2+3 (Fig. 30); vena A1 terminando antes de la unión de las venas CuA1 y CuA2 (Fig. 29); tórax con líneas de escamas iridiscentes (Fig. 31).................................. Celda r2 más larga que la longitud de la vena R2+3(Fig. 32); vena a1 terminando después de la unión de las venas CuA1 y CuA2 (Fig. 34); tórax sin líneas de escamas iridiscentes..................................................

Fig. 30. Ala de Uranotaenia sp mostrando la Celda r2 más corta que la vena r2+3 y la vena A1 terminando antes de la unión de las venas CuA1 y CuA2.

Uranotaenia 14

Fig. 31. Vista lateral de un adulto de Uranotaenia sp mostrando las escamas iridiscentes en el tórax.

Fig. 32. Ala de Culex sp mostrando la Celda r2 más larga que la vena R2+3 y la vena A1 terminando después de la unión de las venas CuA1 y CuA2.

14(13) Antenas más largas que la probóscide (Fig 33).................................................................................................... Antenas más cortas o de igual longitud que la probóscide (Fig. 34)....................................................................

Fig. 33. Cabeza de Deinocerites sp mostrando una de las antenas más larga que la probóscide.

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Fig. 34. Cabeza de Aedes sp mostrando las antenas más cortas que la probóscide.

15(14) Tarsómero 4 de las patas delanteras y medias tan largo como ancho (Fig. 35)................................................... Tarsómero 4 de las patas delanteras y medias más largo que ancho (Fig. 36).....................................................

Fig. 35. Pata media de Orthopodomyia sp mostrando el tarsómero 4 tan largo como ancho.

Deinocerites

Orthopodomyia 16

Fig. 36. Pata media de Culex sp mostrando el tarsómero 4 más largo que ancho.

16 (15) Segmentos de las antenas cortos y ligeramente redondeados (Fig. 37); fémures de las patas medias con un mechón de escamas en el ápice (Fig. 38)............................................................................................... Aedeomyia Segmentos de las antenas largos (Fig. 39); fémures de las patas medias sin un mechón de escamas en el ápice (Fig. 40)................................................................................................ 17

Fig. 37. Cabeza de Aedeomyia squamipennis mostrando la antena con los flagelómeros cortos.

Fig. 38. Fémur de la pata media de Aedeomyia squamipennis mostrando el mechón apical de escamas.

Fig. 39. Cabeza de Aedes sp mostrando la antena con los flagelómeros largos.

Fig. 40. Fémur de la pata media de Culex sp mostrando ausencia del mechón apical de escamas.

17(16) Setas presentes en la base de la vena subcostal del ala (en vista ventral) (Fig. 41).............................................. Setas ausentes en la base de la vena subcostal del ala (en vista ventral) (Fig. 42)...............................................

Fig. 41. Ala de Culiseta particeps mostrando las setas en la vena subcostal (vista ventral).

Culiseta 18

Fig. 42. Ala de Culex sp mostrando ausencia de setas en la vena subcostal (vista ventral).

18(17) Escamas anchas sobre las venas R2 y R3 (Fig. 43).............................................................................................

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Escamas largas y angostas sobre las venas R2 y R3 (Fig. 44).............................................................................

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Fig. 43. Alas de Mansonia sp mostrando las escamas anchas en las venas R2 y R3.

Fig. 44. Alas de Culex sp mostrando las escamas largas y angostas en las venas R2 y R3.

19(18) Fémures con bandas pre-apicales de escamas blancas (Fig. 45).......................................................................... Fémures con escamas negras y blancas mezcladas pero sin bandas pre-apicales de escamas blancas (Fig. 46).....................................................................................................................................

Fig. 45. Patas de Coquillettidia sp mostrando las bandas preapicales de escamas blancas en los fémures.

Mansonia

Fig. 46. Pata media de Mansonia sp mostrando escamas negras y blancas entremezcladas y sin un patrón de banda preapical.

20(18) Setas post-espiraculares ausentes(Fig. 47)............................................................................................................ Setas post-espiraculares presentes(Fig. 48)..........................................................................................................

Fig. 47. Vista lateral de un Aedes sp mostrando la presencia de setas post-espiraculares.

Coquillettidia

Culex 21

Fig. 48. Vista lateral de un Culex sp mostrando la presencia de setas post-espiraculares.

21(20)Setas pre-espiraculares presentes (Fig. 49).......................................................................................................... Setas pre-espiraculares ausentes (Fig. 50)............................................................................................................

Fig. 49. Vista lateral de un Psorophora sp mostrando la presencia de setas pre-espiraculares.

Psorophora Aedes

Fig. 50. Vista lateral de un Aedes sp mostrando la ausencia de setas pre-espiraculares.

Referencias Clark-Gill, S.; R.D. Darsie. 1983. The mosquitoes of Guatemala, their identification, distribution and bionomics. Mosquito Systematics 15(3): 151-284. Harbach, R.E.; K.L. Knight. 1980. Taxonomists´glossary of mosquito anatomy. New Jersey, Plexus Publishing Inc., 415p. Harbach, R.E.; Peyton, E.L. 2000. Systematics of Onirion, a new genus of Sabethini (Diptera: Culicidae) from the Neotropical Region. Bulletin of the Natural History Museum of London 69(2): 115-169. Reinert, J.F. 2000. New classification for the composite genus Aedes (Diptera: Culicidae: Aedini), elevation of subgenus Ochlerotatus to generic rank, reclassification of the other subgenera, and notes on certain subgenera and species. Journal of the American Mosquito Control Association 16(3): 175-188. Vargas, M.V. 1998. El mosquito, un enemigo peligroso. San José, Costa Rica, Editorial de la Universidad de Costa Rica, 264p.