1 Manual de Toma de Muestras Hospital Clinico Univ de Chile 2010

March 6, 2024 | Author: Anonymous | Category: N/A
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©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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EDITOR EN JEFE DRA. M ARÍA EUGENIA PINTO C LAUDE Jefe Servicio Laboratorio Clínico, Hospital Clínico Universidad de Chile

COMITE EDITORIAL E.U. SANDRA M ENA V ELÁSQUEZ Enfermera Dirección de Calidad T.M. HÉCTOR P IZARRO C ONTRERAS Editor Asociado, Coordinador Comité de Calidad, Servicio Laboratorio Clínico D RA. M ARÍA J ESÚS V IAL C. Jefe Servicio Laboratorio Clínico E.U. MARÍA N ELLY A RANEDA F. Enfermera Jefe Unidad de Toma Muestras, Servicio Laboratorio Clínico E.U. MIRNA SOLEDAD A NTIBILO G. Enfermera Unidad de Toma Muestras, Servicio Laboratorio Clínico Q.F. ANA M ARÍA T ONG S. Químico Farmacéutico, Unidad de Recepción, Servicio Laboratorio Clínico T.M. CLARA M USA M. Tecnólogo Médico, Unidad de Bioquímica, Servicio Laboratorio Clínico T.M. BERTHA R OSAS P. Tecnólogo Médico, Jefe Unidad de Hematología, Servicio Laboratorio Clínico D RA. A NDREA S AKURADA Z. Médico Jefe Unidad de Microbiología, Servicio Laboratorio Clínico D R. FRANCISCO S ILVA O. Médico Staff, Servicio Laboratorio Clínico D R. C LAUDIO S UAREZ S. Médico Staff, Servicio Laboratorio Clínico

MANUAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS DE EXÁMENES DE LABORATORIO

Revisión Jefe Laboratorio Clínico Prof. Dra. María E. Pinto C.

CÓDIGO

Fecha: : MAC-LA-TM-01-61

Validación Presidente CIIH Dra. Marcela Cifuentes D.

Aprobación Director Médico Dr. Carlo Paolinelli G.

Fecha:

Fecha: PRÓXIMA REVISIÓN: MARZO

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COLABORADORES El presente manual ha sido elaborado por un comité multidisciplinario del Hospital Clínico de la Universidad de Chile, compuesto por distintos profesionales del Servicio de Laboratorio Clínico y de los Laboratorios de Especialidad; entre ellos: BQ. Williams Acevedo M., Jefe Laboratorio de Medicina Molecular BQ. José Galaz R., Bioquímico Laboratorio de Medicina Molecular TM. Soledad Ripamonti Z., Tecnólogo Médico Laboratorio Inmunología TM. María Luisa Olea B., Tecnólogo Médico Laboratorio Inmunología Dra. Carmen Hurtado H., Jefe Laboratorio de Gastroenterología Dra. María Gabriela Muñoz G., Jefe Laboratorio de Biología Molecular, Sección Gastroenterología BQ. Mauricio Venegas S., Bioquímico Laboratorio de Gastroenterología Dr. Luis Carlos Gil la Rotta., Jefe Laboratorio de Parasitología Dr. Guillermo Conte L., Jefe Laboratorio Hematología Especialidad TM. Marianela Cuneo V., Tecnólogo Médico Laboratorio Hematología Especialidad Dr. Milton Larrondo L., Jefe Banco de Sangre TM. Elsa Orrego G., Tecnólogo Médico Banco de Sangre Mat. Norma Bolivar F., Matrona Jefe Puerperio EU. María Cristina Herrera R., Enfermera Coordinadora Intermedio Quirúrgico EU. Magyolue Quintana C., Enfermera Jefe Departamento de Cirugía y Traumatología Dr. Jorge Alfaro L., Jefe Laboratorio de Terapia Celular BQ. Claudio Pérez N., Bioquímico Laboratorio de Terapia Celular Dra. Carmen Romero O., Jefe Laboratorio de Endocrinologia y Biología de la Reproducción BQ. Jaime Espinoza R., Bioquímico Laboratorio de Endocrinologia y Biología de la Reproducción BQ. Verónica Tapia P., Bioquímico Laboratorio de Endocrinologia y Biología de la Reproducción TM. Egardo Caamaño R., Tecnólogo Médico Laboratorio de Endocrinologia y Biología de la Reproducción Dra. Patricia Sanz C., Jefe Laboratorio de Genética TM. Vera Daher N., Tecnólogo Médico Laboratorio de Genética Dra. Tirsa Saavedra U., Jefe Servicio Dermatología TM. Solange Zapata M, Tecnólogo Médico Laboratorio de Dermatología

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PRESENTACIÓN El Laboratorio asistencial a nivel de Hospital ha evolucionado en el tiempo a un Laboratorio altamente confiable y oportuno en sus respuestas. Su objetivo es apoyar eficazmente al equipo clínico permitiendo una atención ágil y de calidad concordante con el compromiso con clínicos y pacientes. Un Laboratorio Clínico puede tener la mejor tecnología y el equipo humano mejor entrenado, pero no podrá lograr un buen diagnóstico si no se cumplen los requisitos en la etapa preanalítica del proceso. Esto es la correcta selección de la muestra a estudiar, la mejor implementación de las condiciones de la toma de la muestra y el adecuado y oportuno transporte al Laboratorio. Esta es una etapa compleja y de gran importancia que debe llevarse a cabo con el cumplimiento riguroso de las normas establecidas por el Hospital. Las diferentes experiencias disponibles indican que los errores preanalíticos pueden significar el 60 - 70 % de todos los errores en el diagnóstico de laboratorio y que los esfuerzos en este aspecto pueden reducir significativamente la tasa general de errores. Los procesos de Acreditación de Instituciones de Salud otorgan una gran relevancia a la calidad en los procesos de Laboratorio Clínico. Es fundamental para este fin el diseño de Normas para la Toma de Muestra de Laboratorio, que reflejen tanto la mejor información nacional e internacional, como también la experiencia local en lo que se refiere a indicaciones, requisitos, condiciones y métodos en la recolección y transporte de las muestras clínicas. El texto que ahora ofrecemos representa a todos los laboratorios que realizan diagnóstico en el Hospital Clínico e incluye tanto aspectos generales de la Toma de Muestras como aspectos específicos de muestras procesadas en Unidades del Laboratorio Clínico y los diferentes laboratorios de especialidad Su preparación ha sido un trabajo largo y laborioso que se ha cumplido gracias al valioso trabajo del Comité editorial y en especial al Editor Asociado y de todos los colaboradores que contribuyeron con sus experimentados aportes. Creemos que el Manual será de ayuda para los equipos clínicos y de apoyo tanto del Hospital como de la Red y deberá contribuir también al refuerzo de la información referida a diagnóstico de Laboratorio que se entrega en la docencia a las diferentes Carreras de la Salud. Es también un aporte relevante a los esfuerzos que desarrolla el Hospital Clínico en lograr la mejor calidad institucional.

Dra. María Eugenia Pinto Jefe Servicio Laboratorio Clínico Editor

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Índice general 1. PR O C E DI M I E N T O S PA R A T O M A DE M U E ST R A S 1.1. INTRODUCCIÓN . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.2. PROPÓSITO . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.3. OBJETIVO . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.4. NORMATIVA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.5. DIRIGIDO A . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.6. RESPONSABLES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.7. SISTEMA PARA LA EXTRACCIÓN DE MUESTRAS DE SANGRE . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.8. RECOMENDACIONES GENERALES PARA LA TOMA DE MUESTRAS . . . . . . . . . . . . . . 1.9. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS DE: . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1. Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1.1. Punción Venosa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1.2. Punción Arterial . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1.3. Punción Cutánea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1.4. Extracción de Sangre desde un Dispositivo Intravascular . . . . . . . . . 1.9.1.5. Hemocultivos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.1.6. Hemocultivo Cuantitativo Pareado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2. Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.1. Orina Aislada o de Segundo Chorro . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.2. Orina por Recolector . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.3. Orina por Catéter Urinario a Permanencia o Sonda Foley . . . . . . . . . 1.9.2.4. Orina por Sondeo Vesical . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.5. Orina de Primer Chorro . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.6. Orina para Baciloscopia y Cultivo de Koch . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.7. Orina Post Masaje Prostático . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.2.8. Orina de 24 horas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.3. Deposición . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.3.1. Deposición Sin Medio de Transporte . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.3.2. Deposición Con Medio de Transporte (Coprocultivo) . . . . . . . . . . . 1.9.4. Secreciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.1. Secreción Conjuntiva . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.2. Secreción Ótica Externa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.3. Secreción Ótica Media . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.4. Nasal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.5. Aspirado Nasofaríngeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.6. Torulado Nasofaríngeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.7. Expectoración Espontánea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.8. Expectoración Inducida . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.9. Expectoración para Baciloscopia y Cultivo de Koch . . . . . . . . . . . . 1.9.4.10. Faríngea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.11. Aspirado Endotraqueal Cuantitativo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.12. Secreción Uretral . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.13. Secreción Post Masaje Prostático . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.14. Semen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.15. Flujo Vaginal y Secreción de Endocérvix . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.16. Secreción Endometrial . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL 1.9.4.17. Cultivo Perineal para Detección de Streptococcus Grupo B . . . . . . . . 1.9.4.18. Herida . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.19. Úlceras Necróticas y Escaras . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.4.20. Saliva . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5. Otros . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.1. Curva de Glucosa e Insulina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.2. Tiempo de Sangría . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.3. Líquido Cefalorraquídeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.4. Líquido Cavidad Peritoneal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.5. Líquido Cavidad Pleural . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.6. Líquido Amniótico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.7. Punta de Catéter o Técnica de Maki . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.8. Tejido Óseo (Médula Ósea) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.9. Piel . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.10. Pelo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.11. Uñas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.12. Mucosa Oral (Cromatina Sexual o Nuclear) . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.13. Intrademorreacción PPD (Derivado Proteico Purificado) . . . . . . . . . . 1.9.5.14. Intradermo Reacción DNCB (Dinitroclorobenceno) . . . . . . . . . . . . 1.9.5.15. Intradermoreacción con Suero Autólogo . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.16. Test de ACTH para Cortisol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.17. Test de Dexametasona para cortisol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.18. Test de Dexametasona-Desmopresina para Cortisol . . . . . . . . . . . . 1.9.5.19. Test de ACTH para 17-OH Progesterona . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.20. Test de Clonidina para Hormona de Crecimiento . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.21. Test de Tolerancia a la Glucosa para Hormona del Crecimiento . . . . . 1.9.5.22. Estudio D-Xilosa en Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.23. Estudio de D-Xilosa en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.24. Investigación de Fasciolasis o Distomatosis . . . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.5.25. Investigación de Oxiuros (Técnica de Graham) . . . . . . . . . . . . . . . 1.9.6. Vigilancia de Enterococcus Resistente a Vancomicina (ERV ) . . . . . . . . . . . . . .

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2. R OT U L A DO DE M U E ST R A S 2.1. PROCEDIMIENTO GENERAL DE ROTULACIÓN . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2. PROCEDIMIENTOS ESPECÍFICOS DE ROTULACIÓN . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.1. Drogas de Abuso . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.2. Rotulación HIV . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.3. Rotulación CARGA VIRAL . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.4. Rotulación Genotipificación VIH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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3. T R A N SP O R T E DE M U E ST R A S 3.1. INDICACIONES GENERALES PARA TRANSPORTE DE MUESTRAS . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2. INDICACIONES ESPECÍFICAS PARA TRANSPORTE DE MUESTRAS . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.1. Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.1.1. Transporte de Muestras Obtendidas por Punción Venosa . . . . . . . . . 3.2.1.2. Transporte de Muestra Jeringa Punción Arterial . . . . . . . . . . . . . . 3.2.1.3. Transporte Extracción de Sangre Dispositivo Intravascular . . . . . . . . . 3.2.2. Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.2.1. Orina Aislada para Orina Completa y Química de Orina . . . . . . . . . . 3.2.2.2. Orina Aislada para Urocultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.2.3. Orina para Baciloscopia y Cultivo de Koch . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.2.4. Orina de Recolección . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.2.5. Orina Sondeo Vesical . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.3. Deposición . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.4. Detección Cuantitativa de Grasa en Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.5. Líquidos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.5.1. Líquidos en general . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.5.2. Líquido Amniótico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.6. Piel y Tejidos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL . . . . . . . .

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5. EXAMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 5.1. EXÁMENES BIOQUÍMICOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.1. Perfil Bioquímico y Exámenes Relacionados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.2. Perfil Lipidico y Exámenes Relacionados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.3. Perfil Hepático y Exámenes Relacionados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.4. Electrólitos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.5. Marcadores Cardíacos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.6. Marcadores Tumorales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.7. Cuerpos Cetónicos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.8. Hormonas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.9. Marcadores Nutricionales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.10. Acido Láctico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.11. Creatinina y Clearance . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.12. Proteína C Reactiva . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.13. Amilasa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.14. Curva de Glucosa e Insulina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.15. Inmunoglobulina IgA Secretora . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.16. Examen de pH y Gases (Muestra Arterial o Venosa) . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.17. Antiestreptolisina O . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.18. Acilcarnitina (Método Espectrometría de Masas de Tandem) . . . . . . . . . . . . 5.1.19. Screening Neonatal Ampliado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.20. Magnesio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.21. Ácido Pirúvico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.22. Exámenes Especiales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.23. Determinaciones en Orina Aislada . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.24. Orina Completa y Sedimento Urinario . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.25. Determinaciones en Orina de 24 horas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.1.26. Determinaciones en Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2. NIVELES DE FÁRMACOS Y DROGAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.1. Drogas Terapéuticas en Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2. Tiempo de Muestreo Drogas Terapéuticas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.1. Niveles plasmáticos de Fenitoína . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.2. Niveles plasmáticos de Carbamazepina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.3. Niveles plasmáticos de Fenobarbital . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.4. Niveles plasmáticos de Ácido Valproico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.5. Niveles de Gentamicina y Amikacina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.6. Niveles de Vancomicina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.7. Niveles de Ciclosporina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.2.8. Niveles de Tacrolimus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.2.3. Drogas de Abuso en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.3. EXÁMENES HEMATOLÓGICOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.3.1. Hemograma-VHS y Recuentos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.3.2. Exámenes de Coagulación . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

91 93 93 93 94 94 95 95 95 96 96 96 97 97 97 98 98 99 99 100 100 101 101 102 103 104 105 106 107 107 107 107 107 108 108 108 108 108 109 109 110 110 110

3.2.7. 3.2.8. 3.2.9. 3.2.10. 3.2.11. 3.2.12.

3.2.6.1. Piel . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.2.6.2. Uñas micológico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Drogas de Abuso . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Cariograma y FISH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Muestras del Laboratorio de Terapia Celular . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Estudio de Fierro Sérrico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Trombofilia Hereditaria . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Estudio Genético de Hemocromatosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

4. C R I T E R I O S G E N E R A L E S DE R E C H A Z O DE M U E ST R A S 4.1. REQUISITOS DE CALIDAD DE LAS MUESTRAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4.1.1. Nivel de Muestra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4.1.2. Integridad de muestras . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4.1.3. Transporte adecuado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4.2. CAUSAS DE RECHAZO DE MUESTRAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL 5.3.3. Tiempo de Sangría . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.3.4. Eosinófilos Nasales - Orina - Bronquial . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4. EXÁMENES MICROBIOLÓGICOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.1. Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.1.1. Hemocultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.1.2. Hemocultivo Cuantitativo Pareado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.1.3. Antigenemia Citomegalovirus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.2. Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.2.1. Urocultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.2.2. Otros . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.3. Deposición Sin Medio de Transporte . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.4. Deposición Con Medio de Transporte (Coprocultivo) . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5. Muestras respiratorias . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.1. Secreción Nasal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.2. Secreción Faríngea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.3. Aspirado Nasofaríngeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.4. Torulado Nasofaríngeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.5. Expectoración . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.6. Expectoración para Baciloscopia y Cultivo de Koch . . . . . . . . . . . . 5.4.5.7. Expectoración Inducida . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.5.8. Aspirado Endotraqueal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6. Muestras genitales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.1. Secreción Uretral . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.2. Secreción Post Masaje Prostático . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.3. Semen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.4. Secreción de Endocérvix . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.5. Secreción Endometrial . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.6.6. Cultivo Perineal para Detección de Streptococcus Grupo B . . . . . . . . 5.4.7. Líquidos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.7.1. Líquido Cefalorraquídeo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.7.2. Líquido Amniótico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.7.3. Líquidos de Cavidades Estériles: Pericárdico, Peritoneal, Pleural, Ascítico y Articular . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8. Otras . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.1. Secreción Conjuntiva . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.2. Secreción Ótica Externa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.3. Secreción Ótica Media . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.4. Punta de Catéter o Técnica de Maki . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.5. Cultivo de hongos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.6. Cultivo Corriente . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.7. Cultivo de Anaerobios . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.4.8.8. PCR para Chagas y Toxoplasmosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5.5. EXÁMENES SEROLÓGICOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

110 111 111 111 111 111 112 112 112 112 113 113 114 114 114 115 116 116 117 117 117 118 118 118 118 119 119 119 120 120 121

6. EXAMENES OFRECIDOS POR LOS LABORATORIOS DE ESPECIALIDADES 6.1. BANCO DE SANGRE . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2. LABORATORIO DE CITOGENÉTICA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.1. Cariograma y FISH en Sangre Periférica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.2. Cariograma en Sangre de Cordón . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.3. Cariograma y FISH en Médula Ósea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.4. Cariograma en Restos de Aborto . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.5. Cariograma en Biopsia de Vellosidad Corial de Embrión Vivo . . . . . . . . . . . . 6.2.6. Cariograma en Biopsia de Piel . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.7. Cariograma en Líquido Amniótico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.8. Cariograma en Mortinato . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.9. Test de Transformación Linfoblástica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.2.10. Cromatina Sexual o Nuclear . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3. LABORATORIO DE DERMATOLOGÍA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL 6.3.1. Sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.1.1. Inmunofluorescencia Indirecta . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.2. Tejidos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.2.1. Inmunofluorescencia Directa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.3. Inmunoperoxidasa (Biopsia) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.4. PPD (Derivado Proteico Purificado). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.5. DNCB (DinitroClorobenceno) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.6. Tricograma . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.7. Examen Micológico Directo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.8. Búsqueda de Demodex . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.9. Examen Ácaro Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.10. Test de Tzanck . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.11. Cultivo para Hongos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.12. Prueba de Suero Autólogo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.3.13. Búsqueda de Parásitos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.4. LABORATORIO DE TERAPIA CELULAR . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.4.1. Exámenes Especiales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.4.2. Preparación de Productos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5. LABORATORIO DE ENDOCRINOLOGÍA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.1. Hormonas Reproductivas (sexuales e hipofisiarias) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.2. GH-DHEA-SHBG-Androstenediona . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.3. Prolactina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.4. IGF-1 e IGFBP-3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.5. 17-OH Progesterona . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.6. Cortisol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.7. Paratohormona (PTH) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.8. Renina Plasmática (ARP) y Aldosterona . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.9. TG-ATG-ATPO . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.10. Adrenocorticotropina (ACTH) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.11. Cortisol Libre Urinario (CLU) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.12. Aldosterona en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.13. TSH Neonatal y Fenilalanina (PKU) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.14. Pruebas Funcionales Endocrinas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.14.1. Test de ACTH para Cortisol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.14.2. Test de Dexametasona para Cortisol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.14.3. Test de Dexametasona-Desmopresina para Cortisol . . . . . . . . . . . . 6.5.14.4. Test de ACTH para 17-OH Progesterona . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.5.14.5. Test de Clonidina para Hormona de Crecimiento . . . . . . . . . . . . . 6.5.14.6. Test de Tolerancia a la Glucosa para Hormona de Crecimiento . . . . . . 6.6. LABORATORIO DE GASTROENTEROLOGÍA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.1. Estudio de Fierro Sérico o Cinética de Fierro . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.2. Amonio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.3. Ceruloplasmina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.4. Caroteno y Sobrecarga de Caroteno . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.5. Adenosindeaminasa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.6. Lipasa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.7. Estudio D-Xilosa en sangre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.8. Estudio D-Xilosa en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.9. Porfobilinógeno Urinario, Prueba Cualitativa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.10. 5 Hidroxi Indol Acético en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.11. Detección de Antígeno Helicobacter Pylori en Deposiciones . . . . . . . . . . . . 6.6.12. Detección Cuantitativa de Grasa en Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.13. Detección Cualitativa de Grasa en Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.14. Determinación Cuantitativa de Elastasa Fecal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.15. Virus de la Hepatitis C y/o Virus de la Hepatitis B . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.16. Estudio Genético de Hemocromatosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.17. Trombofilia Hereditaria . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.18. Detección de Anticuerpos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL 6.6.19. Toxoplasma Gondii . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.6.20. Serología para Marcadores Virales de Hepatitis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.7. LABORATORIO DE PARASITOLOGÍA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.7.1. Investigación de Fasciolasis o Distomatosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.7.2. Investigación de Oxiuros (Técnica de Graham) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.7.3. Parasitológico Seriado de Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.7.4. Estudio o Identificación de Gusanos (Entero Parásitos) . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8. LABORATORIO DE HEMATOLOGÍA ESPECIALIDAD . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.1. Hemograma y Recuentos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.2. Pruebas de Coagulación . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.3. Estudio de Von Willebrand y Factores de Coagulación . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.4. Tinciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.5. Estudios de Función Plaquetaria . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.6. Estudio de Trombofilia y Síndrome Antifosfolípidos . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.7. Estudios de Anemias . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.7.1. Cuerpos de Heinz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.7.2. Investigación de Drepanocitos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.7.3. Test de Ham y Sucrosa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.7.4. Resitencia Globular Osmótica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.8. Estudio de Fibrinólisis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.9. Test de Reptilasa . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.10. Retracción del Coágulo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.11. Estudio de Trombosis y Coagulación Intravascular Diseminada (CID) . . . . . . . 6.8.12. Viscosidad Sanguínea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.13. Estudio de Neutropenia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.14. Exámenes Especiales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.14.1. Anti X Activado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.14.2. Inhibidores Bethesda . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.8.15. Hemosiderina en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9. LABORATORIO DE INMUNOLOGÍA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.1. Cuantificación de Imunoglobulinas y Complemento . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.2. Estudio de Autoanticuerpos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.3. Marcadores Tumorales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.4. Estudio de Amiloide en Grasa Abdominal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.5. Detección de Antígeno Criptococo Neoformans . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.6. Estudio de Anticuerpos en Frío . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.7. Tipificación HLA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.8. Estudio de Función de Neutrófilos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.9. Estudio de Células de Lupus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.10. Poblaciones y Subpoblaciones Linfocitarias . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.11. Estudio de Proteínas de Bence Jones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.12. HIV o VIH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.13. Técnicas Electroforéticas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.14. Estudio de Líquidos Especiales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.9.15. Inmunofenotipo para Leucemias Agudas y Linfomas por Citometría de Flujo . . . 6.10. LABORATORIO DE MEDICINA MOLECULAR . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.10.1. Carga Viral . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.10.2. Genotipificación . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6.10.3. Extracción de ADN . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

7. ANEXOS 7.1. INSTRUCTIVOS PARA PACIENTES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.1. Indicaciones Generales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.2. Curva de Tolerancia a la Glucosa y Curva de Insulina . . . . . . . . . . . . . . 7.1.3. Glicemia o Insulina en Ayunas y Post- Prandial . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.4. Antígeno Prostático (PSA) Total y Libre . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.5. Prolactina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.6. Recolección de Orina de 24 horas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

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ÍNDICE GENERAL

7.2. 7.3. 7.4. 7.5.

7.6. 7.7.

7.8.

7.1.7. Recolección de Orina de 24 horas con Timol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.8. Catecolaminas y Acido Vainillilmandélico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.9. Eosinófilos Nasales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.10. Baciloscopia y Cultivo de Koch en Expectoración . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.11. 5 Hidroxi Indol Acético en Orina . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.12. D-Xilosa en Orina (Ambulatorio) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.13. Hemorragias Ocultas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.14. Depociciones Frescas (Leucocitos Fecales y Rotavirus) . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.15. Balance Graso . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.16. Fasciolasis o Distomatosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.17. Investigación de Oxiuros (Técnica de Graham) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.18. Parasitológico Seriado de Deposiciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.1.19. Flujo Vaginal (Indicaciones Generales) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . CONSENTIMIENTO INFORMADO VIH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . FLUJOGRAMA PACIENTES AMBULATORIOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . FLUJOGRAMA PACIENTES HOSPITALIZADOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . TIEMPOS DE RESPUESTA SLC . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.5.1. Unidad de Bioquímica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.5.2. Unidad de Hematología . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.5.3. Unidad de Microbiología . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . SOLICITUD DE DROGAS DE ABUSO . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.6.1. Cadena de Custodia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . CONTENEDORES DE MUESTRAS CLÍNICAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.7.1. Tubos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.7.2. Frascos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.7.3. Medio de Transporte . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.7.4. Otros . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . GLOSARIO DE TÉRMINOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

8. BIBLIOGRAFÍA

176 176 177 177 177 177 178 178 178 179 180 180 180 181 184 185 186 186 192 193 196 197 198 198 198 198 198 199 203

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©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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1.1. INTRODUCCIÓN El Laboratorio Clínico, (LC), cumple la función de análisis físico, químico y biológico de diversos componentes y productos del cuerpo humano. Estos análisis se deben desarrollar bajo condiciones de seguridad y ética, ya que los resultados contribuyen al diagnóstico y tratamiento de las diversas patologías por lo que, además, deben estar disponibles oportunamente a fin cumplir con las necesidades de todos los pacientes y del personal clínico responsable del cuidado de la salud humana. En el desarrollo de este proceso se consideran tres etapas: 1. Pre - analítica 2. Analítica 3. Post - analítica En la actualidad, el Laboratorio Clínico y laboratorios de especialidades reciben muestras procedentes desde la unidad de toma de muestras, servicios clínicos y, servicios externos periféricos. Se procesan muestras como sangre arterial, venosa, orina, deposiciones, expectoración, tejidos, exudados, etc., ya sean de pacientes adultos o pediátricos. La técnica para la obtención de ellas dependerá de las condiciones clínicas y físicas del paciente, pudiéndose obtener por punción directa, por técnica al vacío o con jeringa, o bien, a través de un dispositivo. Este Manual está orientada a la etapa pre analítica, ya que es competencia del personal que trabaja en los Servicios Clínicos y de Toma de Muestras, el proveer al laboratorio de muestras que cumplan con las condiciones técnicas adecuadas para su procesamiento. En este manual se indica, el examen solicitado, el laboratorio responsable del procesamiento, el propósito del examen, los contenedores necesarios, el procedimiento de obtención de muestras y comentarios específicos con relación al examen.

1.2.

PROPÓSITO

Proporcionar una herramienta de consulta y apoyo técnico para facilitar el trabajo del personal clínico de las distintas unidades en donde se tomen muestras para exámenes.

1.3.

OBJETIVO

Estandarizar la etapa pre-analítica de laboratorio en los Servicios Clínicos, Toma de Muestras y Centros externos del Hospital Clínico Universidad de Chile a fin de asegurar la calidad y la oportunidad de la toma de muestras para obtener resultados fidedignos.

1.4.

NORMATIVA

Toda muestra recepcionada en los Laboratorios del Hospital Clínico Universidad de Chile deberá cumplir con las siguientes especificaciones: La muestra llega transportada en contenedor cerrado. La muestra llega transportada en posición vertical. La muestra llega transportada según especificación de temperatura. La muestra es transportada en el rango de tiempo establecido. La muestra es adecuada según examen solicitado en la orden médica. El tubo viene con nivel de llenado según lo especificado. En lo referente a documentación se debe verificar que: La descripción del procedimiento escrito esté en un lugar visible.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Existe orden médica para el examen. La orden médica está completa. Se deja registro de la muestra recepcionada.

1.5.

DIRIGIDO A

Este manual se aplicará en todos los Servicios Clínicos, Toma de Muestras Central, Laboratorios de Especialidades y Centros Externos dependientes del Hospital Clínico Universidad de Chile.

1.6.

RESPONSABLES De la aplicación E nf ermeras M atronas M édi cos Tecnólogos médicos Ayudantes de enfermería. Ayudantes técnicos de Laboratorio

De la supervisión y evaluación T ecnól ogos médi cos de Laboratori o C l í ni co C omi té de cal i dad de Laboratori o C l í ni co C omi té de cal i dad de Laboratori os de E speci al i dades Enfermeras de tomas de muestras

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

1.7.

19

SISTEMA PARA LA EXTRACCIÓN DE MUESTRAS DE SANGRE

Para la obtención de muestras de sangre se puede utilizar el sistema tradicional (con jeringa), o el sistema al vacío (Vacutainer). Estos sistemas, según corresponda, se componen de los siguientes elementos:

SISTEMA AL VACÍO

SISTEMA TRADICIONAL

TUBO VACUTAINER:

JERINGA DESECHABLE:

Es un tubo para depositar la muestra de sangre.

Su capacidad de volumen dependerá de la cantidad de la muestra a extraer.

Cerrado al vacío, con o sin anticoagulante y su capacidad fluctúa entre 1,8 y 10 ml.

SISTEMA AL VACÍO

SISTEMA TRADICIONAL

AGUJA MÚLTIPLE:

AGUJA DESECHABLE:

Es una aguja específica para tomar muestras de sangre. Sirve para llenar varios tubos en la misma punción.

Para puncionar la vena o arteria, idealmente usar 21G.

SISTEMA AL VACÍO MARIPOSA VACUTAINER: Es una aguja corta con tubo extensor.

SISTEMA TRADICIONAL TUBO VACUTAINER: Es un tubo para depositar la muestra de sangre. Cerrado al vacío, con o sin anticoagulante y su capacidad fluctúa entre 1,8 y 10 ml.

SISTEMA AL VACÍO ADAPTADOR O CAMISA (HOLDER): Cilindro plástico, el cual permite fijar la aguja.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

1.8.

RECOMENDACIONES GENERALES PARA LA TOMA DE MUESTRAS Siempre utilizar sistema al vacío, excepto en caso de pacientes multipuncionados o con dificultad para puncionarlos, en cuyo caso se prefiere el sistema tradicional (jeringa con aguja o mariposa). Frente a un fracaso en la punción, se debe reintentar la punción en la otra extremidad, “NUNCA INTENTAR MÁS DE DOS VECES EN LA MISMA VENA O EN LA MISMA EXTREMIDAD ”. Ante esta situación, se debe solicitar ayuda a un tercero calificado. La secuencia de llenado de los tubos es la siguiente: 1º.-Tubos con anticoagulantes: primero pruebas de coagulación y luego otras muestras. 2º.-Tubos sin anticoagulantes. Los tubos con anticoagulante se deben mezclar por inversión suave. Registro del procedimiento • Registre el procedimiento en la ficha del paciente especificando fecha, hora, examen tomado, sitio de punción, cantidad de sangre extraída en ml. e identificación de la persona que realizó la punción. • Registre las muestras tomadas en el cuaderno de registro interno del servicio u otro sistema de registro. La

HEMÓLISIS

se previene:

• Usando una aguja lumen adecuado. • No puncionando donde exista hematoma anterior. • Retirando el torniquete antes de extraer la sangre. • Mezclando suavemente los tubos que contengan anticoagulante. • Vaciando la sangre por las paredes de éste, en caso de utilizar jeringa. El

HEMÁTOMA

se previene:

• Puncionando sólo la pared anterior de la vena (evitar atravesarla). • Quitando el torniquete antes de extraer la sangre. • Presionando suavemente el sitio de punción, una vez que se ha retirado la aguja, hasta que deje de salir sangre.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

1.9.

PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS DE:

1.9.1. Sangre 1.9.1.1.

Punción Venosa

O BJETIVO : Obtener a través de una punción una muestra de sangre venosa, adecuada en cantidad y calidad, para su posterior análisis en el laboratorio. C ODIFICACIÓN : 307011 V ENOSA A DULTOS , 307012 VENOSA NIÑOS Responsables de la ejecución Paci ente adul to Paci ente pedi átr i co E nf ermera E nf ermera capacitada en atenci ón pedi átri ca M atronas M atrona capacitada en atenci ón pedi átri ca Ayudante enfermería (Toma de muestra) Materiales P ACIENTE

A DULTO

G uantes de procedi mi entos Antiséptico para la piel (Alcohol 70º) T órul as l i mpi as T ubos según el ex amen A guj a múl ti pl e* C ami sa ( H ol der) * Jeri nga y aguj a Parche curita o cinta quirúrgica Riñón limpio o bandeja limpia T orni quete o l i gadura Caja desecho corto punzante Re ceptácul o para desechos Pin za Kel l y

P ACIENTE P EDIÁTRICO G uantes de procedi mi entos Antiséptico para la piel (Alcohol 70º) T órul as l i mpi as T ubos según el ex amen A guj a múl ti pl e* C ami sa ( H ol der) * M ari posa 23 o 25G ( según necesi dad) Jeringa y aguja Parche curita o cinta quirúrgica R i ñón l i mpi o o bandej a l i mpi a Torniquete o ligadura C aj a desecho corto punzante Receptácul o para desechos Pinza Kelly

* Sistema al vacío. Procedimiento Paciente adulto hospitalizado y/o ambulatorio Explicar al paciente claramente el procedimiento. Buscar al paciente en el sistema computacional. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. De contar con impresoras correspondientes, sacar los códigos de barra, con los cuales se rotulan los tubos. Lavarse las manos. Colocarse los guantes de procedimiento. Colocar el torniquete en el brazo, 7 a 10 cm. por sobre el lugar donde se puncionará, para favorecer el llene venoso. Pedir al paciente que empuñe la mano. Localizar una vena adecuada, que sea visible y fácilmente palpable.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Aplicar antiséptico con movimiento rotatorio del centro hacia la periferia, esperar que la piel esté seca. Estirar la piel, con la mano no dominante, para fijar la vena. Canalizar la vena con la aguja en la misma dirección de ella y, con el bisel hacia arriba y en ángulo de 45°. Soltar el torniquete, una vez canalizada la vena, y proceder a llenar los tubos correspondientes. En caso de utilizar jeringa aspirar suavemente, sin ejercer demasiada presión. Retirar el último tubo y posteriormente la aguja con la camisa (Holder), en el caso de sistema al vacío. Colocar un algodón seco sobre la zona puncionada y retirar la aguja aplicando presión suave. Dejar el algodón e instruir al paciente para mantener la presión por un par de minutos. Llenar los tubos, vaciando la sangre por las paredes de éstos (en caso de usar jeringa). Mezclar suavemente (8 veces) los tubos que contengan anticoagulante y aditivos. Rotular los tubos según se describe en el capítulo “Rotulación de Muestras” Colocar parche curita u otro en el sitio de punción. Descartar el material según norma. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Realizar registro correspondiente en orden médica (fecha, hora e identificación de quien tomó la muestra), y enviar las muestras con su respectiva orden al laboratorio. Entregar documentos correspondientes al paciente e informarle cuando y donde retirar los resultados.

Paciente pediátrico hospitalizado y/o ambulatorio Explicar el procedimiento al paciente en un lenguaje entendible de acuerdo a su edad y solicite su cooperación. Explicar el procedimiento a los padres o acompañantes y solicitar su cooperación al menos a uno, con el fin de inmovilizar al paciente, siempre y cuando su condición de salud y estabilidad emocional no interfiera con el procedimiento. Si el paciente no coopera, según su edad, debe asistir en el procedimiento al menos 3 personas. Verificar las órdenes de exámenes con los datos del paciente. Reunir el material necesario. Lavarse las manos. Usar guantes de procedimientos. Elevar la extremidad alrededor de 5 cm. para facilitar el llenado de la vena. Ligar, seleccionar el sitio de la punción y limpiar la piel con tórula con alcohol de 70°, desde el centro a la periferia, con movimientos rotatorios. Una vez seca la piel puncionar en dirección de la vena con el bisel hacia arriba en un ángulo de 30° con mariposa 23 ó 25G o aguja de 20 ó 21, esta última solamente para técnica de goteo, esperando llenar uno a uno los frascos. Al canalizar la vena aspirar con la jeringa, ajustada a la mariposa, suavemente hasta obtener la cantidad necesaria de muestra y luego suelte rápidamente la ligadura. Retirar la aguja de la vena rápido pero suavemente y aplicar compresión con tórula seca.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Llenar los tubos de exámenes. Rotular los tubos según se describe en el capítulo “Rotulación de Muestras”. Dejar de presionar el sitio de punción sólo una vez que se ha verificado el cese del sangramiento, protéjalo con una tórula y tela adhesiva hipoalergénica. Descartar el material corto punzante y los desechos según la norma. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Realizar registro correspondiente en orden médica (fecha, hora e identificación de quien tomó la muestra), y enviar las muestras con su respectiva orden al laboratorio. En caso de paciente ambulatorio, entregue documentos correspondientes al paciente e infórmele fecha y lugar de retiro de los resultados. Consideraciones Paciente Pediátrico Explicar el procedimiento al niño en un lenguaje entendible de acuerdo a su edad. Permitir la presencia de la madre o familiar siempre y cuando no interfiera en el procedimiento. Siempre contar con la ayuda de un tercero para inmovilizar al paciente. Realizar la punción en box o camilla según edad del niño, condición de salud, rechazo o dificultad para inmovilizar. Seleccionar el sitio de punción: vena visible y palpable, de preferencia en el pliegue del codo o en la mano. Como últimas alternativas las venas del pie, y finalmente en casos extremos yugular o arterial. Posterior a la punción y antes de que el niño se retire, revisar y evaluar la zona puncionada y dar las indicaciones a la madre. Si aparece equimosis colocar paños fríos alternados con paños tibios y aumentar la ingesta de líquidos por ese día. En el caso de niños menores de 3 años el procedimiento se hará con el sistema tradicional (jeringa y aguja o mariposa). No intentar más de dos punciones, si es necesario solicitar ayuda a un tercero. 1.9.1.2. Punción Arterial O BJETIVO : Obtener una muestra de sangre arterial, adecuada en cantidad y calidad, para ser analizada en laboratorio. C ODIFICACIÓN : 307009 A RTERIAL ADULTOS, 307010 ARTERIAL EN NIÑOS Responsables de la ejecución Enfermera y/o Matrona.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Materiales P ACIENTE

A DULTO

Riñón limpio o bandeja limpia. Guantes de procedimientos. T órul as l i mpi as. Antiséptico para la piel (alcohol 70º). Jeringa de gases. (con heparina liofilizada). Aguj a 21G . U ni dad ref ri gerante. T el a adhesiva. C i nta para rotul ar. Caja desecho material corto punzante. Pi nza K el l y. Receptácul o para desecho.

P ACIENTE P EDIÁTRICO Riñón limpio o bandeja limpia. Guantes de procedimiento. T órul as l i mpi as. Antiséptico para la piel (alcohol 70°). Jeringa de gases. M ari posa N ° 23 ó 25. H i el o o uni dad ref ri gerante. T el a mi cropore. C i nta para rotul ar. Caja desecho material corto punzante. Al mohadi l l a G asas estéri l es. Jeringas de 3 ó 5 cc. Pinza Kelly. Receptáculo para desecho.

Procedimiento Paciente adulto hospitalizado y/o ambulatorio Explicar al paciente el procedimiento. Verificar los exámenes con la orden en el sistema computacional y obtener los códigos de barra para rotular. Lavarse las manos. Colocarse los guantes de procedimiento. Seleccionar el sitio de punción, de preferencia la arteria radial de la muñeca, coloque la muñeca ligeramente extendida y en rotación externa. Realizar el test de Allen, si es primera vez que se punciona arteria al paciente. Aplicar el antiséptico (Alcohol 70º), con movimiento rotatorio del centro hacia fuera. Palpar la arteria. Una vez identificada, puncionar en ángulo de 30 a 45º, con el bisel hacia arriba. Observar si refluye sangre y el color de ésta (arterial = rojo rutilante). Realizar cambio de jeringa, cuidadosamente, en caso de que el paciente tenga otros exámenes. Retirar la aguja y ejercer presión en el sitio de punción, hasta que deje de salir sangre (se recomienda 3 minutos). Indicar al paciente que mantenga la presión en el sitio de punción. Retirar la aguja con pinza Kelly, elimine las burbujas de aire de la jeringa y coloque el tapón de goma en la punta de la jeringa. Dejar la jeringa en contacto con la unidad refrigerante y envíe a laboratorio inmediatamente. Colocar algodón con tela transpore ejerciendo firme presión sobre la zona puncionada. Rotular los tubos según se describe en el capítulo “Rotulación de Muestras” Descartar el material según norma. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Realizar el registro correspondiente: hora, fecha, FiO2, e identificación del profesional que tomó la muestra, en orden médica. Entregar los documentos correspondientes al paciente e infórmar dónde y cuándo retirar los resultados. En caso de fracaso de la punción intentar en el pliegue del codo (arteria humeral) y/o solicite ayuda.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Paciente pediátrico hospitalizado o ambulatorio Explicar el procedimiento al paciente si su edad y comprensión lo permiten, y solicitar su colaboración para que no se mueva. Explicar al familiar el procedimiento y solicitar, al menos a uno, si su condición de salud y estabilidad emocional lo permiten, que colabore en la inmovilización del paciente y siempre que no interfiera en el examen. Para examen por punción Proceda con la punción según se detalla en el procedimiento anterior para toma de muestra arterial en paciente adulto hospitalizado y/ambulatorio. Utilizar materiales especifícos para punción pediátrica, según se definio previamente. Para extraer muestra de línea arterial Lavarse las manos. Colocarse guantes para procedimiento. Limpiar el acceso a la entrada, cerrando la llave de paso hacia la solución de la línea arterial, con una gasa estéril con alcohol 70 %. Abrir la tapa e inserte una jeringa de 3cc y aspire suavemente la cantidad de sangre equivalente al espacio muerto del set arterial. Sin cerrar la llave rápidamente cambie jeringa para obtener por aspiración suave la muestra deseada. Realizar cambio de jeringa, cuidadosamente, en caso de que el paciente tenga otros exámenes. Infundir solución fisiológica estéril desde el matraz con presurizador hasta la arteria, para limpiar el trayecto. Cerrar la llave 3 pasos hacia el catéter arterial irrigando solución fisiológica para limpiar el sitio de entrada, evitando la formación de coágulos. Restaurar la posición permeable del catéter arterial dejando el off en la entrada de la llave. Cambiar la tapa y protector de gasa estéril, si fuera necesario. Eliminar las burbujas de aire de la jeringa de gases y mezclar suavemente con el anticoagulante. Descartar el material desechable y corto punzante. Retirar los guantes. Lavarse las manos. Anotar en la orden la temperatura y FiO2 del paciente. Registrar en la ficha clínica la hora, fecha, tipo de examen, técnica utilizada (punción arterial o desde línea arterial), persona responsable, FiO2 utilizada y cantidad de la muestra en ml. Enviar las muestras al laboratorio. Registrar el examen en el cuaderno de toma de muestra del servicio. MANTENGA LA MUESTRA PARA GASES EN HIELO

1.9.1.3.

.

Punción Cutánea

C ODIFICACIÓN : 307014 CAPILAR A DULTO , NIÑOS , LACTANTES

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Para Monitoreo de Exámenes (Ej. glucosa, colesterol, etc.) O BJETIVO : Obtener una gota de sangre, a través de punción cutánea, para determinar en forma inmediata el valor del examen solicitado (glicemia, colesterol, hematocrito, etc.). Responsable de la ejecución Paci ente adul to Enf ermera M atronas Ayudante enfermería (toma de muestra)

Paci ente pedi átr i co Enf ermera capaci tada en atenci ón pedi átri ca M atrona capaci tada en atenci ón pedi átri ca

Materiales Fotómetro de reflexión (Ej. Glucómetro) Tira reactiva. Tórulas secas o humedecidas con agua. Percutor y lancetas. Procedimiento Explicar al paciente claramente el procedimiento. Lavarse las manos. Usar guantes de procedimientos. Preparar el equipo para el procedimiento según las instrucciones del fabricante. Seleccionar la zona a puncionar según las condiciones del paciente. Preferentemente seleccionar los dedos de las extremidades superiores. Limpiar la zona con una tórula con alcohol. Realizar la punción en el costado del dedo, obtenga una gota de sangre adecuada y deposítela en la zona indicada de la tira. Verifique que la cantidad es suficiente para realizar la lectura. Eliminar los materiales, limpie el equipo y guárdelo. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Registrar el resultado obtenido en la ficha clínica o en orden médica respectivamente. Observaciones No comprimir el sitio de punción para obtener mayor flujo. 1.9.1.4. Extracción de Sangre desde un Dispositivo Intravascular O BJETIVO : Obtener a través de un dispositivo intravascular, una muestra de sangre venosa y/o arterial adecuada, en cantidad y calidad, para su posterior análisis en laboratorio. Responsables Enfermera y/o Matrona.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Materiales Guantes estériles. Antiséptico (Alcohol 70 %). Tórulas limpias. Tubos adecuados (según el examen). 3 Jeringas y aguja. Solución fisiológica 20cc. Riñón limpio o Bandeja limpia. Caja desecho corto punzante. Receptáculo para desechos. Unidad refrigerante (en caso de muestra para amonio y/o gases y pH). Cinta para rotular. Procedimiento Explicar al paciente el procedimiento. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. Preparar la bandeja del procedimiento. Lavarse las manos. Colocarse los guantes. Aplicar antiséptico en los bordes del dispositivo que tomará contacto con la jeringa. Conectar la jeringa al dispositivo y aspirar suavemente (desde el cabo distal de CVC o la llave de paso más cercana a la línea arterial), aproximadamente 5 cc. para eliminar la sangre mezclada. Se debe suspender las infusiones momentáneamente por los demás cabos de CVC, a excepción de las Drogas Vasoactivas (DVA). Aspirar suavemente, con la segunda jeringa, la cantidad de muestra deseada. Llenar los tubos, vaciando la sangre por las paredes de éstos. Utilice la unidad refrigerante cuando corresponda. Mezclar por inversión suavemente según corresponda. Permeabilizar el dispositivo con la tercera jeringa que contiene solución fisiológica (mínimo 5 cc.), reinstale infusiones o deje sellado el sistema del dispositivo. Descartar el material según norma. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Realizar el registro correspondiente en orden médica (fecha, hora e identificación de quien tomó la muestra). Enviar las muestras, con su respectiva orden, al laboratorio. 1.9.1.5. Hemocultivos O BJETIVO : Determinar agente etiológico en pacientes con sospecha de bacteriemia o fungemia, en pacientes febriles, con cuadro séptico de origen no aclarado, fiebre prolongada, sospecha de endocarditis u otra patología que lo amerite.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS C ODIFICACIÓN : 307013 CON TÉCNICA ASÉPTICA PARA HEMOCULTIVO Responsables de la ejecución Enfermera y/o matrona. Ayudante de enfermería (apoya el procedimiento). Materiales Guantes estériles. Alcohol de 70º. Aguja Jeringa Tórulas de algodón. Ligadura Receptáculo para desechos. Receptáculo para cortopunzantes. Frascos de hemocultivos. Riñón estéril. Jabón Sistema de toma de muestras al vacío*. * El sistema de toma de muestras al vacío no esta recomendado por el fabricante, pero de ser necesario su uso, el responable de la punción será el encargado de verificar que se cumpla con los volúmenes que se detallan más abajo. Procedimiento Explicar al paciente claramente el procedimiento. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. Reunir el material necesario para el procedimiento. Lavar manos según procedimiento de lavado clínico. Seleccionar el sitio de la punción y limpiar la piel con con agua y jabón. Lavar manos según procedimiento de lavado quirúrgico. Realizar antisepsia con alcohol 70 % desde el centro a la periferia, con movimientos rotatorios. Ligar 15 cm. sobre el sitio a puncionar evitando el contacto con la región preparada. Colocar guantes estériles. E NFERMERA : Realizar punción con el sistema al vacio o jeringa-aguja. Extraer la sangre en las siguientes cantidades: • Adultos y niños mayores a 40 Kg de peso: 8-10 cc de sangre por botella. • Niños entre 15-40 Kg de peso: 5-10 cc de sangre por botella. • Niños entre 1-6 años de edad: 1-3 cc de sangre por edad.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS • Neonatología: 0.5-1.5 cc de sangre por botella. Retirar ligadura y comprimir el sitio de punción. A YUDANTE : • Retirar el sello del frasco. • Descontaminar tapón con alcohol 70 %. • Presentar el frasco a la enfermera. E NFERMERA : Pinchar el tapón e inyectar la sangre según los volumenes indicados previamente. Mantener los frascos a temperatura ambiente hasta completar el set. Eliminar el material cortopunzante según norma. Retirar guantes y lavar manos. Rotular frascos y consignar en la orden hora de la toma de muestra y profesional responsable. Registrar procedimiento. Comentarios En caso de tomar otros exámenes junto al hemocultivo, la primera muestra debe ser para el hemocultivo, con el fin de no contaminar la muestra ni la aguja de extracción. El número de Hemocultivos es de dos frascos por paciente. Cada frasco debe provenir de punciones en zonas distintas. En caso de sospecha de endocarditis bacteriana se toman dos hemocultivos y si a las 24 horas son negativos se toman otros dos. Evitar toser, hablar y estornudar mientras dure el procedimiento o utilice mascarilla. La mantención de los frascos en los servicios clínicos es a temperatura ambiente. 1.9.1.6. Hemocultivo Cuantitativo Pareado O BJETIVO : Se utiliza para diferenciar bacteremias cuya posible causa es un catéter venoso central, de otras de distinto origen, en pacientes portadores de CVC sin necesidad de retirarlo. Responsable de la ejecución Enfermera y/o matrona. Ayudante de enfermería. Materiales Guantes estériles. Alcohol de 70º. Aguja Jeringa heparinizada. Tórulas de algodón. Ligadura Receptáculo para desechos. Receptáculo para corto punzantes. Heparina y tapas estériles.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Procedimiento IMPORTANTE : Antes de iniciar el procedimiento confirme que al paciente se le han tomado hemocultivos tradicionales durante el mismo día, de lo contario, tome hemocultivos según procedimiento Explicar al paciente claramente el procedimiento. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. Reunir el material necesario para el procedimiento. Lavar manos según procedimiento de lavado clínico. Seleccionar el sitio de la punción y limpie la piel con con agua y jabón. Lavar manos según procedimiento de lavado quirúrgico. Realizar antisepsia con alcohol 70 % desde el centro a la periferia, con movimientos rotatorios. Ligar 15 cm. sobre el sitio a puncionar evitando el contacto con la región preparada. Colocar guantes estériles. ENFERMERA Y /O MATRONA :

Realizar punción periférica:

• Utilizar una jeringa de gases. • Extraer 2 cc. para paciente adulto o pediátrico y 1 cc. para paciente de neonatología. • Eliminar aguja en receptáculo para material cortopunzante. • Tapar con tapa estéril. A YUDANTE : Rotular con los datos del paciente indicando que se trata de sangre periférica. ENFERMERA Y/O MATRONA: Realizar

punción del catéter venoso central:

• Lavar manos según procedimiento de lavado quirúrgico. • Colocar guantes estériles. • A través del catéter aspirar con jeringa sin heparina 0,2 cc. de sangre si se trata de niños o neonatos y eliminar. • Si se trata de pacientes adultos aspirar 0,5 cc. de sangre y eliminar. • Con jeringa heparinizada aspirar 2 cc. en adultos y niños. • En caso de neonatos aspirar 1 cc. de sangre. • Eliminar aguja en receptáculo para material cortopunzante. • Tapar con tapa estéril. A YUDANTE : Rotular con los datos del paciente indicando que se trata de sangre de catéter venoso central y el lumen al cual corresponde. Retirar guantes y lavar manos. Registrar procedimiento. Comentarios En el caso de cateteres con más de un lumen, la toma de muestras se realiza siempre del lumen para nutrición parenteral y del lumen más utilizado para otros fines. En caso de no existir un lumen para nutrición parenteral tomar sólo del lumen más utilizado. Evitar toser, hablar y estornudar mientras dure el procedimiento

1.9.2.

Orina

1.9.2.1. Orina Aislada o de Segundo Chorro O BJETIVO : Obtener una muestra de orina en cantidad y calidad adecuadas para su análisis en laboratorio.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Responsable de la ejecución Enfermeras y/o Matronas. Ayudantes de Enfermería. Materiales PACIENTE A DULTO Para aseo genital: - Tórulas limpias. - Solución jabonosa. - Agua limpia, tibia. - Guantes de procedimientos. - Bandeja limpia.

Para la extracción de orina: - Tórulas limpias. Riñón estéril. - Frascos estéril para urocultivo. - Guantes para procedimientos.

Otros: - Cinta para rotular.

Procedimiento Paciente adulto hospitalizado y ambulatorio Explicar el procedimiento al paciente. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. Preparar la bandeja del procedimiento. Lavarse las manos antes y después del procedimiento clínico. Usar guantes de procedimiento. Realizar aseo genital que incluya zona inguinal, con agua y jabón. No use antisépticos. Mujeres: Separar los labios mayores y limpiar con la tórula mojada, desde adelante hacia atrás, en un solo movimiento por cada tórula y luego enjuague con agua. Coloque tapón vaginal, ante presencia de menstruación o flujo vaginal. Hombres: Desplazar el prepucio hacia atrás en los hombres y limpiar con una tórula en un movimiento giratorio, sin pasar la misma por el mismo lugar. Enjuague con agua. Indique al paciente lo siguiente: • Abra el frasco entregado, sin tocar el interior con las manos. • Orine el primer chorro en el inodoro. • Detenga la micción. • Continue orinando directamente en el frasco entregado (segundo chorro). • Tape el frasco y entreguelo al personal que le dio las indicaciones. Retirarse los guantes y lávese las manos. Identificar el frasco con los datos correspondientes del paciente. Enviar la muestra al laboratorio. VER TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE EXAMEN . 1.9.2.2. Orina por Recolector O BJETIVO : Obtener una muestra de orina en cantidad y calidad adecuadas para su análisis en laboratorio. Responsable de la ejecución Enfermeras y/o Matronas. Ayudantes de Enfermería.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Materiales PACIENTE P EDIÁTRICO Para aseo genital: - Tórulas limpias. - Solución jabonosa. - Agua limpia, tibia. - Guantes de procedimientos. - Bandeja limpia.

Para la extracción de orina: - Tórulas limpias. - Recolector de orina pediátrico. - Frascos estéril para urocultivo. - Guantes para procedimientos. - Jeringa de 10 cc. - Alcohol de 70°.

Otros: - Cinta para rotular.

Procedimiento Paciente pediátrico hospitalizado y ambulatorio Explicar el procedimiento al paciente y/o familiar. Lavarse las manos. Colocarse guantes. Realizar aseo genital con agua y jabón suave, que incluya zona inguinal. No use antisépticos. Mujeres: Separar los labios mayores y limpiar con la tórula mojada, desde adelante hacia atrás, en un solo movimiento por cada tórula y luego enjuague con agua. Hombres: desplazar el prepucio hacia atrás y limpiar con una tórula en un movimiento giratorio, sin pasar la misma por el mismo lugar. Enjuague con agua. Secar cuidadosamente y colocar el recolector. Si es necesario fije con tela micropore (papel). Indicar a la madre que le coloque pañal suelto y que lo mantenga en posición vertical para evitar filtración de orina. Tomar la muestra, cuando el niño haya orinado. Vaciar la orina en el frasco estéril, como mínimo 1 ml. para urocultivo y 10 ml. para otros exámenes. Retirarse los guantes y lávese las manos. Identificar el frasco con los datos correspondientes del paciente. Enviar la muestra al laboratorio.

VER TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE EXAMEN .

IMPORTANTE: Cambiar el recolector cada 30 minutos para urocultivo y cada una hora para otro tipo de examen, realizando nuevamente el procedimiento de aseo genital completo. 1.9.2.3.

Orina por Catéter Urinario a Permanencia o Sonda Foley

O BJETIVO : Obtener muestra de orina aséptica a través de un catéter vesical. Responsable de la ejecución Enfermera o Matrona. Ayudante de enfermería. Materiales Para aseo genital: T órul as l i mpi as. Solución jabonosa. Guantes de procedimientos. Agua limpia, tibia. Bandeja limpia.

Para la extracción de orina: A nti sépti co Jeringa y aguja N° 24. Tórulas limpias. Frascos de exámenes. Guantes para procedimientos.

Otros: C i nta para rotul ar.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente, si su edad y nivel de entendimiento lo permite. Si es niño, explicar el procedimiento a sus padres y solicitar, al menos a uno de ellos, que colabore para contenerlo y tranquilizarlo. Verificar las órdenes de exámenes, con los registros del paciente. Preparar la bandeja con el material necesario para el procedimiento. Lavarse las manos con procedimiento clínico. Colocarse guantes para procedimientos. Limpiar con antisépticos la zona proximal de la sonda en el sitio de bifurcación y espere unos minutos para que el antiséptico se seque. Puncionar con la jeringa y la aguja N°24 en el sitio más proximal al meato urinario cuidando de no puncionar el cuff. Vaciar la muestra en los frascos respectivos según tipo de examen. Rotular los frascos de exámenes con el nombre y los 2 apellidos. Descartar el material. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Registrar en orden médica (fecha, hora e identificación de quien tomo la muestra). Completar el registro de la toma de muestra en la ficha clínica y en el cuaderno del servicio. Enviar la muestra al laboratorio lo antes posible. EXAMEN .

VER TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE

1.9.2.4. Orina por Sondeo Vesical O BJETIVO : Obtener una muestra de orina para estudio físico - químico y/o microbiológico a través de sondeo vesical. Responsable de la ejecución Enfermeras o Matronas. Ayudantes de enfermería. Materiales Para aseo genital: Tórulas limpias Solución jabonosa Agua limpia, tibia Guantes de estériles Bandeja limpia

Para la extracción de orina: Equipo de sondeo vesical (riñón estéril, paño perforado, tórulas estériles). Sonda vesical Nº 12 a 16 o según necesidad, preferentemente Nº 12 Tórulas limpias. Frascos de exámenes Vaselina líquida estéril (ampolla) Frascos para orina (urocultivo – orina completa) Cinta de rotular Guantes estériles

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Verificar los exámenes solicitados en la orden médica. Preparar la bandeja del procedimiento. Lavarse las manos. Colocarse guantes de procedimiento. Realizar el procedimiento con la colaboración de un Ayudante de enfermería. Realizar aseo genital (enfermera o matrona) con agua y jabón, que incluya zona inguinal. No use antisépticos. Mujeres: separar los labios mayores y limpiar con la tórula mojada, desde adelante hacia atrás, en un sólo movimiento por cada tórula y luego enjuague con agua. Hombres: desplazar el prepucio hacia atrás y limpiar con una tórula en un movimiento giratorio, sin pasar la misma por el mismo lugar. Enjuague con agua. Lavarse las manos con jabón antiséptico. Colocarse los guantes estériles y reciba los materiales requeridos, presentados por la ayudante. Colocar el paño perforado en la zona genital. Lubricar la sonda con vaselina líquida estéril, cuidando mantener la asepsia. En el caso de la mujer ubique el meato urinario separando los labios menores e introduzca la sonda cuidando que no toque los bordes de los labios o la vagina. Introducir la sonda suavemente hasta que comience a salir orina dejando escurrir el primer chorro. Llenar los frascos que le presenta la ayudante de enfermería, primero el de urocultivo y luego el de orina completa . Retirar la sonda, vaciando primero la vejiga si es necesario. Descartar el material. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular los frascos con los datos del paciente. Realizar los registros correspondientes en la orden médica y la ficha clínica del paciente. Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible. EXAMEN .

VER TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE

1.9.2.5. Orina de Primer Chorro O BJETIVO : Identificar agente etiológico de cuadro sugerente de uretritis. Responsable de la ejecución Enfermeras o Matronas. Ayudantes de enfermería.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Materiales Algodón, agua, jabón. Guantes de procedimiento. Frasco boca ancha, tapa rosca roja. Procedimiento Reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. En la mujer, separar cuidadosamente los labios mayores y deslizar las tórulas con agua desde adelante hacia atrás sin volver. Cada tórula se debe utilizar una vez. En el hombre, retraer el prepucio y asear el glande usando las tórulas con agua, desde la uretra hacia el prepucio. Cada tórula se debe utilizar sólo una vez. El prepucio debe mantenerse retraído hasta la obtención de la muestra. Indicar al paciente que orine 10 a 20 ml en frasco de boca ancha (idealmente 1ª orina de la mañana). Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular los frascos con los datos del paciente. Realizar los registros correspondientes en la orden médica y la ficha clínica del paciente. Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible. VER

TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE

EXAMEN.

1.9.2.6. Orina para Baciloscopia y Cultivo de Koch O BJETIVO : Detectar Mycobacterias en la orina de pacientes con sospecha de tuberculosis renal. Responsable Enfermeras o Matronas. Ayudantes de enfermería. Materiales Algodón, agua, jabón y un riñón. Guantes de procedimiento. Frasco seco y estéril protegido de la luz, con tapa hermética. Procedimiento Seguir procedimiento indicado para toma de muestras de orina aislada o de segundo chorro. Consideraciones Una vez tomada la muestra proteger de la luz con papel oscuro. Obtener la 1ª orina de la mañana, de no ser posible el paciente debe abstenerse de orinar durante 3 horas previo a la toma de muestra. No forzar la obtención de la muestra mediante ingestión de líquidos ya que esto diluye la orina, alterando el recuento de microorganismos. Volumen adecuado de muestra: 50 ml (mínimo 15 ml).

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS La orden de examen debe consignar el método mediante el cual se obtuvo la muestra, la hora de obtención y la presencia de embarazo o patología urinaria. El estudio para Mycobacterias debe solicitarse explícitamente en la orden. Deben procesarse 6 muestras en días seguidos. Debe quedar registrado si se trata de un paciente virgen a tratamiento, en caso de un antes tratado, indicar si es recaída, abandono o fracaso de tratamiento, indicando en estos últimos cuales fueron las drogas utilizadas.

