Analgesia Pequeños

 

 

Manual de en Pequeños anestesia Regional en  é

Animales y T cnicas de Analgesia

Phillip Lerche Turi K. AarnesGwen Covey-Crump Fernan Fer nando do Mar Martín tínez ez Taboad Taboadaa

Wl LEY Blackwell 

 

 

Manual de la anestesia regional de Pequeñ Peq ueños os An Anima imales les y Técnicas analgesia

 

 

Manual de la anestesia regional de Pequeños Animales y Técnicas analgesia Phillip Lerche BVSc DipACVAA PhD Profesor Asocia Profesor Asociado do - Clí Clínic nicaa Anestesiología y Manejo del Dolor  Departamento Departam ento de Ciencias Clínicas Veterinarias Veterinarias La Universidad Estatal de Ohio Facultad deOhio, Medicina Veterinaria Columbus, EE.UU.

Turi K. Aarnes DVM DÍPACVAA MS Profesor Asocia Profesor Asociado do - Clí Clínic nicaa Anestesiología y Manejo del Dolor  Departamento Departam ento de Ciencias Clínicas Veterina Veterinarias rias La Universidad Estatal de Ohio Facultad de Medicina Veterinaria Columbus, Ohio, EE.UU.

Gwen Covey-Crump BVetMed CertVA DipECVAA MRCVS Especialista en Anestesia y Analgesia Veterinaria Profesor clínico Servicios Veterinarios Langford Universidad de Bristol Bristol, Reino Unido

Fernando Martínez Taboada LV CertVA DÍPECVAA MRCVS Especialista en Anestesia y Analgesia Veterinaria El Hospital de Enseñanza Veterinaria   Veterinarias Facultad de Ciencias La Universidad de Sydney

Sydney, Australi Australiaa

WILEY Blackwell  

 

Esta edición publicada por primera vez 2016 © 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. Oficina registrada:  John Wiley & Sons, Ltd., Ltd., el atrio, Puerta del Sur, Chichester, Chichester,

West Sussex, PO19 8SQ, Reino Unido oficinas editoriales:  9600 Garsington Road, Oxford, 2DQ OX4, Reino Unido

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1 2016  

 

Contenido

1 

2 

Introducción, 1  Razones para proporcionar anestesia regional, 2 Historia de la anestesia / analgesia regional, 3 Principios de las técnicas principales, 3 fármacos anestésicos locales, 4 Aditivos a los anestésicos locales, 6 Equipo, 7 Jeringas, 7 Agujas, 7 kits catéter epidural, 8 localizadores nerviosas, 8 transductor de presión diferencial, 9 Dispositivo acústico, 9 Complicaciones y contraindicaciones, 9 Local, 10 Sistémica, 10 Las diferencias entre especies y consideraciones, 10 una práctica segura, 11 Ganando confianza, 11 Hacer un plan, 11 Referencias, 11 Para leer más, 12 Inervación cutánea Índice, 13  índice de inervación cutánea, 14 dermatomas caninos Cuerpo, 14

Cabeza, 15 extremidad Torácica, 16 miembro pélvico, 18

v  

 

vi Contenido 3 

Los bloques de infiltración, 21  La infiltración para la eliminación de masa, 22 Línea y anillo bloques, 22 Invertida bloque de “L", 24 Bloque de la incisión quirúrgica, 26 Una sola inyección de la incisión quirúrgica, 26 catéter Difusión / catéter "madurador" / "dolor más ocupado",

28  bloques intercostales, 30  bloque interpleural (también conocido como intrapleural o  pleural), 32  bloque intraperitoneal, intraperitonea l, 34 Referencias, 35 4  Bloques de la Cabeza, 37  Retrobulbar, 38 Maxilar, 40 Infraorbital, 42 Mandibular (o alveolar inferior), 44 Mentales (o medio mental), 46 Auriculotemporal y un gran auricular, 48 Referencias, 52 5  Regionales anestésicas Bloques de las extremidades, 53  miembro torácico bloqueos anestésicos regionales, 54  plexo braquial, 56

6 

Paravertebral: C6-T1, 58 RUMM (radial / cubital / mediana / musculocutáneo), 60  bloqueo de Bier (anestesia regional intravenosa), intraveno sa), 62 miembro pélvico, 64 Femoral / bloqueo del nervio safeno, 66 El bloqueo del nervio ciático, 70 Referencias, 74 Las epidurales y espinales, 75  epidural y la médula lumbosacra en los perros, 76

epidural lumbosacro en los gatos, 78 epidural caudal en los perros y gatos, 80 Referencias, 82 7  Procedimientos de emergencia, 83  Las complicaciones asociadas con las técnicas anestésicas locales, 84 Sangrado, 84  

 

Contenido vii

Las complicaciones asociadas con fármacos anestésicos locales, 84 Las reacciones alérgicas a los fármacos anestésicos locales, 84 La metahemoglobinemia, 85 La toxicidad sistémica de los anestésicos locales, 85 La toxicidad cardiovascular, 85 Referencias, 88 Otras lecturas, 88 Índice, 89

 

 

CAPÍTULO 1 

Introducción  Phillip Lerche

 Handbook of Small Small Animal Anestesia Regional Regional y las técnicas de analgesia, analgesia, Primera edición.

Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd.

1  

 

Pe queños Animales y Analgesia 2 Manual de Anestesia Regional de Pequeños

Razones para proporcionar anestesia regional El uso de la anestesia regional como componente del manejo del dolor  perioperatorio ha ganado aceptación acep tación y popularidad en clínica de d e pequeños animales en los últimos decenios. Las razones para esto incluyen el hecho de que muchos de los bloques regionales son sencillos de realizar, que requiere habilidad moderada familiaridad técnica dada dad a con la anatomía del  paciente; que pueden llevarse a cabo de manera relativamente segura dado entendimiento de la farmacología fármaco anestésico local, complicaciones y efectos secundarios; y contribuyen a los dos principios más importantes de tratamiento del dolor: analgesia preventiva y multimodal. Proporcionar analgesia preventiva mediante la realización de la anestesia regional antes de la cirugía conduce a una reducción drástica en la estimulación nociceptiva intraoperatoria (dolor). Esto se traduce en una disminución de medicamento de mantenimiento anestésico, así como la necesidad de analgésicos intra y postoperatorias, disminuyendo así la incidencia de los efectos secundarios de los medicamentos durante la cirugía, y la mejora de la comodidad del paciente postoperatorio así como la duración del alivio del dolor. Algunas técnicas se pueden continuar  postop- eratively para ayudar en el manejo del dolor después de cirugías  particularmente dolorosos una vez que el paciente pa ciente se ha recuperado de la anestesia, por ejemplo, infundiendo anestésico local en un tubo de pecho después de toracotomía, o la inyección de anestésico local en una epidural o un catéter espinal después de miembro pélvico o cirugía abdominal. La experiencia del dolor, un proceso que interviene la vía sensorial nociceptivo, es complejo, e implica varios pasos. Los estímulos nocivos que implican lesión térmica al tejido mecánicos, químicos o se transducen  primero en estímulos eléctricos por nociceptores periféricos (receptores del dolor). Estos impulsos eléctricos se transmiten a la médula espinal, donde son moduladas por las neuronas en el asta dorsal de la sustancia gris de la médula espinal. Aquí, la intensidad de impulso se puede aumentar (amplificado) o disminuye (suprimida). Finalmente, las señales

nociceptivas se proyectan a través de las fibras nerviosas laterales al cerebro donde se percibe. Considerando que la mayoría de los fármacos analgésicos o bien disminuir la cantidad de neurotransmisores excitadores, o aumentar el nivel de neurotransmisores inhibidores liberados en la vía nociceptivo, fármacos utilizados para proporcionar canales bloque anestesia sodio regionales en las neuronas. Esto evita completamente las neuronas sensoriales de la transmisión de estímulos nocivos desde la periferia hasta el cerebro y la médula espinal o de la médula espinal al cerebro en el caso de analgesia epidural o espinal, proporcionando así alivio eficaz del dolor durante la duración del bloque. El uso de técnicas anestésicas anestésica s regionales en conjunción con otros fármacos analgésicos que actúan de diferentes maneras en las fibras nociceptivas (por ejemplo, con los opioides,  

 

