Analisis Microbiologico Pescado Fresco y Marisco

“AÑO DEL BUEN SERVICIO AL CIUDADANO”

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA

Departamento de Acuicultura e Industria Pesquera PROFESORA:

 Nancy Martínez Ordinola

CURSO:

Microbiología Pesquera

TEMA:

Análisis microbiológico en pescado fresco, mariscos

DIA Y HORA:

30 de mayo 2017 / 11:00 am –  1:00  1:00 pm

ALUMNA(O): MESA:

4

CICLO:

2017 - I I.

INTRODUCCION

La composición del músculo de pescado es muy variable y depende de la especie, tamaño y estación del año. En general, la carne de pescado contiene 20-25% de proteínas de alto valor biológico, vitaminas (tiamina, vitamina B12, riboflavina, ácido pantoténico, ácido

fólico, niacina y piridoxina) y minerales (yodo, sodio, potasio, fósforo, calcio, magnesio, hierro, flúor, manganeso, cloro, azufre, etc.). El contenido graso varía con la especie (4 a 8%) y está constituido por triglicéridos y fosfolípidos. Es pobre en hidratos de carbono. El pH del pescado inmediatamente después de su captura es neutro, luego desciende a 6,2-6,5 para luego subir a 6,6-6,7. Este parámetro contribuye a la inestabilidad del pescado luego de su muerte porque estos valores de pH favorecen el desarrollo microbiano. Las capas internas del músculo se consideran, como en los casos anteriores, estériles. Las bacterias del pescado fresco se encuentran en tres puntos principales: limo externo, agallas e intestinos. La microbiota del pescado es psicrotolerante y en el caso de los  pescados de mar, halofílica. Los microrganismos que acompañan al pez vivo dependen del ambiente natural en el que habita y las especies aisladas del intestino son las mismas que las de las aguas donde es capturado. Salvo que se pesquen en aguas contaminadas, raramente son fuente de microorganismos patógenos. La incidencia de microorganismos en gambas, ostras y almejas depende en gran parte de la higiene de las aguas en las que se capturan. Estos moluscos se alimentan por filtración fi ltración y tienden a extraer y acumular los virus y bacterias del agua en la que viven. Los microorganismos bacterianos patógenos para el hombre y que se trasmiten por este  producto se pueden pueden dividir en dos grupos: grupos: especies cuyo cuyo hábitat natural es el agua (Vibrio cholerae, Aeromonas sp., etc.) y otros que están presentes pr esentes en el agua por contaminación de origen fecal y se asocian al proceso de manipulación que posteriormente sufre el pescado y/o marisco (Escherichia coli, Salmonella sp. Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus). Los cambios que se producen desde la captura hasta la venta alteran las condiciones físicas, químicas y microbiológicas convirtiendo este producto en un alimento de alto riesgo para la salud del consumidor, sobre todo a través de la cadena de comercialización, en la cual se presentan una serie de puntos críticos que si no son controlados adecuadamente acaban  por incidir sobre la calidad calidad sanitaria del del producto.

II.

OBJETIVOS



Conocer la flora microbiana de los productos pesqueros como materia prima, con el uso de prueba microbiológicas como parte del control de calidad.



Las bacterias procedentes del pescado dependiendo dependiendo del tipo de agua procedente.

III.

REVISION DE LITERATURA

La composición del músculo de pescado es muy variable y depende de la especie, tamaño y estación del año. En general, la carne de pescado contiene 20-25% de proteínas de alto valor biológico, vitaminas (tiamina, vitamina B12, riboflavina, ácido pantoténico, ácido fólico, niacina y piridoxina) y minerales (yodo, sodio, potasio, fósforo, calcio, magnesio, hierro, flúor, manganeso, cloro, azufre, etc.). El contenido graso varía con la especie (4 a 8%) y está constituido por triglicéridos y fosfolípidos. Es pobre en hidratos de carbono. El pH del pescado inmediatamente después de su captura es neutro, luego desciende a 6,2-6,5 para luego subir a 6,6-6,7. Este parámetro contribuye a la inestabilidad del pescado luego de su muerte porque estos valores de pH favorecen el desarrollo microbiano. Las capas internas del músculo se consideran, como en los casos anteriores, estériles. Las bacterias del pescado fresco se encuentran en tres  puntos principales: limo externo, agallas e intestinos. La micro biota del pescado es  psicrotolerante y en el caso de los pescados de mar, halofílica. Los microrganismos que acompañan al pez vivo dependen del ambiente natural en el que habita y las especies aisladas del intestino son las mismas que las de las aguas donde es capturado. Salvo que se pesquen en aguas contaminadas, raramente son fuente de microorganismos patógenos. La incidencia de microorganismos en gambas, ostras y almejas depende en gran parte de la higiene de las aguas en las que se capturan. Estos moluscos se alimentan por filtración y tienden a extraer y acumular los virus y bacterias del agua en la que viven.