1.9.2.7. Orina Post Masaje Prostático O BJETIVO : Detectar la presencia de bacterias causantes de uretritis. No se aplica en general para Chlamydia trachomatis , Ureaplasma urealyticum ni Mycoplasma hominis. Responsable Médico y Ayudante de enfermería. Materiales Algodón, agua, jabón y un riñón. Guantes de procedimiento. Frasco seco y estéril (tapa roja). Procedimiento AYUDANTE : Reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. Colocarse guantes, realizar aseo genital con abundante agua y jabón. Retraer el prepucio y asear el glande usando las tórulas con agua, desde la uretra hacia el prepucio. Cada tórula se debe utilizar sólo una vez. El prepucio debe mantenerse retraído hasta la obtención de la muestra. MÉDICO :

Lavarse las manos. Colocarse los guantes. Mediante un tacto rectal realizar masaje prostático, posteriormente indicar al paciente que orine y recolectar 10 ml de orina en frasco estéril. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. AYUDANTE :

Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular los frascos con los datos del paciente. Realizar los registros correspondientes en la orden médica y la ficha clínica del paciente. Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible. VER

TRANSPORTE DE MUESTRA SEGÚN TIPO DE

EXAMEN.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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1.9.2.8. Orina de 24 horas O BJETIVO : Obtener una muestra homogénea de orina de 24 hrs. para ser analizada en laboratorio, según el examen solicitado. Responsables de la ejecución Enfermera, matrona, ayudante de enfermería o pacientes ambulatorios. Materiales Guantes de procedimientos. Frascos de vidrio (paciente hospitalizado). Contenedor plastico o frasco de recoleccion de 5 litros (paciente ambulatorio). Frascos tapa azul o frasco no estéril. Procedimiento paciente hospitalizado Verificar el examen solicitado. Seleccionar los frascos de vidrio para recolección de orina y rotúlelos con los datos del paciente, la hora de inicio y término de la recolección. Establezca la hora de inicio de la recolección, idealmente en las primeras horas de la mañana. Haga orinar al paciente, elimine la orina emitida y registre en el frasco la hora establecida para el inicio de la recolección hasta completar las 24 hrs. Luego comience a juntar la orina en los frascos de vidrio (limpios). Se juntará toda la orina hasta completar las 24 hrs., incluyendo lo que orine hasta esa hora. En caso de necesidad de defecar, indique al paciente que primero debe orinar. Homogenizar la orina, medir el volumen total recolectado, tomar una muestra de 60 cc. en el frasco de orina, no estéril. En caso de existir más de un frasco de vidrio se debe mezclar la orina de ambos frascos, homogeneizándola y luego medir el volumen total y tomar una muestra en el frasco de orina. Rotular el frasco de orina con los datos del paciente, incluyendo el volumen total de orina recolectado. Realizar el registro correspondiente. Enviar al laboratorio. Procedimiento paciente ambulatorio Entregar material (contenedor e instructivo), según examen solicitado. Al recibir la muestra, registre los datos del paciente en orden médica , con fecha, volumen total y de ser necesario peso y talla. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Homogenizar la orina, medir el volumen total recolectado, tomar una muestra de 60 cc. en el frasco de orina, no estéril. En caso de existir más de un frasco de vidrio se debe mezclar la orina de ambos frascos, homogenizándola y luego medir el volumen total y tomar una muestra en el frasco de orina. Extraer una muestra de 60 cc. de orina y deposítela en frasco no estéril.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Etiquetar la muestra. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Trasladar al laboratorio.

1.9.3.

Deposición

1.9.3.1. Deposición Sin Medio de Transporte O BJETIVO : Estudio complementario de cuadros de diarrea aguda. Materiales Guantes para procedimientos. Espátula o baja lengua. Tórula Frasco limpio y seco o tubo estéril. Responsable de la ejecución Enfermera, ayudante de enfermería. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos y colocarse los guantes. Solicitar al paciente, cuando manifieste su deseo de defecar, que no mezcle la deposición con orina. Con la deposición recién emitida depositar, con la ayuda de una espátula (o bajalenguas), una cantidad aproximadamente de 1 a 3 gramos en un frasco limpio y seco. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Enviar al laboratorio. 1.9.3.2. Deposición con Medio de Transporte (Coprocultivo) O BJETIVO : Detección de microorganismos causantes de diarrea aguda, entre ellos: Salmonella spp , Shigella spp , Yersinia spp, Escherichia coli diarreogénicas y Vibrio spp. Responsable de la ejecución Enfermera Ayudante de Enfermería. Materiales Tórulas Medio de transporte Cary Blair. Guantes de procedimiento.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Procedimiento Informar al paciente del procedimiento. Reunir el material. Lavarse las manos y colocarse los guantes. Recoger con la tórula una cantidad de deposición recién emitida, si hay presencia de mucosidad o sangre tomar la muestra de dicha zona. En caso de torulado rectal introducir 2 cms. por el ano rotándola en forma circular. Introducir la tórula en medio de transporte Cary Blair. Retirarse los guantes. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. Enviar al laboratorio.

1.9.4.

Secreciones

O BJETIVO : Obtener muestras, según se solicite, adecuadas en cantidad y calidad para su análisis en laboratorio en busca de agentes patógenos. Responsable de la ejecución Enfermera Matrona Ayudante de Enfermería. Médico Kinesiologo, sí corresponde. 1.9.4.1. Secreción Conjuntiva Materiales Guantes para procedimientos. Suero fisiológico estéril. 2 ó 4 tórulas de algodón estéril y tubo estéril. Medio de transporte Stuart. Láminas para Chlamydias. Procedimiento Reunir el material, lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Informar al paciente del procedimiento. Humedecer una tórula en suero fisiológico estéril. Limpiar la piel que rodea el ojo con suero fisiológico estéril. Deprimir el párpado inferior del ojo afectado y frotar la tórula por el fondo de saco conjuntival inferior en el ángulo interno del ojo. Introducir la tórula en tubo con medio de transporte Stuart.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Repetir el procedimiento con otra tórula para preparar frotis para Chlamydia. Retirarse los guantes. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. Enviar al laboratorio.

Detalle del portaobjeto o lámina para Chlamydias y la preparación del frotis:

Al pasar el dedo por la superficie de la lámina notará una textura porosa y un cambio en la profundidad del círculo central, lo que indica que es el lado correcto para depositar la muestra. Una vez que disponga de la tórula con la muestra, frote la misma en el círculo central, como se muestra en la imagen. 1.9.4.2. Secreción Ótica Externa Materiales Guantes para procedimientos. 2 tórulas estériles. Algodón Suero fisiológico. Medio de transporte Stuart. Procedimiento Reunir el material, lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Informar al paciente del procedimiento. Limpiar el pabellón auricular con algodón y suero fisiológico. Recoger la secreción presente en el conducto auditivo externo con la tórula estéril. Introducir la tórula en medio de transporte Stuart. Retirarse los guantes. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. Enviar al laboratorio.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS 1.9.4.3.

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Secreción Ótica Media

Materiales Algodón Suero fisiológico. Jeringa y tapón estéril. Procedimiento Según procedimiento de punción timpánica (procedimiento médico). La muestra puede ser dejada en una jeringa tapada sin aguja o bien en un tubo estéril sin anticoagulante. Registrar y enviar al laboratorio. 1.9.4.4. Nasal Materiales Guantes para procedimientos. Tubo con tórula estéril. Ampolla con solución fisiológica. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Humedecer la tórula en solución fisiológica estéril e introducir en una fosa nasal sin tocar las aletas de la nariz, frótela hacia la derecha e izquierda y retírela cuidadosamente. Depositar la tórula en un frasco estéril. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Trasladar al laboratorio. IMPORTANTE : Muestra útil sólo para estudios de portación nasal de Staphylococcus aureus, no apta para diagnóstico de rinosinusitis. 1.9.4.5.

Aspirado Nasofaríngeo

Materiales Mascarilla quirúrgica. Delantal manga larga. Gafas (antiparras). Guantes de procedimientos. Sistema de aspiración (o jeringa de 10 ml). Sonda de alimentación estéril niños Nº 8. Tubo o ampolla con suero fisiológico estéril. Kit de aspiración. Tubo tapa terracota 10 ml.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Procedimiento con Sistema de Aspiración Se realiza con ayudante de enfermería quien presenta el material a la enfermera. Colocar gafas antiparras, mascarilla quirúrgica, delantal manga larga y guantes de procedimientos (enfermera y ayudante). Informar al paciente el procedimiento. Eliminar la secreción visible de las fosas nasales antes de iniciar el procedimiento. Romper el sobre que contiene el kit de aspiración y conectar el final del tubo con diámetro menor a una sonda de alimentación estéril. Conectar el otro extremo de diámetro mayor a la bomba de vacío. Medir con la sonda de diámetro menor desde la aleta de la fosa nasal hasta el lóbulo de la oreja, medida que se introducirá en la fosa nasal del paciente. Humedecer la sonda en suero fisiológico estéril. Traccionando levemente la nariz hacia arriba, introducir la sonda por una fosa nasal en forma horizontal, después de pasar los cornetes dirigirla hacia abajo. Aspirar en forma intermitente. Retirar la sonda sin aspirar. Una vez obtenida la muestra, aspirar aproximadamente 3 ml de suero fisiológico estéril para arrastrar la secreción de la sonda y enviar al laboratorio. Retirarse los guantes. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. Procedimiento con Jeringa (sin sistema de aspiración) Se realiza con ayudante de enfermería quien presenta el material a la enfermera. Colocar gafas antiparras, mascarilla quirúrgica, delantal manga larga y guantes de procedimientos (enfermera y ayudante). Informar al paciente el procedimiento. Aspirar 3 ml suero fisiológico estéril, vaciarlo en el tubo tapa terracota de 10 ml. Conectar la jeringa sin aguja a la sonda estéril. Medir el diámetro menor de la sonda desde la aleta de la fosa nasal hasta el lóbulo de la oreja, medida que se introducirá en la fosa nasal del paciente. Retirar la sonda y aspirar simultáneamente la secreción, girando suavemente, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal con la misma sonda. Presionar el embolo de la jeringa y empujar la secreción hacia el extremo de la sonda. Aspire desde el tubo terracota 3 ml suero, devuelva este volumen al tubo para así arrastrar toda la secreción. Corte la punta de la sonda y déjela dentro del tubo. Asegúrese que el tubo quede cerrado correctamente. Para evitar derrames sellar la tapa del tubo con parafilm u otro. Retirarse los guantes. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. Rotular la muestra. Enviar al Laboratorio de inmediato.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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1.9.4.6. Torulado Nasofaríngeo Materiales Mascarilla Guantes de procedimientos. T ÓRULA FLEXIBLE PARA NASOFARINGE ,

NO USAR OTRO TIPO DE TÓRULA .

Tubo sin aditivos (tapon rojo) con 1-2 ml de Buffer Fosfato Salino (PBS). Procedimiento Reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. Utilizar mascarilla y guantes de procedimientos. Eliminar la secreción visible de las fosas nasales antes de iniciar el procedimiento. Traccionando levemente la nariz hacia arriba, introducir la torula por una fosa nasal en forma horizontal, después de pasar los cornetes dirigirla hacia abajo. Al encontrar resistencia girar la torula en ambos sentidos unas 3-5 veces. Retirar la tórula. Introducir la tórula en el tubo con PBS y cerrar herméticamente. Enviar al laboratorio. Ordenar el material, lavarse las manos y registrar. 1.9.4.7. Expectoración Espontánea Materiales Guantes para procedimientos. Tubos o frascos estériles. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Realizar aseo bucal, sin antiséptico bucofaríngeo, sólo con agua. A primera hora de la mañana solicite al paciente que inspire profundo y al momento de eliminar el aire inspirado forzar el reflejo tusivo para que elimine una muestra de expectoración adecuada en cantidad y calidad (libre de saliva). Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Trasladar al laboratorio a temperatura ambiente antes de 30 minutos de tomada la muestra. 1.9.4.8. Expectoración Inducida Este procedimiento se realiza en el laboratorio de la sección de enfermedades respiratorias del departamento de medicina.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Materiales Frasco estéril con tapa. Mascarilla con nebulizador. Ampolla de suero fisiológico. Ampolla de NaCl al 10 %. Jeringa de 5 ml. PEF y saturómetro. Puff de Salbutamol. Mascarilla reforzada para el operador. Frasco tapa roja estéril para cultivos y/o frasco plástico negro para baciloscopia. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos y mascarilla. Realizar medición de PEF y saturometría. Inhalar al paciente con 2 puff de salbutamol. En pacientes de riesgo (necesita alta FIO2 para mantener saturación de 90 %) iniciar nebulizaciones con suero fisiológico por 10 minutos, si no es de riesgo iniciar de inmediato con solución hipertónica. Continuar o iniciar nebulización con solución salina al 3 % (3 ml suero fisiológico/ 1 ml NaCl 10 %) por 10 minutos, luego al 5 % por diez minutos (2 ml suero fisiológico/ 2 ml NaCl 10 %). Medir PEF antes de cada nebulización. Cuando se produzca la tos permita que el paciente deposite la secreción en el frasco (al menos 1-2 ml). Si después de 15 minutos de nebulización el paciente no elimina secreción hacer un última nebulización con solución al 5 %, medir PEF y suspender si este cae más del 20 %. Enviar antes de 30 minutos al laboratorio a temperatura ambiente. Ordenar el material, retirarse los guantes, lavarse las manos y registrar. 1.9.4.9. Expectoración para Baciloscopia y Cultivo de Koch Materiales Guantes para procedimientos. Frasco limpio de color negro o en su defecto frasco limpio protegido de la luz.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Realizar aseo bucal, sin antiséptico bucofaríngeo, sólo con agua. A primera hora de la mañana solicite al paciente que inspire profundo y al momento de eliminar el aire inspirado forzar el reflejo tusivo para que elimine una muestra de expectoración adecuada en cantidad y calidad (libre de saliva). Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Trasladar de inmediato al laboratorio, de lo contrario refrigerar a 4º C no más de 2 horas. Consideraciones Deben tomarse 2 muestras en días consecutivos en caso de diagnóstico y una en caso de control de tratamiento, junto a una orden de examen especial que indique la sospecha clínica. Debe quedar registrado si se trata de un paciente virgen a tratamiento, o un paciente antes tratado, indicar si es recaída, abandono o fracaso de tratamiento, indicando en estos últimos cuales fueron las drogas utilizadas. 1.9.4.10. Faríngea Materiales Guantes para procedimientos. Baja lenguas Linterna Tubo Estéril Tapón de Goma (Terracota), sólo para test rápido. Tórulas Medio de transpsorte Stuart, sólo para cultivo corriente. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Colocar al paciente en posición cómoda y con buena iluminación hacia la zona faríngea. Solicitar al paciente que pronuncie la letra A. Desplazar la lengua hacia abajo (con baja lengua). Frotar la tórula con suavidad por ambas caras de las amígdalas, y luego la parte posterior de la faringe. Retirarse los guantes. Lavarse las manos.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Trasladar al laboratorio.

IMPORTANTE : Para cultivo de secreción faríngea la muestra debe ser enviada en Medio de Transporte Stuart y para Test rápido Streptococcus B hemolítico grupo A en Tubo Estéril Tapón de Goma (Terracota).

1.9.4.11. Aspirado Endotraqueal Cuantitativo Materiales Frasco con tapa estéril. Equipo de aspiración. Guantes estériles. Procedimiento Reunir el material, lavarse las manos y colocarse los guantes. Informar al paciente del procedimiento si es posible. Utilizando técnica aséptica introducir sonda estéril por el tubo endotraqueal hasta encontrar resistencia, aspirar secreciones (al menos 1-2 ml) y depositarlas directamente en un frasco estéril. No usar suero fisiológico para facilitar la aspiración de secreciones, ya que esto diluye la muestra e invalida la cuantificación de microorganismos. Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. Ordenar el material, retirarse los guantes, lavarse las manos y registrar. 1.9.4.12. Secreción Uretral O BJETIVO: Obtener muestra para estudio etiológico en pacientes con sospecha de uretritis. Responsable de ejecución Enfermera Materiales Guantes de procedimiento. Tórulas estériles flexibles. Medio de transporte Stuart, sólo para cultivo. Láminas portaobjetos especiales sólo para Chlamydia. Frasco con medio de transporte R1, sólo para Mycoplasma y Ureaplasma.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Procedimiento Informar al paciente. Lavarse las manos y colocarse los guantes. Realizar aseo genital con agua jabonosa, enjuagando con suero fisiológico estéril. Exprimir la uretra desde la base del pene hacia el glande. Cuando la expresión no es efectiva, tomar la muestra con tórula introducida en el meato urinario y rotándola. Realizar frotis para Chlamydia con una segunda tórula. Con una tercera tórula tomar la muestra e introducirla en el medio de transporte R1, agitar suavemente evitando derramar el contenido. Retirar la torula y cerrar el frasco. Ordenar el material, retirarse los guantes, lavarse las manos y registrar. 1.9.4.13. Secreción Post Masaje Prostático O BJETIVO : Obtener muestra para diagnóstico de infección prostática o uretritis en pacientes sin secreción uretral. Responsable de la ejecución Médico urólogo y ayudante. Materiales Guantes de procedimiento. Tórulas estériles flexibles. Medio de transporte Stuart, sólo para cultivo. Láminas portaobjetos especiales sólo para Chlamydia. Frasco con medio de transporte R1, sólo para Mycoplasma y Ureaplasma. Procedimiento A YUDANTE : Reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. Colocarse guantes, realizar aseo genital con abundante agua y jabón. Retraer el prepucio y asear el glande usando las tórulas con agua, desde la uretra hacia el prepucio. Cada tórula se debe utilizar sólo una vez. El prepucio debe mantenerse retraído hasta la obtención de la muestra. MÉDICO :

Lavarse las manos. Colocarse los guantes. Mediante un tacto rectal realizar masaje prostático y tomar muestras de la secreción obtenida con tórulas estériles flexibles. Realizar frotis para Chlamydia con una segunda tórula. Con una tercera tórula tomar la muestra e introducirla en el medio de transporte R1, agitar suavemente evitando derramar el contenido. Retirar la torula y cerrar el frasco. Retirarse los guantes.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Lavarse las manos. AYUDANTE :

Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular los frascos con los datos del paciente. Realizar los registros correspondientes en la orden médica y la ficha clínica del paciente. Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible. 1.9.4.14. Semen O BJETIVO : Obtener muestra para estudio bacteriológico. Responsable de la ejecución Enfermera, matrona o ayudante técnico. El propio paciente. Materiales Frasco tapa rosca estéril. Procedimiento

ENFERMERA, MATRONA , AYUDANTE

Informar al paciente. PACIENTE

Lavarse las manos. Realizar aseo genital con agua jabonosa y enjuagar. La muestra debe ser obtenida por masturbación en el frasco estéril. Lavarse las manos. Entregar la muestra. ENFERMERA , MATRONA , AYUDANTE

Lavarse las manos. Recibir la muestra. Rotular los frascos con los datos del paciente. Realizar los registros correspondientes. Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible. I MPORTANTE : Para estudios de fertilidad dirigirse a la Maternidad del Hospital Clínico Universidad de Chile y solicite una matrona para mayores indicaciones. 1.9.4.15. Flujo Vaginal y Secreción de Endocérvix O BJETIVO : Obtener muestra para estudio microbiológico de secreción endocervical. Responsable de la ejecución Enfermera, matrona o médico.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS Materiales Guantes estériles. Espéculo estéril. Tórulas estériles (3). Receptáculo para desechos. Suero Fisiológico estéril. Medio de transporte Stuart. Porta objeto especial para Chlamydias. Tubo R1 especial para Mycoplasmas y ureaplasmas. Procedimiento Informar a la paciente. Lavarse las manos según procedimiento. Colocarse los guantes. Colocar a la paciente en posición ginecológica. Entreabrir la vulva e introducir el espéculo. Introducir la tórula en el endocérvix con un movimiento rotatorio y ponerla en tubo con medio de transporte. Pasar la segunda tórula por marca del portaobjeto para estudio de Chlamydia. Introducir la tercera tórula en frasco R1, agitar con suavidad, evitando derramar el contenido. Retirar la tórula y cerrar el frasco Retirar espéculo. Retirar guantes y lavarse las manos. Ordenar el material y registrar procedimiento. 1.9.4.16. Secreción Endometrial O BJETIVO : Toma de muestra para estudio microbiológico. Responsable de la ejecución Médico Materiales Guantes estériles. Jeringa con tapon estéril. Sonda para aspiración. Espéculo estéril.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Procedimiento Informar al paciente. Lavarse las manos según procedimiento. Colocarse los guantes. Colocar a la paciente en posición ginecológica. Entre abrir la vulva e introducir el especulo. Introducir la sonda a través de endocérvix, aspirar con jeringa. Tapar la jeringa con tapón estéril. Retirar espéculo. Retirar guantes y lavar manos. Ordenar el material y registrar procedimiento. Enviar jeringa al laboratorio lo antes posible. 1.9.4.17. Cultivo Perineal para Detección de Streptococcus Grupo B O BJETIVO : Obtener muestra de secreción vaginal y rectal para estudio de Streptococcus grupo B. Se realiza en forma preventiva para reducir la morbimortalidad neonatal asociada a este agente. Se realiza entre las 35-37 semanas de gestación. Responsable de la ejecución Matrona o médico. Materiales Guantes de procedimientos. 2 tubos con medio de transporte Stuart. Tórulas estériles. Receptáculo para desechos. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Colocarse los guantes. Colocar a la paciente en posición ginecológica. Entre abrir labios mayores, visualizar vagina e introducir y rotar tórula en tercio externo de la vagina y la otra tórula en zona perianal. Colocar cada tórula en un tubo distinto y con medio de transporte Stuart. Retirar guantes y lavar manos. Rotular las muestras, indicando claramente de donde proviene cada una. Ordenar el material y registrar procedimiento. 1.9.4.18. Herida O BJETIVO : Obtener muestra para estudio microbiológico en caso de sospecha de infección de herida.

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Responsables de la ejecución Enfermera o matrona. Materiales Guantes para procedimientos. Guantes estériles. Tórula estéril. Medio de transporte Stuart. Jeringa y tapón de goma estéril. Equipo de curaciones. Suero fisiológico estéril. Procedimiento Explicar procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes para procedimientos. Retirar apósitos de la herida. Lavarse las manos. Colocarse guantes estériles. Realizar la curación o aseo de la herida con suero fisiológico. Pasar la tórula estéril por las paredes internas de la herida, en la región más alejada de la piel. Intrucir la tórula en el medio de transporte. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Registrar el procedimiento. Trasladar al laboratorio. I mportante: EN CASO QUE SE DETECTA UNA COLECCIÓN CON CONTENIDO LÍQUIDO TOMAR LA MUESTRA ASPIRANDO CON JERINGA ESTÉRIL Y ENVIAR DE INMEDIATO AL LABORATORIO , TAPADA CON TAPÓN DE GOMA ESTÉRIL.

1.9.4.19. Úlceras Necróticas y Escaras Muestras tomada por torulado o el tejido necrótico, no son adecuados para estudio microbiológico y se rechazarán de tomarse. En caso de sospecha de infección profunda, el tipo de muestra adecuado debería ser tejido vital tomado en pabellón previo aseo quirúrgico con suero fisiológico. 1.9.4.20. Saliva O BJETIVO : Evaluar la respuesta inmune humoral en mucosa, fundamentalmente IgA secretora. Reponsables Enfermera, matronas o ayudante de enfermería.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

Materiales Sistema de aspiración. Tubo sin anticoagulante. Sonda de aspiración (nélaton). Guantes de procedimiento. Procedimiento pacientes pediátricos (lactantes y pre-escolares): Explicar el procedimiento al paciente o familiar, según corresponda. Lavarselas manos. Usar guantes de procedimientos. Verificar que el menor no tenga restos de comida en cavidad oral. Estimular la salivación del menor y aspire suavemente con sonda nélaton conectada a jeringa o con sistema de aspiración. En los niños pequeños, tomar antes los exámenes de sangre si los tiene, ya que el llorar estimula la salivación. Enviar un mínimo de 2 cc. de saliva en tubo rojo sin anticoagulante. Procedimiento pacientes adultos y pediátricos en edad escolar: Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Usar guantes de procedimientos. Verificar que no tenga restos de comida en cavidad oral. Solicitar al paciente que junte abundante saliva en su boca y la deposite suavemente por las paredes del tubo sin anticoagulante, (mínimo 2 cc.). Si es necesario aspire suavemente con jeringa. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Rotular la muestra. Enviar al laboratorio. Comentario Importante enviar muestra de saliva limpia (sin desgarro).

1.9.5.

Otros

1.9.5.1. Curva de Glucosa e Insulina O BJETIVO : Estas pruebas se utilizan para el diagnóstico y seguimiento de la diabetes, resistencia a la insulina, síndrome metabólico, entre otras patologías. Responsable de la ejecución Paci ente adul to E nf ermera M atronas Ayudante enfermería (toma de muestra)

Paci ente pedi átr i co E nf ermera capaci tada en atenci ón pedi átri ca M atrona capaci tada en atenci ón pedi átri ca

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CAPÍTULO1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS

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Materiales Fotómetro de reflexión (Ej. Glucómetro) Tira reactiva. Tórulas secas o humedecidas con agua. Percutor y lancetas. Materiales descritos procedimiento para “punción venosa”. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Colocarse guantes para procedimientos. Tomar glicemia capilar utilizando el procedimiento descrito para “punción cutánea” Interpretar el resultado: • Sí el resultado es mayor o igual a 140 mg/dl se posterga examen y se envía una muestra de glicemia basal urgente al laboratorio. • Sí se confirma valor elevado se suspende examen y debe derivarse a médico tratante. • Sí el resultado es menor a 140 mg/dl se prosigue con el examen. Instalar una vía venosa periférica. Tomar una muestra para glicemia basal. En pacientes adultos dé a beber 75 grs. de glucosa como solución preparada (trutol) o polvo (disuelto en 250 cc. de agua tibia más jugo de limón usado sólo como saborizante). IMPORTANTE :

En niños la dosis es de 1.75 grs. de glucosa/Kg. de peso total hasta un máximo de 75 grs.

Explicar al paciente que durante el examen no puede fumar, ni ingerir agua o alimentos y debe mantenerse en reposo. Tomar glicemia de control a los 30, 60 y 120 minutos o según especificación del médico (puede ser basal, postcarga o de 5 a 6 puntos, completando los 180 minutos). En caso que el paciente presente vómitos, no se presente a la hora indicada para el siguiente punto o no se tome una de las muestras, se suspende el examen, se da aviso al laboratorio y se cita al paciente para realizarlo en otra oportunidad. Retirar la vía venosa. Comprimir sitio de inserción y luego proteja con un parche curita. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Luego de tomada la primera muestra (basal), en la orden de examen se debe registrar el horario correspondiente a cada punto. • Basal: Hora en que se tomó la primera muestra. • HGT: Valor de la glicemia capilar (Hemoglucotest) en mg/dl. • 75 grs. glucosa o trutrol: hora en que terminó de beber la solución de glucosa. • 30 minutos: Hora en que se debe tomar la segunda muestra post ingesta de la solución. • 60 minutos: Hora de la tercera muestra.

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CAPÍTULO 1. PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS • 120 minutos: Hora de la cuarta muestra. Enviar las muestras al laboratorio inmeditamente después de la extracción: • La muestra basal se envia junto a la orden médica y con los datos de registro. • El resto de las muestras se envian solas a medida que se van realizando las punciones. Para muestras provenientes de centros externos: • Centrifugar cada muestra, separar el suero y congelar a -20°C. • Enviar al laboratorio orden médica y todas las muestras de la curva en cadena de frío. 1.9.5.2.

Tiempo de Sangría

O BJETIVO : Evaluar la función plaquetaria (cantidad y calidad de plaquetas). Responsable de la ejecución Enfermera, matrona o ayudante de enfermería. Materiales Esfingomanómetro Simplate adulto o pediátrico. Cronómetro Papel filtro. Tórulas limpias. Guantes de procedimiento. Procedimiento Explicar el procedimiento al paciente. Lavarse las manos. Colocarse guantes para procedimientos. Limpiar la piel con tórula seca. Colocar en el brazo el mango de presión a 40 mm de Hg . Hacer incisión en el antebrazo, en la cara interna con el aparato de Ivy (simplate) cuidando que no sea muy profunda. Poner en marcha el cronómetro, recoger la gota de sangre con papel filtro cada 30 segundos, sin tocar la incisión, hasta que deje de salir sangre, en ese momento debe detener el cronómetro . Posteriormente retirar el manguito, se limpia y se coloca un parche curita. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Registrar el resultado en orden médica que enviará el laboratorio. Comentarios No realizar si el paciente está tomando ASPIRINA, este medicamento prolonga el tiempo de sangría.

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Capítulo 2

ROTULADO DE MUESTRAS

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CAPÍTULO 2. ROTULADO DE MUESTRAS

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO 2. ROTULADO DE MUESTRAS

2.1. Procedimiento General de Rotulación El rotulado debe realizarse inmediatamente después de extraída la muestra, consignando con letra clara, como mínimo, el nombre y dos apellidos del paciente. Cualquier otro dato exigido (Ej. carné de identidad, fecha nacimiento, etc.), para el examen a realizar, se especificará en la descripción del examen. En caso de utilizar código de barra como rotulado, este se debe pegar inmediatamente después de extraída la muestra. Todas las muestras deben estar rotuladas en forma clara y sin correcciones. La muestras que no cumplan con la condición de rotulado serán rechazadas.

2.2.

Procedimientos Específicos de Rotulación

2.2.1.

Drogas de Abuso

Rotular la muestras frente al paciente siguiendo las indicaciones generales de rotulación. Colocar el contenedor con la muestras en caja de seguridad y cerrar con la llave respectiva. Llenar el registro

CADENA DE CUSTODIA Y CONSENTIMIENTO INFORMADO (ver

anexos).

2.2.2. Rotulación HIV Por norma del MINSAL, la orden debe llevar los siguientes datos: • Nombre completo • Fecha de nacimiento • RUT • Teléfono de contacto • Dirección

2.2.3. Rotulación CARGA VIRAL PACIENTES FONASA : Rotule el tubo con código de paciente ( INICIALES DEL PRIMER NOMBRE , PRIMER Y SEGUNDO APELLIDO , FECHA DE NACIMIENTO DD /MM /AA , TRES ÚLTIMOS DÍGITOS DEL CARNÉ DE IDENTIDAD Y DÍGITO VERIFICADOR ),

fecha y hora de punción.

PACIENTES PARTICULARES : Rotule el tubo con nombre completo, fecha y hora de punción considerando el manejo confidencial de pacientes portadores de V.I.H.

2.2.4.

Rotulación Genotipificacion VIH

PACIENTES FONASA Rotule el tubo con código de paciente, fecha y hora de punción. PACIENTES PARTICULARES Rotule el tubo con nombre completo o código de paciente, fecha y hora de punción considerando el manejo confidencial de pacientes portadores de V.I.H.