Introducción 3

la vía del dolor durante y después de la cirugía. Este enfoque permite la dosis eficaz más baja de cada medicamento para ser utilizado, lo que disminuye los efectos secundarios y mejora la seguridad del paciente. Historia de la anestes anestesia ia / analgesia regional regional El uso de un medicamento anestésico local se demostró por primera vez en 1884 cuando se utilizó la cocaína para desensibilizar el ojo antes de la cirugía. Debido a la formación de cocaína ser hábito y que tiene un margen de seguridad bajo, así como la aparición de técnicas que permiten la síntesis artificial de los compuestos químicos en la década de 1900, se  buscaron no tóxicas, anestésicos locales no adictivos, descubrieron, y fabricados. Inicialmente, se produjeron compuestos de tipo éster de aminoácidos, hasta que en 1943 lidocaína, un fármaco amino amida, fue desarrollado. De tipo amida fármacos anestésicos locales se prefieren para su mayor duración de acción, y varios compuestos de este grupo fueron descubiertos en la última mitad del siglo 20, incluyendo mepivacaína,  bupivacaína, y ropivacaína. Principios de las técnicas principales  Aplicación tópica tópica

gotas anestésicas locales, por ejemplo proparacaına, se pueden aplicar directamente en el ojo para el alivio inmediato del dolor queratoconjuntival, aunque no se recomienda el uso de retrasos  prolongados cicatrización cicat rización corneal y. El anestésico local también tambié n se puede pu ede aplicar directamente al tejido expuesto. expuesto . Drogas es depositado directamente en el campo quirúrgico por goteo de una jeringuilla, o sumergirse esponjas quirúrgicas en anestésico local y su aplicación al tejido. El anestésico local también se puede instilar en el pecho a través de un tubo de toracostomía  para desensibilizar la pleura después de la cirugía en el pecho, y en la cavidad abdominal para tratar el dolor después de la incisión del peritoneo. crema anestésica local está disponible como una mezcla de lidocaína y  prilocaína, que se utiliza para desensibilizar la piel para la colocación del

catéter intravenoso. La lidocaína también está disponible como un parche transdérmico. infiltración regional

analgesia regional continua se logra colocando fenestrados catéteres "remojo" en las zonas que no son susceptibles a las técnicas de analgésicos  periféricos o regionales. El catéter se une después a una bomba de infusión o un balón de elastómero que proporciona una tasa de conjunto de anestésico local durante un período de tiempo especificado. intravenosa analgesia regional

Analgesia se puede proporcionar a una extremidad distal mediante la colocación de un vendaje Esmarch y la inyección de anestésico local  

 

4 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Pe queños Animales y Analgesia

La inyección intraarticular

Los anestésicos locales se inyectan en las articulaciones tienen una larga duración de la acción debido a la lenta absorción sistémica. Hay pruebas in vitro que los anestésicos locales pueden ser perjudiciales para la salud de los condrocitos, siendo preferidos formulaciones sin conservantes. Sin embargo, in vivo, esto no se ha demostrado que es definitivamente el caso (Chu et al, 2008). bloqueo de nervios periféricos

Individuales o grupos de nervios sensoriales que suministran una región específica se encuentran por palpación, la electrofisiología, ultrasonido o diferentes combinaciones de dos o tres de estas técnicas. técnic as. La anestesia local se deposita a continuación adyacente a, pero no en, los nervios. Los nervios están normalmente bloqueadas en los sitios proximal y distantes al sitio de la cirugía. la inyección epidural y espinal

Usando epidurales / agujas espinales específicos, anestésico local se deposita ya sea en el espacio extradural (inyección epidural) o en el espacio subaracnoideo (inyección espinal o intratecal). Esto proporciona mayor duración, más intensa analgesia y relajación muscular, mientras que se minimizan los efectos secundarios sistémicos. Se recomiendan formulaciones conservantes de fármaco para inyección epidural o espinal siempre que sea posible. fármacos anestésicos locales Mecanismo de acción

Los anestésicos locales actúan principalmente mediante el bloqueo de sodio (Na +) canales, lo que impide la despolarización de la membrana celular neuronal, y por lo tanto la generación de un impulso eléctrico e léctrico no se  produce en respuesta respu esta a los estímulos nocivos. Hay Ha y evidencia para sugerir que los anestésicos locales también pueden ejercer su actividad mediante

el bloqueo de los canales de calcio y la inhibición de la recaptación de la GABA neurotransmisor inhibidor, mejorando así su efecto. Propiedades fisicoquím fisicoquímicas icas

fármacos anestésicos locales tienen un anillo aromático y un grupo amina separados por una cadena hidrocarbonada. El grupo amina puede ser un éster o una amida enlazada. Los ésteres son de acción típicamente más corto que amidas ya que pueden ser hidrolizados por las colinesterasas  plasmáticas. Ésteres, por tanto, no son dependientes de hígado para el despacho, mientras que las amidas se someten a metabolismo hepático. Velocidad de aparición es inversamente proporcional a la solubilidad en lípidos de la droga y pKa, es decir, el pH al que el fármaco existe en cantidades iguales de moléculas cargadas y no cargadas. La duración del  

 

Introducción 5 Tabla 1.1 Farmacolo Farmacología gía clínica de

los agentes anestésicos locales en los gatos y perros

 

La lidocaína  mepivacaína 

bupivacaína 

ropivacaína 

5-10 

5-10 

20-30 

20-30 

1-3 

1.5-3 

3-8 

3-8 

dosis clínica  (Mg / kg) 

0,5-2,0 perro  0,5-1,5 gato 

Hasta 3,0 perro   1,0-1,5 perro  Hasta 1,5 gato  1.0 gato 

dosis tóxica  (Mg / kg) 

6,0 perro  3.0 gato 

6,0 perro  3.0 gato 

Comienzo  (minutos)  Duración  (horas) 

3.0 perro  2.0 gato 

Hasta 3,0 perro *   5.0 perro * 

* Dosis tóxica no establecido en los gatos. Recomiendan dosis no superior a 2 mg / kg total.

medicamentos medicamento s específicos

De tipo amida fármacos anestésicos locales se prefieren en la práctica veterinaria actual de su duración de acción más larga en comparación con los fármacos de tipo éster. Véase la Tabla 1.1 para la información de resumen. La lidocaína 

La lidocaína tiene una breve aparición debido a su bajo pKa de 7,9. Duración de la acción es corta, con una duración de hasta 2 h. Esto es debido a su nivel relativamente bajo baj o de unión a proteínas (70%), (70 %), y el hecho de que es un potente vasodilatador. La lidocaína formulado con epinefrina tiene una mayor duración de acción debido a las causas vasoconstricción epinefrina. La lidocaína es menos tóxico que otras drogas de tipo amida si se administra por vía intravenosa (IV), y se pueden administrar IV para tratar el dolor sistémicamente, así como para el tratamiento de arritmias ventriculares. mepivacaína 

Mepivacaine tiene un bajo pKa de 7,6, y por lo tanto un rápido inicio de

acción. Es altamente unido a proteínas (95%), resultando en una duración de acción de 6-8 h.  bupivacaína 

La bupivacaína tiene un pKa de 8,1 y se une intensamente a proteínas (95%), resultando en una mayor duración de acción (6-8 h). El margen de seguridad es la más baja en comparación con la lidocaína, mepivacaína, y acaine ropiv-. ropivacaína 

La ropivacaína tiene propiedades fisicoquímicas similares a la  bupivacaína, y por po r lo tanto tiene un inicio y duración du ración de acción similar. Otros anestésicos locales se sintetizan como mezclas racémicas, mientras  

 

6 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Pe queños Animales y Analgesia

Combinación de fármacos 

La lidocaína y la bupivacaína se pueden mezclar en una proporción 1: 1  para tomar ventaja de inicio más corto de la lidocaína lidocaí na y la mayor duración de la bupivacaína de acción. Aditivos a los anestésicos locales Otros fármacos se pueden añadir a los anestésicos locales para mejorar o extender bloqueo, o para disminuir el dolor experimentado durante la inyección. Los opioides

Los opiáceos, especialmente la morfina libre de conservantes, se administran comúnmente con anestésicos locales para analgesia epidural o espinal. Esto produce efectos analgésicos multimodales aditivos o sinérgicos, con analgesia duración de hasta 24 h, mucho más tiempo que con el tratamiento farmacológico individual. Las complicaciones de la adición de los opioides incluyen depresión respiratoria, especialmente si se usan dosis altas o volúmenes, retención urinaria, vómito (en perros conscientes), y el prurito. Mioclono, paresia de las extremidades  posteriores, la propiocepción alterado, hiperestesia y son complicaciones raras.  Agonistas alfa-2 alfa-2 adrenoceptor adrenoceptor