DETERIORO

El deterioro de los pescados es debido principalmente a la autolisis, la oxidación química de lípidos, el crecimiento bacteriano y el metabolismo resultante en la formación de compuestos de olor desagradables, siendo estos últimos lo más importante. Sin embargo, no todos los microorganismos presentes son igualmente causantes de los cambios de calidad. Los hábitos alimenticios de los peces, la zona geográfica, la estación, la temperatura del agua, el tipo de pez, el lugar donde los pescados son capturados y las condiciones de

almacenamiento, que incluyen la temperatura y la composición de la atmósfera del envase, determinan la presencia de los microorganismos específicos de la alteración. El principal signo de deterioro es el mal olor que se percibe al examinar las agallas, pues la región branquial es la más susceptible a la alteración microbiana. Los mejores indicadores de la alteración del pescado son la pérdida del brillo de los ojos y los colores superficiales, cambios en el olor y presencia del limo superficial. Si el pescado no es eviscerado de inmediato, algunos organismos atraviesan las paredes del intestino y llegan a los tejidos internos de la cavidad abdominal. La evisceración y el fileteado pueden extender la micro biota intestinal sobre toda la superficie.   Photobacterium

sp,

Shewanella putrefaciens,

Brochothrix

thermosphacta,

 Pseudomonas spp, Aeromonas spp  y bacterias lácticas son miembros de micro biota

de los pescados de agua templada. Sin embargo, S. putrefaciens es el organismo específico del deterioro de los pescados y mariscos de agua fría marina almacenados sobre hielo, produciendo trimetilamina y sulfuro de hidrógeno. Por otra parte, Photobacterium sp. causa la alteración bajo condiciones de atmósfera modificada.   Pseudomonas spp y Shewanella spp  son

los agentes específicos del deterioro de

 pescados de agua mar templada, mantenidos en hielo.  Pseudomonas fluorescens y  P. lundensis son las especies predominantes mientras que  P. fragi y P. putida

son detectadas con menos frecuencia. La temperatura de almacenamiento y la composición de la atmósfera afectan la proporción de las especies mencionadas en la población final del pescado.   Listeria monocytogenes está

presente en el 7 a 18% de los productos pesqueros.

Otros géneros, en su mayoría psicrotrofos, que suelen ser aislados de los productos de mar son  Achromobacter, Bacillus, Clostridium, Corynebacterium, Escherichia,  Flavobacterium, Micrococcus, Moraxella, Proteus, Serratia, Sarcina y Vibrio .

También suelen encontrarse especies de Mycobacterium en el pescado congelado. En las aguas contaminadas con estiércol se ha observado un aumento del número de  Acinetobacter spp

y otras bacterias resistentes a los antimicrobianos. El pescado

deshidratado con sal y ahumado (por ejemplo, bacalao) posee una actividad de agua tan  baja que solo es alterado por mohos y algunas bacterias halófilas, por ejemplo,  Halobacterium.



MICROORGANISMOS PATÓGENOS

Los peces capturados en mar abierto están exentos de patógenos entéricos, mientras que los de agua dulce están expuestos a la contaminación procedentes del hombre y otros animales. Las bacterias productoras de aminas vasopresoras (escombrotoxina), como histidina y otras, son en su mayor parte enterobacterias mesófilas, entre ellas  Proteus morganii, Hafnia alvei y Klebsiella pneumoniae . La conservación del pescado a 0ºC impide la formación de

estos compuestos. Clostridium botulinum  tipo E puede crecer y sintetizar toxinas a 3ºC y la prevalencia en

 pescado crudo varía de 10 a 40% según las especies y en los productos envasados al vacío es 5%, por lo que constituye un riesgo en la industria pesquera. Vibrio parahaemolyticus, V. cholerae y V. vulnificus  son las principales especies de vibrios

causantes de las infecciones relacionadas a los pescados y mariscos (9). También se suelen aislar Salmonella y Shigella, aunque no sean contaminantes normales del pez.  Pseudomonas aeruginosa  

es un patógeno oportunista que puede iniciar algunas

infecciones en personas con las defensas bajas y las cepas patógenas tienen una alta resistencia a los antibióticos debido a un plásmido. Las especies de Aeromonas son  patógenos para peces, pero A. hydrophila y A. sobria  son enterotoxigénicas para el hombre. Los patógenos humanos son retenidos por las ostras sin o con mínima inactivación. Como la velocidad de depuración es muy baja pueden representar un peligro para la salud pública si son criadas en aguas contaminadas. Las ostras suelen transmitir ooquistes de Cryptosporidium parvum,

quistes de Giardia lamblia, esporos de microsporidios

 Encephalitozoon spp.