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CAPÍTULO 2. ROTULADO DE MUESTRAS

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Capítulo 3

TRANSPORTE DE MUESTRAS

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CAPÍTULO 3. TRANSPORTE DE MUESTRAS

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO 3. TRANSPORTE DE MUESTRAS

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3.1. INDICACIONES GENERALES PARA TRANSPORTE DE MUESTRAS El transporte debe efectuarse lo más cercano al momento de la extracción de la muestra o de inmediato, según la especificación del examen a realizar. Cualquiera sea el sistema de envío disponible (banda neumática o a través de un auxiliar volante), las muestras deben trasladarse a temperatura ambiente o cumpliendo las especificaciones de temperatura para el tipo de muestra (con unidades refrigerantes o hielo), según se especificará en la descripción del examen. • Los tubos o frascos deben ir limpios y en posición vertical. • En caso de transporte por auxiliar volante, deben ir en contenedor tipo coleman, cumpliendo las condiciones anteriores. • Las muestras bacteriológicas, de orina y las de sangre, deben ir en contenedores diferentes. • La muestra no debe trasladarse si no va con todos los datos de identificación del paciente y con la orden respectiva. • En caso de tomas de muestras externas y de la Red, salvo exámenes que requieren de traslado inmediato, los horarios de traslado son a las 10:00, 12:30 y 15:00 hrs. Siempre en contenedores tipo coleman con unidades refrigerantes y en posición vertical.

3.2.

INDICACIONES ESPECÍFICAS PARA TRANSPORTE DE MUESTRAS

3.2.1. Sangre 3.2.1.1.

Transporte de Muestras Obtendidas por Punción Venosa

Según se describe en las indicaciones generales de transporte de muestras. 3.2.1.2. Transporte de Muestra Jeringa Punción Arterial Transporte inmediato en hielo (a menos de 4 °C), en contenedor cerrado. 3.2.1.3. Transporte Extracción de Sangre Dispositivo Intravascular El traslado debe realizarse lo más precozmente posible, en hielo o con unidades refrigerantes, si corresponde al examen solicitado.

3.2.2. Orina 3.2.2.1. Orina Aislada para Orina Completa y Química de Orina Traslado de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente, de lo contario refrigerar entre 4 - 8 ºC hasta 2 horas. 3.2.2.2. Orina Aislada para Urocultivo Traslado antes de dos horas al laboratorio a temperatura ambiente, de lo contario refrigerar entre 4 8 ºC hasta 24 horas. 3.2.2.3. Orina para Baciloscopia y Cultivo de Koch Antes de 2 horas a temperatura ambiente o a 4 ºC dentro de las 8 horas siguientes (máximo 24 horas a 4 ºC ), en frasco protegido de la luz.

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CAPÍTULO 3. TRANSPORTE DE MUESTRAS

84 3.2.2.4. Orina de Recolección A temperatura ambiente.

El envase con el total de orina recolectada debe ser entregada en la toma de muestra en la mañana del día que finaliza la recolección (de preferencia de lunes a sábado antes de las 10:00 horas AM). 3.2.2.5. Orina Sondeo Vesical A temperatura ambiente. • En paciente hospitalizado, antes de 30 minutos. • En paciente ambulatorio, antes de 2 horas y con unidad refrigerante.

3.2.3. Deposición A temperatura ambiente.

3.2.4.

Detección Cuantitativa de Grasa en Deposiciones

Dado el volumen de muestra de este examen y el frasco en el cual se traslada las deposiciones de 72 hrs., se recomienda transportar en cadena de frio, pero no congelada. (El traslado de muestras congeladas debe ser idealmente en caja de plumavit o coleman con hielo o unidades refrigerantes que mantengan la muestra congelada hasta su recepción en el laboratorio).

3.2.5.

Líquidos

3.2.5.1. Líquidos en general Inmediato, a temperatura ambiente. 3.2.5.2. Líquido Amniótico Trasladar de inmediato al laboratorio a Tº ambiente. En el caso de solicitarse Mycoplasma y Ureaplasma, el medio de transporte PPLO debe enviarse a 4 ºC durante la semana de 8:00 a 19:00 hrs. de lunes a viernes y de 8:00 a 12:00 hrs. el día sábado. En los otros horarios y fines de semanas o feriados, la muestra debe ser almacenada por el servicio clínico refrigerada (no congelada) y enviada al laboratorio al día hábil siguiente.

3.2.6. Piel y Tejidos 3.2.6.1. Piel Inmediato luego de tomada la muestra a temperaratura ambiente. 3.2.6.2. Uñas micológico Las muestras deben llegar al laboratorio de dermatología antes de 48 hrs., a temperatura ambiente.

3.2.7.

Drogas de Abuso

La muestra debe ser transportada a temperatura ambiente. Transportar en caja de seguridad con llave. Trasladar junto al formulario de Consentimiento Informado para Drogras de Abuso. Trasladar junto al Formulario de Cadena de Custodia completo, con los datos del responsable de la toma de muestra y el traslado. Estos datos incluyen la firma de los involucrados.

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CAPÍTULO 3. TRANSPORTE DE MUESTRAS

85

3.2.8. Cariograma y FISH Para los siguientes tipos de muestras: sangre periférica, sangre de cordón, médula ósea, restos de abortos, biospia de vellosidad corial de embrión vivo, biopsia de piel, líquido amniótico y mortinato, se aplican los criterios de transporte que a continuación se indican: La muestra debe ser enviada al laboratorio a temperatura ambiente, en condiciones estériles. En caso de demora o fin de semana, la muestra debe ser guardada, por un plazo máximo de 3 días, a 4 °C, en la parte baja del refrigerador. NO PONER EN CONTACTO CON HIELO. Al día hábil siguiente, enviarla al laboratorio de genética a temperatura ambiente.

3.2.9. Muestras del Laboratorio de Terapia Celular Luego de extraída la muestra, trasladar al laboratorio de Terapia Celular, (sector A subterráneo), antes de una hora. Si las muestras permanecerán por más de 1 hora en el servicio, deben mantenerse refrigeradas (4 ºC) y trasladarse manteniendo la cadena de frío. El horario de recepción de muestras y entrega de informes es de 09:00 a 15:30 horas, de Lunes a Viernes.

3.2.10. Estudio de Fierro Sérrico Las muestras que luego de extraídas, no son trasladadas al laboratorio antes de 3 horas, se deberá separar del suero y enviarlas en tubos que han sido remojados, lavados con EXTRAN y posteriormente enjuagados con agua bidestilada. Se puede almacenar a 4 ºC por un plazo máximo de 5 días o congelada a -20 ºC para su posterior envío al laboratorio.

3.2.11. Estudio de Trombofilia Hereditaria (Laboratorio Gastroenterología) Traslado temperatura ambiente sin separar la sangre del plasma. Las muestras que serán trasladadas después de 3 horas de extraídas y hasta un plazo máximo 8 horas deben ser almacenadas a 4 ºC. Muestras cuyo traslado será posterior a 8 horas, se deben congelar a -20 ºC hasta su recepción en el laboratorio. Las muestras previamente congeladas deben mantenerse así durante el traslado y hasta la recepción en el laboratorio.

3.2.12. Estudio Genético de Hemocromatosis Traslado temperatura ambiente sin separar la sangre del plasma. Las muestras que serán trasladadas después de 3 horas de extraídas y hasta un plazo máximo 8 horas deben ser almacenadas a 4 ºC. Muestras cuyo traslado será posterior a 8 horas, se deben congelar a -20 ºC hasta su recepción en el laboratorio. Las muestras previamente congeladas deben mantenerse así durante el traslado y hasta la recepción en el laboratorio.

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86

CAPÍTULO 3. TRANSPORTE DE MUESTRAS

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Capítulo 4

CRITERIOS GENERALES DE RECHAZO DE MUESTRAS

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88

CAPÍTULO 4. CRITERIOS GENERALES DE RECHAZO DE MUESTRAS

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO 4. CRITERIOS GENERALES DE RECHAZO DE MUESTRAS

89

4.1. REQUISITOS DE CALIDAD DE LAS MUESTRAS Para que las muestras sean aceptables para realizar los análisis solicitados, deben cumplir ciertas características específicas. Estas son:

4.1.1. Nivel de Muestra El nivel de muestras debe ser adecuado al contenedor en el que fue tomada. Un nivel bajo, en los contenedores con anticoagulante, producen dilución de la muestra, mientras que, el sobre nivel origina microcoágulos. Por lo tanto, se desprende que todo contenedor con anticoagulante, tiene un nivel óptimo de llenado el cual debe ser respetado. Además, en contenedores que no tienen anticoagulante, la muestra debe tener un volumen suficiente que permita la realización del exámen (orina completa, cálculos urinarios).

4.1.2. Integridad de Muestras M UESTRAS COAGULADAS : las muestras en contenedores con anticoagulantes no deben presentar coágulo. Dado lo anterior, en contenedores para suero: tubos tapa amarilla y tubo tapa roja,es esperable la presencia de coágulos. H EMÓLISIS : la mayoría de las pruebas bioquímicas y de coagulación son interferidas por la presencia de hemólisis intensa. La decisión de rechazo debe ser consultada siempre en este caso al profesional de la unidad analítica correspondiente. L IPEMIA : Muestras lipémicas no contituyen problema en la mayoría de las técnicas serológicas, sólo debe rechazarse esta muestra en caso de solicitud de perfil lipídico.

4.1.3. Transporte Adecuado Se debe verificar que las muestras sean transportadas correctamente, ya que muchas determinaciones se ven alteradas debido al mal transporte y los resultados obtenidos no guardan relación con el estado clínico del paciente. Ejemplos de estos casos: • Vitamina B12 • Folato eritrocitario • Cultivo de Koch (fotolábiles)

Protegido de la luz

• PH y gases: en hielo y antes de 30 minutos en el laboratorio.

4.2.

CAUSAS DE RECHAZO DE MUESTRAS Muestras mal rotuladas o sin rótulo. Muestras tomadas en contenedores inadecuados. Calidad inaceptable de muestra. Muestras mal transportadas. Muestras derramadas. Muestras inadecuadas para el estudio solicitado. Muestra escasa (en ciertos casos). Confirmación de resultados dudosos o no correspondiente (solicitud expresa de profesional que procesa el examen).

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CAPÍTULO 4. CRITERIOS GENERALES DE RECHAZO DE MUESTRAS

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Capítulo 5

EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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EXÁMENES BIOQUÍMICOS

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NOMBRE

Perfil Lipídico 302034 Colesterol Total* 302067 Colesterol HDL* 302068 Triglicéridos* 302064 * Parámetros incluidos en el Perfil Lipídico. ** Con gel separador.

CÓDIGO

Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla**

CONTENEDOR

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Requiere ayuno, al menos 12 horas Requiere ayuno, al menos 12 horas Requiere ayuno, al menos 12 horas Requiere ayuno, al menos 12 horas

COMENTARIOS

O BJETIVO : Pruebas que permiten, en forma conjunta determinar el riesgo de enfermedad cardíaca coronaria. Además, han mostrado ser buenos indicadores de la posibilidad de presentar un ataque cardíaco o apoplejía provocados por obstrucción de los vasos sanguíneos (endurecimiento de las arterias).

5.1.2. Perfil Lipídico y Exámenes Relacionados

O BJETIVO: Orientación general del funcionamiento de órganos como los riñones, el hígado y algunas glándulas endocrinas, además del metabolismo de lípidos, proteínas y nutrientes. P LAZO DE N OMBRE C ONTENEDOR C OMENTARIOS C ÓDIGO E NTREGA P ERFIL B IOQUÍMICO Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil Requiere ayuno, al menos 10 horas 302075 Glucosa* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil Requiere ayuno, al menos 10 horas 302047 Nitrógeno Ureico* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302057 Ácido Úrico* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302005 Calcio* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302015 Fósforo* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302042 Proteínas totales* (Albúmina*) Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302060 x 2 Colesterol Total* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302067 Bilirrubina Total* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302012 Transaminasas, Oxalacética (GOT)* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302063-01 Fosfatasas Alcalinas Totales* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302040 Deshidrogenasa Láctica Total (LDH)* Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302030 Proteínas Fraccionadas Albúminas/Globulinas Tubo Tapa Amarilla** 1 día hábil 302059 * Parámetros incluidos en el Perfil Bioquímico. ** Con gel separador.

5.1.1. Perfil Bioquímico y exámenes relacionados

5.1.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 93

NOMBRE Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Celeste*** Tubo Tapa Amarilla**

CONTENEDOR

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno

COMENTARIOS

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302032 * Con gel separador

C ÓDIGO

CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla*

NOMBRE

Electrólitos Plasmáticos (Na - K - Cl)

C LORO : Su propósito principal es mantener la neutralidad eléctrica, sobre todo contra el ión sodio.

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

P OTASIO : Para detectar o confirmar la presencia de condiciones que afectan los líquidos corporales, como la deshidratación, el vómito y la diarrea o trastornos renales o de las glándulas suprarrenales que son la fuente de la aldosterona.

S ODIO : Se utiliza para determinar el estado de hidratación.

O BJETIVO :

5.1.4. Electrólitos

302076 302012

P ERFIL HEPÁTICO * Bilirrubina Total* Bilirrubina Directa* Fosfatasas Alcalinas Totales* 302040 Gamma Glutamiltranspeptidasa (GGT)* 302045 Transaminasas Oxalacética y Pirúvica 302063 Transaminasas Oxalacética (GOT)* 302063-01 Transaminasas Pirúvica (GPT)* 302062-02 Tiempo de Protrombina (TP)* 301059 Bilirrubina Total y Conjugada 302013 * Parametros incluidos en el Perfil Hepático ** Con gel separador *** Plasma/Citrato Na 3,2 %

CÓDIGO

O BJETIVO : Permite evaluar las patologías más frecuentes que afectan al hígado y vesícula biliar, como son procesos virales, parasitarios, obstructivos, neoplásicos o tóxicos.

5.1.3. Perfil Hepático y Exámenes Relacionados

94 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

N OMBRE

Creatinquinasa Total, CK-Total Creatinquinasa Fracción MB, CKMB Troponina ProBNP

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA COMENTARIOS

http://bookmedico.blogspot.com CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

N OMBRE

Antígeno Prostático Específico Antígeno Prostático Específico Total Antígeno Prostático Específico Total y Libre Antígeno CA 125 Antígeno CA 15-3 Antígeno CA 19-9

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

N OMBRE

CONTENEDOR

Acetona Cualitativa en Sangre (a) Tubo Tapa Amarilla* 302001 Cuerpos Cetónicos en Orina (a) Tubo Tapa Amarilla* 309011 * Con gel separador (a) No debe transcurrir más de 4 horas desde la toma de muestra hasta su análisis.

C ÓDIGO

1 día hábil 1 día hábil

ENTREGA

PLAZO DE

Estabilidad máxima 4 horas Estabilidad máxima 4 horas

COMENTARIOS

O BJETIVO : Diagnóstico de complicaciones de la diabetes (cetoacidosis diabética), en el ayuno prolongado, en la inanición y en la enfermedad de Von Gierke. En hiperinsulinismo (debido a la hipoglucemia), y en procesos que cursan con un mayor requerimiento de hidratos de carbono, como en la tirotoxicosis y el síndrome febril.

5.1.7. Cuerpos Cetónicos

305070 305070-01 305070-02 305170-01 305170-02 305170-03 * Con gel separador

C ÓDIGO

O BJETIVO : Screening y diagnóstico del cáncer de manera precoz, momento en que es más tratable, y antes que haya tenido la oportunidad de crecer y extenderse a otras zonas.

5.1.6. Marcadores Tumorales

302026 302025 302027 302119 * Con gel separador

C ÓDIGO

O BJETIVO : El objetivo de la utilización de marcadores cardíacos es el de detectar cuanto antes la presencia y severidad de cualquier alteración cardíaca aguda, de manera que se pueda iniciar el tratamiento adecuado de inmediato.

5.1.5. Marcadores Cardíacos CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 95

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

Gonadotrofina Coriónica Humana (BhCG) Hormona Tiroestimulante,TSH Tiroxina Libre o Tetrayodotironina Libre, T4 L Tiroxina o Tetrayodotironina, T4 Triyodotironina, T3

NOMBRE

ENTREGA

PLAZO DE

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

Indicar Fecha de Última Regla (F.U.R.)

COMENTARIOS

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302004 * Plasma/Fluoruro

C ÓDIGO

Ácido Láctico

N OMBRE

PLAZO DE ENTREGA

1 día hábil

CONTENEDOR

Tubo Tapa Gris*

COMENTARIOS

O BJETIVO : Determinar concentraciones aumentadas que pueden ser consecuencia de hipoxia tisular; diabetes mellitus; tratamiento con metformina; tumores malignos; glucogenosis; ingestión de etanol; metanol o salicilato, y acidosis metabólica.

5.1.10. Acido Láctico

Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil Proteger de la luz, con papel kraft 301002-01 Ácido Fólico Sérico o Folato Sérico (a) Tubo Tapa Lila** 1 día hábil Proteger de la luz, con papel kraft 301002-02 Ácido Fólico Eritrocitario (a) Vitamina B12 Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 301087 Proteger de la luz, con papel kraft Prealbúmina Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302115 * Con gel separador ** Plasma/EDTA (a) Sí el médico sólo pide Ácido Fólico y no específica si es Sérico o Eritrocitario, debe tomarse muestra para ambos exámenes (un tubo tapa amarilla y un tubo tapa lila).

CÓDIGO

O BJETIVO : Detectar deficiencias nutricionales. CONTENEDOR

CONTENEDOR

NOMBRE

5.1.9. Marcadores Nutricionales

303014 303024 303026 303027 303028 * Con gel separador

CÓDIGO

O BJETIVO: La Gonadotrofina Coriónica Humana (BhCG), se utiliza principalmente ante la sospecha de embarazo, pero tambien tiene otras utilidades clínicas como marcador tumoral. Las Hormonas Tiroídeas sirven para detectar y diagnosticar enfermedades tiroideas; para monitorizar el tratamiento del hipotiroidismo y del hipertiroidismo.

5.1.8. Hormonas

96 CAPÍTULO 4. CRITERIOS GENERALES DE RECHAZO DE MUESTRAS

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Frasco Tapa Azul**

Creatinina, en sangre Clearance de Creatinina (muestra de sangre y orina 24 horas)

Creatinina Cuantitativa (en Orina Aislada o de 24 horas) Frasco Tapa Azul**

302023

309010

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Indicar el volumen total de la muestra de orina, además del peso y talla del paciente. Para orina de recolección indicar el volumen total y tiempo de recolección.

COMENTARIOS

CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

N OMBRE

Proteína C Reactiva Cuantitativa (PCR) Proteína C Reactiva Ultrasensible (PCR us, usCRP)

http://bookmedico.blogspot.com Tubo Tapa Amarilla* Frasco Tapa Azul**

Amilasa

Amilasa Cuantitativa (en Orina Aislada o de 24 horas)

302008

309006

* Con gel separador ** Alícuota de 60 cc.

CONTENEDOR

N OMBRE

C ÓDIGO

O BJETIVO : Diagnóstico diferencial de sospecha de pancreatitis aguda

5.1.13. Amilasa

305031-01 305031-02 * Con gel separador

C ÓDIGO

1 día hábil

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Para orina de recolección indicar el volumen total y tiempo de recolección.

COMENTARIOS

COMENTARIOS

O BJETIVO : La PCR es una proteína de fase aguda cuya determinación es una medida de un proceso inflamatorio, injuria aguda, infección bacteriana o inflamatoria como la fiebre reumática y la artritis reumatoidea en fase aguda. Es una prueba inespecífica. En cambio, la PCR US se utiliza para evaluar el riesgo de desarrollar Cardiopatía Coronaria (CC).

5.1.12. Proteína C Reactiva

* Con gel separador ** Alícuota de 60 cc.

302024

CONTENEDOR

NOMBRE

C ÓDIGO

O BJETIVO : Se utilizan como marcadores de función renal o para estimar la tasa de filtración glomenular.

5.1.11. Creatinina y Clearance CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 97

Curva de Glucosa e Insulina

Tubo Tapa Amarilla*

Curva o Test de Tolerancia a la Glucosa (4 Determinaciones)

302048 x 2

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Inmunoglobulina IgA Secretora CONTENEDOR

Tubo Tapa Roja

E XAMEN Inmunoglobulina IgA Secretora

C ÓDIGO

305026

O BJETIVO : Estudio de inmunidad

5.1.15.

120 minutos: Hora de la cuarta muestra.

60 minutos: Hora de la tercera muestra.

30 minutos: Hora en que se debe tomar la segunda muestra post ingesta de la solución.

75 gr glucosa o trutrol: hora en que terminó de beber la solución de glucosa.

HGT: Valor de la glicemia capilar (Hemoglucotest) en mg/dl.

Basal: Hora en que se tomó la primera muestra.

* Con gel separador. (a) La muestra debe ser transportada con cadena de frío. (b) La toma de muestra para este examen es sólo hasta las de 10 de la mañana. (c) En la orden de examen se debe registrar el horario correspondiente a cada punto.

303017 303031

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

Tubo Tapa Amarilla*

Curva o Test de Tolerancia a la Glucosa Basal y Postcarga (Dos Determinaciones de Glucosa)

302048 x 1

Insulina Basal (a) Curva de Insulina (a)

CONTENEDOR

CÓDIGO

EXAMEN

COMENTARIOS

Requiere ayuno, al menos 10 horas, (b), (c) Requiere ayuno, al menos 10 horas, Requiere ayuno, al menos 10 horas, (b), (c)

Requiere ayuno, al menos 10 horas, (b), (c)

COMENTARIOS

4 días hábiles

PLAZO DE ENTREGA

1 día hábil 1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

O BJETIVO : Estas pruebas se utilizan para el diagnóstico y seguimiento de la diabetes, resistencia a la insulina, síndrome metabólico, entre otras patologías.

5.1.14.

98 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

1 día hábil 1 día hábil

Jeringa de gases* Jeringa de gases* Jeringa de gases*

Bicarbonato Standard (a), (b)

Calcio Iónico (a)

Gases y Equilibrio Ácido Base(a), (b)

302011

302016

302046

Jeringa herméticamente cerrada con tapa de goma, sin burbujas ni coágulos. Jeringa herméticamente cerrada con tapa de goma, sin burbujas ni coágulos. Jeringa herméticamente cerrada con tapa de goma, sin burbujas ni coágulos. Jeringa herméticamente cerrada con tapa de goma, sin burbujas ni coágulos.

COMENTARIOS

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305008 * Con gel separador

C ÓDIGO

CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla*

NOMBRE

Antiestreptolisina O

O BJETIVO : Test de screening frente a sospecha de infección estreptococcida aguda o fiebre reumática.

5.1.17. Antiestreptolisina O

Edad del paciente (adulto o pediátrico).

Hora de toma la muestra.

1 día hábil

ENTREGA

PLAZO DE

COMENTARIOS

Modo de administración del oxígeno: naricera, mascarilla de oxígeno, collar para traqueostomía, tubo T, Bi-pap, C-pap, Ventilación mecánica (Si está en ventilación mecánica debe consignar además, volumen /min., peep, frecuencia respiratoria).

Cantidad de oxígeno que recibe: FiO2.

Tipo de sangre (arterial, venosa, cordón, etc.)

* 1 o 3 ml. con heparina de litio. (a) Para mantener la estabilidad transportar de inmediato, en hielo (a menos de 4 ºC) y procesar antes de 20 minutos de extraída. (b) Datos adicionales en la orden:

1 día hábil

1 día hábil

Jeringa de gases*

Carboximetahemoglobina (a), (b)

301105

PLAZO DE ENTREGA

CONTENEDOR

E XAMEN

CÓDIGO

O BJETIVO : Identificar alteraciones, según examen solicitado..

5.1.16. Examen de pH y Gases (Muestra Arterial o Venosa) CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 99

Papel filtro*

Acilcarnitina (Método Espectrometría de Masas de Tandem) (a)

302121

Papel filtro*

Screening Neonatal Ampliado (a), (b)

303503

7 a 10 días hábiles

ENTREGA

PLAZO DE

15 días hábiles

PLAZO DE ENTREGA

Colocar en cada círculo de la tarjeta una gota de sangre procurando respetar los márgenes. Dejar secar .

COMENTARIOS

Colocar en cada círculo de la tarjeta una gota de sangre procurando respetar los márgenes. Dejar secar .

COMENTARIOS

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El código de barra está en la parte posterior de la tarjeta.

La tarjeta esta rayada o tiene alguna mancha de agua o de otro elemento.

Las gotas van unidas entre si.

* Tarjeta de papel filtro (tiene impreso 5 círculos). (a) Incluye perfil de aminoácidos, perfil de acilcarnitinas, Fenilalanina, Hormona tiroestimulante, Biotinidasa, 17-OH progesterona, Galactosa total, Galactosa 1p - uridiltransferasa, Tripsina. (b)La identificación del paciente debe ir en hoja adjunta que viene con la tarjeta. El examen se rechaza si:

CONTENEDOR

E XAMEN

C ÓDIGO

O BJETIVO : Estudio de enfermedades metabólicas en el recién nacido.

5.1.19. Screening Neonatal Ampliado

El código de barra está en la parte posterior de la tarjeta.

La tarjeta esta rayada o tiene alguna mancha de agua o de otro elemento.

Las gotas van unidas entre si.

* Tarjeta de papel filtro (tiene impreso 5 círculos) (a) La identificación del paciente debe ir en hoja adjunta que viene con la tarjeta. El examen se rechaza si:

CONTENEDOR

E XAMEN

C ÓDIGO

O BJETIVO : Cuantificar Acilcarnitina en circulación.

5.1.18. Acilcarnitina (Método Espectrometría de Masas de Tandem)

100 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Ácido Pirúvico

306155

7 días hábiles

COMENTARIOS

Para orina de recolección indicar el volumen total y tiempo de recolección.

Tubo especial*

* Solicitar con anticipación tubo especial a la Unidad de Bioquímica del Servicio de Laboratorio Clínico, anexo 88011.

E XAMEN

C ÓDIGO

O BJETIVO : Estudio de enfermedades metabólicas

5.1.21. Ácido Pirúvico

1 día hábil

COMENTARIOS

PLAZO DE ENTREGA

Frasco Tapa Azul**

Magnesio en Orina Aislada o de 24 horas

309109

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla*

Magnesio

302056

* Con gel separador. ** Alícuota de 60 cc.

CONTENEDOR

N OMBRE

C ÓDIGO

O BJETIVO : Detectar niveles aumentados o disminuido debido a su importancia como cation intracelular y su participación en reacciones enzimáticas y otras funciones fisiológicas.

5.1.20. Magnesio

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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101

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Cobre en Sangre Colinesterasa Complemento Hemolítico (CH 50)

Eritropoyetina Plasmática

Fosfatasas Ácidas Prostáticas Fosfatasas Ácidas Totales Fosfatasas Ácidas Totales y Fracción Prostática Fosfolípidos Gastrina Hemoglobina Glicosilada, HbA1C IgE Específica para Alérgenos Isoenzimas Fosfatasas Alcalinas Lípidos Totales Lipoproteínas, Electroforesis de Osmolaridad en Plasma Procalcitonina Subclases de IgG (1,2,3,4) Trab Anticuerpos Receptores TSH Zinc

Insuline-Like Growth Factor Binding Protein 1 (IGFBP-1)

302020 302021 305013

303009

308030 302037 302038 302041 303012 301041 305029 302039 302069 302054 302058 302118 303043 306158 302122

30304802

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Lila** 2 tubos Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Lila** Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

Tubo Tapa Lila** 2 tubos

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos 1 día hábil Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos 1 día hábil Ver anexos Ver anexos Ver anexos 7 días hábiles

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

Requiere ayuno. Toma de muestra sólo hasta las 12 de la mañana.

Envíar en hielo.

Por cada alérgeno solicitado.

Sólo para hospitalizados. Traslado de inmediato al laboratorio con unidad refrigerante.

Abstenerse de la ingesta de vainilla, plátanos y café 24 horas previo a la toma de muestra.

Sólo para hospitalizados.

COMENTARIOS

* Con gel separador ** Plasma/EDTA (a) Una vez tomadas las muestras, estas deben ser enviadas en hielo en forma inmediata al laboratorio. No tiene cobertura por FONASA.

Catecolaminas Plasmáticas (a)

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

Alfa 1 Antitripsina Cuantitativa Aminoacidemia Angiotensina, Enzima Convertidora de Apolipoproteínas (fracción A y/o B)

305001 302009 302033 302070

303005

CONTENEDOR

NOMBRE

Determinación de componentes séricos o plasmáticos para la pesquisa, confirmación diagnóstica, seguimiento y prónostico de condiciones clínicas.

CÓDIGO

OBJETIVO :

5.1.22. Exámenes Especiales

102 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul*

Amilasa en Orina Aislada

Calcio en Orina Aislada

Catecolaminas Urinarias, sin cobertura por FONASA

Creatinina en Orina Aislada

Cuerpos Cetónicos en Orina

Electrolitos en Orina Aislada

Fósforo en Orina Aislada

Glucosa en Orina Aislada

Magnesio en Orina Aislada

Microalbuminuria en Orina Aislada

Nitrógeno Ureico en Orina Aislada

Osmolaridad Urinaria (20 ml)

Proteinuria Aislada, Proteínas en Orina Aislada

Screening Metabólico

309006

309006

303034

309010

309011

309012

309015

309016

309109

309013

309020

309026

309028

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309110

IMPORTANTE

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

(a)

COMENTARIOS

: Si obtiene la muestra de orina en su casa, debe traer el frasco entregado por la Unidad de Toma de Muestras en una bolsa con hielo antes de 2 horas.

* Alícuota de 60 cc. (a) En caso de estar menstruando, se debe colocar tapón vaginal.

7 días hábiles

1 día hábil

Ver anexos

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

Ver anexos

1 día hábil

1 día hábil

1 día hábil

Frasco Tapa Azul*

Acido Úrico en Orina Aislada

309004

PLAZO DE ENTREGA

EXAMEN

CÓDIGO

CONTENEDOR

O BJETIVO : Cuantificar la cantidad de componentes en orina, según se solicite.

5.1.23. Determinaciones en Orina Aislada

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 103

Orina Completa y Sedimento Urinario

Sedimento Urinario ** (a)

309024 Roja*

Sonda Foley

Recolector

Sondeo Vesical

Frasco Tapa Azul o

Orina 2º chorro

Recolector

Sondeo Vesical

Sonda Foley

Orina 2º chorro

Recolector

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Cambiar el recolector cada 60 minutos

Cambiar el recolector cada 60 minutos

Cambiar el recolector cada 60 minutos

COMENTARIOS

IMPORTANTE: La Orina Completa incluye el código 309023 (Orina, físico-químico) y el código 309024 (Sedimento Urinario), pero si el médico lo solicita se puede procesar sólo uno de ellos.

* Alícuota de 60 cc. ** Plazo de entrega 1 día hábil (a) Traslado de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente, de lo contario refrigerar entre 4 - 8 ºC hasta 2 horas.

Orina, Fisicoquímico** (a)

309023

Roja*

Sonda Foley Sondeo Vesical

Frasco Tapa Azul o

Orina 2º chorro

Orina Completa **(a)

309022

CONTENEDOR

TIPO DE MUESTRA

EXAMEN

CÓDIGO

O BJETIVO : Obtener una muestra de orina en cantidad y calidad adecuadas, para estudio fisicoquímico y sedimento.

5.1.24.