El agonismo de receptores alfa-2 pre y postsinápticos en los resultados vía del dolor en analgesia. Xilazina (0,25 mg / kg) y medetomidina (15 pg / kg) se han usado por vía epidural en perros, con medetomidina proporcionar analgesia durante un máximo de 8 h. Los efectos secundarios incluyen  bradicardia e hipertensión. La dexmedetomidina produce prod uce analgesia de una manera dependiente de la dosis cuando se administra por vía intratecal y epidural en perros. La ketamina

La ketamina más probable produce sus efectos analgésicos cuando se

administran por vía epidural mediante el bloqueo bloqu eo de los canales de NMDA. Ketamina también bloquea algunos canales de sodio y de potasio, disminuyendo así la propagación de las señales nociceptivas. Las dosis eficaces están 1-3 mg / kg. Los efectos secundarios incluyen aumento del ritmo cardíaco, la presión arterial, y el trabajo del miocardio. La epinefrina (adrenalina)

La epinefrina se puede añadir al anestésico local a una concentración de 5  pg / ml. La deposición de la combinación resulta en la vasoconstricción local, que conduce a la disminución de absorción sistémica y la  prolongación de bloqueo. bl oqueo. Esto retrasa la l a absorción absorc ión también se traduce en un menor número de efectos secundarios sistémicos debido a la  

 

Introducción 7 Bicarbonato de sodio

La adición de bicarbonato de sodio a 1 mEq por 10 ml de anestesia local aumenta la cantidad de activo (no ionizada) fármaco presente, el aumento de la difusión a través de las membranas celulares de las neuronas. Esto  puede conducir a una duración más corta aparición y ya de bloqueo. El dolor experimentado durante la inyección de anestésico local en el  paciente consciente también se disminuye mediante la adición de  bicarbonato de sodio. El bicarbonato de sodio no se debe añadir a la  bupivacaína o ropivacaína como ocurrirá precipitación. precipit ación. hialuronidasa

Hialuronidasa mejora la permeabilidad del tejido teji do por despolimerización de ácido hialurónico, resultando en una mejor propagación del anestésico local. Se puede añadir a 3,75 UI por ml de anestésico local para mejorar la calidad de bloqueo. Debido a la permeabilidad mejorada, duración puede ser disminuido y toxicidad aumenta debido al aumento de la absorción sistémica. La adición de hialuronidasa a la ropivacaína no mejora la  propagación.

Equipo  jeringas Debido a la variedad de tamaños de perros, una variedad de tamaños de  jeringas que van desde 1 ml a 20 ml debe estar disponible. jeringas de vidrio, o hechos especialmente jeringas de baja resistencia de plástico, son útiles cuando se realizan técnicas epidurales para comprobar la pérdida de

resistencia. Un tipo específico de jeringa, llamado una jeringa de Episure ™, se ha evaluado en personas como una alternativa a jeringas de vidrio cuando se realiza la anestesia epidural. Esta jeringa presenta un muelle de compresión, que suministra una presión constante cuando está unido a una aguja. El operador puede avanzar la aguja con las dos manos, en lugar de una mano, lo que permite más constante avance de la aguja y una señal

visual de que se ha entrado en el espacio epidural (Riley (Rile y y Carvalho, 2007). agujas Las agujas hipodérmicas que van desde 25 Ga a 20 Ga y 2-5 cm se utilizan  para realizar muchos bloqueos de nervios locales.

agujas epidurales / espinal se utilizan al realizar epidural o analgesia espinal. Estas agujas tienen un bisel afilado y incorporan un estilete para evitar el depósito de núcleos de tejido dentro del espacio epidural o espinal. Estas agujas están disponibles en una gama de medidores (18, 20, y 22 Ga) y longitudes (3.8, 6.3, y 9.0 cm). Una aguja espinal modificado, o una aguja Tuohy, está ligeramente curvada en la punta, lo que facilita el avance del catéter cuando la coloque  

 

Pe queños Animales y Analgesia 8 Manual de Anestesia Regional de Pequeños

el espacio epidural. Este tipo de aguja suele estar marcada en incrementos de 1 cm a lo largo de su longitud para ayudar a determinar qué tan lejos  para insertar el catéter. agujas Tuohy son típicamente de mayor calibre (16 y 18 Ga) que las agujas epidurales estándar con el fin de colocar el catéter más fácilmente, aunque esto puede dificultar la colocación en pacientes  pequeños. kits catéter epidural kits esterilizados para la colocación de catéteres epidurales están disponibles comercialmente. Ellos incluyen típicamente una aguja Tuohy, una pérdida de jeringa de resistencia, un catéter radiopaco con alambre de guía, un conector, y un filtro antibacteriano. antibacteriano . Algunos kits también incluyen una pluma estéril, que se utiliza para marcar en el catéter de la distancia distanci a que se debe avanzar a través de la aguja de Tuohy. localizadores nerviosas 

localizadores nerviosas se utilizan para mejorar la precisión de la deposición de anestésico local, disminuir la dosis de anestésico local es necesario, y limitar los efectos secundarios. estimuladores nerviosos periféricos

estimuladores nerviosos periférico (SNP) se utilizan en conjunción con las agujas recubiertos de teflón, que tienen una pequeña zona zon a conductora en la  punta, para localizar los nervios utilizando una corriente eléctrica (Figura 1.1). El recubrimiento de teflón asegura que sólo la punta de la aguja transmite la corriente eléctrica de modo que se consigue una alta densidad de corriente. Se aconseja al lector a referirse a la hoja de instrucciones adjunta con el estimulador de nervios periféricos. Brevemente, el conductor positivo (ánodo) está unido a la piel por medio de un electrodo pegajosa (pad ECG) y el cable negativo (cátodo) se conecta a la aguja. puntos de referencia anatómicos se palpan y la aguja se inserta a través de la piel. La aguja se hace avanzar hasta que está en estrecha proximidad al nervio. Entonces, el operador gira el estimulador

A, estimulador Peripheralnerve. B, la aguja revestida de Teflón. C, Positivelead (ánodo) y stickyelectrode (pad ECG). D, cable negativo (cátodo) .E, Jeringa, puerto de inyección, y el tubo. withpermission reproducido de la Universidad OhioState. Figura

1.1

 

 

Introducción 9

duración de 0,1-0,3 ms. Esto genera un campo eléctrico adyacente al nervio, que resulta en la despolarización y la contracción muscular, o contracciones nerviosas. La corriente requerida para provocar una contracción aumenta exponencialmente a medida que la distancia entre el nervio y los aumentos de aguja. La corriente se reduce al nivel más bajo  posible requerida para provocar una contracción, y esto se hace tiempo que reorientan cuidadosamente la aguja de modo que se encuentra muy cerca del nervio. La corriente útil no es un estímulo doloroso, y se puede utilizar en un paciente sedado. Una vez que la corriente más bajo posible requerido  para provocar una contracción ha sido determinada, anestésico local se inyecta a través de la aguja a través de la tubería. tubería . La inyección de anestesia local empuja la aguja un poco más lejos del nervio, así contracciones nerviosas son por lo general disminuyen o se pierden inmediatamente después de la inyección. Ultrasonido

sondas de ultrasonidos se pueden usar para visualizar los nervios directamente tanto antes y durante la colocación coloc ación de la aguja y la deposición del fármaco anestésico, lo que permite mejorar la precisión de bloqueo. Esta técnica se combina a menudo con un estimulador nervioso para confirmar la ubicación del nervio, lo que qu e permite la deposición del fármaco cerca de, pero no en, el nervio. transductor de presión diferencial La probabilidad de daño a los nervios durante la inyección de anestésico local se incrementa cuando las inyecciones se llevan a cabo bajo alta  presión. El uso de un transductor de presión en línea permite que la fuerza

constante que se aplica durante la inyección. dispositivo acústico Identificación de entrada de la aguja en, o punción de, el espacio epidural  puede ser difícil usando la pérdida convencional de la técnica de resistencia. la amplificación acústica se ha utilizado para detectar la

 punción con más precisión. Un transductor de presión de línea en está unido a un amplificador de presión, que a su vez está unido un ido a un altavoz. El sonido del paso de la aguja de baja resistencia a los tejidos circundantes a la alta resistencia del ligamento amarillo se puede apreciar de forma audible (Lechner et al, 2002).

