Caracterizacion de Las Larvas de Camaron

Caracterización, selección , aclimatación y transporte de larvas Ac. Susana Peña de Rengel

“Así como el camaronero sabe que camarón esta cosechando, el laboratorio sabe que calidad de larva le esta vendiendo” “Se debe crear una relación de confianza a través de resultados entre el laboratorio y la camaronera” Dr. Chalor Limsuwan

¿Como garantizamos éxito en un cultivo de camarón? Al menos 50% del éxito en la producción de camarón

se debe a la buena calidad de larva

¿Cómo se hace esto? Manejo de reproductores Selección de nauplios vigorosos y saludables Nutrición en el laboratorio Monitoreo constante de la salud de la larva

Y después??? También es muy importante: Aclimatación de la larva Transporte de larvas Después de realizar un trabajo muy meticuloso todo puede fallar por errores cometidos en estos procesos y no termina allí….. Muy importante condiciones de las piscinas que reciben la larva.

Caracterización de las larvas de camarón Objetivo Evaluar la calidad de las larvas y su desarrollo en los diferentes estadios larvarios para asegurarnos una excelente selección.

EVALUACION Actividad deformidad Desarrollo branquial Atrasos Lípidos Índice de masa muscular Homogeneidad Cromatóforos Opacidad en musculatura Necrosis Presencia de protozoarios Crecimiento

ACTIVIDAD

Observación visual: Larvas saludables nadan activamente en contra de la

corriente Animales débiles agrupados en el centro Forma de nado Varias tallas Color del hepatopáncreas

DESARROLLO BRANQUIAL Las branquias son el principal órgano de regulación osmótica en camarones, por lo cual una evaluación del desarrollo de las mismas es muy importante, ya que además nos indica el estado de desarrollo general de la larva ((Tomado del libro "Manual Práctico para la Producción Semi-intensiva de Camarón Marino")

Observación: la larva madura presenta en la última

lamela 2 pares de lóbulos branquiales

En una larva saludable después de 17 días de cultivo

(PL 10-11) su desarrollo branquial debería estar alrededor del 95%

PL 4

PL 8 -10

PL 6

PL 10 - 12

GRAFICOS TOMADOS DE MANUAL DE CALIDAD DE LARVAS DE CENAIM, ESPOL

PL 8

ATRASOS Es un indicativo de que existió problemas durante las

fases del cultivo Es más fácil observar los atrasos en el paso de mysis 3

a postlarva 1 Los atrasos es una de las causas de la disparidad en el

cultivo larvario

LIPIDOS Tanto el HP como el tracto digestivo deben presentar alto

contenido de lípidos Indicativo de una buena nutrición en la postlarvas La artemia salina aporta

1978c)

W3-HUFA (Watanabe et al

CROMATOFOROS Cromatóforos normales : puntos pigmentados En relación con la edad de las postlarvas

Cuando están dilatados o ramificados es una señal de estrés

Cromatóforos Expandidos

CRECIMIENTO DE LAS POSTLARVAS Relación de cantidad de postlarvas en un gramo de

peso (PL/GR) Haciendo pl./gr periódicamente observamos como las

postlarvas van creciendo durante el cultivo Indicador de buena salud y nutrición

TABLA DE CRECIMIENTO EDAD

PLs/g MIN

PLs/g

MAX

PL 1

1627

1712

PL 2

1407

1037

PL 3

1377

1391

PL 4

1200

1266

PL 5

1012

1115

PL 6

835

937

PL 7

712

720

PL 8

589

606

PL 9

493

565

PL 10

403

466

PL 11

334

376

PL 12

239

299

PROTOZOARIOS No debe observarse protozoarios adheridos al

exoesqueleto, apéndices y branquias Una gran proliferación de estos organismos impide a las larvas mudar y se debilitan A nivel de branquias impide la osmoregulacion y captación de oxigeno llegando a la muerte.

Vorticellas

Bacterias filamentosas en branquias

Zoothamnium sp.

Acineta sp.

HOMOGENEIDAD Lo que nos referimos a la disparidad de tallas en el

cultivo larvario Ligado a los atrasos ocurridos durante las diferentes fases del cultivo También ocasionado por baja nutrición de las postlarvas Medir porcentajes de tallas (preferible 80% de la población de una misma talla) a pl12-13

NECROSIS Las postlarvas presentan necrosis cuando están sub

alimentadas (canibalismo) Problemas de enfermedades bacterianas No llevar larvas con un porcentaje mayor al 5% de necrosis a nivel de pleopodos No llevar postlarvas con necrosis a nivel de branquias

INDICE DE MASA MUSCULAR Es la relación entre el grosor del intestino y el ancho

del 6to segmento abdominal. Larva vigorosa tiene una relación de 5:1 Es un indicativo de buena salud También es indicativo de una buena nutrición

DEFORMIDAD Postlarvas con rostrum torcido, deforme o doblado problemas de muda y pérdida de apéndices

OPACIDAD MUSCULAR La presencia de camarones con opacidad en su musculatura puede ser debido a stress por: Condiciones ambientales Infecciones Generalmente se encuentra el tracto intestinal vacío

Otras herramientas para la selección Prueba de stress: medir la resistencia de las postlarvas

sometidas a un shock de un parámetro conocido y después evaluar su recuperación, Análisis de IHHNV, WSSV ,NHP para asegurarnos de

sembrar larvas saludables, con baja incidencia de virus dependiendo del laboratorio escogido para realizar el análisis Análisis bacteriológico: observación de bacterias

luminiscentes, presencia de bacterias patógenas.