104 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA COMENTARIOS

17- Cestosteroides (a) Frasco Recolección* Ver anexos 303043 17- Hidroxicorticoesteroides (a) Frasco Recolección* Ver anexos 303044 Ácido Vainillilmandélico (a), (b) Frasco Recolección** Ver anexos Detalle de indicaciones en instructivo 303032 Frasco Recolección* 1 día hábil 309004 Ácido Úrico Cuantitativo (a) Amilasa Cuantitativa (a) Frasco Recolección* 1 día hábil 309006 Calcio Cuantitativo (a) Frasco Recolección* 1 día hábil Contenedor libre de minerales*** 309008 Catecolaminas(a), (b) Frasco Recolección** Ver anexos Detalle de indicaciones en instructivo 303034 Citraturia (a) Frasco Recolección* Ver anexos Contenedor libre de minerales*** 309106 Clearance de Creatinina(a) Frasco Recolección* 1 día hábil Detalles en numeral 5.1.11 302024 Cobre o Cupruria (a) Frasco Recolección* Ver anexos Contenedor libre de minerales*** 309011 Creatinina Cuantitativa (a) Frasco Recolección* 1 día hábil Detalles en numeral 5.1.11 309010 Electrolitos en Orina de 24 horas (a) Frasco Recolección* 1 día hábil 309012 Fósforo Cuantitativo(a) Frasco Recolección* 1 día hábil Contenedor libre de minerales*** 309015 Glucosa Cuantitativa(a) Frasco Recolección* 1 día hábil 309016 Hidroxiprolina (a) Frasco Recolección* Ver anexos 309017 Magnesio en Orina de 24 horas(a) Frasco Recolección* 1 día hábil Contenedor libre de minerales*** 309109 Microalbuminuria Cuantitativa (a) Frasco Recolección* 1 día hábil 309013 Nitrógeno Uréico Cuantitativo(a) Frasco Recolección* 1 día hábil 309020 Oxalaturia (a) Frasco Recolección* Ver anexos 309105 Proteína Cuantitativa(a), Proteinuria de 24 horas Frasco Recolección* 1 día hábil 309028 Zinc o Zinquiuria (a) Frasco Recolección* Ver anexos Contenedor libre de minerales*** 309112 * Frasco de recolección: Se entrega en Unidad de Toma de Muestras. Al laboratorio enviar sólo una alícuota de 60 cc. en Frasco Tapa Azul. ** Agregar preservante entregado por el laboratorio, anexo 88011. *** Retirar frasco en la Unidad de Toma de Muestras y para pacientes hospitalizados directamente en abastecimiento. (a) Indicar en orden médica el volumen total de la muestra de orina y el período de recolección. (b) Tres días antes a la recolección, seguir régimen libre de productos con vainilla, no debe ingerir plátano, té o café. Permanecer en reposo relativo durante la recolección.

CÓDIGO

O BJETIVO : Cuantificar la cantidad de componentes en orina recolectada en 24 horas, según se solicite.

5.1.25. Determinaciones en Orina de 24 horas

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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105

Tarjetas (3 muestras)

Hemorragias Ocultas

308004

1 día hábil

1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Dos días antes, dieta libre de carnes poco cocidas (especialmente prietas) y, alimentos que puedan teñir de rojo la deposición: betarraga, tomate, ciruela, jugos, etc.

COMENTARIOS

* Alternativa: Frasco Plástico Pequeño (Sin aditivos, tipo tempera). (a) Una vez tomada la o las muestras se deben mantener a temperatura ambiente, protegidas de la luz y fuentes de calor. (b) En el caso de muestras seriadas, entregarlas todas juntas, acompañadas por su respectiva orden médica cancelada. Cada muestra debe traer claramente escrita la fecha en que fue tomada (puede ser o no correlativa).

Frasco Tapa Azul*

CONTENEDOR

Azúcares Reductores (Benedict-fehling)(a), (b)

E XAMEN

308001

C ÓDIGO

H EMORRAGIAS OCULTAS : Permite la detección de sangre, como sinónimo de hemorragias gastrointestinales.

A ZÚCARES REDUCTORES : Se solicita para investigar síndromes de mala absorción (Ej.: intolerancia a la lactosa).

O BJETIVO :

5.1.26. Determinaciones en Deposiciones

106 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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NIVELES DE FÁRMACOS Y DROGAS

E XAMEN CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA COMENTARIOS

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Niveles plasmáticos de Fenitoína

Niveles plasmáticos de Carbamazepina

Con el paciente en estado de equilibrio, inmediatamente antes de la próxima dosis.

5.2.2.2.

Medicamento intravenoso: 2 - 4 horas luego de la administración.

5.2.2.1.

5.2.2. Tiempo de Muestreo Drogas Terapéuticas

Vancomicina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-04 Gentamicina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* Ver anexos 302035-03 Amikacina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* Ver anexos 302035-02 Metotrexato Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* Ver anexos Proteger de la luz, con papel kraft 302035-06 Fenobarbital, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-13 Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-11 Ácido Valproico, Niveles Plasmáticos de (a) Carbamazepina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-12 Fenitoína, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-15 Digoxina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302025-14 Litio, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302055 Primidona, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Amarilla* Ver anexos 302035-19 Rapamicina, Niveles Plasmáticos de(a) Tubo Tapa Amarilla* Ver anexos Sólo hospitalizados y urgencia 302035-20 Teofilina/Aminofilina, Niveles Plasmáticos de(a) Tubo Tapa Amarilla* 1 día hábil 302035-10 Ciclosporina, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Lila** 1 día hábil 302035-01 Tacrolimus, Niveles Plasmáticos de (a) Tubo Tapa Lila** Ver anexos 302035-18 * Con gel separador ** Plasma/EDTA (a) INDICAR CLARAMENTE LA FECHA Y HORA DE ÚLTIMA DOSIS ADEMÁS DE LA FECHA Y HORA DE TOMA DE MUESTRAS , POR CADA FARMACO A CUANTIFICAR.

C ÓDIGO

O BJETIVO : Cuantificar niveles de fármacos circulantes, según se solicite.

5.2.1. Drogas Terapéuticas en Sangre

5.2.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 107

Niveles plasmáticos de Fenobarbital

Niveles plasmáticos de Ácido Valproico

Niveles de Gentamicina y Amikacina

Niveles de Vancomicina

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Niveles de Ciclosporina

Información en la orden de examen: dosis del inmunosupresor (mg y frecuencia), hora y fecha de última toma del medicamento.

El inicio de la monitorización debe comenzar después del período de estado inmunosupresor.

C2: Toma de Muestra a las 2 horas después de la administración del inmunosupresor. Ojalá el medicamento se ingiera siempre con el mismo tipo de líquido y en un envase que no sea plástico.

C0 ( BASAL): Toma de Muestra antes de la administración del medicamento inmunosupresor.

5.2.2.7.

• Enviar la muestra de inmediato debido a inestabilidad del antibiótico en el suero.

• El inicio de la monitorización debe comenzar después del período de estado antibiótico. • La toma de muestra del examen debe tomarse de la extremidad contralateral del sitio de la administración del antibiótico, y no debe ser obtenida de vías heparinizadas. • La orden de examen debe especificar claramente la última dosis del antibiótico, dosificación (mg/horas), hora de toma de muestra, asociación de antibióticos que recibe el paciente y diagnóstico.

• El tiempo de toma de muestra debe considerarse desde el final de la administración del antibiótico.

Valle: 30 minutos antes de la siguiente dosis .

5.2.2.6.

Valle: 30 minutos antes de la siguiente dosis.

Peak: 60 a 90 minutos posterior a la inyección intramuscular y, 30 a 60 minutos posterior a la inyección endovenosa.

5.2.2.5.

Peak: Tomar la muestra de 1 a 3 hrs. después de dosis oral.

Basal: inmediatamente antes de administrar la siguiente dosis, una vez alcanzado el estado de equilibrio.

5.2.2.4.

Debido a la larga vida media, el tiempo real de muestreo no es importante. Sin embargo, cuando se hacen mediciones comparativas es importante que el tiempo sea coherente.

5.2.2.3.

108 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

E XAMEN Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul* Frasco Tapa Azul*

CONTENEDOR

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

CONSENTIMIENTO INFORMADO

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El transporte de muestra se realiza en CAJA DE SEGURIDAD

con llave.

C ADENA DE C USTODIA. no existen o estan incompletos.

FORMULARIO DE

FORMULARIOS CONSENTIMIENTO INFORMADO Y CADENA DE CUSTODIA

La muestra obtenida debe ser rotulada por la Enfermera delante del paciente y llenar el

No se reciben muestras si los

Se exigen condiciones de seguridad Se exigen condiciones de seguridad Se exigen condiciones de seguridad Se exigen condiciones de seguridad Se exigen condiciones de seguridad

COMENTARIOS

y en caso de menor de edad, debe ser firmado por su tutor legal.

La obtención de la muestra se debe realizar en el box de orinas bajo supervisión de la enfermera de la Unidad.

El paciente debe firmar un

La identificación del paciente se realiza en el box de toma de muestras con cédula de identidad respectiva.

Anfetaminas 302035-07 Benzodiazepinas 30203509 Cocaína 302035-05 Marihuana (THC) 302035-06 Opiácidos 302035-08 * Alícuota de 60 cc. (a) CONDICIONES DE SEGURIDAD

C ÓDIGO

O BJETIVO : Determinar la presencia o ausencia de una droga determinada en la muestra de orina obtenida, según se solicite.

5.2.3. Drogas de Abuso en Orina

Proteger de la luz y entregar en el Laboratorio antes de las 10:00 horas AM.

Adjuntar claramente dosis total, frecuencia y fecha/hora de la última dosis en hoja de Protocolo que proporciona la Unidad de Trasplante.

5.2.2.8. Niveles de Tacrolimus

(a) (a) (a) (a) (a)

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 109

EXÁMENES HEMATOLÓGICOS

EXAMEN

CONTENEDOR

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno

COMENTARIOS

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

http://bookmedico.blogspot.com CONTENEDOR

No requiere

EXAMEN

Tiempo de Sangría

CÓDIGO

301072

O BJETIVOS : Evaluar la función plaquetaria, usando el método de Iv.y

5.3.3. Tiempo de Sangría

1 día hábil

ENTREGA

PLAZO DE

No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno No requiere ayuno

COMENTARIOS

No indicado en paciente con consumo de aspirina

COMENTARIOS

Tiempo de Protrombina (TP)(a) Tubo Tapa Celeste* 1 día hábil 301059 Tiempo Parcial de Tromboplastina (TTPA) (a) Tubo Tapa Celeste* 1 día hábil 301085 Fibrinógeno (a) Tubo Tapa Celeste* 1 día hábil 301021 Dímero D Cuantitativo (a) Tubo Tapa Celeste* 1 día hábil 301128 * Plasma/Citrato Na 3.2 %, requerimiento mínimo de sangre: 2,7 ml. paciente adulto, 1,7 ml. paciente pediátrico. (a) Evitar hemólisis y NO INTENTAR MÁS DE DOS PUNCIONES.

CÓDIGO

O BJETIVOS : Estudiar defecto de la vía intrínseca, la vía extrínseca y vía final común de la coagulación, además de la funcionalidad y defectos cuantitativos del fibrinógeno.

5.3.2. Exámenes de Coagulación

Hemograma - VHS Tubo Tapa Lila* 301045 VHS Tubo Tapa Lila* 301086 Hematocrito Tubo Tapa Lila* 301036 Hemoglobina Tubo Tapa Lila* 301038 Leucocitos Tubo Tapa Lila* 301065 Plaquetas Tubo Tapa Lila* 301067 Reticulocitos Tubo Tapa Lila* 301068 * Plasma/EDTA, requerimiento mínimo de sangre: 2 ml. paciente adulto, 0.5 ml. paciente pediátrico.

CÓDIGO

O BJETIVOS : Diagnosticar enfermedades hematológicas, morfología de la serie roja, glóbulos blancos y plaquetas.

5.3.1. Hemograma-VHS y Recuentos

5.3.

110 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

2 Portaobjetos Frasco Tapa Azul* Frasco Plástico

Eosinófilos Nasales Eosinófilos en Orina Eosinófilos en Secreción Bronquial

Hemocultivo

1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil

ENTREGA

PLAZO DE COMENTARIOS

Frasco Hemocultivo (Adulto o pediátrico) Frasco Hemocultivo (Adulto o pediátrico)

Sangre Líquido Sangre Líquido

Hemocultivo (ambulatorio)**

Hemocultivo (hospitalizado)**

30600901

30600902

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Hemocultivo Cuantitativo Pareado

EXAMEN

Hemocultivo Cuantitativo Pareado** 306202 * 1 o 3 ml. con heparina de litio. ** Para plazos de entrega ver anexos de tiempos de respuestas.

CÓDIGO

Sangre

TIPO DE MUESTRA

COMENTARIOS

Mantener frascos a temperatura ambiente

Mantener frascos a temperatura ambiente

COMENTARIOS

Jeringa de Gases*

CONTENEDOR

O BJETIVO : Determinar agente etiológico en pacientes con sospecha de infección asociada a catéter venoso central.

5.4.1.2.

**Para plazos de entrega ver anexos de tiempos de respuestas

CONTENEDOR

TIPO DE MUESTRA

EXAMEN

CÓDIGO

O BJETIVO : Determinar agente etiológico en pacientes con sospecha de bacteremia o fungemia, en pacientes febriles hospitalizados, con cuadro séptico de origen no aclarado, fiebre prolongada, sospecha de endocarditis u otra patología que lo amerite

5.4.1.1.

CONTENEDOR

EXAMEN

EXÁMENES MICROBIOLÓGICOS

5.4.1. Sangre

5.4.

308013 308013 308013 * Alícuota de 60 cc.

CÓDIGO

O BJETIVOS: Obtener muestra de secreción nasal, orina, bronquial.

5.3.4. Eosinófilos Nasales - Orina - Bronquial

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 111

Antigenemia de Citomegalovirus (PP65)**

Urocultivo

Sangre

TIPO DE MUESTRA

2 Tubos Tapa Lila*

CONTENEDOR

Muestras en el laboratorio antes de las 10:00 AM.

COMENTARIOS

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Otros

C ÓDIGO E XAMEN TIPO DE MUESTRA 306137 Antígeno Urinario Streptococcus pneumoniae Orina (a) 309104 Antígeno Urinario de Legionella pneumophila 306018 Cultivo de Koch, en orina Orina (a) 306001 Baciloscopía, en orina * Alícuota de 60 cc. (a) Para estos exámenes se puede utilizar todos los tipos de muestras descritos para urocultivo.

5.4.2.2.

Frasco Tapa Roja* o Azul Frasco Tapa Roja* estéril

CONTENEDOR

Protegido de la luz.

COMENTARIOS

O BJETIVO : Obtener muestra de orina para estudio de pacientes con sospecha de infección del tracto urinario. C ÓDIGO E XAMEN TIPO DE MUESTRA CONTENEDOR COMENTARIOS 30601101 Urocultivo (ambulatorio)**(a) (b) Orina 2º chorro Frasco Tapa Roja* Sonda Foley estéril Sondeo Vesical Recolector Cambiar el recolector cada 30 minutos. 30601102 Urocultivo (hospitalizado)**(a) (b) Orina 2º chorro Frasco Tapa Roja* Sonda Foley estéril Sondeo Vesical Recolector Cambiar el recolector cada 30 minutos. * Alícuota de 60 cc. ** Para plazos de entrega ver anexos de tiempos de respuestas. (a) Traslado antes de dos horas al laboratorio a temperatura ambiente, de lo contrario refrigerar entre 4 - 8 ºC hasta 24 horas. (b) Registrar en orden médica si el paciente esta con tratamiento antibiótico y el tipo de muestra.

5.4.2.1.

5.4.2. Orina

* Plasma/EDTA ** Para plazos de entrega ver anexos de tiempos de respuestas.

30606802

EXAMEN

de infección / reactivación de enfermedad por Citomegalovirus (CMV) en pacientes inmunocomprometidos.

Antigenemia Citomegalovirus

OBJETIVO : Estudio CÓDIGO

5.4.1.3.

112 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Tinción Violeta Bicarbonato para Campylobacter spp*

Leucocitos fecales*

Rotavirus*

Determinación de tóxina de Clostridium difficile*

306130

308005

306170

306116

Frasco Plástico Pequeño** Frasco Plástico Pequeño** Frasco Plástico Pequeño** Frasco Plástico Pequeño**

CONTENEDOR

ENTREGA

3 horas

1 hora

1 hora

1 hora

PLAZO DE ENTREGA

1,5 ml o 1-2 grs. deposición. Muestra estable 2 horas a temperatura ambiente 1,5 ml o 1-2 grs. deposición. Muestra estable 2 horas a temperatura ambiente 1,5 ml o 1-2 grs. deposición. Muestra estable 2 horas a temperatura ambiente 1,5 ml o 1-2 grs. deposición. Muestra estable 2 horas a temperatura ambiente

COMENTARIOS

306007

Coprocultivo*

Tórula en Medio de Ver anexos Muestra estable 24 horas a temperatura transporte Cary Blair ambiente *En caso de sospecha de infección por Vibrio spp o Yersinia spp consignar en orden la sospecha clínica y solicitar por separado para que sea sembrado en los medios adecuados para la detección de estos agentes

O BJETIVO : Detección de microorganismos causantes de diarrea aguda, entre ellos: Salmonella spp, Shigella spp, Yersinia spp, Escherichia coli diarreogénicas y Vibrio spp. PLAZO DE COMENTARIOS E XAMEN C ÓDIGO CONTENEDOR

5.4.4. Deposición Con Medio de Transporte (Coprocultivo)

*Se deben enviar sólo deposiciones diarreicas (líquidas o semilíquidas). ** Sin Aditivos, tipo tempera.

E XAMEN

C ÓDIGO

Tipo de muestra aplicable a:

O BJETIVO : Estudio complementario de cuadros de diarrea aguda.

5.4.3. Deposición Sin Medio de Transporte CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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113

Secreción Nasal

E XAMEN CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA COMENTARIOS

Secreción Faríngea

Cultivo Corriente Nasal*

E XAMEN CONTENEDOR ENTREGA

PLAZO DE

COMENTARIOS

306005

Tinción de Gram (a), (b)

Tórula en Medio de Ver anexos transporte Stuart Tórula en Medio de Cultivo corriente(a), (b) Ver anexos 306008-01/02 transporte Stuart Tórula en Tubo Estéril Si se requiere test rápido y cultivo deben Tapón de Goma Test rápidoStreptococcus B hemolítico Grupo A Ver anexos 306090 enviarse 2 tórulas. (Terracota) (a) Si se requiere estudio para Neisseria gonorrhoeae, tomar otra muestra de la misma manera y enviar de inmediato al laboratorio (b) Si se sospecha difteria, tomar la muestra del borde de la membrana evitando desprenderla. Introducir en tubo estéril y enviar de inmediato al laboratorio. Comunicar al laboratorio de la sospecha diagnóstica antes de tomar la muestra para asegurarse de que estén disponibles los insumos necesarios para una búsqueda dirigida.

C ÓDIGO

O BJETIVO : Estudio de pacientes con sospecha de faringoamigalitis bacteriana. Tipo de muestra aplicable a:

5.4.5.2.

306008-01/02

Medio de transporte Muestra estable 2 horas a temperatura Ver anexos Stuart ambiente *Muestra de secreción nasal puede ser tomada seriada cada 7 días en caso necesario y no se considera útil para el diagnóstico de sinusitis.

C ÓDIGO

O BJETIVO: Estudiar la portación nasal de Staphylococcus aureus. Tipo de muestra aplicable a:

5.4.5.1.

5.4.5. Muestras respiratorias

114 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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Aspirado Nasofaríngeo

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Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo con Medio de Hanks ** Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo con Medio de Hanks ** Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo con Medio de Hanks ** Tubo Estéril Tapa Rosa* Tubo Estéril Tapa Rosa* Tubo con Medio de Hanks ** Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo con Medio de Hanks ** Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca*

Panel viral por Inmunofluorescencia*** Panel viral rápido VRS determinación por IFI*** VRS determinación por test rápido

VRS, aislamiento viral

Adenovirus determinación por IFI*** Adenovirus determinación por test rápido

Adenovirus, aislamiento viral

Influenza A determinación por IFI*** Influenza A determinación por test rápido

Influenza A, aislamiento viral

Influenza B determinación por IFI*** Influenza B determinación por test rápido

Influenza B, aislamiento viral

Parainfluenza determinación por IFI***

Parainfluenza, aislamiento viral

IFD Bordetella*** PCR para Influenza H1N1 (Influenza Humana)***

30607002 30607010 30627002 30627001

30606806

30607005 30607011

30606801

30607006 30607003

30606807

30607007 30607012

30606808

30607008

30606809

30607009 305182

Ver anexos Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Enviar de inmediato al laboratorio con unidad refigerante. Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Enviar de inmediato al laboratorio con unidad refigerante. Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Enviar de inmediato al laboratorio con unidad refigerante. Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Enviar de inmediato al laboratorio con unidad refigerante. Muestra estable 2 horas a TA Enviar de inmediato al laboratorio con unidad refigerante. Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA

COMENTARIOS

* Tubo Estéril Tapa Rosca con sistema de aspiración autómatica. Para aspiración manual utilizar el Tubo Estéril Tapón de Goma (Terracota). ** De no contar con el tubo apropiado (Tubo con Medio de Hanks), puede ser tomado en cualquier Tubo Estéril con tapón de goma o tapa rosca (no algodón) con ½ cc. de suero fisiológico, cuidando de enviar de inmediato al laboratorio en unidad refrigerante. *** Previo el análisis se evaluará la calidad de la muestra verificando el contenido de células de la misma. TA: Temperatura Ambiente.

CONTENEDOR

E XAMEN

C ÓDIGO

Tipo de muestra aplicada en

O BJETIVO : Estudiar la presencia de Virus Respiratorios (Virus Respiratorio Sincicial, Parainfluenza, Influenza A y B, Adenovirus, H1N1) y/o Bordetella pertussis en aspirado nasofaríngeo para inmunofluorescencia y/o test rápidos virales, para el diagnostico de infecciones respiratorias tanto en niños como en adultos.

5.4.5.3.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 115

Torulado Nasofaríngeo

Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca* Tubo Estéril Tapa Rosca*

Panel viral por Inmunofluorescencia** Panel viral rápido VRS determinación por IFI** VRS determinación por test rápido Adenovirus determinación por IFI** Adenovirus determinación por test rápido Influenza A determinación por IFI** Influenza A determinación por test rápido Influenza B determinación por IFI** Influenza B determinación por test rápido Parainfluenza determinación por IFI** PCR para Influenza H1N1 (Influenza Humana)**

30607002 30607010 30627002 30627001 30607005 30607011 30607006 30607003 30607007 30607012 30607008 305182

http://bookmedico.blogspot.com

Expectoración

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Muestra estable 2 horas a TA Enviar inmediatamente al laboratorio en frío

COMENTARIOS

Cultivo corriente (cultivo de expectoración) (a) Frasco Tapa Roja estéril Ver anexos En el laboratorio antes de 30 min a TA 306008-01/02 Cultivo de hongos (si se solicita) Frasco Tapa Roja estéril Ver anexos En el laboratorio antes de 30 min a TA 306017 Tinción de Gram Frasco Tapa Roja estéril Ver anexos En el laboratorio antes de 30 min a TA 306005 (a) Al recibir la muestra en el laboratorio se realizará una tinción para evaluar la calidad microbiológica de la muestra. En caso de no contar con los requisitos de 10 células epiteliales por campo 100x y más de 25 leucocitos por campo 100x la muestra no será procesada y se solicitará nueva muestra. TA : Temperatura Ambiente.

CÓDIGO

O BJETIVO : Detección de microorganismos causantes de infecciones respiratorias bajas. Tipo de muestra aplicada en:

5.4.5.5.

* Tubo Estéril Tapón de Goma (Terracota), con 1-2 ml de Buffer Fosfato Salino (PBS). ** Previo al análisis se evaluará la calidad de la muestra verificando el estado de células de la misma. TA: Temperatura Ambiente.

CONTENEDOR

E XAMEN

C ÓDIGO

Tipo de muestra aplicada en:

O BJETIVO : Estudiar la presencia de Virus Respiratorios (Virus Respiratorio Sincicial, Parainfluenza, Influenza A y B, Adenovirus, H1N1) en muestra nasofaríngea para inmunofluorescencia y/o test rápidos virales, para el diagnóstico de infecciones respiratorias en adultos.

5.4.5.4.

116 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Expectoración para Baciloscopia y Cultivo de Koch

Frasco Plástico Negro*

Baciloscopía (expectoración)

Cultivo de Koch (expectoración)

306002

306018

Expectoración Inducida

Ver anexos

Ver anexos

Consignar hora y método de obtención de la muestra. Consignar hora y método de obtención de la muestra.

EXAMEN

http://bookmedico.blogspot.com Frasco Tapa Roja estéril Frasco Tapa Roja estéril Frasco Tapa Roja estéril Frasco Plástico Negro* Frasco Plástico Negro*

CONTENEDOR

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

ENTREGA

PLAZO DE

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

COMENTARIOS

30600802

Cultivo Cuantitativo de Aspirado Endotraqueal Tubo estéril, tapa rosca Ver anexos (CCAET) (a) (a) Para el estudio etiológico de neumonía asociada a ventilación mecánica solicitar explícitamente en la orden un cultivo cuantitativo del aspirado endotraqueal. No solicitar en paciente que tenga menos de 72 horas de ventilación mecánica y con cambios recientes de terapia antimicrobiana.

CÓDIGO

O BJETIVO : Identificar microorganismos causantes de infección respiratoria baja en pacientes en ventilación mecánica. Tipo de muestra aplicada en:

5.4.5.8. Aspirado Endotraqueal

Cultivo Corriente (Cultivo de Expectoración) 306008-01/02 Tinción de Gram 306005 Cultivo de hongos (si se solicita) 306017 Baciloscopía (si se solicita) 306002 Cultivo de Koch (si se solicita) 306018 * o en su defecto frasco limpio protegido de la luz.

CÓDIGO

Tipo de muestra aplicada en:

O BJETIVO : Identificar microorganismos patógenos en pacientes con infecciones respiratorias bajas y con dificultad para obtener expectoración espontánea.

5.4.5.7.

* o en su defecto frasco limpio protegido de la luz.

Frasco Plástico Negro*

EXAMEN

CÓDIGO

Tipo de muestra aplicada en:

O BJETIVO : Detectar presencia de mycobacterias en cuadros pulmonares sospechosos de tuberculosis.

5.4.5.6.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 117

Secreción Uretral

EXAMEN

Secreción Post Masaje Prostático

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

Lámina para Chlamydias Frasco R1

PLAZO DE ENTREGA

Medio Trasnsporte Stuart Medio Trasnsporte Stuart Medio Trasnsporte Stuart

CONTENEDOR

(a)

(a)

(a) (a) (a)

COMENTARIOS

EXAMEN

CONTENEDOR

ENTREGA

PLAZO DE

http://bookmedico.blogspot.com

Semen

EXAMEN

Tinción de Gram 306005 Cultivo corriente 306008-01/02 Cultivo de hongos 306017 Ureaplasma y Mycoplasma 306023 TA : Temperatura Ambiente.

CÓDIGO

Frasco Estéril Tapa Rosca Frasco Estéril Tapa Rosca Frasco Estéril Tapa Rosca Frasco Estéril Tapa Rosca

CONTENEDOR

O BJETIVO : Obtener muestra para estudio bacteriológico. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.3.

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

Cultivo corriente Medio Transporte Stuart Ver anexos 306008-01/02 Cultivo para Neisseria gonorrhoeae Medio Transporte Stuart Ver anexos 306016 Tinción de Gram Medio Transporte Stuart Ver anexos 306005 (a) Tomar muestra en la mañana, antes de orinar. Si ha orinado, debe esperar al menos una hora antes de tomar la muestra.

CÓDIGO

De inmediato al laboratorio a TA De inmediato al laboratorio a TA De inmediato al laboratorio a TA De inmediato al laboratorio a TA

COMENTARIOS

(a) (a) (a)

COMENTARIOS

O BJETIVO : Obtener muestra para dianóstico de infección prostática o uretritis en pacientes sin secreción uretral. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.2.

306008-01/02 306005 306017

Cultivo corriente Tinción de Gram Cultivo de hongos Estudio de Chlamydia por inmunofluorescencia Directa 306039 (IFD) Mycoplasma spp y Ureaplasma spp 306023 (a) Si el paciente ha orinado debe esperar una hora para el procedimiento.

CÓDIGO

O BJETIVO : Obtener muestra para estudio etiológico en pacientes con sospecha de uretritis. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.1.

5.4.6. Muestras genitales

118 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Secreción de Endocérvix

Ver anexos

Medio Transporte Stuart

http://bookmedico.blogspot.com Ver anexos Ver anexos

Medio Transporte Stuart Medio Transporte Stuart Jeringa c/ Tapón de Goma Medio Transporte Stuart Caldo T Lámina para Chlamydias Medio Transporte Stuart

Tinción de Gram Cultivo Corriente Cultivo para anaerobios Cultivo de hongos Estudio de Mycoplasma y Ureaplasma Estudio deChlamydia spp por inmunofluorescencia (IFD) Cultivo de Neisseria gonorrhoeae

Cultivo Perineal para Detección de Streptococcus Grupo B

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

CONTENEDOR

EXAMEN

Jeringa sin aguja y sin aire

COMENTARIOS

COMENTARIOS

306008-01/02

CÓDIGO

PLAZO DE ENTREGA

Ver anexos

CONTENEDOR

Medio Transporte Stuart 2 tubos

EXAMEN

Búsqueda de Streptococcus grupo B

Indicar en cada tubo si corresponde a muestra vaginal o rectal

COMENTARIOS

O BJETIVO : Obtener muestra de secreción vaginal y rectal para estudio de Streptococcus grupo B. Se realiza en forma preventiva para reducir la morbimortalidad neonatal asociada a este agente. Se realiza entre las 35-37 semanas de gestación. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.6.

306016

306039

306005 306008-01/02 306012 306017 306023

CÓDIGO

PLAZO DE ENTREGA

Ver anexos

Lámina para Chlamydias

Secreción Endometrial

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

Medio Transporte Stuart Medio Transporte Stuart Medio Transporte Stuart Caldo T

Tinción de Gram Cultivo Corriente Cultivo de hongos Estudio de Mycoplasma y Ureaplasma Estudio de Chlamydia spp por inmunofluorescencia (IFD) Cultivo de Neisseria gonorrhoeae

PLAZO DE ENTREGA

CONTENEDOR

EXAMEN

O BJETIVO : Toma de muestra para estudio microbiológico. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.5.

306016

306039

306005 306008-01/02 306017 306023

CÓDIGO

O BJETIVO : Obtener muestra para estudio microbiológico de secreción endocervical. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.6.4.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 119

Líquido Cefalorraquídeo

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos 1 día hábil 1 día hábil

Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo estéril* Tubo Tapa Roja** Tubo Tapa Lila*** Tubo Tapa Roja** Tubo Tapa Lila***

Tinción de Gram (a) Cultivo Corriente (a) Cultivo de hongos(a)

Cultivo de Koch (a)

Látex de meningitis (a) VDRL (a) Cultivo o PCR viral (VHS 1, VHS 2, HH6, CMV, VVZ, VEB, Enterovirus (a) Tinta China (a) Físico-químico (a) Citológico (a)

306005 306008-01/02 306017

306018

306115 306042

Citoquímico (a) 308014 308010 * De preferencia Tapa Roja Estéril. ** Tubo Tapa Roja (Suero/Sin Aditivos) o Tubo Tapa Amarillo (Suero/Gel). *** Plasma/EDTA (a) Ideal 2 - 5 ml de líquido en total.