Las complicaciones y contraindicaciones En la práctica segura en general, saber cuándo está contraindicada una técnica de anestesia local es esencial, como es la comprensión de las complicaciones de la administración de anestesia local y cómo tratarlos. Las complicaciones pueden ser ampliamente clasificados como  

 

10 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Local  Piel

técnicas analgésicas locales no deben intentarse donde se inflama la piel que recubre el sitio de inyección, infectado, o claramente neoplásicas ya que esto puede promover la transmisión y propagación de organismos infecciosos o células neoplásicas en el tejido adyacente. Nervio

trauma directo a los nervios por la aguja o de inyección de alta presión  puede resultar en la pérdida de sensibilidad, dolor, malestar malestar y / o debilidad motora que puede ser temporal, que dura días o años, o permanente. El daño a los vasos sanguíneos cerca de los nervios, particularmente aquellos con pobre suministro de sangre, puede conducir a la isquemia. Por último, los fármacos anestésicos locales o aditivos pueden ser directamente tóxicos para el tejido nervioso. sistémico Sistema nervioso central

El exceso de la absorción sistémica de anestésico local puede causar convulsiones. Esto ocurre porque las neuronas inhibidoras son más sensibles al bloqueo del canal de Na +, y si están bloqueados entonces los resultados de excitación. Cardiovascular

técnicas anestésicas locales deben realizarse con precaución o evitarse en  pacientes que son hipotensos o en estado de shock, como la administración del fármaco inadvertida en una vena o inesperado rápida absorción sistémica de fármacos puede conducir a un colapso cardiovascular. coagulopatía

Técnicas en las que la hemorragia es una complicación posible, por

ejemplo, el bloqueo epidural, no deben llevarse a cabo en pacientes en los que la coagulopatía se ha demostrado o se sospeche. Laceración de un vaso sanguíneo puede llevar a un sangrado que será difícil de controlar. Si se  produce hemorragia no controlada en un espacio cerrado, que puede conducir a necrosis por presión de los tejidos adyacentes.

Las diferencias entre especies y consideraciones Como especie, los gatos son generalmente menos susceptibles de ser inmovilizado para los procedimientos a menos que estén fuertemente sedados o anestesiados, en comparación con los perros en los que algunas técnicas pueden realizarse con sedación ligera. También puede ser más  

 

Introducción 11

la dosificación exacta dará lugar a un menor número de complicaciones. anestesia inhalante con isoflurano o sevoflurano disminuye el metabolismo metaboli smo de la lidocaína después de 2 mg / kg de la administración intravenosa en gatos, incluso a dosis inhalantes relativamente bajas, mientras que este no es el caso en los perros (Thomasy et al, 2005). La inyección rápida inadvertida intravenosa de lidocaína, mientras que no es ideal en cualquier especie, puede ser más problemático en los gatos.

práctica segura ganando confianza técnicas anestésicas locales varían en su nivel de dificultad para llevar a cabo, la eficacia del bloqueo, y la complejidad de los equipos necesarios. Comenzando por el uso de técnicas sencillas que requieren poco en el camino de equipo adicional, y se ha informado que tienen altas tasas de éxito, se recomienda. Una vez cómodo con técnicas sencillas, el  practicante puede ampliar su repertorio. Asistir a seminarios de educación educ ación continua y cursos sobre técnicas de anestesia local, particularmente cuando un laboratorio húmedo es un componente de la formación, se recomienda. También creemos que el uso de este libro será de gran valor cuando se trata de técnicas escénicas donde el practicante tiene poca o ninguna experiencia. Hacer un plan Independientemente de la técnica, la realización con éxito bloqueos anestésicos locales requiere preparación del equipo adecuado, y un conocimiento profundo de la anatomía del paciente y la farmacología fármaco anestésico local. Es también importante que el médico que qu e realiza el bloqueo anestésico local tiene una apreciación de las posibles complicaciones que podrían ocurrir y es capaz de desarrollar un plan para su tratamiento (véase el capítulo 7). La persona que realiza el bloque también debe tener en cuenta un plan alternativo para proporcionar

analgesia caso de que el bloque de resultar imposible de realizar, o en los casos en que continúan con el bloque está contraindicado (por ejemplo, caída severa en la presión arterial durante la administración epidural, infección de la piel sobre el sitio de inyección se hace evidente después despu és de recorte).

referencias Chu, CR, Izzo, NJ, Coyle, CH, et al. (2008) Los efectos in vitro de acaine bupiv- en condrocitos articulares. articulares. J Bone Joint Surg 90: 814-820. Lechner, TJM, van Wijk, MGF y Maas, JJ (2002) Los resultados clínicos con un

 

 

12 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Riley, ET y Carvalho, B. (2007) La jeringa Episure: a novel pérdida de jeringa resistencia para localizar el espacio epidural. Analg 105: 1164-1166. Thomasy, SM, Pypendop, BH, Ilkiw, JE y Stanley, SD (2005) Farmacoc Farmacocinética inética de lidocaína y su metabolito activo, monoetilglicinaxilidida, después de la administración intravenosa de lidocaína a despierto y isoflurane- gatos anestesiados. Am J Vet Res 66: 1162-1166.

Otras lecturas Campoy, L. & Read, MR (2013) Anestesia Regional de Pequeños Animales y analgesia. Ames, IA: Wiley-Blackwell. Shelby, AM & McKune, CM (2014) Técnicas de anestesia Pequeño animal. Ames, IA: Wiley-Blackwell. Tranquilli, WJ, Thurmon, JC & Grimm, KA (2007) Lumb y Jones Anestesia Veterinaria, 4ª ed. Ames, IA: Wiley-Blackwell.

 

 

CAPITULO 2 

Cutáneo  Índice de inervación  Gwen Covey-Crump

 Handbook of Small Animal Anestesia Regional Regional y las técnicas de analgesia, analgesia, Primera edición.

Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd.

13  

 

14 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Índice inervación cutánea Utilice este capítulo como una ayuda para la elección de una técnica de anestesia regional adecuada para el procedimiento previsto. dermatomas caninos - Cuerpo

Figura 2.1 Mapa dermatoma canina. inervación cutánea de acuerdo con

segmento espinal. Esto está pensado como una guía sólo como mucho solapamiento entre los segmentos y la variación entre los animales existen. Reproducida de Oliver, JE y Lorenz, MD (eds) (1983) Veterinaria Diagnóstico neurológico. Filadelfia: WBSaunders Co Reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

Índice Inervación ccutánea utánea 15

Cabeza

 

Inervación cutánea de la cabeza canina. se muestran las regiones sensoriales autónomas. Existen algunos superposición y la variación entre las zonas y los animales. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. Figura 2.2

 

 

dieciséis Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

miembro torácico

 

Figura 2.3 inervación cutánea de la

extremidad torácica canina. se muestran las regiones sensoriales autónomas. Existen Existen algunos superposición y la variación entre las zonas y los animales. LCB-T2, lateral braquial cutánea del nervio torácico 2. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

Índice Inervación ccutánea utánea 17 Tabla 2.1 inervación sensorial de la

C6-7 

extremidad torácica canino

Región 

Nervio 

técnicas 

hombro lateral y la articulación 

supraescapular 

CP 

subescapular 

CP 

C7-8  C8 

antebrachium Craniomedial  articulación del hombro Caudal, brachium lateral 

musculocutáneo   Axilar 

CP, BP, RUMM  CP, BP 

C7-T1 

Lateral articulación del codo, antebrachium craneolateral, carpo y los dígitos  

Radial 

CP, BP, RUMM 

C8-T1  C8-T2 

articulación del codo medial 

Mediana  cubital 

CP, BP, RUMM  CP, BP, RUMM 

Caudal articulación del codo, antebrachium caudolateral, carpo y los dígitos  

BP, el plexo braquial; CP, paravertebral cervical; RUMM, radial, cubital, la mediana, musculocutáneo.