El pescado alberga numerosos parásitos que, en su mayoría, no suelen afectar al hombre. Sin embargo,  Anisakis es un nematodo que se encuentra en la musculatura de los peces y sobrevive a la congelación. Se ingiere con el pescado crudo, adobado o ahumado en frío,

o poco cocinado. Otros parásitos son las Tenias  Diphyllobothrium latum, en el hemisferio norte, y D. pacificum, en América del Sur, que son transmitidas al hombre por el pescado crudo. La intoxicación paralizante es causada por mejillones, ostras, berberechos y almejas que han incorporado a su organismo algas tóxicas. Aparece a la media hora después de la ingestión, causando síntomas neurológicos que en el 20% de los casos conducen a la muerte. Las saxitoxinas son producidas por especies de Gonyaulax, Gymnodinium y  Pyrodinium

IV.          

MATERIALES

10gr. de muestra a evaluar (pescado caballa, almeja) 90 ml. con Solución Salina Peptonada / pomo Pinza (esterilizada) Asa de Kolle Pipetas de 0.1, 1 ml. Placas Petri. Tubos de ensayo (contenido con Caldo E.c.) Pomos (contenido con SSP) Balanza Licuadora

 ME DI OS DE CULTI VO      

Plate Count Agar. Manitol Sal Agar. Agar Tiosulfato Citrato Sales Biliares Sacarosa. Caldo Lauril Sulfato Triptosa. Caldo Lactosado Verde Brillante Bilis. Caldo de Escherichia coli.

V.   



METODOS

Pesar 10gr. de muestra, mezclar homogéneamente. Licuar la muestra con 90ml de SSP (solución salina peptonada): dilución 10 -1. Sacar 10 ml de la dilución 10 -1 y transvasarlo a otro pomo que contiene 90ml de SSP (solución salina peptonada): dilución 10 -2. Sacar 10 ml de la dilución 10 -2 y transvasarlo a otro pomo que contiene 90ml de SSP (solución salina peptonada): dilución 10 -3.

Obteniendo las diluciones se procede a realizar las siguientes pruebas:

CONTAJE DE AEROBIOS EN PLACA (técnica de vertido en placa) 







Tomar 1 ml. de cada dilución 10 -1, 10-2y 10-3 y agregar a su placa Petri respectiva (2 veces por dilución). Adicionar aproximadamente 15 ml. del medio de cultivo de PCA. Realizar la homogenización lentamente hacia la derecha, luego hacia la izquierda y finalmente en forma de 8. Dejar enfriar e incubar a 20ºC y a 37ºC durante 24 horas.

NMP DE COLIFORMES 

COLIFORMES TOTALES:



PRUEBA PRESUNTIVA: 

 

Sembrar 1 ml. de dilución de la muestra (10 -1, 10-2, 10-3) en 6 tubos de ensayos con Caldo Lauril Sulfato Triptosa, incluyendo las campanas Durhman en cada uno respectivamente. Incubar a 37ºC por 24 horas. Observar las campanas de Durhman:

Reacción Positiva; producción de gas en los tubos Durhman Reacción Negativa; no hay producción de gas en los tubos Durhman 

PRUEBA CONFIRMATIVA:  



 

Agitar los tubos con reaccion positiva. Con ayuda de una asa de Kolle, sacar un inoculo del Caldo Lauril Sulfato Triptosa; según la dilución. El inoculo introducirlo en un tubo de Caldo Lactosa Verde Brillante Bilis que contienen campanas de Durhman. Incubar a 37º C durante 24 horas. Observar los tubos Durhman: Reacción Positiva; producción de gas en los tubos Durhman. Reacción Negativa; no hay producción de gas en los tubos Durhman .