306150 308014 308010

Ver código

1 día hábil

Ver anexos

Ver anexos Ver anexos Ver anexos

CONTENEDOR

CÓDIGO

EXAMEN

PLAZO DE ENTREGA

Transportar a 4°C. Mantener refrigerado. No congelar.

A temperatura ambiente y protegido de la luz.

COMENTARIOS

O BJETIVO : Determinar agente etiológico en pacientes con sospecha de meningitis o meningoencefalitis. Tipo de muestra aplicable a:

5.4.7.1.

5.4.7. Líquidos

120 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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Líquido Amniótico

CONTENEDOR

Jeringa c/ Tapón de Goma* Jeringa c/ Tapón de Goma* Jeringa c/ Tapón de Goma* Medio de transporte PPLO Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Lila*** Tubo Tapa Amarilla** Tubo Tapa Lila***

EXAMEN

Tinción de Gram (a) Cultivo Corriente (a) Cultivo anaerobio (a) Cultivo de Mycoplasma y Ureaplasma (a) Físico - Químico (a) Estudio Citológico (a) 1 día hábil

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Jeringa sin aguja y sin aire

COMENTARIOS

En el caso de solicitar Mycoplasma y Ureaplasma, el medio de transporte PPLO debe enviarse a 4 ºC durante la semana de 8 a 19 horas. En los otros horarios y fines de semanas o feriados, la muestra debe ser almacenada por el servicio clínico refrigerada (no congelada) y enviada al laboratorio al día hábil siguiente. En caso de sospecha de parto prematuro asociado a la presencia de infección vaginal, se sugiere solicitar concomitantemente un estudio de flujo vaginal.

Extraer 2-5 ml de líquido, inocular 0,2 ml en medio de transporte PPLO (Mycoplasma), al menos 1 ml en un tubo tapa amarilla (físico-químico) y 1 ml en tubo tapa lila (citológico) y dejar al menos 1 ml en la jeringa tapada para el resto de los estudios.

Citoquímico (a) 308014 308010 * o Tubo Estéril, Tapa Roja o Amarillo ** Tubo Tapa Amarilla (Suero/Gel) o Tubo Tapa Roja (Suero/Sin Aditivos) *** Plasma/EDTA (a) Consideraciones:

306005 306008-01/02 306012 306023 308014 308010

CÓDIGO

Esta muestra se aplica a los siguientes exámenes:

O BJETIVO : Determinar agente etiológico en pacientes con sospecha de infección intraamniótica o trabajo de parto prematuro.

5.4.7.2.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

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121

Líquidos de Cavidades Estériles: Pericárdico, Peritoneal, Pleural, Ascítico y Articular

CONTENEDOR

Tubo estéril* Frasco Hemocultivos Pediátrico Tubo estéril Tubo estéril Jeringa c/ Tapón de Goma Tubo Tapa Roja** Tubo Tapa Lila*** Tubo Tapa Roja** Tubo Tapa Lila***

EXAMEN

Tinción de Gram (a), (b) Cultivo Corriente (a), (b) Cultivo de hongos (si se solicita) (a), (b) Cultivo de Koch (si se solicita) (a), (b) Cultivo anaerobio (si se solicita) (a), (b) Físico-químico Citológico

Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos 1 día hábil 1 día hábil

PLAZO DE ENTREGA

Protegido de la luz Jeringa sin aguja y sin aire

Al menos 1 ml Inocular 2-5 ml de líquido en el frasco

COMENTARIOS

Secreción Conjuntiva

5.4.8.1.

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EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

Tinción de Gram Medio Transporte Stuart Ver anexos 306005 Cultivo corriente Medio Transporte Stuart Ver anexos 306008-01/02 Cultivo de hongos Medio Transporte Stuart Ver anexos 306017 Cultivo de Neisseria spp (a) Medio Transporte Stuart Ver anexos 306016 Inmunofluorescencia (IFD) para Chlamydias Lámina para Chlamydias Ver anexos 306039 (a) Si se requiere estudio para Neisseria gonorrhoeae , tomar otra muestra de la misma manera y sembrarla inmediatamente en medio de cultivo Thayer-Martin dibujando una Z (solicitar este medio al laboratorio antes de tomar la muestra). Consignar la sospecha en la orden de examen y enviar rápido al laboratorio. Si no se dispone del medio Thayer-Martin, enviar la muestra inmediatamente al laboratorio en medio de transporte Stuart.

CÓDIGO

O BJETIVO : Detección de microorganismos causantes de conjuntivitis. Tipo de muestra aplicada en:

Otras

5.4.8.

Citoquímico 1 día hábil 308014 308010 * De preferencia Tapa Roja Estéril. ** Tubo Tapa Roja (Suero/Sin Aditivos) o Tubo Tapa Amarillo (Suero/Gel). *** Plasma/EDTA (a) En el caso del líquido articular se debe solicitar además cultivo para Neisseria spp. (b) En caso de que el volumen obtenido sea inferior al exigido enviar en una jeringa tapada y no inocular en frasco de hemocultivo.

306005 306008-01/02 306017 306018 306012 308014 308010

CÓDIGO

O BJETIVO : Determinar agente etiológico de infección según localización. Estas muestra se aplica a los siguientes exámenes:

5.4.7.3.

122 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Secreción Ótica Externa

CONTENEDOR

Medio Transporte Stuart Medio Transporte Stuart Medio Transporte Stuart

EXAMEN

Tinción de Gram Cultivo corriente Cultivo de hongos

EXAMEN

Punta de Catéter o Técnica de Maki

Jeringa c/ Tapón de Goma* Jeringa c/ Tapón de Goma*

CONTENEDOR

EXÁMEN

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Cultivo de hongos

Frasco o Tubo Estéril

CONTENEDOR

Ver Anexos

ENTREGA

PLAZO DE

Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

COMENTARIOS

COMENTARIOS

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

Cultivo de hongos (a) Según Tipo de Muestra 306017 (a) Si se desea estudio de antifungigrama este debe ser solicitado por separado en la orden médica, ya que no se realiza de rutina.

CÓDIGO

O BJETIVO : Obtener muestra de diversas secreciones, tejidos y líquidos estériles para estudio microbiológico de levaduras y hongos filamentosos.

5.4.8.5.

Cultivo corriente de punta de catéter (a) 306008-01/02 (a) Siempre se debe acompañar de 2 hemocultivos periféricos.

CÓDIGO

O BJETIVO: Determinar agente etiológico de infección asociada a catéter venoso central. Muestra aplicable en:

5.4.8.4.

Tinción de Gram 306005 Cultivo corriente 306008-01/02 * o Tubo Estéril, Tapa Roja o Amarillo.

CÓDIGO

O BJETIVO : Detección de microorganismos causantes de otitis media. Tipo de muestra aplicable en:

5.4.8.3. Secreción Otica Media

306005 306008-01/02 306017

CÓDIGO

O BJETIVO: Detección de microorganismos causantes de otitis externa. Tipo de muestra aplicada en:

5.4.8.2.

CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 123

Cultivo Corriente

Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

CERVICAL , ENDOCERVICAL ,

EXAMEN

CONTENEDOR

PLAZO DE ENTREGA

COMENTARIOS

EXPECTORACIÓN, ASPIRADO ENDOTRAQUEAL , DEPOSICIONES , CUALQUIER OTRA SECRECIÓN TOMADA POR TORULADO.

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PCR para Chagas y Toxoplasmosis

EXAMEN

PCR para Toxoplasmosis (a) 306504 PCR para Chagas (a) 306503 (a) Estable a temperatura ambiente hasta por 3 días. * Tubo Especial PCR Chagas y Toxoplasma (Solicitar 88011).

CÓDIGO

O BJETIVO : Estudio de chagas o toxoplasmosis.

5.4.8.8.

Tubo especial* Tubo especial*

CONTENEDOR

7 días hábiles 7 días hábiles

PLAZO DE ENTREGA

Para muestras de sangre y LCR. Para muestras de sangre

COMENTARIOS

Cultivo de Anaerobios (a) Jeringa c/ Tapón de Goma Ver anexos 306012 (a) Las muestras se toman desde cavidades cerradas con jeringa. Deben ser enviadas en la jeringa tapada sin aguja, y removiendo todas las burbujas, de manera inmediata al laboratorio.

CÓDIGO

N O SE REALIZA EN MUESTRA DE ORINA ,

Tipos de Muestras: abcesos, biopsias (tejidos), secreción endometrial, otras colecciones cerradas, líquido amniótico, líquido pleural .

O BJETIVO: Obtener muestra de diversas secreciones y líquidos estériles para estudio microbiológico de agentes anaerobios.

Cultivo de Anaerobios

Según Tipo de Muestra Según Tipo de Muestra

Cultivo Corriente Ambulatorio Cultivo Corriente Hospitalizado

30600801 30600802

5.4.8.7.

CONTENEDORES

EXAMEN

CÓDIGO

Tipos de Muestras: examen aplicable a la mayoría de las secreciones y líquidos estériles. N O SE APLICA A MUESTRAS DE ORINA , MUESTRAS DE DEPOSICIÓN , MUESTRAS DE HEMOCULTIVOS , MUESTRAS DE FLUJO VAGINAL, SECRECIÓN URETRAL .

O BJETIVO: Obtener muestra de diversas secreciones y líquidos estériles para estudio microbiológico de agentes aerobios.

5.4.8.6.

124 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

EXÁMENES SEROLÓGICOS

306033 306037 306042 306038 306041 306039 30603702 30603701 30606938 30606939 30606940 306138 306163 30606917 30606903 30606902 30606912 30606933 30606920 30606904 30606922 30606921 30606937 30606936 *Con gel separador

C ÓDIGO CONTENEDOR

Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

E XAMEN

Estudio de Brucella Paul Bunell / Monotest VDRL RPR FTA-ABS Reacción de Widal IgM Mycoplasma pneumoniae IgG Mycoplasma pneumoniae IgG Chlamydia trachomatis IgG Chlamydia pneumoniae IgG Chlamydia psittaci IgM Bartonella henselae IgG Bartonella henselae Serología Parvovirus B19 IgM Citomegalovirus IgG Citomegalovirus IgM Epstein Barr (VEB IgM) IgG Epstein Barr (VEB IgG) IgM Herpes Simplex 1 (VHS1 IgM) IgG Herpes Simplex 1 (VHS1 IgG) IgM Herpes Simplex 2 (VHS2 IgM) IgG Herpes Simplex 2 (VHS2 IgG) IgM Bordetella IgG Bordetella

O BJETIVO : Detección de Anticuerpos contra enfermedades infecciosas en muestras de sangre.

5.5.

Ver anexos 1 día hábil 1 día hábil 1 día hábil Ver anexos 1 día hábil Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

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Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre Volumen de 3 a 5 ml de sangre

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CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO 125

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Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla* Tubo Tapa Amarilla*

IgM Virus Varicela Zoster

IgG Virus Varicela Zoster

IgM Rubéola

IgG Rubéola

IgM Adenovirus

IgG Adenovirus

IgG Hanta

IgM Hanta

IgM Parotiditis

IgG Parotiditis

Antigenemia Candida

Galactomanano aspergillus

IgG Cisticercosis

IgG Hidatidosis

IgG Toxocariasis

IgG Trichinosis

IgG Distomatosis

IgM Distomatosis

30606926

30606909

30606923

30606905

30606919

30606901

30606934

30606935

30606915

30606916

30603202

30603201

30606164

30606102

30606110

30606112

30606103

30606107

*Con gel separador

CONTENEDOR

E XAMEN

C ÓDIGO

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

Ver anexos

PLAZO DE ENTREGA

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

Volumen de 3 a 5 ml de sangre

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126 CAPÍTULO 5. EXÁMENES OFRECIDOS POR EL SERVICIO DE LABORATORIO CLÍNICO

Capítulo 7

ANEXOS

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174

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

175

7.1. INSTRUCTIVOS PARA PACIENTES 7.1.1. Indicaciones Generales Los exámenes se toman en ayunas de 8:00 a 10:00 AM. De lunes a sábado. Por orden de llegada. La última comida de la noche anterior debe hacerla a las 22:00 horas.

7.1.2.

Curva de Tolerancia a la Glucosa y Curva de Insulina

Debe disponer de al menos tres horas para el examen, incluyendo el tiempo empleado para el trámite del pago. La atención es por orden de llegada. El día previo al examen, la última comida debe ser a las 22:00 horas. Debe presentarse EN AYUNAS en la Unidad de Toma de Muestras a las 08:00 horas AM. Se le realizará una extracción de sangre basal. Luego de ingerir la glucosa la segunda extracción se realizará a los 120 minutos o según indicación médica (30, 60, 90, 120 y/o 180 minutos). Debe permanecer en la Toma de Muestras, en reposo, sin ingerir alimentos, agua y sin fumar durante toda la prueba. En caso de pacientes pediátricos, se recomienda traer un limón para preparar solución de glucosa a ingerir en caso de uso de glucosa en polvo.

7.1.3.

Glicemia o Insulina en Ayunas y Post- Prandial

El paciente debe presentarse en Toma de Muestras en ayunas antes de las 10:00 AM. Se toma la primera muestra de sangre en ayunas. Luego debe consumir el siguiente desayuno (aportado por el paciente): • Una taza de té o café con leche más dos cucharadas de azúcar. • Un pan con margarina, jamón y queso. • Un alfajor. Este desayuno se debe ingerir en un tiempo aproximado de 15 minutos. Una vez terminado el desayuno contabilizar 2 horas exactas y acudir al box para tomar la segunda muestra. Hasta ese momento debe mantenerse en reposo relativo y no debe ingerir ningún otro alimento, ni agua.

7.1.4.

Antígeno Prostático (PSA) Total y Libre

No requiere ayuno. Abstinencia sexual 24 horas antes de la toma de la muestra ya que la actividad sexual aumenta los niveles del Antígeno (PSA). Si ha tenido cualquier manipulación rectal (tacto rectal, ecografía transrectal, u otro procedimiento por vía rectal) debe esperar una semana antes de tomarse el examen, ya que esto aumenta los niveles del Antígeno (PSA). Evitar el estreñimiento o diarrea exagerada con una semana de anticipación.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

176

7.1.5. Prolactina No requiere ayuno. Se requiere fecha de la última regla (FUR). Abstinencia sexual 24 horas antes de la toma de la muestra ya que la actividad sexual aumenta los niveles de la hormona. Si ha tenido cualquier manipulación vaginal (tacto o ecografía transvaginal u otro procedimiento) debe esperar 24 horas antes de tomarse el examen, ya que esto aumenta los niveles de la hormona.

7.1.6.

Recolección de Orina de 24 horas

En la mañana al levantarse a las 7:00 AM elimine la primera orina directamente en el baño. Desde ese momento, debe comenzar a guardar toda la orina que haga durante las 24 horas. Incluída la orina de la 07:00 AM de la mañana del día siguiente. En caso de necesidad de obrar, primero orine y guarde esta orina en la botella de recolección. El envase con la totalidad de la orina recolectada debe ser entregado en la Toma de Muestra en la mañana del día que finaliza la recolección. No se recepcionará el examen sin la correspondiente orden médica.

7.1.7.

Recolección de Orina de 24 horas con Timol

Antes de empezar la recolección de la orina debe agregar el preservante entregado en Toma de Muestras a la botella de recolección. En la mañana al levantarse a las 7:00 AM elimine la primera orina directamente en el baño. Desde ese momento, debe comenzar a guardar toda la orina que haga durante las 24 horas. Incluída la orina de la 07:00 AM de la mañana del día siguiente. En caso de necesidad de obrar, primero orine y guarde esta orina en la botella de recolección. El envase con la totalidad de la orina recolectada debe ser entregado en la Toma de Muestra en la mañana del día que finaliza la recolección. No se recepcionará el examen sin la correspondiente orden médica ya cancelada.

7.1.8.

Catecolaminas y Acido Vainillilmandélico

Eliminar de la dieta cuatro días antes del examen cualquier alimento que contenga: colorantes de color fuerte, vainilla, plátano y café. Al tercer día de dieta vaciar el preservante que se le entregó al bidón de recolección y comience la recolección de orina. En la mañana al levantarse a las 7:00 AM elimine la primera orina directamente en el baño. Desde ese momento, debe comenzar a guardar toda la orina que haga durante las 24 horas. Incluída la orina de la 07:00 AM de la mañana del día siguiente. En caso de necesidad de obrar, primero orine y guarde esta orina en la botella de recolección. El envase con la totalidad de la orina recolectada debe ser entregado en la Toma de Muestra en la mañana del día que finaliza la recolección. No se recepcionará el examen sin la correspondiente orden médica.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

177

7.1.9. Eosinófilos Nasales La obtención de la muestra debe ser matinal, antes de sonarse y cuando tenga secreción nasal. Se debe colocar una placa bajo la fosa nasal que tenga más secreción y tapar la otra, luego impulsar el aire fuerte por la nariz. Juntar ambas placas dejando la muestra al medio y frotarlas suavemente. Separar las placas y dejar secar al aire libre. Una vez secas, guardar las placas en el mismo sobre en que fueron entregadas. Entregar la muestra y junto a la orden médica ya cancelada en la unidad de Toma de Muestras.

7.1.10. Baciloscopia y Cultivo de Koch en Expectoración La obtención de la muestra debe ser matinal, al levantarse, antes de cepillarse los dientes, y antes de ingerir alimentos líquidos. Se debe depositar una muestra de

DESGARRO

en el frasco,

NO SIRVE LA MUESTRA DE SALIVA.

Cerrar y proteger de la luz con papel café. Entregar la muestra y la orden de examen en la unidad de Toma de Muestras, antes de cumplir las 2 horas de obtenida. En caso de ser más de una muestra, estas deberán entregarse a diario, con la orden de examen correspondiente, según la cantidad de muestras indicadas por el médico.

7.1.11. 5 Hidroxi Indol Acético en Orina Retire la solución* que permite la conservación de la orina en el Laboratorio de Gastroenterología. 1 semana antes de la recolección de orina debe abstenerse de ingerir plátanos, castañas, nueces, berenjenas, chocolate. Previa autorización médica, 48 hrs. antes de realizar la recolección de orina suspenda medicamentos tales como tranquilizantes, diuréticos, metil dopa y reserpina. Antes de comenzar a juntar la orina, agregue al recipiente la solución preservante (*Ácido Acéticoglacial y Tolueno). Elimine la primera orina que emita al despertar, registre la hora e inicie la recolección hasta completar 24 hrs. Al completar las 24 hrs. debe orinar y agregarla a lo recolectado. Durante la recolección agite de vez en cuando, suavemente el recipiente, para que se mezcle la orina con la solución preservante. Una vez terminada la recolección lleve de inmediato toda la orina al Laboratorio de Gastroenterología.

7.1.12. D-Xilosa en Orina (Ambulatorio) El paciente debe estar en ayunas. A las 6 AM. se le hace orinar y dicha orina se elimina. Administrar los 25 gramos de D-Xilosa disueltos en 250 cc de agua, esperar unos minutos y dar otros 250 cc de agua. A contar de ese momento y por un lapso de 5 horas, juntar toda la orina. A las 11 AM. se le hace orinar por última vez y esta orina se agrega a la recolectada en las 5 horas precedentes. Enviar toda la orina emitida, inmediatamente al Laboratorio de Gastroenterología. Es importante que la orina llegue lo antes posible al laboratorio para evitar pérdidas por descomposición.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

178

7.1.13.

Hemorragias Ocultas

Cada tarjeta sirve sólo para un examen. Si el médico solicita muestras seriadas, se entregarán tantas tarjetas como exámenes se indiquen (por lo general las muestras seriadas son tres). A contar de 48 hrs. antes de realizar el examen, el paciente se debe someter a una dieta libre de carnes poco cocidas (en especial prietas) y, de alimentos que puedan teñir de color rojo las deposiciones (betarraga, tomate, ciruela, jugos y gelatinas con colorantes rojos). Al tercer día de régimen se toma la primera muestra de deposición, colocando en cada una de las ventanas “A” y “B” un poco de muestra. Siguiendo la misma indicación para la segunda y tercera muestra, si así lo solicita el médico tratante. Cada muestra debe traer claramente escrita la fecha en que fue tomada (puede ser o no correlativa). Una vez tomadas la o las muestras se deben mantener a temperatura ambiente y protegidas de la luz y fuentes de calor, mientras se entregan al laboratorio para ser procesadas. En el caso que las muestras sean seriadas, se deben entregar todas juntas acompañadas por su respectiva orden médica cancelada.

7.1.14. Depociciones Frescas (Leucocitos Fecales y Rotavirus) La muestra de deposiciones debe ser fresca y entregada antes de cumplir 2 horas de obtenida. Recoja la muestra a cualquier hora del día y antes de las 15 horas. El paciente debe orinar primero y luego defecar (obrar) en un recipiente limpio. Colocar una muestra del tamaño de una nuez en el frasco con la ayuda de un palo de helado. Tapar herméticamente el frasco y mantener en un lugar fresco, alejado de la luz y calor. Etiquete cada frasco con el nombre y la fecha. Entregar la muestra y la orden de examen en la unidad de Toma de Muestras. No se recepcionará sin orden de examen correspondiente.

7.1.15. Balance Graso P ROCEDIMIENTO PARA EXAMEN DE B ALANCE G RASO Retire un recipiente prepesado y la solución preservante de las deposiciones en el Laboratorio de Gastroenterología.

Antes de iniciar la recolección agregue al recipiente la solución preservante.

Inicie el régimen indicado.

Al cuarto día de iniciado el régimen recolecte, dentro del tacho prepesado, las deposiciones correspondientes a los tres últimos días del régimen que se detalla a continuación: R ÉGIMEN DE 70 GRAMOS DE MATERIA GRASA PARA B ALANCE G RASO Es un régimen que debe ser consumido por el paciente durante 7 días, en forma constante, sin aumentar ni disminuir las cantidades de alimentos que se indican a continuación.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

A LIMENTOS L eche Mantequilla Huevo Carne, ave o pescado Aceite Verduras F rutas Papas Pan Arroz, fideos, cereales Azúcar, sal, aliño Té o café Miel o mermelada Bebidas gaseosa Jugos Jal eas

179

C ANTIDAD 500 cc 20 g 1 unidad 100 g 40 cc 300 g 200 gr 200 gr 200 gr 50 gr (crudo) a voluntad a voluntad a voluntad a voluntad a vol untad a vol untad

M EDIDA C ASERA 2 tazas l eche pasteuri zada 26 % grasa 4 cucharaditas de té 1 trozo regular 2 cucharas soperas 2 porciones regulares 2 regul ares 2 regul ares 2 1 plato regular

Queda prohibido todo alimento que no aparece en esta lista, como por ejemplo: queso, palta, aceitunas, nueces, almendras, maní, crema, manteca, chocolate, jamón, cecinas, tocino, conservas en aceite, entre otros.

Preparación de la minuta diaria: a voluntad del paciente, ocupando todas las cantidades de alimentos que aparecen en la lista.

7.1.16.

Fasciolasis o Distomatosis

Defeque (obre) en una bacinica limpia, no mezclando la deposición con orina (conviene, orinar antes). Inmediatamente, después de defecar, saque una cantidad de excremento, del tamaño de una nuez y deposítela dentro de uno de los frascos, hasta la mitad del líquido. Con la ayuda de la paleta mézclela con el líquido, hasta formar una pasta, y tape bien el frasco. Si ve algún gusano en la deposición, colóquelo aparte en un frasco con agua de la llave. Lávese las manos. Etiquete el frasco con nombre y dos apellidos. Tome una muestra diariamente hasta completar los 10 frascos. Entregue en el laboratorio al completar las 10 muestras. Comentarios Se debe tener la precaución de no dejar los frascos al alcance de los niños y no beber el contenido, ya que éste es venenoso. Sirven las deposiciones emitidas en cualquier momento del día. Pegue una etiqueta en cada frasco, escriba con letra muy clara el nombre y los dos apellidos, ya que de no cumplir esta indicación el examen será rechazado. Entrega del informe en 10 días hábiles.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

180

7.1.17.

Investigación de Oxiuros (Técnica de Graham)

FORMA DE HACER EL EXAMEN

:

Debe hacerlo al despertar en las mañanas; antes de orinar o defecar (obrar) y antes de hacerse cualquier tipo de aseo. No debe colocarse pomadas o polvos en la región anal la noche anterior al examen. La toma de muestra o aplicación del scotch al paciente debe efectuarla un familiar en los niños y en lo posible también en los adultos. Se rechazarán las muestras con restos de deposiciones u otras sustancias. PROCEDIMIENTO

Desprenda de la placa la tira de scotch y por el lado engomado haga tocaciones (pegar y despegar) en el ano varias veces, teniendo la precaución de no tocar la zona engomada del scotch. Luego pegue el scotch, bien estirado y derecho, en la placa de vidrio. Envuelva la placa en un papel blanco (confort) y sobre el envoltorio ponga la fecha, su nombre y los apellidos (NO DEBE PEGAR NINGUNA ETIQUETA EN LA PLACA DE VIDRIO). Use una placa diferente cada mañana durante 5 días seguidos. Lavarse las manos prolijamente con agua y jabón.

7.1.18. Parasitológico Seriado de Deposiciones TOMA DE MUESTRAS

La muestra de deposiciones puede ser emitida a cualquier hora del día. Recoja las muestras día por medio hasta completar tres (3). El paciente debe orinar primero en el baño y luego defecar en un recipiente limpio. Coloque una muestra del tamaño de una nuez en cada frasco con la ayuda de un palo de helado (hasta la mitad del líquido), mezcle hasta formar una pasta, sin derramar. Tape herméticamente el frasco y mantengalo en lugar fresco, alejado de la luz y del calor. Etiquete cada frasco con el nombre y la fecha de obtención de la muestra. De no cumplir esta condición el examen será rechazado. Si observa algún gusano, colóquelo en un frasco aparte sólo con agua de la llave. Si es lactante la muestra se toma de la parte central del pañal, recién emitida. Una vez completadas las tres muestras entregue en Unidad de Toma de Muestras junto a orden de examen. No se recepcionará sin orden de examen correspondiente. PRECAUCIÓN

No beber el contenido de los frascos porque el líquido que contiene es venenoso. No deje los frascos al alcance de los niños.

7.1.19. Flujo Vaginal (Indicaciones Generales) Aseo genital diario. Sin menstruación hasta 2 a 3 días después. Sin tratamiento de óvulos, cremas o talcos. Horario de atención: lunes a viernes de 08:00 a 16:00 horas.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

7.2.

181

CONSENTIMIENTO INFORMADO VIH

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

182

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

183

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

184

7.3.

FLUJOGRAMA PACIENTES AMBULATORIOS

FLUJOGRAMA: Toma de Muestra Ambulatorio Cliente (Paciente) Orden de examen

Admisión (Cajas)

Box Toma de Muestras

Cobro del examen Comprobante de pago Comprobante de retiro del examen Autorización TOMA DE MUESTRA

Llamado del paciente Verificar: - Examen a tomar - Orden - Comprobante de pago - Comprobante de retiro examen

Ingreso paciente en SIL

Toma de muestra según procedimiento

Identificación de fecha y lugar de retiro del examen Traslado muestras laboratorio Fin del proceso

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

7.4.

185

FLUJOGRAMA PACIENTES HOSPITALIZADOS

FLUJOGRAMA: Toma de Muestra Hospitalizados Médico

Cliente (Paciente)

Orden de examen

Personal Clínico

Laboratorio

Verificación datos de solicitud Consentimiento del examen

Preparación del paciente Preparación del material

Toma de muestra según procedimiento

Registro de enfermería Traslado de muestras

Recepción de muestras

Análisis de muestras

Emisión del Informe Fin del proceso

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ACIDO LÁCTICO

ACIDO ÚRICO

302004

302005

24 horas

1 hora

1 hora

1 hora

24 horas

ALFA 1 ANTITRIPSINA CUANTITATIVA

AMIKACINA, NIVELES PLASMATICOS DE AMILASA

AMILASA CUANTITATIVA

305001

30203502

309006

ANTIGENO CA 125

ANTIGENO CA 15-3

ANTIGENO CA 19-9

ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO

ANTIGENO PROSTATICO TOTAL

ANTIGENO PROSTATICO TOTAL Y LIBRE

APOLIPOPROTEINAS

AZUCARES REDUCTORES (BENEDICT-FEHLING)

BARTONELLA HENSELAE, SEROLOGÍA IGM E IGG

BENZODIAZEPINAS , DETERMINACION DE

BICARBONATO STANDARD

BILIRRUBINA TOTAL

BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA

30517001

30517002

30517003

305070

30507001

30507002

302070

308001

306138

30203509

302011

302012

302013

ANTIESTREPTOLISINA O

ANTIFUNGIGRAMA

305008

306028

AMINOACIDEMIA

AMINOACIDURIA

302009

309007

302008

ADENOVIRUS IgM, Ac VIRALES, DETERM DE

ADENOVIRUS, AISLAMIENTO VIRAL

30606919

30606801

ACILCARNITINA

ADENOVIRUS IgG, Ac VIRALES, DETERM DE

302121

30606901

http://bookmedico.blogspot.com 1 hora

1 hora

45 min

1 hora

7 días hábiles

1,5 horas

48 horas

4 horas

1 hora

1,5 horas

2 horas

2 horas

2 horas

5 días hábiles

1,5 horas

7 días hábiles

7 días hábiles

1 hora

1 hora

24 horas

3 días hábiles

7 días hábiles

7 días hábiles

7 días hábiles

7 días hábiles

ACIDO FOLICO O FOLATOS SERICO

30100201

15 días hábiles

ACIDO FOLICO O FOLATOS ERITROCITARIO

30100202

1 hora 1 hora

ACIDO ÚRICO CUANTITATIVO

ACETONA CUALITATIVA

302001

ACIDO VAINILLILMANDÉLICO

AC. VALPROICO , NIVELES PLASMATICOS DE

30203511

3 días hábiles

309004

17 HIDROXICORTICOESTEROIDES.

303044

URGENCIA 7 días hábiles

24 horas 24 horas 24 horas 24 horas

2 horas 1 hora 2 horas 2 horas

24 horas 7 días hábiles

7 días hábiles

48 horas

48 horas 2 horas

24 horas 24 horas

24 horas

2 horas 4 horas

24 horas

3 horas 2 horas

24 horas 24 horas

3 horas 3 horas

24 horas 5 días hábiles

2 horas 5 días hábiles

7 días hábiles 7 días hábiles

7 días hábiles 7 días hábiles

24 horas 24 horas

2 horas

24 horas

24 horas 2 horas

7 días hábiles 3 días hábiles

3 días hábiles

7 días hábiles

7 días hábiles 7 días hábiles

7 días hábiles No se realiza

7 días hábiles No se realiza

24 horas 15 días hábiles

2 horas

24 horas 24 horas

2 horas 2 horas 15 días hábiles

24 horas 24 horas

24 horas 24 horas

24 horas 24 horas

2 horas 2 horas

7 días hábiles 3 días hábiles

3 días hábiles

AMBULATORIOS

7 días hábiles

HOSPITALIZADOS

7.5.