 

 

18 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

miembro pélvico

Figura 2.4 inervación cutánea de la extremidad pélvica canina. se muestran las

regiones sensoriales autónomas. Existen algunos superposición y la variación entre las zonas y los animales. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

Índice Inervación ccutánea utánea 19 Tabla 2.2 inervación sensorial de la

extremidad pélvica canino

 

Región  L4  L5  L6  L7 

Hemipelvis (excl. La piel   articulación de la cadera suprayacente), medial  muslo, reprimir, pierna, del

miembro entero dorsolateral   distal a  extremidad distal  S1, S2  sofocar (excl.  Laterocaudal  tira medial)  extremidad distal 

técnicas  Femoral  Safena 

Inguinal  Preiliac   Psoas  compartimiento 

Ciático 

Peroneo 

Lateral   parasacral 

tibial 

transglúteo 

 

 

CAPÍTULO 3 

Los bloques de infiltración 

 Handbook of Small Animal Anestesia Regional Regional y las técnicas de analgesia, analgesia, Primera edición.

Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd.

21  

 

22 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

La infiltración de remoción en masa bloques de línea y anillo indicaciones

La resección quirúrgica de masas cutáneas o superficiales, el cierre quirúrgico de laceraciones, los procedimientos que implican un apéndice (por ejemplo, dedo del pie, cola, pabellón de la oreja, etc.) nervios de destino

nervios cutáneos de la zona afectada región anestesiado a nestesiado

distal apéndice de bloque, área inmediatamente debajo del bloque y, en el caso de la realización de un bloque de anillo, el área circunscrita por lo hitos

Tejido circundantesealrededor la zona de interés. Es fundamental que el tejido subcutáneo identificadeclaramente  Aguja

Aguja hipodermica. Se recomienda el uso de una longitud más larga, pero  pequeña en tamaño de aguja (por ejemplo, 23 Ga 02.05 a 03.08 cm) Profundidad

La inyección subcutánea de anestésico local Técnica

1  Identificar el área de interés. Si se resecó una masa, el contorno total de la misma y de los márgenes debe tenerse en cuenta 2  Los bloques de línea y anillo son los componentes más fáciles de realizar, ya que no se requieren conocimientos específicos de la neuroanatomía

3  Introducir una aguja hipodérmica larga a toda su longitud en el tejido subcutáneo 4  Aspirar para evitar la administración intravenosa accidental ac cidental y depositar algo de anestésico local (por ejemplo, 0,2 ml de bupivacaína) 5  Retire la aguja aproximadamente 5 mm (la distancia puede variar en función del volumen inyectado en cada punto. Cuanto más grande sea el volumen, mayor será la distancia puede ser), aspirado de nuevo e inyectar anestésico un poco más local 6  Repetir la secuencia hasta que se circunscribe el área de interés 7  Cuando se realiza de anillo o de la curva de bloques de línea, se recomienda retirar la aguja casi totalmente antes de redirigirla en una dirección diferente para prevenir el daño tisular y la flexión de la aguja  precauciones

inyección intravenosa accidental de anestésico local. Este tipo de bloque sustituye a la precisión mediante el uso de un gran volumen de anestésico local. Sobredosis de anestésico local es un peligro grave si la dosis total no  

 

Los bloques de infiltración 23

 

Figura 3.1 bloque de línea. Reproducido Reproducido con permiso permiso de la Universidad Universidad Estatal de Ohio.

 

anillo. Realizado Realizado como una combinación combinación de bloques de línea para Figura 3.2 bloque de anillo. evitar la flexión de la aguja. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

24 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Invertida bloque de "L" indicaciones

La resección quirúrgica de masas cutáneas o superficiales, el cierre quirúrgico de laceraciones nervios de destino

nervios cutáneos originarios de los nervios espinales dorsales región anestesiado a nestesiado

El área de interés general se encuentra dentro del tronco del animal. Clásicamente, esta técnica se ha utilizado para desensibilizar el flanco hitos

Tejido circundante alrededor de la zona de interés. Es fundamental identificar subcutáneo y las capas musculares, si hay una implicaciónelde tejido estas estructuras  Aguja

Aguja hipodermica. Se recomienda el uso de una longitud más larga, pero  pequeña en tamaño de aguja (por ejemplo, 23 Ga 02.05 a 03.08 cm) Profundidad

La inyección subcutánea de anestésico local Técnica

área interés. Si se resecó masa, el contorno total de 1  Identificar la misma yelde losdemárgenes debe tenerseuna en cuenta 2  Siguiendo los pasos descritos en el bloque anterior, anterio r, dos bloques de línea

deben ser realizadas (la formación de la “L” invertida) 3  Realizar un bloque de línea entre la masa (o área de interés) y la columna vertebral del paciente 4  Añadir otro bloque de línea craneal al área de interés 5  Si hay participación de capas musculares, es necesario bloquear el tejido subcutáneo (para el bloqueo de las ramas cutáneas de los nervios), sino también para llevar a cabo un bloque de profundidad  para bloquear bl oquear las l as ramas musculares. La L a inyección in yección de anestésico local en el músculo es muy estimulante, por más lo que el bloque subcutánea es aconsejable antes de intentar el bloque profunda  precauciones

inyección intravenosa accidental de anestésico local. Sobredosis de anestésico local es un peligro serio como un gran volumen de anestésico local puede ser necesario para desensibilizar a un área grande del cuerpo. La dilución de la anestesia local con solución salina estéril puede ser una opción para alcanzar el volumen deseado  

 

Los bloques de infiltración 25

 

Figura 3.3 "L" invertida bloque

(flechas azules) azules) para la resección de tumor de de

mastocitos (flecha roja).

 

 

26 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Bloque de la incisión quirúrgica Este bloque se puede conseguir mediante una única inyección en el momento de cierre través de un catéterque de permite difusiónlacolocado en las capas profundas de olaaincisión quirúrgica administración continua de anestésicos locales. Una sola inyección de la incisión quirúrgica indicaciones

Analgesia de heridas o incisiones quirúrgicas nervios de destino

nervios cutáneos de la zona afectada región anestesiado

 bordes incisión quirúrgica hitos

El tejido subcutáneo alrededor de la incisión  Aguja

23-25 Ga 1.6 a 1.9 cm de aguja hipodérmica Profundidad

Piel al tejido subcutáneo Técnica

1  Probablemente el bloqueo nervioso más antiguo anti guo y más fácil de realizar  2  La inyección de anestésico local en el tejido subcutáneo expuesto en la herida quirúrgica es más eficaz que un simple toque de la droga en la incisión 3  La inyección de anestésico local debe hacerse de la misma manera que el bloque de línea (véase la descripción anterior de este capítulo) Savvas et al (2008) informó mejores resultados cuando el bloque se llevó a cabo antes de la primera incisión, que cuando se realizó antes de la sutura.  precauciones

Sobredosis de anestésico local es un peligro serio como un gran volumen de anestésico local puede ser necesario para desensibilizar a un área grande del cuerpo. La dilución de la anestesia local con solución salina estéril  puede ser una opción para alcanzar el volumen deseado

 

 

Los bloques de infiltración 27

 

Figura 3.4 inyección solo bloque incisional. Reproducido con permiso de

la

Universidad Estatal de Ohio.

 

 

28 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

catéter Difusión / "madurador" catéter / "destructor de dolor” indicaciones

Analgesia de heridas o incisiones quirúrgicas nervios de destino

nervios cutáneos de la zona afectada región anestesiado a nestesiado

incisión quirúrgica de capas profundas a bordes de la piel hitos

Incisión quirúrgica  Aguja  Ninguna. El catéter es un tubo de poliuretano flexible de diámetro diámetro pequeño

con múltiples poros para una distribución uniforme un iforme del anestésico local. El catéter se coloca durante el cierre quirúrgico de la incisión Profundidad

Piel a las capas más profundas de la herida quirúrgica Técnica

1  Con un par de pinzas arteriales y un bisturí, introducir el catéter de unos  pocos centímetros desde el borde de la incisión (por lo que no interfiere con la recuperación) 2  Colocar el catéter en las capas más profundas de la incisión 3  Asegúrese de que la longitud del tubo con c on poros está completamente en la incisión y que es lo suficientemente largo para el tamaño de la

incisión 4  Cierre el tejido blando por encima del catéter 5  Asegurar el catéter externamente a la piel para evitar su movimiento 6  La analgesia se puede conseguir mediante la administración intermitente de bupivacaína 2 mg / kg cada 6 h (cierta superposición entre las administraciones se requiere como anestésicos anestésico s locales pueden  picar durante la administración). Una infusión constante evita una analgesia "brecha" entre las dosis. dosis constante infusión de lidocaína: perros 2-3 mg / kg / h, gatos 1-1,5 mg / kg / h Hansen et al (2013) demostraron que no había diferencia entre los catéteres comerciales y los hechos a mano. También encontraron que las tasas de infusión muy lentas producen una distribución irregular de la droga.  precauciones

El volumen total que se utilizará utili zará depende de la longitud de la incisión y no  

 

Los bloques de infiltración 29

 

La colocación de un catéter de remojo en las capas profundas de la incisión antes del cierre. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. Figura 3.5

Figura 3.6 Remojo catéter utilizado en un

gato para el tratamiento del dolor después de

un sarcoma sitio de la inyección.