COLIFORMES FECALES:



PRUEBA PRESUNTIVA: 

 

Sembrar 1 ml. de dilución de la muestra (10 -1, 10-2, 10-3) en tubos de ensayos (positivas en la presuntiva) con Caldo Lauril Sulfato Triptosa, incluyendo los tubos Durhman en cada uno respectivamente. Incubar a 37ºC por 24 horas. Observar los tubos Durhman:

Reacción Positiva; producción de gas en los tubos Durhman. Reacción Negativa; no hay producción de gas en los tubos Durhman. 

PRUEBA CONFIRMATIVA:

 



 

Agitar los tubos con reaccion positiva. Con ayuda de una asa de Kolle, sacar un inoculo del Caldo Lauril Sulfato Triptosa; según la dilución. El inoculo introducirlo en un tubo de Caldo  Escherichia Coli que contienen tubos Durhman. Incubar a 37º C durante 24 horas. Observar los tubos Durhman:

Reacción Positiva; producción de gas en los tubos Durhman. Reacción Negativa; no hay producción de gas en los tubos Durhman. NUMERACION DE Staphylococcus INDICADOR 







Tomar 1 ml. de cada dilución 10 -1, 10-2y 10-3 agregar a su placa Petri respectiva (2 veces por dilución). Seguidamente adicionar aproximadamente 15 ml. del medio de cultivo de Manitol Salt Agar. Realizar la homogenización lentamente hacia la derecha, luego hacia la izquierda y finalmente en forma de 8. Dejar enfriar e incubar a 37ºC durante 24 horas

DETECCION DE Vibrio sp 







Tomar 1 ml. de cada dilución 10 -1, 10-2y 10-3 y agregar a su placa Petri respectiva (2 veces por dilución). Seguidamente adicionar aproximadamente 15 ml. del medio de cultivo de Agar Tiosulfato Citrato Sales Biliares Sacarosa. Realizar la homogenización lentamente hacia la derecha, luego hacia la izquierda y finalmente en forma de 8. Dejar enfriar e incubar a 20ºC y a 35ºC durante 24 horas.

VI.

RESULTADOS

A. Contaje de aerobio en placa APC 20ªC DILUCIONES

UFC  ME SA 1

UFC  ME SA 2

UFC  ME SA3

UFC  ME SA 4

−

364

300<

1200

>1800

−

61

300<

600

1800

−

3

480

130

180

61x102

48x104

13x104

18x104

  

APC

APC 37ªC UFC DILUCIONES  ME SA 1

UFC  ME SA 2

UFC  ME SA 3

UFC  ME SA 4

−

460

300<

400

>600

−

39

300<

150

600

−

4

304

30

400

39x102

30x103

23x103

-

  

APC

B. Numeración de Staphylococcus

DILUCIONES

UFC  ME SA 1

UFC  ME SA 2

UFC  ME SA 3

UFC  ME SA 4

−

21

150

400

>125

−

4

117

90

125

1

30

12

31

21x x 10

30x103

 

−



APC

9x 103  

22x 103

C. Detección de Vibrio sp. DILUCIONES

UFC  ME SA 1

UFC  ME SA 2

UFC  ME SA 3

UFC  ME SA 4

−

5

150<

4

56

−

0

18

0

9

−

0

0

0

4

50

18x102

40

56 x 10

  

APC

D. Detección de coliformes DILUCIONES

UFC  ME SA 1

UFC  ME SA 2

−

0

0

0

−

0

0

0

−

0

0

0

  



UFC  ME SA 3

UFC  ME SA 4

Pescado por grupo  ME SA 1

ME SA 2

ME SA 3

ME SA 4

MUESTRAS

Bonito

Caballa

Caballa

C.aballa

CORTE

Dorsal

Ventral

Dorsal

Ventral

PIEL

Sin piel

Con piel

Sin piel

Con piel

VII.

DISCUSIONES MESA 1

MESA 3

MESA 4

APC 20°C

35x103

48x103

13x104

18x104

APC 37°C

39x102

30x103

23x103

-

Coli. Totales

0

0

0

Coli. Fecales

0

0

0

Staphylococcus Vibrio



MESA 2

21x x 10 50 ufc/g

30x103 18x102  ufc/g

9x 103 40 ufc/g

64 x 102 56 x 103  ufc/g

Claramente se observa un elevado número de aerobios en el pescado con piel, según (Ing. Martínez, 2017) Las bacterias procedentes del pescado son por lo general psicrófilas o  psicrotolerantes, dependiendo de la cantidad y los géneros del tipo de agua donde procede. Los análisis de piel y mucus demuestran la existencia de Pseudomonas, Achromobacter, Micrococus, Flavobacterium, Corynebacterium, Aeromonas, Vibrio, Sarcina y Bacillus. De esto decimos que la carga microbiana aerobia del pescado, evaluando su calidad sanitaria (las condiciones higiénicas de la materia prima), es alta.