EVALUACION DE LA PRUEBA DE ESTRÉS Porcentaje de supervivencia

Evaluación

90 a 100%

Excelente

85%

Aceptable

80%

Regular

< 80%

No aceptable

CHEQUEOS IMPRESCINDIBLES Recepción de nauplios (en el laboratorio) Al recibir nauplios en el laboratorio, hay dos chequeos que tienen que

realizarse cómo parte de este programa.   a.) la confirmación de origen, familia (línea genética) y código de

identificación de los nauplios.   b.) La primera observación microscópica después de 18 horas de

siembra, para confirmar la metamorfosis completa (100%) de N5 a Z I.  

PRODUCCION DE LARVAS Durante esta fase hay un mínimo de 5 chequeos independientes de las larvas antes del despacho:   Primer chequeo: Z3-M I (desarrollo morfológico y rango de estadios) Segundo chequeo: M3-PL1 (actividad, salud general,

atrasos, y supervivencia).

Tercer chequeo: Post larva temprana PL4 - PL 5 ( tasa

de crecimiento, disparidad de tallas, supervivencia, salud).   Cuarto Chequeo: Post larva desarrollada PL 8-PL 10

(prueba de estrés, desarrollo branquial, salud, análisis NHP, IHHNV, WSSV, se inicia proceso de aclimatación)  

Quinto Chequeo: Chequeo pre cosecha (cálculo de

requisito de transporte, revisión de temperatura y salinidad, revisión final de larvas) Nota: Cuando se encuentre algún problema

solucionable, se debe programar medidas correctivas inmediatas con el encargado. Debe existir un tiempo máximo para la solución del problema en caso contrario la larva será rechazada.

ACLIMATACION Reducir al máximo el stress y mortalidad para asegurarnos

una siembra exitosa, Temperatura y salinidad son los parámetros que debemos monitorear, Adaptación gradual a las nuevas condiciones ambientales, Comunicación entre la camaronera y el laboratorio debe ser fluida , La camaronera debe informar con suficiente anticipación los parámetros de sus piscinas para proceder a la aclimatación gradual de las postlarvas

ACLIMATACION A BAJA SALINIDAD  Para iniciar una aclimatación a baja salinidad la larva debe tener su desarrollo

branquial completo (OSMOREGULACION)  Antes de iniciar la aclimatación, las larvas deben estar saludables (ningún

tratamiento)  Durante el proceso de aclimatación debe aumentar la ración de artemia en cada

dosis Observación constante al microscopio

TABLA DE ACLIMATACION #1 La salinidad normal en los laboratorios está entre 33 y

34 ups. RANGO SALINIDAD

TIEMPO EN HORAS

34 - 30

4

30 - 25

6

25 - 20

8

20 - 15

10

15 - 10

14

10 - 5

18

5 - 2

20

TABLA DE ACLIMATACIÓN #2 RANGO SALINIDAD

ppt o ups / min

34 - 25

1 ppt / 30 min

25 - 20

1 ppt / 30 min

20 - 15

1 ppt / 30 min

15 - 10

1 ppt / 40 min

10 - 5

1 ppt /45 min

5 - 0

1 ppt /60 min

METODOS PARA MEJORAR CAMARONICULTURA EN CENTRO AMERICA, Cap. Aclimatación y Siembra de PLs, por TREECE, del Texas A&M University., 2002

TRANSPORTE DE LAS POSTLARVAS Densidad de las postlarvas es fundamental en el transporte asegura la

sobrevivencia de las mismas. Temperaturas no inferiores a 22˚ C son ideales para transportar post-

larvas de camarón a largas distancias, lo cual reduce la actividad, la producción de metabolitos tóxicos (Franco, 1990), el metabolismo y con ello el consumo de oxígeno de las larvas (Arellano, 1993). Uso de vitamina C , betaglucanos para minimizar el estrés del viaje  Suficiente artemia y oxígeno en el transporte

METODO DE TRANSPORTE

Cartones: en fundas plásticas como se transporta los

nauplios, colocar carbón activado, vitamina C, artemia. Tinas: Acompañar la larva hasta la camaronera para garantizar el suministro correcto de oxígeno y alimentación durante el transporte; se debe revisar mínimo cada 2 horas durante el viaje

TABLA DE DENSIDADES EN EL TRANSPORTE Datos expresados en g de PLs/l HORAS DE

T oC Agua Transp. Tinas 23 – 24 24 - 26 26 - 28

22

22

T oC Agua Transp. Cartones 23 – 24 24 - 26 26 - 28

3h

7

6.5

6

5.5

2.28

2.21

2.14

2

4h

6.5

6

5.5

5

2.21

2.14

2

1.9

5h

6

5.5

5

4.5

2.14

2

1.85

1.8

6h

5.5

5

4.5

4

2

1.9

1.7

1.64

7h

5

4.5

4

3.5

1.95

1.85

1.6

1.57

8h

4.5

4

3.5

3

1.9

1.8

1.5

1.42

9h

4

3.5

3

2.5

1.85

1.7

1.4

1.35

10 h

3.5

3

2.5

2

1.8

1.5

1.3

1.28

MUCHAS GRACIAS