 

 

30 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

bloques intercostales indicaciones

toracotomía lateral, la analgesia para fracturas de costillas, la analgesia  para la colocación de un drenaje torácico nervios de destino

nervios intercostales región anestesiado a nestesiado

Intercostal espacio distal a la inyección hitos

 borde caudal de la nervadura como proximal a la columna colu mna vertebral como es posible palpar  Aguja

23 Ga 1,9-2,5 cm Profundidad

 borde caudal de la costilla. Precaución: la introducción de la aguja adicional puede penetrar en la pleura. pl eura. Dirigir la punta de la aguja debajo deb ajo de la nervadura puede dañar la vena y / o arteria intercostal Técnica

1  Se palpa el extremo caudal de la costilla y seguirlo hacia la columna vertebral la aguja perpendicular a la piel y dirigir su punta hacia el 2  Introducir extremo caudal de la costilla 3  Se aspira a evitar la inyección intravascular

4  Administrar 0,3-1 ml de bupivacaína 5  Repetir los pasos anteriores en al menos dos espacios intercostales craneal y caudal a la zona de interés (Thompson & Johnson, 1991). Aunque la desensibilización de tres espacios, los resultados son mejores Esta técnica se ha demostrado ser superior a los opioides sistémicos cuando la función respiratoria se evaluó en pacientes después de una toracotomía lateral (Berg & Orton, 1986).

 

 

Los bloques de infiltración 31

Figura 3.7 El bloqueo del

nervio intercostal. Se palpa la nervadura y luego deslice la aguja sobre el borde caudal. Reproducido con permiso p ermiso de la Universidad Estatal de Ohio.

Figura 3.8 Un bloque de

intercostal eficaz requiere tres espacios intercostales intercostales a cada lado de la zona de interés. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

32 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

bloque interpleural (también conocido como intrapleural o pleural) indicaciones

Clásicamente, este bloque está indicado para el tratamiento postoperatorio de una toracotomía lateral o una esternotomía, ya que produce menos depresión respiratoria que los opiáceos solos (Berj y Orton, 1986; Conzemius et al, 1994). En la medicina humana, se indica para otras condiciones, por ejemplo, tumor del plexo braquial (Dionne, 1992), la colecistectomía (VadeBoncouer et al, 1989), pero la medicina veterinaria carece de experiencia en estos usos. nervios de destino

El mecanismo de acción es desconocido. Se especula que la técnica puede funcionar en tres niveles: nervios intercostales (debido a una difusión retrógrada aunque la pleura parietal), el bloqueo de la cadena simpática y los nervios esplácnicos, y / o bloqueo del plexo braquial ipsilateral. región anestesiado a nestesiado

cavidad torácica, la cavidad abdominal craneal hitos

cavidad interpleural en un espacio intercostal  Aguja

catéter sobre la aguja (14-18 Ga 4.8 a 3.2 cm). Es aconsejable el uso de catéteres con punta de bayoneta para evitar la perforación del pulmón Profundidad

Skin a la cavidad interpleural

Técnica

Para el bloque repetible, es recomendable colocar un catéter de drenaje o difusión torácica permanente aunque la técnica puede ser realizada por una sola inyección. 1  Introducir el catéter a través de la piel sobre un espacio intercostal y avanzar la punta de la aguja, haciendo un túnel en el tejido subcutáneo a la siguiente espacio intercostal 2  Penetran en la pared torácica en el espacio intercostal, evitando el extremo caudal de la costilla donde se encuentran el nervio, la arteria y vena 3  Introducir el catéter en un ángulo poco profundo para disminuir la  posibilidad de dañar el pulmón 4  Analgesia puede estar provisto de bupivacaína 2 mg / kg cada 5-6 h  precauciones

 Neumotórax, hemotórax, sobredosis de anestésico local. Las complicaciones son raras si la fuga de catéter / pecho se manipula con cuidado. Los efectos cardiopulmonares de los anestésicos locales en el espacio interpleural son muy transitoria y no es clínicamente significativa,  

 

Los bloques de infiltración 33

 

Figura 3.9 interpleural bloque. La aguja se introduce más

cerca del borde craneal de la costilla para evitar los vasos intercostales. intercostales. Reproducido con permiso de la Universidad Un iversidad Estatal de Ohio.

Figura 3.10 catéter sobre la aguja con punta

de bayoneta para evitar daños en los pulmones.

 

 

34 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

bloque intraperitoneal indicaciones

Analgesia de la cavidad abdominal. Este bloque se ha convertido en una técnica analgésico postoperatorio común para laparotomías y laparoscopias en la medicina humana nervios de destino

nervios esplácnicos responsables de la componente visceral del dolor abdominal región anestesiado a nestesiado

cavidad abdominal (exclusivamente el componente visceral) hitos

cavidad abdominal (específicamente el área de interés, por ejemplo, ovario, riñón, vesícula biliar ..)  Aguja

 No se requiere ninguna aguja, se aplica apl ica en el abdomen antes de cerrar la línea alba Profundidad

Cavidad abdominal Técnica

1  Usar 1-2 mg / kg de bupivacaína 2  Diluir con solución salina estéril si el área de interés es demasiado

grande para el volumen calculado 3  Splash el anestésico local sobre el área de interés, por ejemplo el  pedículo ovárico 4  Alternativamente, salpicar el volumen en la cavidad, tratando de lograr una distribución uniforme 5  Cerca línea alba Algunos autores recomiendan la infiltración de la incisión quirúrgica  para minimizar el dolor somático o parietal (Carpenter et al, 2004).  precauciones

El volumen total que se utilizará depende de la cavidad abdominal o el tamaño de la zona de interés y no tanto de la longitud y el tamaño del  paciente. Siempre verifique verifiq ue la dosis total a inyectar y diluir con solución salina estéril, si el volumen no es suficiente.

 

 

Los bloques de infiltración 35

referencias Berg, RJ y Orton, CE (1986) de la función pulmonar en perros después de intercostal toracotomía: comparación de morfina, oximorfona, y bloqueo del nervio intercostal selectiva. selectiva. Am J Vet Res 47: 471-474. Bernard, F., Kudnig, ST & Monnet, E. (2006) Efectos hemodinámicos de la lidocaína interpleural y la combinación de bupivacaína en perros anestesiados con y sin pericardio p ericardio y abierta. Vet Surg 35: 252-258. Carpenter, RE, Wilson, DV & Evans, AT (2004) Evaluación de la intraperitoneal y lidocaína o bupivacaína incisional para la analgesia después de ovariohisterectomía ovariohisterec tomía en el perro. Vet Anaesth Analg 31: 46-52. Conzemius, MG, Brockman, DJ, Rey, LG, et al. (1994) Analgesia en perros después de intercostales toracotomía: ensayo clínico que compara la  buprenorfina intravenosa intravenosa y bupivacaína interpleural. interpleural. Vet Surg Surg 23: 291-298. Dionne, C. (1992) invasión del tumor del plexo braquial: la gestión del dolor con analgesia Interplural. Puede JAnaesth 39: 520-521. Hansen, B., Lascelles, BD, Thomson, A., et al. (2013) Variabilidad de rendimiento de los catéteres de infusión de la herida. Vet Anaesth Analg 40 (3): 308-315. Savvas, I., Papazoglou, LG, Kazakos, G., et al. (2008) de bloque incisional con  bupivacaína para la analgesia después de la laparotom laparotomía ía en los perros. J Am Anim Hosp Assoc 44 (2): 60-66. Thompson, SE & Johnson, JM (1991) Analgesia en perros después de toracotomía intercostal. Una comparación de la morfina, bloque intercostales nervio selectiva, y analgesia regional interpleural con bupivacaína. Vet Surg 20: 73-77. VadeBoncouer, TR, Riegler, FX, Gautt, RS, et al. (1989) Una comparación aleatorizado, doble ciego de los efectos de bupivacaína interpleural y solución salina en las necesidades de morfina y la función pulmonar después de la colecistectomía. colecistectom ía. Anesthesio Anesthesiology logy 71: 339-343.