Las bacterias mesofílicas aerobias proporcionan información acerca del número de  bacterias viables, por lo que representan un recurso valioso adicional para determinar el grado de exposición de los alimentos a la contaminación por microorganismos. El recuento de estos organismos representa un respaldo al significado atribuído a los resultados de los análisis de los coliformes. Durante la determinación de bacterias mesófilas aerobias, se observaron valores muy variados dentro de los diferentes lugares de muestreo, esta variación puede deberse a factores tales como: la frescura del pescado, temperatura y el tiempo de almacenamiento (Morales J., 2002)



Se obtuvo diferencia de carga microbiana de mesófilos entre el lugar de toma de muestra y si esta poseía piel o no, dándonos cuenta de que había mayor contenido de bacterias mesófilas en las muestras de corte ventral y con piel reduciéndose posteriormente al incubar a mayor temperatura debido a que los mesófilos tienden a no sobrevivir o desarrollarse adecuadamente a temperaturas un poco elevadas a sus óptimas.



Respecto a los coliformes que se realiza para el control microbiológico del agua y los  productos pesqueros, podemos observar que se obtuvo un resultado negativo según ( norma oficial mexicana nom-127-ssa1-1994) el limite permisible para coliformes totales es de 2 y en la practica no se obtiene resultados para esta prueba , quiere decir que el agua de donde  procede el pescado es un agua no contaminada o ya el pescado paso por un proceso previo de desinfección para la venta en los mercados. En coliformes fecales también da como resultado negativo, por lo tanto, no existe contaminación fecal o hubo una buena limpieza del alimento.



En el caso de S. aureus, de acuerdo a la NOM-115-SSA1-1994, su límite máximo permitido en pescado crudo es de 1000 UFC/g, lo cual no representó un problema en cuanto a la calidad del pescado crudo analizado en el alaboratorio , ya que no se encontró presencia elevada de este microoganismo, los valores son menores al igual que los reportados por Borbolla y colaboradores (2003),pero donde se encontró mayor carga de S. aureus fue en el pescado caballa y donde fue menor su presencia es en el pescado bonito. Sin embargo, es importante considerar que de acuerdo con Carrera y colaboradores (1998), los alimentos más propensos a presentar concentraciones de S. aureus por encima de los 1,000UFC/g y por lo tanto aquellos capaces de causar directamente la infección intestinal debido a la toxina que se produce, son los productos de repostería a base de crema y los quesos; es decir los productos lácteos. En el análisis de las muestras se encontró Vibrio cholerae , lo cual permite decir que todas las muestras analizadas de pescado crudo no cumplen con la NOM-027-SSA11993, Borbolla y colaboradores (2003) encontraron V. cholerae en un los pescados crudos analizados en su estudio al igual que en nuestro análisis ; lo cual refleja que es  posible encontrar a esta bacteria en pescado crudo.

VIII. CONCLUSIONES  En mesófilos de 20°C se encontró en la mesa 4 la mayor cantidad y la menor cantidad en la mesa 1, con 18x 104  y 35x103 ufc/gr; respectivamente.  

En mesófilos de 37°C se encontró en la mesa 1 la mayor cantidad, con 39 x 102 ufc/gr, donde en la mesa 4 no se encontraron mesófilos en su muestra. Coliformes, ninguna mesa presento coliformes esto se puede dar por que la muestra puede haber tenido una limpieza antes de experimentar en el laboratorio.



Staphylococcus, la mesa 1 obtuvo la mayor cantidad y la menor cantidad la mesa 2, con 21x104  y 30x103 respectivamente.



Vibrio, en la mesa 4 y mesa 3 se obtuvieron la mayor y la menor cantidad de unidades formadoras de colonias, respectivamente. Con valores de 560 ufc/g y 40 ufc/gr.

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA MICROBIOLOGIA PESQUERA

IX. 

BIBLIOGRAFIA

Alfaro, G. 2004. III. Diferentes tipos. En: Laboratorio de microbiología. Instrumentación y principios básicos. Editorial ciencias médicas.