303032

17 CETOESTEROIDES

EXAMEN

303043

CÓDIGO

186 CAPÍTULO 7. ANEXOS

TIEMPOS DE RESPUESTA SLC

7.5.1. Unidad de Bioquímica

EXAMEN

BORDETELLA PERTUSSIS IGG, AC VIRALES, DETERM DE BORDETELLA PERTUSSIS IGG, AC VIRALES, DETERM DE CALCIO CALCIO CUANTITATIVO CALCIO IÓNICO CÁLCULO URINARIO CARBAMAZEPINA, NIVELES PLASMÁTICOS DE CARNITINA LIBRE Y TOTAL CATECOLAMINAS EN SANGRE CATECOLAMINAS URINARIAS CHLAMYDIA PNEUMONIAE , IgG, AC VIRALES, DETERM DE CHLAMYDIA PSITTACI, IgG, AC VIRALES, DETERM DE CHLAMYDIA TRACHOMATIS, IgG, AC VIRALES, DETERM DE CICLOSPORINA NIVELES PLASMATICOS DE CISTICERCOSIS, IGG, (ELISA) CITRATURIA CLEARENCE DE CREATININA COBRE EN ORINA COBRE SANGRE - COBRE EN ORINA COCAÍNA / MARIHUANA (AMBOS), DETERMINACIÓN DE COCAÍNA, DETERMINACIÓN DE COLESTEROL HDL COLESTEROL TOTAL COLINESTERASA CREATININA CREATININA CUANTITATIVA CREATÍNQUINASA CK MB MIOCÁRDICA CREATÍNQUINASA CK TOTAL CUERPOS CETÓNICOS CURVA DE TOLERANCIA DE GLUCOSA DESHIDROGENASA LÁCTICA TOTAL (LDH) DETECCIÓN ASPERGILLUS, GALACTOMANANO

CÓDIGO

30606936 30606937 302015 309008 302016 309009 30203512 302120 303005 303034 30606939 30606940 30606938 30203501 30606104 309106 302024 309111 302020 30203516 30203505 302068 302067 302021 302023 309010 302025 302026 309011 302048 302030 30603201

URGENCIA

7 días hábiles 7 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 48 horas 1 hora 7 días hábiles 15 días hábiles 15 días hábiles 7 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 1 hora 7 días hábiles 7 días hábiles 1 hora 15 días hábiles 15 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 1 hora 2 días 1 hora 1 hora 1 hora 1 hora 1 hora 3 horas 1 hora 48 horas

7 días hábiles 7 días hábiles 2 horas 2 horas 1 hora 48 horas 2 horas 7 días hábiles 15 días hábiles 15 días hábiles 7 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 2 horas 7 días hábiles 7 días hábiles 2 horas 15 días hábiles 15 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 días 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 3 horas 2 horas 48 horas

HOSPITALIZADOS

7 días hábiles 7 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 48 horas 24 horas 7 días hábiles 15 días hábiles 15 días hábiles 7 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 7 días hábiles 24 horas 15 días hábiles 15 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 2 días 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 48 horas

AMBULATORIOS

CAPÍTULO 7. ANEXOS 187

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CÓDIGO 30203514 30606103 302032 308012 309012 30606803 302033 303009 30203515 30203513 308014 308030 302037 302038 302040 302041 302042 309015 306041 302045 302046 303012 30203503 302047 308015 309016 303014 301041 308004 30606102 309017 30603701 303017 303031

EXAMEN DIGOXINA, NIVELES PLASMATICOS DE DISTOMATOSIS, IGG, (ELISA) ELECTROLITOS ELECTROLITOS ELECTROLITOS ENTEROVIRUS,AISLAMIENTO VIRAL ENZIMA CONVERTIDORA DE ANGIOTENSINA ERITROPOYETINA PLASMÁTICA FENITOINA , NIVELES PLASMÁTICOS DE FENOBARBITAL, NIVELES PLASMÁTICOS DE FISICOQUÍMICO FOSFATASA ÁCIDA PROSTÁTICA FOSFATASA ÁCIDAS TOTALES FOSFATASA ÁCIDAS TOTALES Y FRACCIÓN PROSTÁTICA FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES FOSFOLÍPIDOS FÓSFORO FÓSFORO CUANTITATIVO FTA - ABS GAMMA GLUTAMILTRANSPEPTIDASA (GGT) GASES Y EQUILIBRIO ÁCIDO BASE GASTRINA GENTAMICINA, NIVELES PLASMÁTICOS DE GLUCOSA GLUCOSA GLUCOSA CUANTITATIVA GONADOTROFINA CORIÓNICA, FRACCIÓN BETA HEMOGLOBINA GLICOSILADA HEMORRAGIAS OCULTAS HIDATIDOSIS, IGG, (ELISA) HIDROXIPROLINA IgG MYCOPLASMA PNEUMONIAE INSULINA INSULINA, CURVA DE

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URGENCIA 1 hora 7 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 7 días hábiles 2 días hábiles 5 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 2 días 2 días 2 días 1 hora 48 horas 1 hora 1,5 horas 7 días hábiles 1 hora 1 hora 48 horas 1 hora 1 hora 1 hora 1 hora 1,5 horas

HOSPITALIZADOS 2 horas 7 días hábiles 1 hora 1 hora 2 horas 7 días hábiles 2 días hábiles 5 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 2 días 2 días 2 días 2 horas 48 horas 2 horas 2 horas 7 días hábiles 2 horas 2 horas 48 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 1,5 hora 7 días hábiles 10 días hábiles 3 días hábiles 24 horas 24 horas

AMBULATORIOS 24 horas 7 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 2 días hábiles 5 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 2 días 2 días 2 días 24 horas 48 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 24 horas 24 horas 48 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 10 días hábiles 3 días hábiles 24 horas 24 horas

188 CAPÍTULO 7. ANEXOS

CÓDIGO 302039 302069 302054 302055 302056 309109 30203506 30203517 309013 302113 306136 302057 309020 30203508 309022 309023 309024 302058 309026 309105 30606917 306139 306146 306144 306145 306147 306504 306143 306142 302075 302076 302034 308006 308017

EXAMEN ISOENZIMAS FOSFATASAS ALCALINAS LÍPIDOS TOTALES LIPOPROTEÍNAS, ELECTROFORESIS DE LITIO MAGNESIO MAGNESIO EN ORINA MARIHUANA, DETERMINACIÓN DE METOTREXATO, NIVELES PLASMÁTICOS DE MICROALBUMINURIA CUANTITATIVA MIOGLOBINA NEUMOCYSTIS CARINII , PCR NITRÓGENO UREICO NITRÓGENO UREICO CUANTITATIVO OPIÁCEOS, DETERMINACIÓN DE ORINA COMPLETA ORINA, FISICOQUÍMICO ORINA, SEDIMENTO OSMOLALIDAD PLASMA OSMOLALIDAD URINARIA OXALATURIA PARVOVIRUS B19 IgM; ESTUDIO SEROLÓGICO PCR MICOBACTERIAS TBC PCR EPSTEIN BARR PCR HERPES SIMPLE I Y HERPES II PCR HERPES TIPO 6 PCR PARVOVIRUS B19 PCR TOXOPLASMOSIS PCR VARICELA ZOSTER PCR, ENTEROVIRUS PERFIL BIOQUÍMICO PERFIL HEPÁTICO PERFIL LIPÍDICO PH PH

URGENCIA 7 días hábiles 48 horas 5 días hábiles 1 hora 1 hora 1,5 horas 1 hora 24 horas 1 hora 5 días hábiles 2 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 1,5 horas 1,5 horas 1,5 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 7 días hábiles 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 7 días hábiles 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 1 hora 1 hora 1 hora 45 min 45 min.

HOSPITALIZADOS 7 días hábiles 48 horas 5 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 24 horas 2 horas 5 días hábiles 2 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 7 días hábiles 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 7 días hábiles 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 2 horas 2 horas 2 horas 1 hora 1 hora

AMBULATORIOS 7 días hábiles 48 horas 5 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas No se realiza 2 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 7 días hábiles 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 7 días hábiles 48 horas - 72 horas 48 horas - 72 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas

CAPÍTULO 7. ANEXOS 189

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CÓDIGO 302115 30203519 302119 302118 305031 30503102 309028 302059 302060 308018 30203520 30606905 30606923 309110 303503 306148 305138 30203518 306131 30203510 305063 305061 305062 303024 303026 303027 30606110 302063 30206301 30206302 302064 30606112 303028 302114 30203504

EXAMEN PREALBUMINA PRIMIDONA, NIVELES PLASMÁTICOS DE PRO BNP PROCALCITONINA PROTEÍNA C REACTIVA CUANTITATIVA PROTEÍNA C REACTIVA ULTRASENSIBLE PROTEÍNA CUANTITATIVA PROTEÍNAS FRACCIONADAS ALBÚMINA/GLOBULINA PROTEÍNAS TOTALES PROTEÍNAS TOTALES Y ALBÚMINA RAPAMICINA, NIVELES PLASMÁTICOS DE RUBEOLA IgG, Ac VIRALES, DETERM DE RUBEOLA IgM, Ac VIRALES, DETERM DE SCREENING METABÓLICO SCREENING NEONATAL AMPLIADO SHELL VIAL DE CMV (CITOMEGALOVIRUS) SUBCLASES DE IGG (1.2.3.4) TACROLIMUS, NIVELES PLASMÁTICOS DE TÉCNICA PCR CHAGAS TEOFILINA(AMINOFILINA), NIVELES PLASMÁTICOS DE TIPIFICACIÓN HLA A Y B TIPIFICACIÓN HLA B-8 TIPIFICACIÓN HLA DR TIROESTIMULANTE (TSH) TIROXINA LIBRE (T4L) TIROXINA O TETRAYODOTIRONINA (T4). TOXOCARIASIS , IGG, (ELISA) TRANSAMINASAS OXALACÉTICA Y PIRÚVICA TRANSAMINASAS, OXALACÉTICA (GOT) TRANSAMINASAS, PIRUVICA (GPT) TRIGLICÉRIDOS TRIQUINOSIS, IGG, (ELISA) TRIYODOTIRONINA (T3) TROPONINA VANCOMICINA, NIVELES PLASMÁTICOS DE

URGENCIA 1 hora 48 horas 1 hora 3 horas 1,5 horas 1 hora 1,5 horas 1 hora 1 hora 1 hora 7 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 a 10 días hábiles 72 horas 7 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 1 hora 5 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 1,5 horas 1,5 horas 1,5 horas 7 días hábiles 1 hora 1 hora 1 hora 1 hora 7 días hábiles 1,5 horas 1 hora 1 hora

HOSPITALIZADOS 2 horas 48 horas 2 horas 4 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 7 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 a 10 días hábiles 72 horas 7 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 2 horas 5 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 7 días hábiles 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 7 días hábiles 2 horas 1 hora 2 horas

AMBULATORIOS 24 horas 48 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas No se realiza 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 a 10 días hábiles 72 horas 7 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 24 horas 5 días hábiles 5 días hábiles 5 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 7 días hábiles 24 horas 24 horas 24 horas

190 CAPÍTULO 7. ANEXOS

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CÓDIGO 30606934 30606935 30606915 30606916 30606909 30606908 30606926 301087 30606806 302122 309112

EXAMEN VIRUS HANTA IgG, Ac VIRALES, DETERM DE VIRUS HANTA IgM, Ac VIRALES, DETERM DE VIRUS PAROTIDITIS IgM; ESTUDIO SERÓLOGICO VIRUS PAROTIDITIS IgG; ESTUDIO SERÓLOGICO VIRUS VARICELA ZOSTERIgG, DETECCIÓN DE VIRUS VARICELA ZOSTERIgM, DETECCIÓN DE VIRUS VARICELA ZOSTERIgM, DETECCIÓN DE VITAMINA B12 VRS SINCICIAL RESPIRATORIO, AISLAMIENTO VIRAL ZINC ZINC EN ORINA

URGENCIA 4 días 4 días 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 15 días hábiles 15 días hábiles

HOSPITALIZADOS 4 días 4 días 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 24 horas 7 días hábiles 15 días hábiles 15 días hábiles

AMBULATORIOS No se realiza No se realiza 5 días hábiles 5 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 7 días hábiles 24 horas No se realiza 15 días hábiles 15 días hábiles

CAPÍTULO 7. ANEXOS 191

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CÓDIGO 301128 301021 301036 301038 301045 301062 308013 301063 301064 301065 301066 301067 301068 301069 301059 301072 301085 301086

EXAMEN DÍMERO D CUANTITATIVO FIBRINÓGENO. HEMATOCRITO HEMOGLOBINA HEMOGRAMA RECUENTO DE BASÓFILOS (ABSOLUTO) RECUENTO DE EOSINÓFILOS nasal RECUENTO DE EOSINÓFILOS (ABSOLUTO) RECUENTO DE ERITROCITOS ( ABSOLUTO) RECUENTO DE LEUCOCITOS RECUENTO DE LINFOCITOS (ABSOLUTO) RECUENTO DE PLAQUETAS RECUENTO DE RETICULOCITOS RECUENTO DIFERENCIAL TIEMPO DE PROTROMBINA TIEMPO DE SANGRÍA (IVY) TIEMPO PARCIAL DE TROMBOPLASTINA (TTPA) VELOCIDAD DE ERITRO SEDIMENTACIÓN

URGENCIA 1,5 horas 1 hora 15 min 15 min 1,5 horas 1,5 horas 1,5 horas 1,5 horas 1 hora 15 min 1,5 horas 15 min 1 hora 1,5 horas 45 minutos No se realiza 45 minutos 15 min

HOSPITALIZADOS 1,5 horas 1 hora 15 min 15 min 2 horas 2 horas 2 horas 2 horas 1 hora 15 min 2 horas 15 min 1 hora 2 horas 1,15 horas depende del paciente 45 minutos 15 min

AMBULATORIOS 24 horas 24 horas 24 horas día 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas 24 horas depende del paciente 24 horas 24 horas

192 CAPÍTULO 7. ANEXOS

7.5.2. Unidad de Hematología

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1,5 horas

1 día 2 días según calendario en la tarde según calendario en la tarde 1 día 2 días (-) 3 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 2 días (-) hasta 6 días (+) 60 días (-), (+) antes de 60 días 2 días (-) hasta 3 días (+) levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo 3 días (-) 5 días (+) 2 días (-), hasta 4 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 3 horas 30 minutos

ADENOVIRUS, Ag VIRALES DETERM. DE, TEST RÁPIDO ANTIBIOGRAMA CORRIENTE

ANTÍGENO ESTREPTOCOCO PNEUMONIAE ANTÍGENO URINARIO DE LEGIONELLA PNEUMOPHILA ASPERGILOSIS, CANDIDIASIS, HISTOPLASMOSIS U OTROS HONGOS

BACILOSCOPIA ZIEHLNEELSEN BORDETELLA PERTUSIS, Ag VIRALES DETERM. DE, POR IF CITOMEGALOVIRUS IGG, C/U CITOMEGALOVIRUS IGM, C/U CLAMIDIAS POR INMUNOFLUORESCENCIA DIRECTA COPROCULTIVO CULTIVO CORRIENTE CULTIVO CORRIENTE AMBULATORIO (EXCEPTO COPROCULTIVO, HEMOCULTIVO)

CULTIVO CORRIENTE HOSPITALIZADO (AUTOMATIZADO) (EXCEPTO COPROCULTIVO, HEMOCULTIVO)

CULTIVO PARA ANAEROBIOS CULTIVO PARA BACILO DE KOCH CULTIVO PARA CAMPYLOBACTER, YERSINIA, VIBRIO CULTIVO PARA HONGOS

CULTIVO PARA HONGOS O LEVADURAS

CULTIVO PARA LISTERIA. CULTIVO PARA NEISSERIA GONORRHOEAE CULTIVO PARA NEISSERIA MENINGITIDIS DETERMINACIÓN TOXINA CLOSTRIDIUM DIFFICILE DIRECTO AL FRESCO C/S TINCIÓN

30607011 306026

306137 309104 306032

306002 30607009 306106 306107 306034 306007 306008 30600801

30600802

306012 306018 306014 306117

306017

306020 306016 306021 306116 308011

1 día bacteria comunitaria, 2 días bacteria hospitalaria 24 horas 1 hora 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo

URGENCIA Recibido antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs.

EXAMEN ADENOVIRUS, Ag VIRALES DETERM. DE, POR IF

CÓDIGO 30607005

AMBULATORIOS Recibido antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas 1 día bacteria comunitaria 2 días bacteria hospitalaria 24 horas 1 hora 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo 1 día 2 días según calendario en la tarde según calendario en la tarde 1 día 2 días (-) 3 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 3 días (-) hasta 6 días (+) 60 días (-), (+) antes de 60 días 2 días (-) hasta 3 días (+) levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo 3 días (-) 5 días (+) 2 días (-), hasta 4 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 3 horas 30 minutos

HOSPITALIZADOS Recibido antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas 1 día bacteria comunitaria 2 días bacteria hospitalaria 24 horas 1 hora 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo 1 día 2 días según calendario en la tarde según calendario en la tarde 1 día 2 días (-) 3 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-), hasta 5 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 3 días (-) hasta 6 días (+) 60 días (-), (+) antes de 60 días 2 días (-) hasta 3 días (+) levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo 3 días (-) 5 días (+) 2 días (-), hasta 4 días (+) 3 días (-) 4 días (+) 3 horas 30 minutos

CAPÍTULO 7. ANEXOS 193

7.5.3. Unidad de Microbiología

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IGM MYCOPLASMA PNEUMONIAE , C/U INFLUENZA A, Ag VIRALES DETERM. DE, POR IF

INFLUENZA A, Ag VIRALES DETERM. DE, TEST RÁPIDO

INFLUENZA B, Ag VIRALES DETERM. DE, POR IF

INFLUENZA B, Ag VIRALES DETERM. DE, TEST RÁPIDO LÁTEX PARA MENINGITIS LEUCOCITOS FECALES MYCOPLASMA HOMINIS Y UREAPLASMA URYALITICUM NEUMOCYSTIS CARINII PANEL RESPIRATORIO DIRECTO, POR IF (INCLUYE HASTA 5 MUESTRAS) PANEL RESPIRATORIO DIRECTO, TEST RAPIDO (X4) PARAINFLUENZA, Ag VIRALES DETERM. DE, POR IF

R.P.R.

30603702 30607006

30607003

30607007

30607012 306115 308005 306023 306135 30607002

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306038

30607010 30607008

30606904 30606920 30606921 30606922 306118

306009 30600901 30600902

30804402

EXAMEN EPSTEIN BARR IgG, Ac VIRALES, DETERM DE EPSTEIN BARR IgM, Ac VIRALES, DETERM DE EXAMEN DIRECTO AL FRESCO FLUJO VAGINAL, ESTUDIO DE (INCLUYE TOMA DE MUESTRA Y) FLUJO VAGINAL, ESTUDIO DE (INCLUYE TOMA DE MUESTRA Y) HEMOCULTIVO AEROBIO HEMOCULTIVO AEROBIO, AMBULATORIO C/U HEMOCULTIVO AEROBIO, HOSPITALIZADO (AUTOMATIZADO) C/U HERPES SIMPLE 1 IgG, Ac VIRALES, DETERM DE HERPES SIMPLE 1 IgM, Ac VIRALES, DETERM DE HERPES SIMPLE 2 IgG, Ac VIRALES, DETERM DE HERPES SIMPLE 2 IgM, Ac VIRALES, DETERM DE IDENTIFICACIÓN DE HONGOS

CÓDIGO 30606933 30606912 306004 308044

levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo según calendario en la tarde llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas 1 hora 1 hora 2 días 24 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs 1,5 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs durante el día

5 días (-), hasta 7 días (+) 5 días (-), hasta 7 días (+) 5 días (-), hasta 7 días (+)

3 días (-) 5 días (+)

30 minutos 3 días (-) 4 días (+)

URGENCIA

según calendario en la tarde según calendario en la tarde según calendario en la tarde según calendario en la tarde levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo según calendario en la tarde llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas 1 hora 1 hora 2 días 24 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. durante el día

5 días (-), hasta 7 días (+) no hacemos 5 días (-), hasta 7 días (+)

3 días (-) 5 días (+)

HOSPITALIZADOS según calendario en la tarde según calendario en la tarde 30 minutos 3 días (-) 4 días (+)

1,5 horas 1 hora 1 hora 2 días 24 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. durante el día

5 días (-), hasta 7 días (+) 5 días (-), hasta 7 días (+) 5 días (-), hasta 7 días (+) según calendario en la tarde según calendario en la tarde según calendario en la tarde según calendario en la tarde levaduras 3 días (-) hasta 5 días (+)/ hongos filamentosos 15 días (-), (+) cuando depende del tipo de desarrollo según calendario en la tarde llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. según horario en el día

3 días (-) 5 días (+)

AMBULATORIOS según calendario en la tarde según calendario en la tarde 30 minutos 3 días (-) 4 días (+)

194 CAPÍTULO 7. ANEXOS

30 minutos 1 hora 1 día 30 minutos 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) durante el día llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas

30 minutos 1 hora 1 día 30 minutos 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) durante el día llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas

30 minutos 1 hora 30 minutos 30 minutos 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) 1 días (-) hasta 4 días (+) durante el día llegados antes de medio día a las 12 hrs, luego a las 16 hrs. 1,5 horas

REACCIÓN DE PAUL BUNNELL REACCIÓN DE WIDAL REACCIÓN DE WRIGHTHUDLESON PARA BRUCELLA ROTAVIRUS SECRECION URETRAL, ESTUDIO DE (INCLUYE TOMA DE MUESTRA Y) TEST RÁPIDO DE STREPTOCOCCUS GRUPO A TINCIÓN CAMPYLOBACTER TINCIÓN DE GRAM. TINCIÓN DE TINTA CHINA (HONGOS EN LCR) UROCULTIVO UROCULTIVO, AMBULATORIO (RECUENTO DE COLONIAS Y ANTIBIOGRAMA) (CUALQUIER) UROCULTIVO,HOSPITALIZADO (AUTOMATIZADO) (REC.DE COLONIAS Y ANTIBIOGRAMA)CUALQUIER V.D.R.L VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO POR INMUNOFLUORESCENCIA VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO, TEST RÁPIDO

306036 306039 306033 306170 30804401

30627001

306042 30627002

30601102

306090 306130 306005 306150 306011 30601101

AMBULATORIOS

30 minutos 30 minutos 2 días 30 minutos 3 días (-) 5 días (+)

HOSPITALIZADOS

30 minutos 30 minutos 2 días 30 minutos 3 días (-) 5 días (+)

URGENCIA

30 minutos 30 minutos 2 días 30 minutos 3 días (-) 5 días (+)

EXAMEN

CÓDIGO

CAPÍTULO 7. ANEXOS 195

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

196

7.6.

SOLICITUD DE DROGAS DE ABUSO

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

197

7.6.1. Cadena de Custodia

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

198

7.7.

CONTENEDORES DE MUESTRAS CLÍNICAS

7.7.1. Tubos C ONTENEDOR Tubo Tapa Amarilla (Suero/gel) Tubo Tapa Lila (Plasma/EDTA) Tubo Tapa Verde (Plasma/Heparina de Litio) Tubo Tapa Roja (Suero/Sin aditivos) Tubo Tapa Celeste (Plasma/Citrato Na 3.2 %) Tubo Tapa Azul Tubo Tapa Gris (Plasma/Fluoruro) Tubo con Medio de Hanks* Tubo Estéril Tapón de Goma (Terracota) Tubo Estéril Tapa Rosca (Cónico) Tubo Especial PCR Chagas y Toxoplasma Tubo Especial Ácido Pirúvico Frasco Estéril con Suero Fisiológico * Medio utilizado exclusivamente para muestras de estudios virales.

T IPO DE M UESTRA Sangre Sangre Sangre Sangre Sangre Sangre Sangre Secreciones y líquidos Muestras microbológicas Aspirados y expectoraciones Sangre Sangre Flujo vaginal y secreción uretral

7.7.2. Frascos C ONTENEDOR Frasco Orina (Tapa Azul) Frasco Urocultivo (Tapa Roja) Frasco Plástico Pequeño (Sin Aditivos, tipo tempera) Frasco Plástico Negro Frasco Hemocultivos (Adultos y pediátricos) Frasco o Bidón de Recolección Frascos Parasitológico

T IPO DE M UESTRA Orina Orina aséptica Deposiciones frescas y cálculos Expectoración (sólo Baciloscopías) Sangre o líquidos estériles Orina Deposición

7.7.3. Medio de Transporte C ONTENEDOR Medio de Transporte Amies Medio de Transporte Stuart Medio de Transporte Cary Blair Medio de Transporte R1

T IPO DE M UESTRA Secreciones Secreciones Deposición Secreciones urogenitales

7.7.4. Otros C ONTENEDOR Papel filtro Jeringa heparinizada, Jeringa de gases Portaobjetos Recolector pediátrico Tórula con fisiogel Recipiente de vidrio para balance graso Contenedor desmineralizado Tarjetas hemorragias ocultas Láminas para Chlamydias

T IPO DE M UESTRA Sangre Sangre Secreciones, raspados Orina Secreciones Deposición Orina de recolección Deposición Secreciones

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

7.8.

199

GLOSARIO DE TÉRMINOS

ACTH: Adenocorticotropina AFP: Alfafetoproteína ANALÍTICA: Es el procesamiento de las muestras hasta obtener un resultado. ANA: Anticuerpos antinucleares. ANCA: Anticuerpos anti citoplasma de neutrófilos. AMA: Anticuerpos anti mitocondriales. AML: Anticuerpos Anti musculo liso. APCA: Anticuerpos Anti células Parietales ARP: Actividad de Renina Plasmática. ATG: Anticuerpos Anti Tiroglobulina. ATPO: Anticuerpos Anti Tiroperoxidasa. B2M: Beta 2 Microglobulina. BhCG: Gonadotrofina Coriónica Humana Fracción ß. CEA: Antígeno Carcinoembrionario. CCP3: Péptido C Citrulinado 3ª Generación. cc: Centímetro Cúbico. C3: Fracción C3 del Complemento. C4: Fracción C4 del Complemento. CMV: Citomegalovirus CVC: Catéter Venoso Central. DNCB: Dinitroclorobenceno DVA: Drogas Vasoactivas. EDTA: Acido Etilendiaminotetraacético. ED: Endovenosa EMA: Anticuerpos Anti Endomisio. ENA: Antígenos Nuclerares Extractables. HbA1C: Hemoglobina Glicosilada. HH6: Virus Herpes tipo 6. HLA: Complejo Mayor de Histocompatibilidad. IF: Inmunofluorescencia IFD: Inmunofluorescencia Directa. IFI: Inmunofluorescencia Indirecta. IgA: Inmunoglobulina A. IgE: Inmunoglobulina E. IgG: Inmunoglobulina G.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

200 IgM: Inmunoglobulina M. IM: Intramuscular Lancetas: Dispositivo para Punción Capilar. LC: Laboratorio Clínico. LCR: Líquido Cefalorraquídeo. FR: Factor Reumatorideo. F.U.R: Fecha de Última Regla GBM: Anticuerpos Antimenbrana Basal Glomerular.

Glucómetro: Dispositivos Electrónicos para Medir los Niveles de Glucosa en Sangre Capilar. GP1: Glicoproteína 1. gr: Gramo ml:Mililitro MPO: Mieloperoxidasa PC: Computador PEF: Peak Expiratory Flow POST-ANALÍTICA: Corresponde a la emisión del informe de los resultados obtenidos con la respectiva validación por los profesionales competentes y la entrega al Servicio respectivo. PPD: Derivado Proteíco Purificado. PKU: Fenilcetonuria PREA-ANALÍTICA: Etapa comprendida desde la solicitud del examen, preparación del paciente, toma de la muestra, transporte hacia el laboratorio y finalmente recepción de la muestra en éste último. PR3: Proteinasa 3. PSA: Antígeno Prostático Específico. RAM: Reacción Adversa a Medicamentos. RN: Recién Nacido. RPR: Reagina Plasmática Rápida o prueba para detección de sífilis. SHBG: Sex Hormone-Binding Globulin o Globulina Transportadora de Hormonas Sexuales. SLC: Servicio Laboratorio Clínico (Laboratorio Central). T3: Triyodotironina T4: Tiroxina o Tetrayodotironina. T4L o T4 Free: Tiroxina Libre. TBC: Tuberculosis TCL:Técnica de Cultivo Largo. TD: Técnica Directa. TESTDE ALLEN: Test que permite determinar si las arterias radial y cubital del paciente son permeables. TG: Tiroglobulina TIBC: Capacidad Total de Fijación del Fierro.

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CAPÍTULO 7. ANEXOS

201

TSH: Hormona Tiroestimulante. Trutrol: Bebida comercial para prueba de sobrecarga de glucoca a una concentración de 75 gramos. VDRL: Prueba Serológico para Sífilis (Venereal Disease Research Laboratory). VEB: Virus Epstein Barr. VHS1: Virus Herpes Simplex 1. VHS2: Virus Herpes Simplex 2. VRS: Virus Respiratorio Sincicial. VVZ: Virus Varicela Zoster.

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202

CAPÍTULO 7. ANEXOS

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Capítulo 8

BIBLIOGRAFÍA

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CAPÍTULO 8. BIBLIOGRAFÍA

204

©Hospital Clínico Universidad de Chile. Registro de propiedad intelectual N° 204.050. Prohibida su reproducción total o parcial sin autorización del autor. Inscrito en Santiago de Chile, mayo de 2011.

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CAPÍTULO 8. BIBLIOGRAFÍA

205

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CAPÍTULO 8. BIBLIOGRAFÍA

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22. PRC-LA-OO-01-48. Revisión 01. 19-03-2009. Protocolo de Validación de Calidad de Muestras. Servicio de Laboratorio Clínico. Hospital Clínico Universidad de Chile. 23. PRC-LA-OO-01-49. Revisión 01. 19-03-2009. Protocolo de Solicitud de Nueva Muestras. Servicio de Laboratorio Clínico. Hospital Clínico Universidad de Chile. 24. Tozzoli R, Bizzarro N, Tonutti E, et al. Guidelines for the laboratory use of antibody tests in the diagnosis and monitoring of autoimmune diseases. Am J Clin Pathol 2002; 117: 316-24 25. Kavanaug A, Tomar R, Reveille J, et al. Guidelines for clinical use of the antinuclear antibody test and tests for specific autoantibodies to nuclear antigens. Arch Pathol Lab Med 2000; 124:71-81.