 

 

CAPÍTULO 4 

Bloques de la Cabeza  Fernando Martínez Taboada

 Handbook of Small Animal Anestesia Regional Regional y las técnicas de analgesia, analgesia, Primera edición.

Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd.

37   

 

38 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

retrobulbar indicaciones

Los procedimientos quirúrgicos que implican los acinesia ojo y / o  procedimientos que requieren del ojo nervios de destino

división oftálmica del nervio trigémino (V) (percepción sensorial), también dentro del cono ocular, nervios craneales óptica (II), oculomotor (III) y motor ocular externo (VI) (la función motora de los músculos extraoculares). El nervio troclear (IV) se encuentra fuera del cono ocular,  pero con frecuencia se bloquea por la difusión de los fármacos anestésicos y contribuye a la acinesia del ojo región anestesiado a nestesiado

Eye incluyendo conjuntiva, la córnea, y úvea hitos

globo ocular, la órbita del ojo, arco cigomático, rama vertical de la mandíbula  Aguja

22 Ga 2,5 cm (hasta 3,8 cm, dependiendo del tamaño del animal) Profundidad

Piel de cono ocular Técnica

1  Localizar la depresión limitada por la cara caudal del maxilar superior, el borde ventral del arco cigomático y la rama vertical de la mandíbula 2  Introducir la aguja perpendicular al eje largo de la cabeza 3  Tan pronto como la punta de la aguja está en el tejido subcutáneo, dirigir la mediodorsal aguja (detrás del arco cigomático) hacia el cono ocular 4  ubicación precisa de la punta de la aguja puede ser confirmada como la  presión de la aguja contra los músculos extraoculares producir un movimiento ventrodorsal del globo aspira1-2 a evitar inyección intravascular 56   Se Inyectar ml delasolución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína)  precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. daño intraocular es rara, aunque hematomas intraconales pueden causar ca usar ceguera. El enfoque tradicional para este bloque, curvando una aguja espinal (20 Ga 7,5 cm), se ha asociado con fracaso de la técnica y el riesgo de inyección subaracnoidea directa. Por esta razón, este enfoque alternativo se presenta aquí, aunque se necesitan más investigaciones que comparan las  

 

Bloques de la Cabeza 39 

(una)

(do)

Figura 4.1 (A) inserción de la aguja en el cono ocular produce ventrodorsal ventrodorsal

movimiento del globo. (Bc) bloque retrobulbar (enfoque subzygomatic). Partes (a) y (c) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

40 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Maxilar   indicaciones

Los procedimientos quirúrgicos que implican el maxilar superior, el labio superior y / o paladar, extracciones dentales (Aguiar et al, 2015) y de rinoscopía (si se realiza bilateralmente) (Cremer et al, 2013) nervios de destino

nervio maxilar (idealmente con sus ramas: la nasal y los nervios  principales palatinas) palatinas ) región anestesiado a nestesiado

Dorsal de la cabeza y el hocico aproximadamente hasta la línea media. El maxilar superior y maxilar dientes, paladar duro y blando (si importante nervio palatino se bloquea con la técnica), nares, na res, labium superior y la parte rostral de la cavidad nasal hitos

arco cigomático, parte caudal del maxilar superior, y la rama vertical de la mandíbula  Aguja

22 Ga 2,5 cm aguja no aislado

Profundidad

La piel a la fosa pterygoid Técnica

1  Identificar la depresión formada por la cara caudal del maxilar superior, el borde ventral del arco cigomático, y la rama vertical de la mandíbula. Esta depresión se encuentra ventral al canto lateral del ojo 2  Introducir la aguja perpendicular al maxilar 3  Dirigir la punta de la aguja perpendicular al plano sagital del cráneo 4  Si la punta de la aguja realiza hueso, retirar aproximadamente 1-2 mm antes de realizar la inyección 5  Se aspira a evitar la inyección intravascular 6  Inyectar 0,3-1 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína o ropivacaína)  precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios

 

 

Bloques de la Cabeza 41

(una)

Figura 4.2 (A) Bloqueo del nervio maxilar. Aguja

se dirige perpendicular a la  pterygoid fosa para bloquear también también la nasal y palatal ramas del nervio. (B) Bloqueo del nervio maxilar. La parte (a) reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

42 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

infraorbital  indicaciones

Los procedimientos quirúrgicos que implican la parte rostral de la boca del cañón (algunos procedimientos pueden requerir bloque bilateral) nervios de destino

nervio infraorbitario  región anestesiado

 parte rostral de la boca del cañón, incluyendo la piel, maxilar, dientes superiores y el paladar. labio superior rostral y de la cavidad nasal hitos

agujero infraorbitario, P3 premolar diente  Aguja

25 Ga 1,5 o 2,5 cm aguja hipodérmica Profundidad

Piel para el interior del foramen infraorbitario Técnica

1  Por vía percutánea o levantar el labio superior, localizar el agujero

2  3  4  5  6 

infraorbitario (dorsal a la P3 diente) Introducir la aguja en un ángulo poco profundo hacia la entrada del foramen Avance la aguja en el agujero tanto como sea posible (dentro de un margen de seguridad, de unos pocos milímetros es suficiente) Aspirar Para evitar la inyección intravascular Inyectar 0,3-0,5 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína) La eficacia del bloque y el tamaño del área de desensibilizado dependen de si la inyección se realiza dentro del foramen (anestesiar hasta el primer molar; Gross et al, 1997) o sólo en la entrada (bloqueo sólo el rostral área a la canino dientes)

 precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios

 

 

Bloques de la Cabeza 43 

(una)

(segundo) 

(do) 

Figura 4.3 (A) ramas del nervio que sale del foramen infraorbital, (b) infraorbitario

 bloque (nota (nota de la inserción de la la punta punta de la aguja dentro del del canal). canal). (C) (C) infraorbitario  bloque. Partes (a) (a) y (b) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

44 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Mandibular (o alveolar inferior) indicaciones

Los procedimientos quirúrgicos que implican la mandíbula, el labio inferior, y extracciones dentales (Aguiar et al, 2015) nervios de destino

nervio dentario inferior (en el foramen mandibular) región anestesiado a nestesiado

Hemimandíbula hasta la barbilla. Los tejidos entre las mandíbulas no deben ser anestesiados si la técnica se lleva a cabo correctamente. En algunas ocasiones, la parte más rostral de la barbilla no se insensibiliza (en algunos animales es la inervación por el nervio milohioideo) hitos

Mandíbula, proceso angular, foramen mandibular  Aguja

22 Ga 1,6 o 2,5 cm Profundidad

rostral de la piel para el proceso angular de la mandíbula al foramen mandibular Técnica

1  Se palpa el proceso angular de la mandíbula, a continuación, abrir la  boca y palpar el agujero mandibular. Este agujero se encuentra aproximadamente a medio camino entre el último molar y el proceso condilar 2  Introducir la aguja percutánea inmediatamente rostral al proceso angular y dirigido dorsalmente a lo largo del aspecto medial de la mandíbula 3  Dirigir la punta de la aguja hacia el agujero. Es muy difícil avanzar la aguja en el agujero, pero el bloque puede ser eficaz, siempre y cuando se entrega la solución anestésica en la entrada del foramen 4  Se aspira a evitar la inyección intravascular 5  Inyectar 0,2-1 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína)  precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. La desensibilización de la lengua puede ocurrir si un bloque bilateral se realiza con grandes volúmenes y / o una mala técnica (dificultad para localizar e inyectando dentro de los foramen o lo más cerca posible a él). Esta desensibilización puede conducir a la automutilación de la lengua

 

 

Bloques de la Cabeza 45 

(una)

(segundo) 

(do) 

Figura 4.4 (A) Inervación de la mandíbula y la lengua, (b) percutánea enfoque en el

nervio mandibular (tenga en cuenta la punta de la aguja cerca de las foramen). (C) aproximación percutánea para el bloqueo del nervio mandibular. Partes (a) y (b) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

46 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Mentales (o medio mental) indicaciones

Los procedimientos quirúrgicos que implican la mandíbula rostral, los dientes asociados con la zona, y el labio inferior rostral nervios de destino

alveolar inferior (en el foramen mental, también conocido como el nervio mental) región anestesiado a nestesiado