Borbolla et. al.  2003.Contaminación de los alimentos por Vibrio colerae, Coliformes fecales, Salmonella, Hongos, Levaduras y Staphylococcus aureus en Tabasco.



Carrillo, y Audisio, M. 2007. MANUAL DE MICROBIOLOGIA DE ALIMENTOS.1°ed. Asociación Cooperadora de la facultad de Ciencias Agrarias. Argentina. 125p. http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/127ssa14.html Revisado el 27 de Junio 2017.



Carrera et. al. 1998. Evaluación de la vigilancia microbiológica de alimentos que se venden en las calles. Rev. cubana Alimen Nutr.



Morales J. 2002. Evaluación microbiológica de seis productos lácteos y seis  productos cárnicos elaborados en Zamorano. Tesis Ing. Agr. El Zamorano, Honduras, Escuela Agrícola Panamericana. 53 p.





ICMSF. 1998. Microorganisms in foods. 6. Microbial ecology of food commodities. Blackie Academic & Professional, London, p 130. 2. Mossel DAA et al. 2003. Microbiología de los Alimentos. 2ª ed. Acribia, Zaragoza, p 518, 620.

1 ANALISIS MICROBIOLOGICO EN PESCADO FRESCO, MARISCO

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA MICROBIOLOGIA PESQUERA

X.

CUESTIONARIO

1. Los resultados de la prueba de microbiología de contaje de aerobios en placa por duplicado de una muestra de conchas de abanico son los siguientes: PLACAS DILUCIÓN

UFC

1

2

TERCERA

265

249

CUARTA

30

38

QUINTA

5

9

Si se sabe que se realizó las diluciones con 10gr- de muestra y 90ml. De solución salina peptonada y con el método de vertido en placa, ¿Cuál es el contaje de aerobios en placas? 1º

100ml --------- 10gr

2º

3º

4º

5º

10gr

1ml ------------ x X= 10-1

90ml

90ml 90ml

90ml 90ml

RANGO: 30-300 DILUCIÓN

PROMEDIO 3º

-3

10  

257

10-4

34

4º

10-3 g -------- 257

10-4 g --------- 34

1 g -------- APC 1 APC1 = 26*104

10-5

7

1 g -------- APC2 APC2 = 34*104

APC = 30*104

2 ANALISIS MICROBIOLOGICO EN PESCADO FRESCO, MARISCO

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA MICROBIOLOGIA PESQUERA

2. Se realizó un análisis de contaje de aerobios en placa con sólo 7gr. De una muestra de pescado en 90 ml. De SSP y se obtuvieron los siguientes resultados: PLACAS DILUCIÓN

UFC

1

2

PRIMERA

468

455

SEGUNDA

155

234

TERCERA

32

34

CUARTA

4

6

QUINTA

0

1

Si se usó el método de vertido de placa. Hallar el contaje de aerobios en placa. 97ml --------- 7gr 1ml ------------ x

2º

1º

3º

4º

5º

7gr

X= 7.2*10-2

90ml

90ml 90ml

90ml 90ml

RANGO: 30-300 TUBOS

DILUCIÓN

PROMEDIO

1º

7.2*10-2

462

2º

7.2*10-3

195

3º

7.2*10-4

33

4º

7.2*10-5

5

5º

7.2*10-6

1

2º 7.2*10-3 g ------ 257

3º 7.2*10-4 g ------- 34

1 g -------- APC 1 APC1 = 27*103

1 g -------- APC2 APC2 = 46*103

APC = 37*103

3 ANALISIS MICROBIOLOGICO EN PESCADO FRESCO, MARISCO

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA MICROBIOLOGIA PESQUERA

3. Se realizó el contaje de Staphylococcus en una muestra de pescado fresco obteniéndose los siguientes resultados: PLACAS DILUCIÓN

UFC

1

2

SEGUNDA

158

124

TERCERA

15

12

CUARTA

3

6

Si se realizó el análisis con 10gr. De muestra y se utilizó el método por siembra por extensión en superficie, ¿Cuál es el Número de Sthafylococcus indicador? 2º

1º

100ml --------- 10gr

3º

4º

10gr

0.1ml ---------- x X= 10-2

90ml 10-2

90ml 90ml 10-3

10-4

90ml 10-5

RANGO: 15-150 DILUCIÓN

PROMEDIO

10-3 

141

2º 10-3 g ------ 141 1 g -------- APC

-4

10

14

10-5

5

APC = 14*104

4 ANALISIS MICROBIOLOGICO EN PESCADO FRESCO, MARISCO