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ÍNDICE ALFABÉTICO 17- Cestosteroides, 105 17- Hidroxicorticoesteroides, 105 17-OH Progesterona, 139 1p32 SIL-TAL , 137 5 Hidroxi Indol Acético en Orina, 146 5 OH Indol Acético, 146 Ac IgA anti-transglutaminasa Tisular, 150 Ácaro Test, 135 Acetona Cualitativa, 95 Acido Úrico Cuantitativo, 105 Acido Úrico en Orina Aislada, 103 Acido Fólico Eritrocitario, 96 Acido Fólico Sérico, 96 Acido Láctico, 96 Acido Pirúvico, 101 Acido Úrico, 93 Acido Vainillilmandélico, 105 Acido Valproico, Niveles Plasmáticos de, 107 Acilcarnitina, 100 ACTH, 141 Actividad de Renina Plasmática, 140 ADA, 145 Adenosindeaminasa, 145 Adenovirus determinación por IFI, 115, 116 Adenovirus determinación por test rápido, 115, 116 Adenovirus, aislamiento viral, 115 Adrenocorticotropina (ACTH), 141 AFP, 162 Aglutininas Anti Rh, 128 Agregación Plaquetaria con Ácido Araquidónico, 155 Agregación Plaquetaria con ADP, 155 Agregación Plaquetaria con Adrenalina, 155 Agregación Plaquetaria con Colágeno, 155 Agregación Plaquetaria con Ristocetina, 155 Albúmina, 93 Aldosterona, 140 Aldosterona en Orina, 141 Alfa 1 Antitripsina Cuantitativa, 102 Alfafetoproteínas, 162 AMA, 161 Amikacina, Niveles Plasmáticos de, 107 Amilasa, 97 Amilasa Cuantitativa, 97, 105 Amilasa en Orina Aislada, 103 Amiloide, 162 Aminoacidemia, 102 Aminofilina, Niveles Plasmáticos de, 107 AML, 161 Amonemia, 144 Amonio, 144

Análisis de Lavado Broncoalveolar, 166 ANA, 161 ANCA x IFI, 161 Androstenediona, 138 Anfetaminas, 109 Angiotensina, Enzima Convertidora de, 102 Antígeno CA 125, 95 Antígeno CA 15-3, 95 Antígeno CA 19-9, 95 Antígeno Carcinoembrinario, 162 Antígeno Criptococo Neoformans, 162 Antígeno de Superficie Hepatitis B, 128 Antígeno de Superficie Virus Hepatitis B, 151 Antígenoe Virus Hepatitis B, 151 Antígeno Helicobacter Pylori, 147 Antígeno Prostático Específico, 95 Antígeno Prostático Específico Total, 95 Antígeno Prostático Específico Total y Libre, 95 Antígeno Streptococcus Pneumoniae, 112 Antígeno Urinario de Legionella Pneumophila, 112 Anti HBc IgM, 151 Anti HBc Total, 151 Anti HBe, 151 Anti HBs, 151 Anti LKM1, 150 Anti Mitocondrial M2, 150 Anti Toxoplasma gondii IgG, 150 Anti Toxoplasma gondii IgM, 150 Anti VHA IgM, 151 Anti VHA Total, 151 Anti VHC, 151 Anti VHE, 151 Anti X Activado, 159 Anticoagulante Circulante, 155 Anticoagulante Lúpico, 155 Anticuerpo IgM Anti Virus Hepatitis A, 151 Anticuerpos Anti Antígeno de Superficie Virus Hepatitis B,151 Anticuerpos Anti Antígeno E Virus Hepatitis B, 151 Anticuerpos Anti Antígenos Nucleares Extractables, 161 Anticuerpos Anti Beta 2 GP1 IgG, 161 Anticuerpos Anti Beta 2 GP1 IgM, 161 Anticuerpos Anti Células Parietales, 161 Anticuerpos Anti Cardiolipinas: IgG e IgM, 161 Anticuerpos Anti Centrómero, 161 Anticuerpos Anti Citoplasma de Neutrófilos, 161 Anticuerpos Anti DNA, 161 Anticuerpos Anti Endomisio, 161 Anticuerpos Anti Equinococcus IgG, 150 Anticuerpos Anti Músculo Liso, 161 Anticuerpos Anti Membrana Basal Glomerular, 161 Anticuerpos Anti Mieloperoxidasa, 161

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Anticuerpos Anti Mitocondriales, 161 Anticuerpos Anti Nucleares, 161 Anticuerpos Anti Péptido C Citrulinado, 161 Anticuerpos Anti Proteinasa 3, 161 Anticuerpos Anti Tiroglobulina (ATG), 140 Anticuerpos Anti Tiroperoxidasa, 140 Anticuerpos Anti-Transglutaminasa Tisular, 150 Anticuerpos Antiepiteliales, 133 Anticuerpos Antifolículos Pilosos, 133 Anticuerpos Antigliadina: IgA e IgG, 161 Anticuerpos Antimelanoma, 133 Anticuerpos Antivejiga, 133 Anticuerpos Atípicos, Panel de Identificación, 128 Anticuerpos Hepatitis C, 128 Anticuerpos IgG anti Saccharomyces Cerevisiae, 150 Anticuerpos IgA anti Saccharomyces Cerevisiae, 150 Anticuerpos IgG Anti Virus Hepatitis C, 151 Anticuerpos IgG Anti Virus de Hepatitis E, 151 Anticuerpos IgM Anti Core Virus hepatitis B, 151 Anticuerpos Totales Anti Core Virus Hepatitis B, 151 Anticuerpos Totales Anti Virus Hepatitis A, 151 Antiestreptolisina O, 99 Antigenemia Candida, 126 Antigenemia Citomegalovirus, 112 Antitrombina III CR, 155 APCA, 161 APCr, 155 Apolipoproteínas, 102 ARP, 140 Articular, 122 Ascítico, 122 ASCA IgA, 150 ASCA IgG, 150 Aspirado Endotraqueal, 53, 117 Aspirado Nasofaríngeo, 48, 115 ATG, 140 ATPO, 140 Azúcares Reductores, 106 B2M, 162 Búsqueda de Demodex, 135 Búsqueda de Parásitos, 136 Búsqueda de Streptococcus grupo B, 119 Baciloscopia, 83, 117 Baciloscopia (expectoración), 117 Bacilospocia, en orina, 112 Balance Graso o Van de Kamer, 147 Bandas Oligoclonales en LCR, 165 Bandas Oligoclonales en Suero, 165 BCL-1 , 137 BCL-2 , 137 Benedict-fehling, 106 Benzodiazepinas, 109 Beta 2 Microglobulina, 162 BhCG, 96 Bicarbonato Standard, 99

Bilirrubina Directa, 94 Bilirrubina Total, 93, 94 Bilirrubina Total y Conjugada, 94 Biopsia de piel, 133 Biotinidasa, 100 C3, 160 C4, 160 Células de Lupus, 164 Células Natural Killer, 164 Calcio, 93 Calcio Cuantitativo, 105 Calcio en Orina Aislada, 103 Calcio Iónico, 99 Campylobacter spp, 113 Carbamazepina, Niveles Plasmáticos de, 107 Carboximetahemoglobina, 99 Carga Viral V.I.H - Ministerial (FONASA), 168 Carga Viral V.I.H - Particular, 168 Carga Viral Virus Hepatitis B, 148 Carga Viral Virus Hepatitis C, 148 Carga Viral, Rotulación, 79 Cariograma, 85 Cariograma con Técnicas Especiales, 129 Cariograma con Técnicas Especiales, para Médula Ósea, 130 Cariograma en Biopsia de Piel, 131 Cariograma en Biopsia Vellosidad Corial, 130 Cariograma en Cultivo de Tejidos, 130, 131 Cariograma en Cultivos de Tejidos, 130 Cariograma en Líquido Amniótico, 131 Cariograma en Mortinato, 131 Cariograma en Restos de Aborto, 130 Cariograma en Sangre de Cordón, 129 Cariograma en Sangre Periférica, 129 Cariograma y FISH en Médula Ósea, 130 Cariograma y FISH en Sangre Periférica, 120 Caroteno Basal, 145 Catéter Urinario a Permanencia, 39 Catecolaminas, 105 Catecolaminas Plasmáticas, 102 Catecolaminas Urinarias, 103 Causas de Rechazo de Muestras, 89 CCAET, 117 CCP3, 161 CD3/CD16+56, 164 CD3/CD19, 164 CD3/CD4, 164 CD3/CD4 y CD3/CD8, 164 CD3/CD8, 164 CEA, 162 Ceruloplasmina, 144 Chagas, PCR para, 124 Ciclosporina, Niveles Plasmáticos de, 107 Cinética de Fierro, 144 Citológico, 120, 122 Citomegalovirus, 112

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Citometría de Flujo, 167 Citoquímico, 120 - 122 Citraturia, 105 CK-Total, 95 CKMB, 95 Cl, 94 Clearance de Creatinina, 97, 105 Clostridium difficile, 113 CLU, 144 CMV, 112,120 Coágulo, 157 Cobre en Sangre, 102 Cobre o Cupruria, 105 Cocaína, 109 Cofactor de Ristocetina, 155 Colesterol HDL, 93 Colesterol Total, 93 Colinesterasa, 102 Complemento C3, 160 Complemento C3 y C4, 160 Complemento C4, 160 Complemento Hemolítico (CH 50), 102 Coombs Directo, Test de, 128 Coombs Indirecto, Test de, 128 Coombs Monoespecífico Anti C3D, 128 Coombs Monoespecífico Anti IgG, 128 Coprocultivo, 113 Cortisol, 139 Cortisol Libre Urinario (CLU), 141 Creatinina, 97 Creatinina Cuantitativa, 97, 105 Creatinina en Orina Aislada, 103 Creatinquinasa Fracción MB, 95 Creatinquinasa Total, 95 Crioaglutininas, 128 Criofibrinógeno, 163 Crioglobulinas, 163 Criptococcus neoformans en LCR, 162 Criptococcus neoformans en suero, 162 Cromatina Sexual (o Nuclear), 64, 132 Cromatina X, 132 Cromatina Y, 132 Cuantificación de Imunoglobulinas y Complemento,160 Cuerpos Cetónicos en Orina, 95, 103 Cuerpos de Heinz, 156 Cultivo anaerobio, 119, 121, 122, 124 Cultivo Corriente, 117, 119 - 122, 124 Cultivo Corriente, 114, 118, 122, 133 Cultivo Corriente (cultivo de expectoración), 116 Cultivo Corriente Ambulatorio, 124 Cultivo Corriente de punta de catéter, 123 Cultivo Corriente Hospitalizado, 124 Cultivo Corriente Nasal, 114 Cultivo Cuantitativo de Aspirado Endotraqueal, 117 Cultivo de Expectoración, 116, 117

Cultivo de hongos, 116 - 120, 122, 123 Cultivo de Koch, 35, 44, 83, 117, 119, 122 Cultivo de Koch (expectoración), 117 Cultivo de Koch, en orina, 112 Cultivo de Mycoplasma y Ureaplasma, 121 Cultivo de Neisseria gonorrhoeae, 119 Cultivo de Neisseria spp, 122 Cultivo o PCR viral, 120 Cultivo para Hongos, 135 Cultivo para Neisseria gonorrhoeae, 118 Cultivo Perineal para Detección de Streptococcus Grupo B, 50, 119 Cupruria, 105 Curva de Glucosa e Insulina, 52 Curva de Insulina, 98 Curva o Test de Tolerancia a la Glucosa (4 Determinaciones), 98 Curva o Test De Tolerancia a la Glucosa Basal y Postcarga, 98 D-Xilosa, 146 D-Xilosa en Orina, 72, 144 D-Xilosa en sangre, 72 Dehidroepiandrosterona Sulfato (DHEA-SO4), 138 Derivado Proteico Purificado, 64, 134 Deshidrogenasa Láctica Total, 93 Desmopresina para cortisol, 142 Detección de Factor V Leiden, 149 Detección de Mutación C677T, 149 Detección de Mutación de Protrombina, 149 Detección de Streptococcus Grupo B, 50, 119 Detección DNA Virus Hepatitis B, 148 Detección RNA Virus Hepatitis C, 148 Determinación Cuantitativa de Elastasa Fecal, 148 Determinación de Auto y Aloanticuerpos de Clase IgG en presencia de IgM, 128 Determinación de Quimerismo, 137 Determinación de tóxina de Clostridium difficile, 113 Determinación de Veneno de Víbora Russel, 155 DHEA-SO4, 138 Digoxina, Niveles Plasmáticos de, 107 Dimero D Cuantitativo, 110 DinitroClorobenceno, 134 Distomatosis, 152 DNCB, 65, 134 Doble Dímero Cualitativo, 158 Doble Dímero Semicualitativo, 158 Drogas de Abuso en Orina, 109 Drogas de Abuso, rotulación, 79 Drogas de Abuso, solicitud, 194 Drogas de Abuso, transporte, 84 Elastasa Fecal, 148 Electrolitos Plasmáticos, 94 Electroforesis de Proteínas en Orina, 165 Electroforesis de Proteínas en Suero, 165 Electrolitos en Orina Aislada, 103 Electrolitos en Orina de 24 horas, 105 Elisa Chagas, 128

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EMA, 161 ENA, 161 Enterococcus Resistente a Vancomicina, 75 Enterovirus, 120 Eosinófilo Bronquial, 111 Eosinófilo Nasal, 111 Eosinófilos en Orina, 111 Eritropoyetina Plasmática, 102 ERV, 76 Espectrometría de Masas de Tandem, 100 Esteatocrito, 147 Estradiol (E2), 138 Estudio Citológico, 121 Estudio D-Xilosa en Orina, 146 Estudio D-Xilosa en sangre, 146 Estudio de Amiloide en Grasa Abdominal, 162 Estudio de Anticuerpos en Frío, 163 Estudio de Brucella, 125 Estudio de Células de Lupus, 164 Estudio de Chlamydia, 118 Estudio de Chlamydia spp por inmunofluorescencia, 119 Estudio de Cristales en Líquido Sinovial, 166 Estudio de Fierro Sérico, 144 Estudio de Función de Neutrófilos, 163 Estudio de Lípidos en Líquido Sinovial, 166 Estudio de Líquidos Especiales, 166 Estudio de Mycoplasma y Ureaplasma, 119 Estudio de Oxiuros, 152 Estudio Genético de Hemocromatosis, 149 Estudio o Investigación de Gusanos, 152 Examen Acaro Test, 135 Examen Micológico Directo, 134 Expectoración, 116 Expectoración Espontánea, 43 Expectoración Inducida, 43, 117 Expectoración para Baciloscopia, 44 Expectoración para Baciloscopia y Cultivo de Koch, 117 Expectoración para Cultivo de Koch, 44 Extracción de ADN, 171 Extracción de ADN/ARN en Tejido, 137 F VIII Ag., 154 Fórmula Leucocitaria, 153 Fósforo, 93 Fósforo Cuantitativo, 105 Fósforo en Orina Aislada, 103 Físico - químico, 120, 121, 122 Factor Reumatoideo, 161 Factor V, 154 Factor VIIIc, 154 Factor Von Willebrand Antigénico, 154 Factores VII, VIIIc, IX, X, XI, XII Y XIII, 154 Fagocitosis de Levadura, 163 Faríngea, toma de muestra, 45 Fasciolasis, 152

Fenilalanina, 100 Fenilalanina (PKU), 141 Fenitoína, Niveles Plasmáticos de, 107 Fenobarbital, Niveles Plasmáticos de, 107 Ferremia, 144 Ferritina, 144 Fibrinógeno, 110, 153 Fierro Sérico, 144 FIP1L1/PDGFRA , 137 FISH, 85, 130 FISH T(15;17), 130 FISH T(9;22), 130 Flujo Vaginal, 48 Folato Sérico, 96 Fosfatasas Ácidas Prostáticas, 102 Fosfatasas Ácidas Totales, 102 Fosfatasas Ácidas Totales y Fracción Prostática, 102 Fosfatasas Alcalinas Totales, 93, 94 Fosfolípidos, 102 FR, 161 FTA-ABS, 125 FV Q506, 149 Galactomanano aspergillus, 126 Galactosa 1p-uridiltransferasa, 100 Galactosa total, 100 Gamma Glutamiltranspeptidasa, 94 Gases y Equilibrio Acido Base, 99 Gastrina, 102 GBM, 161 Gen de la Metilen Tetrahidrofolato Reductasa, 149 Genotipificación o Test de Resistencia a V.I.H., 169 Genotipificación Virus Hepatitis C, 148 Genotipificacion VIH, rotulación, 79 Gentamicina, Niveles Plasmáticos de, 97 GGT, 94 Glucosa, 93 Glucosa Cuantitativa, 109 Glucosa en Orina Aislada, 103 Gonadotrofina Coriónica Humana, 96 GOT, 93, 94 GPT, 94 Grupo Sanguíneo ABO y Rh, 128 Grupos Menores (Kell, Duffy y similares) c/u, 128 HbA1C, 102 HBeAg, 151 HBsAg, 151 Hematocrito, 110, 153 Hemocultivo, 27 Hemocultivo (ambulatorio), 111 Hemocultivo (hospitalizado), 111 Hemocultivo Cuantitativo Pareado, 29, 111 Hemoglobina, 110, 153 Hemoglobina Glicosilada, 102 Hemograma, 110, 153

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Hemorragias Ocultas, 106 Hemosiderina en Orina, 159 Herida, toma de muestra, 50 HH6, 120 Hidatidosis IgG, 150 Hidroxiapatita en Líquido Sinovial, 166 Hidroxiprolina, 105 HIV, 165 HIV 4º Generación Avanzada, 165 HIV Rápido, 165 HLA, 163 HLA B*27, 163 HLA B*5701, 163 Homocisteína, 156 Hormona de Crecimiento (GH), 138 Hormona Folículo Estimulante (FSH), 138 Hormona Luteinizante (LH), 138 Hormona Tiroestimulante, 96 HSV 1, 120 HSV 2, 120 HTLV 1 y 2 Anticuerpos, 128 IFD Bordetella, 115 IFI Crithidia Lucilae, 161 IgA, 160 IgE Específica (36 Alergenos), 160 IgE Específica para Alergenos, 102 IgE Total, 160 IGF-1, 139 IGFBP-1, 102 IGFBP-3, 139 IgG, 160 IgG Adenovirus, 126 IgG Anti Liver Kidney Microsomal, 150 IgG Anti Mitocondrial Fracción M2, 150 IgG Bartonella henselae, 125 IgG Bordetella, 125 IgG Chlamydia pneumoniae, 125 IgG Chlamydia psittaci, 125 IgG Chlamydia trachomatis, 125 IgG Cisticercosis, 126 IgG Citomegalovirus, 125 IgG Distomatosis, 126 IgG Epstein Barr, 125 IgG Hanta, 126 IgG Herpes Simplex 1, 125 IgG Herpes Simplex 2, 125 IgG Hidatidosis, 126 IgG Mycoplasma Pneumoniae, 125 IgG Parotiditis, 126 IgG Rubéola, 126 IgG Toxocariasis, 126 IgG Trichinosis, 126 IgG Virus Varicela Zoster, 126 IgM, 160 IgM Adenovirus, 126 IgM Bartonella Henselae, 125 IgM Bordetella, 125

IgM Citomegalovirus, 125 IgM Distomatosis, 126 IgM Epstein Barr, 125 IgM Hanta, 126 IgM Herpes Simplex 1, 125 IgM Herpes Simplex 2, 125 IgM Mycoplasma Pneumoniae, 125 IgM Parotiditis, 126 IgM Rubéola, 126 IgM Virus Varicela Zoster, 126 Indice IgG/Albúmina, 160 Influenza A determinación por IFI, 115, 116 Influenza A determinación por test rápido, 115, 116 Influenza A, aislamiento viral, 115 Influenza B determinación por IFI, 115, 116 Influenza B determinación por test rápido, 115, 116 Influenza B, aislamiento viral, 115 Influenza H1N1, 115, 116 Influenza Humana, 115, 116 Inhibidor C1 Cuantitativo, 160 Inhibidor C1 Funcional, 160 Inhibidores Bethesda, 159 Inmunofenotipo Leucemias Agudas, 167 Inmunofijación de Cadenas Pesadas y Livianas en Orina 165 Inmunofijación de Cadenas Pesadas y Livianas en Suero, 165 Inmunofluorescencia Directa, 133 Inmunofluorescencia Indirecta, 133 Inmunofluorescencia para Chlamydias, 122 Inmunoglobulina IgA, 160 Inmunoglobulina IgA Secretora, 98 Inmunoglobulina IgG, 160 Inmunoglobulina IgM, 160 Inmunoglobulinas (IgA, IgG, IgM), 160 Inmunoperoxidasa (Biopsia), 133 Insulina Basal, 98 Insuline-Like Growth Binding Protein 3, 139 Insuline-Like Growth Factor 1, 139 Investigación de Drepanocito, 156 Investigación de Fasciolasis, 152 Investigación de Oxiuros, 152 Isoenzimas Fosfatasas Alcalinas, 1 02 Isoinmunización y Cuantificación de Anticuerpos, 128 Isoinmunización, Investigación, 128 K, 87 Lágrimas, 137 Látex de Meningitis, 120 Lípidos Totales, 102 Líquido Amniótico, 58, 121 Líquido Cavidad Peritoneal, 56 Líquido Cavidad Pleural, 57 Líquido Cefalorraquídeo, 120 Líquido Cefalorraquídeo, toma de muestra, 55 Líquidos de Cavidades Estériles, 122 LDH, 86 Leucocitos, 111, 153 Leucocitos fecales, 113

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Liberación de ATP con Colágeno, 155 Linfocitos B, 164 Linfocitos T Cooperadores, 164 Linfocitos T Supresores, 164 Linfocitos T Totales y Linfocitos T Cooperadores, 164 Linfocitos T Totales y Linfocitos T Supresores, 164 Linfocitos T y Células Natural Killer (NK), 164 Linfocitos T y Linfocitos B, 164 Linfomas, 167 Lipasa Sérica, 145 Lipasemia, 145 Lipoproteinas, 102 Lisis de Euglobulina, 157 Litio, Niveles Plasmáticos de, 107 LLC, 167 Médula Ósea, toma de muestra, 60 Magnesio, 101 Magnesio en Orina Aislada, 103 Magnesio en Orina Aislada o de 24 horas, 101 Magnesio en Orina de 24 horas, 105 Marcación de Plaquetas con Mepacrina, 156 Marcadores Tumorales, 162 Marcadores Virales de Hepatitis, 151 Marihuana, 109 Metotrexato Niveles Plasmáticos de, 107 Micológico Directo, 135 Microalbuminuria Cuantitativa, 105 Microalbuminuria en Orina Aislada, 103 Monómeros de Fibrina en el Plasma, 158 Monotest, 125 MPO, 161 MTHFR C677T, 149 Mutación G1691A, 149 Mutación JAK2/V617F , 137 Mutación PT G20210A, 149 Mutación T315I, 137 Mutaciones C282Y y H63D, 149 Mycoplasma, 118 Mycoplasma spp, 118 MYH11/CBFß , 137 Na, 94 Nasal, toma de muestra, 41 Nitrógeno Uréico Cuantitativo, 105 Nitrógeno Uréico, 93 Nitrógeno Uréico en Orina Aislada, 103 Niveles Plasmáticos de Carbamazepina, 108 Niveles Plasmáticos de Fenitoína, 107 NK, 164 Observación Directa al Fresco, 134 Opiácidos, 109 Orina 2º Chorro, 104, 112 Orina Aislada, 30, 83 Orina Completa, 83, 104 Orina de 24 horas, 37 Orina de Primer Chorro, 34

Orina para Baciloscopia y Cultivo de Koch, 35, 83 Orina Post Masaje Prostático, 36 Orina, Fisicoquímico, 104 Osmolaridad en Plasma, 102 Osmolaridad Urinaria, 103 Oxalaturia, 105 Oxiuros, 152 Panel Leucemia Aguda, 177 Panel Leucemia Células Velludas, 177 Panel Leucemia Linfatica Crónica, 177 Panel Linfoma, 177 Panel Viral por Inmunofluorescencia, 115, 116 Panel Viral rápido, 115, 116 Parainfluenza determinación por IFI, 115, 116 Parainfluenza, aislamiento viral, 115 Parasitológico Seriado de Deposiciones, 152 Paratohormona, 140 Paul Bunell, 125 PCR, 97 PCR Cualitativo Linfoma - Leucemia, 137 PCR Cuantitativo, 137 PCR para Chagas, 124 PCR para Influenza H1N1, 115, 116 PCR para Toxoplasmosis, 124 PCR us, 97 PCR VHB, 148 PCR VHC, 148 PCR viral, 120 Pelo, toma de muestra, 62 Perfil de Acilcarnitinas, 100 Perfil de Aminoácidos, 100 Perfil Bioquímico, 93 Perfil Hepático, 94 Perfil Lipídico, 93 Pericárdico, 122 Peritoneal, 122 Piel, toma de muetra, 61 PKU, 141 Plaquetas, 110 Plasma Rico en Factores de Crecimiento, 137 Pleural, 122 PNP, 155 Poblaciones y Subpoblaciones Linfocitarias, 164 Porfobilinógeno, 146 Porfobilinogeno Urinario, prueba cualitativa, 146 PP65, 112 PPD, 64, 135 PPLO, 121 PR3, 161 Prealbúmina, 96 Preparación Lágrimas Suero Autólogo, 137 Preparación Plasma Autólogo Rico en Factores de Crecimiento, 137 Primidona, Niveles Plasmáticos de, 107 ProBNP, 95 Procalcitonina, 102 Progesterona, 138

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Prolactina, 139 Proteína C, 155 Proteína C Reactiva Cuantitativa, 97 Proteína C Reactiva Ultrasensible, 97 Proteína Cuantitativa, 105 Proteína de Bence Jones, 164 Proteína S, 155 Proteínas Fraccionadas Albúminas/Globulinas, 93 Proteínas Totales, 93 Proteinas en Orina Aislada, 103 Proteinuria Aislada, 103 Proteinuria de 24 horas, 105 Prueba de Suero Autólogo, 136 PTH, 140 Punción Arterial, 23 Punción Cutánea, 25 Punción Venosa, 21 Punta de Catéter, 123 Punta de Catéter, toma de muetra, 59

Semen, toma de muestra, 48 Separación de Células Dendríticas en Sangre Periférica, 137 Separación de Células CD34, 137 Separación de Linfocitos T, 137 Separación de PBMC (Ficoll), 137 Serología Parvovirus B19, 125 Sex Hormone-Binding Globulin (SHBG), 138 SHBG, 138 Sinovioanálisis Completo, 166 Sobrecarga de Caroteno, 145 Sonda Foley, 32, 104, 112 Sondeo Vesical, 33, 104, 112 Stem Cell CD34, 167 Streptococcus B Hemolítico Grupo A, 114 Streptococcus Grupo B, 119 Subclases de IgG (1,2,3,4), 102 Subgrupo ABO y Rh c/u, 128 Subpoblaciones Linfocitarias, 164 Sudan III, 147

Q-PCR, 137 Quimiotaxis, 163

T Helper, 164 t(12;21) TEL/AML1, 137 t(15;17) PML/RAR alfa, 137 t(16;16) o inv(16), 137 t(1;19) E2A/PBX1, 137 t(4 ;11) MLL-AF4 , 137 t(8;21)AML1/ETO, 137 t(9;22) BCR/ABL p190 , 137 t(9;22) BCR/ABL p210 , 137 T3, 96 T4, 96 T4 L, 96 Técnica de Graham, 152 Técnica de Maki, 59, 123 Técnicas Electroforéticas, 165 Títulos Anti HBs Post Vacunación, 151 Tacrolimus, Niveles Plasmáticos de, 107 Tejido Óseo, toma de muestra, 60 Teofilina, Niveles Plasmáticos de, 107 Test de ACTH para 17-OH Progesterona, 143 Test de ACTH para Cortisol, 142 Test de Clonidina para Hormona de Crecimiento, 143 Test de Dexametasona, 142 Test de Dexametasona para cortisol, 142 Test de Donath Lansteiner, 128 Test de Ham, 156 Test de Mieloestimulación con Prednisona, 158 Test de Neutralización Plaquetaria, 155 Test de Nugent, 142 Test de Sucrosa, 156 Test de Tolerancia a la Glucosa para Hormona de Crecimiento, 143 Test de Transformación Linfoblástica, 132 Test de Tzanck, 135 Test rápido de HIV, 128 Test rápido Streptococcus B hemolítico Grupo A, 114 Test Reptilasa, 157

Rapamicina, Niveles Plasmáticos de, 107 Raspado de Piel, Examen Microscópico, 135 Reacción de Widal, 125 Recolector, 104, 112 Recuento de Plaquetas, 153 Recuento Leucocitos, 153 Recuento Reticulocitos, 153 Recuentos Celulares, 110 Renina Plasmática, 140 Reptilasa, 157 Resistencia a inh. de Tirosin Quinasa, 137 Resistencia Globular Osmótica, 157 Resistencia Proteína C, 155 Reticulocitos, 110, 153 Retracción del Coágulo, 157 Rotavirus, 113 Rotulación HIV, rotulación, 79 Rotulación, procedimiento general, 79 RPR, 125 Saliva, toma de muestra, 51 Screening Metabólico, 103 Screening Neonatal Ampliado, 100 Secreción Conjuntiva, 39, 122 Secreción de Endocérvix, 48, 119 Secreción Endometrial, 49, 119 Secreción Faríngea, 114 Secreción Nasal, 114 Secreción Ótica Externa, 40, 123 Secreción Ótica Media, 41, 123 Secreción Post Masaje Prostático, 47, 118 Secreción Uretral, 46, 118 Sedimento Urinario, 104 Semen, 118

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Testosterona Libre, 138 Testosterona Total, 138 Tetrayodotironina, 96 Tetrayodotironina Libre, 96 TG, 150 TIBC, 144 Tiempo de Protrombina (TP), 94, 110, 153 Tiempo de Sangría, 55, 110 Tiempo de Trombina, 153 Tiempo Parcial de Tromboplastina (TTPA), 110, 153 Tinción de Estearasa, 154 Tinción de Fosfatasas Ácidas, 154 Tinción de Fosfatasas Alcalina, 154 Tinción de Glicógeno o PAS, 154 Tinción de Gram, 114, 116 - 123 Tinción de Hemosiderina, 154, 166 Tinción de Lípidos o Sudán,154 Tinción de Peroxidasa, 154 Tinción Violeta Bicarbonato para Campylobacter spp , 113 Tinta China, 120 Tipificación HLA, 163 Tipificación HLAB*27, 163 Tipificación HLAB*5701, 163 Tiroglobulina (TG), 140 Tiroxina, 96 Tiroxina Libre, 96 Torulado Nasofaríngeo, 43, 116 Toxoplasma gondii, 150 Toxoplasmosis, PCR para, 124 Trab Anticuerpos Receptores TSH, 102 Transaminasas Oxalacética, 94 Transaminasas Oxalacética y Pirúvica, 94 Transaminasas Pirúvica, 94 Transaminasas, Oxalacética, 93 Transformación Linfoblástica en Sangre Venosa, 132 Transporte de Muestras, 81 Tricograma, 144 Triglicéridos, 93 Tripsina, 100 Triyodotironina, 96 Trombofilia Hereditaria, 85, 149 Troponina, 95 TSH, 96 TSH Neonatal, 141 TTPA, 110

Vancomicina, Niveles Plasmáticos de, 107 VDRL, 120, 125 VEB IgG, 125 VEB IgM, 125 Ventana de Rebuck, 158 VHS, 110, 153 VHS1 IgG, 125 VHS1 IgM, 125 VHS2 IgG, 125 VHS2 IgM, 125 Vibrio spp, 113 VIH, 165 Virus de la Hepatitis B, 148 Virus de la Hepatitis C, 148 Viscosidad Sanguínea, 158 Vitamina B12, 96 VRS determinación por IFI, 115, 116 VRS determinación por test rápido, 115, 116 VRS, aislamiento viral, 115 VVZ, 120 Yersinia spp, 113 Zinc, 102 Zinc o Zinquiuria, 105

Uñas, toma de muestra, 63 Ureaplasma, 118 Ureaplasma spp, 118 Urocultivo, 83, 112 Urocultivo (ambulatorio), 112 usCRP, 97

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