Chin cuando se realiza bilateralmente, hasta P4 diente premolar si la inyección se realiza dentro del foramen (Gross et al, 2000) hitos

foramen mental, el labio inferior premolares P2 diente  Aguja

25 Ga 1,6 mm Profundidad

mucosa GUM a foramen Técnica

1  Palpar el foramen ventral a la P2 diente desde el interior del labio inferior 2  Introducir la aguja justo rostral a ese punto, con un ángulo pequeño, hacia el foramen 3  Avance la aguja en el agujero tanto como sea posible (sin forzarlo en) 4  Se aspira a evitar la inyección intravascular 5  Inyectar 0,2-0,6 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína)  precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. En algunos algun os casos, la parte más rostral de la barbilla no se insensibiliza (en algunos animales la inervación es por el nervio milohioideo)

 

 

Bloques de la Cabeza 47

(una) 

  Figura 4.5 (A) bloqueo mental (tenga en cuenta la inserción de la punta de la

aguja dentro del canal del nervio). (B) bloqueo b loqueo mental para hemimandibulectomía rostral. La parte (a) reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

48 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Auriculotemporal y un gran auricular indicaciones

Analgesia en casos graves de otitis externa, analgesia perioperatoria para intervenciones quirúrgicas que afectan el canal auditivo externo y el  pabellón auditivo auricular (analgesia postoperatoria también se puede lograr por la infiltración local en el momento del cierre, pero el uso de este  bloque proporcionaría analgesia intraoperatoria, int raoperatoria, así ) nervios de destino

Auriculotemporal (rama del nervio mandibular) y gran auricular (formado  por la unión de las raíces ventrales de C1 y C2) región anestesiado a nestesiado

canal auditivo externo y pabellón auricular hitos

arco cigomático, canal del oído externo, proceso transversal atlas vertebral (también conocido como alas)  Aguja

22 Ga 2,5 cm (o más en perros grandes) Profundidad

Skin a media distancia entre la piel y la articulación temporomandibular  (nervio auriculotemporal) y la piel al tejido subcutáneo (nervio auricular)

 

 

Bloques de la Cabeza 49 

(una)

 

Figura 4.6 (A) Inervación de la oreja y pabellón auricular. (B) Identificación de los

 puntos de referencia referencia anatómicos para la desensibilización desensibilización del nervio nervio auriculotemporal.

 

 

50 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Técnica

Bloqueo del nervio auriculotemporal 

1  2  3  4  5  6  7 

Palpar canal del oído externo (que es de forma cónica y muy duro cuandoelinflamado) Localizar la cara caudal del arco cigomático Introducir la aguja perpendicular a la piel en la depresión dep resión palpable entre el arco cigomático y el canal auditivo externo Avanzar la aguja en la medida de lo posible hasta que la punta es tocar  el hueso (la articulación temporomandibular) Conociendo la profundidad total de los tejidos, retire la aguja aproximadamente a medio camino Se aspira a evitar la inyección intravascular Inyectar 0,5-1,5 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína)

Nervio auricular 

1  Se palpa el conducto auditivo externo 2  Localizar el punto de la apófisis transversa de la vértebra atlas más craneal 3  Introducir la aguja paralela a la apófisis transversa 4  Dirigir la punta de la aguja ventral a la parte más craneal del proceso 5  El nervio es muy superficial y es mejor para mantener la aguja en un ángulo muy poco profunda en la piel 6  Se aspira a evitar la inyección intravascular

7  Inyectar 0,5-1,5 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 0.250.5% de bupivacaína)  precauciones

Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. parálisis temporal de los nervios faciales y / o temporopalpebral impiden al animal de parpadear (recomendado para lubricar el ojo cada 2-4 h)

 

 

Bloques de la Cabeza 51 

Figura 4.6 (continuado)

(C) Inervación en relación a puntos de referencia anatómicos. (D) Great Great bloqueo del d el nervio auricular. Partes (a) y (c) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.

 

 

52 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

referencias Aguiar, J., Chebroux, A., Martínez-Taboada, F., et al. (2015) Los efectos analgésicos de bloqueo de los nervios alveolares del maxilar superior e inferior en los gatos sometidos a extracciones dentales. J Feline Med Surg 17: 110-116. Cremer, J., Sum, SO, Braun, C., et al. (2013) Evaluación de los maxilares y bloqueo del nervio infraorbitario para rinoscopia en perros anestesiados con sevoflurano.. Vet Anaesth Analg 40: 432-439. sevoflurano Gross, ME, Papa, ER, O'Brien, D., et al. (1997) La anestesia regional regional de los nervios alveolares infraorbital e inferior durante la estimulación pulpa del diente no invasiva en perros anestesiados con halotano. J Am Vet Med Assoc 211: 1403-1405. Gross, ME, Papa, ER, Jarboe, JM, et al. (2000) La anestesia regional de los nervios alveolares infraorbital e inferior durante la estimulación pulpa del diente no invasiva en gatos anestesiados con halotano. Am J Vet Res 61: 1245-1247.

 

 

CAPÍTULO 5 

anestesia regional  Bloques de las extremidades 

 Handbook of Small Small Animal Anestesia Regional Regional y las técnicas de analgesia, analgesia, Primera edición.

Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd.

53  

 

54 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

bloqueos anestésicos regionales miembro torácico

 

 

Tabla 5.1 respuestas motoras provocados a la estimulación del nervio - miembro torácico

Técnica

respuesta motora

Músculo

nervios

paravertebral cervical

Hipo  Hipo 

Diafragma

Frénico

plexo braquial

 Aducto, rotar escápula / hombro   hombro Girar el hombro en, codo flexión

Supraespinoso, infraespinoso

supraescapular

bíceps braquial

musculocutáneo

X

Comentario Demasiado ventral /

caudal X/

Craneal

subescapular  / Cara craneal de la técnica

hombro Flex, extender codo / carpo

Redondo mayor / menor, deltoides

Extender el codo / carpo

Tríceps, extensores del carpo / digitales

Radial//

anestésico local aquí debe difundirse en la mayor parte del plexo braquial  braquial 

Pronación antebrachium, carpiano / flexión palmar

Carpo / flexores digitales

Mediana/

Inyección muy caudal puede no llegar a los nervios craneales más  más 

extensión palmar flexión palmar Tríceps / bíceps contracción

 Axilar/

aspecto medio de la técnica de

cubital /

flexión palmar RUMM

Aceptar

Carpo / flexores digitales Carpo / extensores de

Radial/ Mediano, ulnar / X

estimulación muscular

directa   directa

R  e   g i    o n  a  l    e   s   a  n  e   s   t    é   s  i    c   a   s  B l    o  q  u  e   s   d   e  l    a   s   e  x  t   r   e  m i    d  M ui

 

 

56 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia

Plexo braquial

indicaciones

 procedimientos quirúrgicos unilaterales de húmero distal, di stal, el codo, chium chi um antebra-, carpo nervios de destino

Musculocutáneo, axilar, radial, mediano y cubital región anestesiado a nestesiado

Torácica extremidad distal a mediados húmero hitos

Acromion, la tráquea, la vena yugular, primera costilla  Aguja

21 Ga 5,0-10,0 cm aguja aislada Profundidad

Acromion a primera costilla Technique (Campoy (Campoy et al, 2008; Mahler y Adogwa, 2008)

1  Identificar primera costilla por palpación axilar. profundidad de la aguja premedición a un punto en una línea que se extiende el curso de la vena yugular cruza la primera costilla. El plexo braquial es sólo craneal a este punto 2  Inserte craniomedial aguja al acromion en una dirección caudoventral  paralelo a la vena yugular y en un plano estrictamente sagital 3  Con estimulador del nervio a 2 mA y reduciendo gradualmente, observar las respuestas a la estimulación nerviosa (Tabla 5.1) (reducción a 0,2 mA para evitar la inyección intrafascicular antes de la inyección) 4  En el punto de la estimulación del nervio radial (y no más allá de la  profundidad medida previamente), aspirado para evitar intravascular (sangre) o inyección interpleural (aire) 5  Inyectar 0,1 ml / kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 0,75% 6  Retire la aguja de 0.5-1 cm, aspirado, a continuación, inyectar más 0,1 ml / kg 7  Repita el paso 6, la inyección de una final de 0,1 ml / kg por debajo de la punta del hombro

 

 

Regionales anestésicas Bloques de las extremidades 57

n cervical. 6  n cervical. 7  n cervical. 8 n torácica. 1 

v yugular.

Musculocutáneo n